实验六 蛋白质含量测定
实验六双缩脲法测定蛋白质含量
三、操作
1、稀释血清的制备 准确吸取血清0.5mL，置于试管中，加入 0.9% NaCl（即生理盐水）4.5mL,混匀备用。 （血清稀释倍数是多少？5/0.5=10）
2.取三支试管按下表操作
试剂（mL） 蒸馏水
5mg/mL标准蛋白质溶液
空白管 标准 4.0 — — 1.0 4.0
稀释血清 双缩脲试剂 A540
混匀，放置30min后，用分光光度计在 540nm波长处比色，以空白管调零点，测定各 管吸光度。
四、计算
A测定 100 C标准 稀释倍数 血清蛋白质含量（g / 100 mL） A标准 1000
C标准 ：标准蛋白质溶液浓度，为5mg/mL
血清稀释倍数为10 （人的正常值：6～8g/100mL）
2.器材：
(1)试管及试管架； (2) 吸管； (3) 分光光度计。
试剂和器材 1.试剂
(1) 0.9％NaCl溶液即生理盐水； (2) 双缩脲试剂：称取1.5g 硫酸铜(CuSO4•5H2O) 和 6.0g酒石酸钾钠(NaKC4H4O6•4H2O) 溶于500mL蒸馏水 中，在搅拌下加入300 mL 10%NaOH溶液和1.0g KI， 最后用蒸馏水定容至1000mL。 (3) 标准蛋白质溶液(5mg/mL)：牛血清清蛋白用H2O 或0.9%NaCl配制，酪蛋白用0.05mol/LNaOH配制。 (4) 待测蛋白质溶液：血清样本；
实验四 双缩脲法测定蛋白质含量
一、目的
掌握双缩脲法测定蛋白质含量的原理和方法
二、原理
双缩脲是由两分子尿素缩合而成的化合物， 在碱性溶液中双缩脲与硫酸铜反应生成紫红色 络合物，称为双缩脲反应。具有两个或两个以 上肽键的化合物都有双缩脲反应，因此蛋白质
蛋白质的含量测定实验
蛋白质的含量测定实验蛋白质是构成生物体的重要有机分子之一，对于了解生物体的组成和功能具有重要意义。
在科学研究和食品加工等领域，准确测定蛋白质的含量是十分关键的。
本实验将介绍一种常用的蛋白质含量测定方法——低里氏法。
一、材料与试剂准备1. 组织样本：可以选择动植物组织，如肝脏、肌肉等。
2. 水浴锅：用于加热试剂，保持温度恒定。
3. 显色试剂：选择低里氏试剂，常见的有Bradford显色试剂。
4. 蛋白质标准溶液：根据需要选择适当浓度的蛋白质标准溶液，常用的有Bovine Serum Albumin（BSA）标准溶液。
5. 常用实验器材：包括离心管、移液管、离心机、比色皿等。
二、实验步骤1. 样本制备：a. 提取组织样本：取适量的组织样本，如肝脏、肌肉等，使用离心机将其离心，去除杂质和溶液。
b. 重建组织样本：向组织样本中加入一定体积的溶液，使样本浓度适宜，便于后续的测定。
2. 样本处理：a. 取相同体积的样本和蛋白质标准溶液，分别加入离心管中。
b. 添加适量的显色试剂，轻轻摇匀，使样本和标准溶液均匀与显色试剂充分接触。
c. 将离心管放入水浴锅中，调节温度为适宜条件，如常温或37℃。
d. 静置一段时间，使显色反应充分进行。
3. 比色测定：a. 取适量的显色反应液，加入比色皿中。
b. 使用光密度计或分光光度计，以试剂空白对照为基准，测定各个样本的吸光度。
c. 根据吸光度的读数，结合标准曲线，计算出样本中蛋白质的含量。
三、数据分析与结果解读根据实验的结果，我们可以得到样本中蛋白质的含量。
通过对不同样本的测定，可以比较不同组织或不同处理条件下蛋白质含量的差异。
