Folin-酚试剂法测定蛋白质含量
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B.应用本方法有哪些干扰作用？为什么？应如何注意？ 答：1，应用本方法的干扰作用：能干扰双缩脲反应的基团以及在性质上是氨基 酸或肽的缓冲剂（如蔗糖，硫酸铵，巯基化合物等）的干扰以及反应的时间差异 的干扰。
2，造成上述干扰作用的原因为：此法是在 Folin-酚法的基础上引入双缩脲试剂 而成，故所以凡干扰双缩脲反应的因素亦可干扰本方法。同时此反应的显色程度 随反应时间的延长而不断加深，故反应时间的不一致亦为应用本方法的一个干扰 作用。 3，因此需注意事项有：在实验过程中防止因操作不规范而引入干扰杂质以及严 格的控制反应时间。
= 102.7µg/ml×600 = 61.62µg/ml = 61.62g/L 正常人血清蛋白浓度参考范围为：60~80g/L 以上依赖所得实验数据分析得出的待测蛋白浓度落在正常范围内，可认为本次实 验成功。
讨论： A：本次实验中操作严格按照实验要求进行，故所测样品结果 61.62g/L 落在正常 范围内。与同实验室另一小组所测结果（61.80g/L）相比差距很小，故可认为本 次实验成功。 B：实验误差分析如下： 1，在使用加样枪移液过程中可因试液未完全放入试管而有少许残留于移液枪头 导致操作误差。
仪器与器材： V-1100 分光光度计； 恒温水浴箱；试管 6 支、试管架； 加样枪、 加样枪架； 坐标纸
实验步骤示意
蛋白 标 准液
碱性硫 酸铜溶液
混合均匀 静置 10min
加酚 试剂
2s 内混 合均匀
40℃ 水浴 10min
冷却 至室温
比色
详细步骤
A，配置一定浓度梯度溶液: 取 6 支试管分别编号 1 至 6，按下表加样。（1 作空 白对照，2-5 作标准，6 为待测样品）
Folin-酚试剂法测定蛋白质含量
一、实验目的
1，掌握 Folin-酚试剂法测定蛋白质含量的原理及其具体实验操作技术；
2，掌握制作标准曲线的要领；
3，学会通过标准曲线求样品溶液中待测定物质含量的方法。
二、实验原理
1，蛋白质分子中含有的肽键在碱性条件下可以与 Cu2+螯合形成蛋白质Cu2+复合物，即发生双缩脲反应。而此复合物中的含酚羟基的酪氨酸或色氨酸残 基可以还原 Folin-酚试剂的磷钼酸盐-磷钨酸盐，产生蓝色化合物（钼蓝和钨蓝 的混合物），即发生 Folin-酚显色反应。同时，在碱性条件下 Folin-酚试剂极 不稳定，从而易被蛋白质还原而呈蓝色反应。
2，在使用分光光度计测吸光度时，因未能及时将溶液转移至比色皿而导致分别 测定 2-6 试管时各组测定时间的时间间隔不一致，以及在读数时未等读数稳定就 读数均可导致测量误差。
思考题
A.试述 Folin-酚试剂法的优点？ 答：该方法联用 Folin-酚试剂法和双缩脲试剂法测定蛋白质含量可使显色反应 更为明显，从而提高了检测蛋白质的灵敏度。
1，加样时按横向顺序加样，并在加入碱性硫酸铜时：于一号试管加入碱性硫酸 铜溶液 2ml 后等待一分钟再往下一支试管加入同量的碱性硫酸铜溶液，摇匀。如 此类推混匀并将其静置在室温下。
2，在全部试管加完碱性硫酸铜试剂之至距第一支试管加样 10 分钟后，于第 1 支试管立即加入 0.20mL Folin-酚试剂，并于 2s 内摇匀。1 分钟后第 2 支试管加 入 0.20mL Folin-酚试剂，2 分钟后加第 3 支试管，以此类推。
四、结果与讨论：
结果： A，实验过程现象： 1，在向试管中加入 2ml 碱性硫酸铜溶液并摇匀后，溶液澄清，无明显现象； 2，在向试管中加入 0.20mL Folin-酚试剂并立即摇匀时观察到：溶液由浅绿立 即先变黄后变浅蓝，且蓝色随时间延长而有所加深。
B，吸光度数据：
500nm 波长吸收度值记录
测定次数
试剂（ml）
空白管
1
2
牛血清蛋白标准液
-
0.20
样品液（稀释 300 倍） -
-
蒸馏水
1.0
0.80
碱性硫酸铜
2.0
2.0
Folin-酚试剂
0.20
0.20
蛋白质浓度（µg/ml） 0
40
标准管
3
4
0.40
0.60
-
-
0.60
0.40
2.0
2.0
0.20
0.20
80
120
样品管
5
6
0.80
-
-
0.50
2，在一定浓度范围内，蓝色化合物的蓝色深浅与蛋白质浓度呈正比。故通 过测定相应浓度梯度的蛋白质标准溶液吸光度可依其作出标准曲线，以此绘制的 标准曲线和供试品中蛋白质溶液吸光度可求出供试品中蛋白质的含量。
三、材料和方法
样品：健康人血清（300 倍稀释）；正常人血清蛋白质含量：60~80 g/L
试剂：牛血清白蛋白标准液（200µg/ml）；碱性硫酸铜溶液（现配）；Folin酚试剂
根据吸光度数据绘制图表：
试管
1
牛血清蛋白标准液浓 0
度（µg/ml）
A500 平均值
0
2
3
4
5
6
40
80
120
160
-
0.0620 0.1187 0.1730 0.2177 0.146
将测得样品管吸光度 0.1460 代入标准曲线公式 y=0.0013x+0.0125 中，得出样品 浓度为 102.7µg/ml。 即： C（未稀释蛋白含量） = C（稀释后蛋白质含量）×2×300
ຫໍສະໝຸດ Baidu
各管吸光度值 A500
2
3
4
5
1
0.063
0.119
0.173
0.222
2
0.059
0.119
0.171
0.219
3
0.064
0.118
0.175
0.212
—
各管平均值A500
0.0620 0.1187 0.1730 0.2177
（对照组的实验数据均为 0）
6 0.148 0.150 0.140
0.146
0.20
0.50
2.0
2.0
0.20
0.20
160
未知
B，加样完毕后将各试管每隔 1min 按 1-6 顺序放一只试管入水浴箱，分别 40℃ 水浴 10min 后取出冷却至室温。
C，以 500nm 波长比色，以 1 号管作空白对照，按 2-6 顺序每隔一分钟测定一支 试管内溶液吸光度并重复测三次，记下读数，求出平均值，记录数据并计算结果。
2，造成上述干扰作用的原因为：此法是在 Folin-酚法的基础上引入双缩脲试剂 而成，故所以凡干扰双缩脲反应的因素亦可干扰本方法。同时此反应的显色程度 随反应时间的延长而不断加深，故反应时间的不一致亦为应用本方法的一个干扰 作用。 3，因此需注意事项有：在实验过程中防止因操作不规范而引入干扰杂质以及严 格的控制反应时间。
= 102.7µg/ml×600 = 61.62µg/ml = 61.62g/L 正常人血清蛋白浓度参考范围为：60~80g/L 以上依赖所得实验数据分析得出的待测蛋白浓度落在正常范围内，可认为本次实 验成功。
讨论： A：本次实验中操作严格按照实验要求进行，故所测样品结果 61.62g/L 落在正常 范围内。与同实验室另一小组所测结果（61.80g/L）相比差距很小，故可认为本 次实验成功。 B：实验误差分析如下： 1，在使用加样枪移液过程中可因试液未完全放入试管而有少许残留于移液枪头 导致操作误差。
仪器与器材： V-1100 分光光度计； 恒温水浴箱；试管 6 支、试管架； 加样枪、 加样枪架； 坐标纸
实验步骤示意
蛋白 标 准液
碱性硫 酸铜溶液
混合均匀 静置 10min
加酚 试剂
2s 内混 合均匀
40℃ 水浴 10min
冷却 至室温
比色
详细步骤
A，配置一定浓度梯度溶液: 取 6 支试管分别编号 1 至 6，按下表加样。（1 作空 白对照，2-5 作标准，6 为待测样品）
Folin-酚试剂法测定蛋白质含量
一、实验目的
1，掌握 Folin-酚试剂法测定蛋白质含量的原理及其具体实验操作技术；
2，掌握制作标准曲线的要领；
3，学会通过标准曲线求样品溶液中待测定物质含量的方法。
二、实验原理