同时，通过与蛋白质标准溶液的比较，可以验证测定方法的准确性和可靠性。
实验结果的解读应根据具体情况进行。
如果是在科学研究中，可以将结果与已有文献进行比较，探讨其在生物体功能或代谢方面的意义。
如果是在食品加工中，可以根据蛋白质含量的测定结果来评估食品的营养价值和质量。
蛋白质制备及含量测定
实验六蛋白质制备及含量测定微量凯氏(Mirco・Kjeldahl)定氮法一、实验目的要求1、了解蛋白质提取的一般方法和原理2、了解蛋白质含量测定的常用方法3、学习微量凯氏定氮法的原理4、掌握微量凯氏定氮法的操作技术，包括样品的消化、蒸镭、滴定、含氮量的计算及蛋白质含量的换算等。
二、实验原理1、蛋白质的提取与制备蛋白质的提取与制备方法与生物材料的类型及蛋白质的存在部位有关。
如果是胞内蛋白，首先必须要进展细胞破碎。
细胞破碎的方法与细胞的类型有关，包括物理破碎(研磨、超声波等)、化学破碎(化学洛剂处理)、酶法破碎等。
如果是胞外蛋白，可以根据相应蛋白质的性质进展提取别离纯化。
如果待提取的蛋口质是具有生物活性的蛋口质如酶，那么在样品处理、提取及别离纯化过程中需注意防止蛋白质的变形失活，如在低温下操作、选择适当的缓冲体系等。
2、蛋白质含量测定蛋口质含量测定的方法很多，如：紫外吸收法、双缩腺法、考马斯亮蓝染色法(Bradford法)、Folin酚法、微量凯氏定氮法等。
3、凯氏定氮生物材料的含氮量测定在生物化学硏究中具有一定的意义，如蛋白质的含氮量约为16%,测出含氮量那么可推知蛋白含量。
生物材料总氮量的测定，通常采用微量凯氏定氮法。
凯氏定氮法山于具有测定准确度高，可测定各种不同形态样品等两大优点，因而被公认为是测定食品、饲料、种子、生物制品、药品中蛋白质含量的标准分析方法。
其原理如下：(1)消化：有机物与浓硫酸共热，使有机氮全部转化为无机氮一一硫酸镀。
为加快反响，添加硫酸铜和硫酸钾的混合物；前者为催化剂，后者可提高硫酸沸点。
这一步约需2〜3d视样品的性质而定。
天然的含氮有机物(如蛋白质，核酸及氨基酸等)与浓硫酸共热时，其中的碳、氢二元素被氧化成二氧化碳和水；蛋白质分解，而有机氮那么变成氨(无机氮)，并进一步与硫酸作用生成硫酸镀。
此时程称之为“消化“。
但是，这个反响进展得比拟缓慢，通常需要参加硫酸钾或硫酸钠以提高反响的沸点，并参加硫酸铜作为催化剂，以促进反响的进展。
蛋白质的定量测定实验报告
蛋白质的定量测定实验报告一、实验目的。
本实验旨在通过比色法和BCA法两种方法，对蛋白质的定量测定进行实验，以便了解蛋白质含量的测定原理和方法。
二、实验原理。
1. 比色法，比色法是通过测定蛋白质与试剂发生的化学反应后产生的色素溶液的吸光度，从而计算出蛋白质的含量。
常用的试剂有布拉德福试剂和Lowry试剂。
2. BCA法，BCA法是通过测定蛋白质与BCA试剂在碱性条件下发生的紫色螯合物的吸光度，从而计算出蛋白质的含量。
三、实验材料和仪器。
1. 实验材料，蛋白质标准品、蛋白质样品、比色法试剂（布拉德福试剂或Lowry试剂）、BCA试剂、离心管、比色皿等。
2. 实验仪器，分光光度计、离心机、移液器、比色皿架等。
四、实验步骤。
1. 比色法实验步骤：a. 取适量蛋白质标准品和待测样品，分别加入布拉德福试剂或Lowry试剂。
b. 在室温下反应一定时间后，用分光光度计分别测定吸光度。
c. 根据标准曲线，计算出待测样品中蛋白质的含量。
2. BCA法实验步骤：a. 取适量蛋白质标准品和待测样品，分别加入BCA试剂。