1，蛋白质分子中含有的肽键在碱性条件下可以与 Cu2+螯合形成蛋白质Cu2+复合物，即发生双缩脲反应。而此复合物中的含酚羟基的酪氨酸或色氨酸残 基可以还原 Folin-酚试剂的磷钼酸盐-磷钨酸盐，产生蓝色化合物（钼蓝和钨蓝 的混合物），即发生 Folin-酚显色反应。同时，在碱性条件下 Folin-酚试剂极 不稳定，从而易被蛋白质还原而呈蓝色反应。
2，在使用分光光度计测吸光度时，因未能及时将溶液转移至比色皿而导致分别 测定 2-6 试管时各组测定时间的时间间隔不一致，以及在读数时未等读数稳定就 读数均可导致测量误差。
思考题
A.试述 Folin-酚试剂法的优点？ 答：该方法联用 Folin-酚试剂法和双缩脲试剂法测定蛋白质含量可使显色反应 更为明显，从而提高了检测蛋白质的灵敏度。
1，加样时按横向顺序加样，并在加入碱性硫酸铜时：于一号试管加入碱性硫酸 铜溶液 2ml 后等待一分钟再往下一支试管加入同量的碱性硫酸铜溶液，摇匀。如 此类推混匀并将其静置在室温下。
2，在全部试管加完碱性硫酸铜试剂之至距第一支试管加样 10 分钟后，于第 1 支试管立即加入 0.20mL Folin-酚试剂，并于 2s 内摇匀。1 分钟后第 2 支试管加 入 0.20mL Folin-酚试剂，2 分钟后加第 3 支试管，以此类推。
四、结果与讨论：
结果： A，实验过程现象： 1，在向试管中加入 2ml 碱性硫酸铜溶液并摇匀后，溶液澄清，无明显现象； 2，在向试管中加入 0.20mL Folin-酚试剂并立即摇匀时观察到：溶液由浅绿立 即先变黄后变浅蓝，且蓝色随时间延长而有所加深。
B，吸光度数据：
500nm 波长吸收度值记录
测定次数
试剂（ml）
空白管
1
2
牛血清蛋白标准液
-
0.20
样品液（稀释 300 倍） -
-
蒸馏水
1.0
0.80
碱性硫酸铜
2.0
2.0
Folin-酚试剂
0.20
0.20
蛋白质浓度（µg/ml） 0
40
标准管
3
4
0.40
0.60
-
-
0.60
0.40
2.0
2.0
0.20
0.20
80
120
样品管
5
6
0.80
-
-
0.50
2，在一定浓度范围内，蓝色化合物的蓝色深浅与蛋白质浓度呈正比。故通 过测定相应浓度梯度的蛋白质标准溶液吸光度可依其作出标准曲线，以此绘制的 标准曲线和供试品中蛋白质溶液吸光度可求出供试品中蛋白质的含量。
三、材料和方法
样品：健康人血清（300 倍稀释）；正常人血清蛋白质含量：60~80 g/L
试剂：牛血清白蛋白标准液（200µg/ml）；碱性硫酸铜溶液（现配）；Folin酚试剂
根据吸光度数据绘制图表：
试管
1
牛血清蛋白标准液浓 0
度（µg/ml）
A500 平均值
0
2
3
4
5
6
40
80
120
160
-
0.0620 0.1187 0.1730 0.2177 0.146
将测得样品管吸光度 0.1460 代入标准曲线公式 y=0.0013x+0.0125 中，得出样品 浓度为 102.7µg/ml。 即： C（未稀释蛋白含量） = C（稀释后蛋白质含量）×2×300
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各管吸光度值 A500
2
3
4
5
1
0.063
0.119
0.173
0.222
2
0.059
0.119
0.171
0.219
3
0.064
0.118
0.175
0.212
—
各管平均值A500
0.0620 0.1187 0.1730 0.2177
（对照组的实验数据均为 0）
6 0.148 0.150 0.140
0.146
0.20
0.50
2.0
2.0
0.20
0.20
160
未知
B，加样完毕后将各试管每隔 1min 按 1-6 顺序放一只试管入水浴箱，分别 40℃ 水浴 10min 后取出冷却至室温。
C，以 500nm 波长比色，以 1 号管作空白对照，按 2-6 顺序每隔一分钟测定一支 试管内溶液吸光度并重复测三次，记下读数，求出平均值，记录数据并计算结果。