b. 在室温下反应一定时间后，用分光光度计测定吸光度。
c. 根据标准曲线，计算出待测样品中蛋白质的含量。
五、实验结果与分析。
通过比色法和BCA法两种方法测定了蛋白质的含量，得到了相应的实验数据。
经过对实验数据的分析，可以得出蛋白质含量的定量结果。
六、实验结论。
根据实验结果，比色法和BCA法都可以用于蛋白质的定量测定，但在实际应用中需要根据具体情况选择合适的方法。
同时，实验结果也验证了蛋白质定量测定方法的准确性和可靠性。
七、实验总结。
本实验通过比色法和BCA法两种方法，对蛋白质的定量测定进行了实验，深化了对蛋白质含量测定原理和方法的理解，提高了实验操作技能和数据处理能力。
八、参考文献。
1. 《生物化学实验技术手册》。
2. Smith, P. K., et al. (1985). "Measurement of protein using bicinchoninic acid." Analytical Biochemistry 150(1): 76-85.以上就是本次蛋白质的定量测定实验报告的全部内容。
蛋白质含量测定实验报告
一、实验目的1. 理解并掌握考马斯亮蓝法测定蛋白质含量的原理和操作步骤。
2. 学习使用分光光度计进行比色分析。
3. 通过实验，掌握蛋白质含量测定的实际操作，提高实验技能。
二、实验原理考马斯亮蓝法是一种快速、简便的蛋白质定量方法。
该法基于蛋白质与考马斯亮蓝G-250染料的结合，蛋白质含量与染料结合程度呈线性关系。
通过测定溶液在特定波长下的吸光度，可以计算出蛋白质的含量。
实验原理：蛋白质分子中的肽键在碱性条件下能与考马斯亮蓝G-250染料发生结合，形成有色的复合物。
该复合物在特定波长下有特征性吸收峰，其吸光度与蛋白质含量呈线性关系。
三、实验材料1. 蛋白质标准品（如牛血清白蛋白）。
2. 考马斯亮蓝G-250染料。
3. 6.0mol/L NaOH溶液。
4. 双蒸水。
5. 分光光度计。
6. 试管、移液器、吸管等实验器材。
四、实验步骤1. 标准曲线制作：将不同浓度的蛋白质标准品配制成溶液，分别加入考马斯亮蓝G-250染料，在特定波长下测定吸光度，绘制标准曲线。
2. 样品处理：取待测样品，按照一定比例稀释，加入考马斯亮蓝G-250染料，在特定波长下测定吸光度。
3. 数据处理：根据标准曲线，计算待测样品中的蛋白质含量。
五、实验结果与分析1. 标准曲线制作：根据实验数据，绘制标准曲线，得出线性方程。
2. 样品处理：取待测样品，按照一定比例稀释，加入考马斯亮蓝G-250染料，在特定波长下测定吸光度。
3. 数据处理：根据标准曲线，计算待测样品中的蛋白质含量。
实验结果显示，待测样品中的蛋白质含量为XX g/L。
六、实验讨论1. 实验过程中，应注意操作规范，避免污染和误差。
2. 在制作标准曲线时，应选择合适的浓度范围，保证线性关系良好。
3. 待测样品的稀释倍数应根据实际浓度选择，以保证在检测范围内。
4. 在测定吸光度时，应注意仪器校准和操作，避免误差。
七、实验总结本次实验通过考马斯亮蓝法测定了待测样品中的蛋白质含量，实验结果准确可靠。
蛋白含量测定实验报告
一、实验目的1. 掌握双缩脲试剂法测定蛋白质含量的原理和方法；2. 熟悉实验操作步骤，提高实验技能；3. 了解蛋白质含量测定的意义和实际应用。
二、实验原理双缩脲试剂法是一种常用的蛋白质定量方法，其原理是蛋白质分子中的肽键在碱性条件下与铜离子反应，生成紫红色络合物。
紫红色络合物的吸光度与蛋白质含量在一定范围内呈线性关系，通过测定吸光度，可以计算出蛋白质的含量。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 蛋白质标准品- 双缩脲试剂A：硫酸铜溶液- 双缩脲试剂B：酒石酸钾钠溶液- 0.1mol/L氢氧化钠溶液- 0.9%氯化钠溶液- 试管、移液器、分光光度计、天平等2. 实验仪器：- 双缩脲试剂瓶- 磁力搅拌器- 水浴锅- 721型分光光度计四、实验步骤1. 配制标准蛋白质溶液：准确称取一定量的蛋白质标准品，用0.1mol/L氢氧化钠溶液溶解，配制成一定浓度的标准蛋白质溶液。
2. 混合试剂：将双缩脲试剂A和双缩脲试剂B按照一定比例混合，配制成双缩脲试剂。
3. 设置实验组：取若干支试管，分别加入不同浓度的标准蛋白质溶液、待测蛋白质溶液和0.9%氯化钠溶液。
4. 添加试剂：向每组试管中加入适量的双缩脲试剂，混匀。
5. 水浴加热：将试管放入水浴锅中，加热至60℃，保持10分钟。
6. 冷却：取出试管，置于室温下冷却。
7. 测定吸光度：用721型分光光度计在540nm波长下测定吸光度。
8. 绘制标准曲线：以标准蛋白质溶液浓度为横坐标，吸光度为纵坐标，绘制标准曲线。
9. 计算待测蛋白质含量：根据待测蛋白质溶液的吸光度，从标准曲线上查得相应的蛋白质浓度，计算待测蛋白质含量。
五、实验结果与分析1. 标准曲线绘制：根据实验数据，绘制标准曲线。
2. 待测蛋白质含量计算：根据待测蛋白质溶液的吸光度，从标准曲线上查得相应的蛋白质浓度，计算待测蛋白质含量。
六、讨论与心得1. 实验过程中，要注意实验操作的准确性，避免误差产生。
2. 双缩脲试剂法测定蛋白质含量具有操作简便、快速、灵敏等优点，但在实际应用中，要注意选择合适的试剂和仪器，以保证实验结果的准确性。
实验六 血清白蛋白测定(精美课件)
甲胎蛋白
血浆蛋白质概述
血浆蛋白质的分类：
按分离方法分类 盐析法 ：可将血浆蛋白质分为清蛋白和球蛋白两大类。
清蛋白
血浆蛋白质概述
清蛋白(Alb)是血浆中含量最多的蛋白质，约占血
浆蛋白总量的57％～68％。在pH7.4的环境中，每分子
可带200个以上的负电荷，可作为许多物质的运输载体。
Alb由肝细胞合成，合成速度受蛋白质摄入量及血
实验六 血清白蛋白测定
学习要求
1 掌握溴甲酚绿法测定血清白蛋白的基 本原理和方法
2 了解血清白蛋白的测定方法
3 掌握血清白蛋白的参考区间和临床意义
血浆蛋白质概述
血浆中几种主要的蛋白质：
前清蛋白
清蛋白
铜蓝蛋白
转铁蛋白
结合珠蛋白
α1-酸性糖蛋白 C-反应蛋白 癌胚抗原
蛋白质
α1-抗胰蛋白酶
α2 -巨球蛋白 纤维蛋白原
BCP结合法
优点 灵敏度高，与人及动物 与Alb以外的血浆蛋白质结合少， 标本中的Alb结合力差异 干扰小 不大
缺点
除了与Alb结合外，还可 灵敏度较低，与动物标本中的
与血清中其他多种蛋白 Alb结合力相当弱，质控血清多
质也可结合
采用动物血清制备，因此应用
ห้องสมุดไป่ตู้
受限
试剂与器材
试剂与标本 1、0.5 mol/L 琥铂酸缓冲贮存液（PH4.1） 2、BCG贮存液（10mmol/L）（溴甲酚绿、NaOH 溶液） 3、叠氮钠贮存液 4、BCG试剂 5、白蛋白标准液（40g/L） 主要器材 分光光度计
第二节 体液蛋白质检验
血清清蛋白测定：
测定Alb的方法中，目前实验室应用最广的是染料结合法 与Alb结合的染料有多种，其中溴甲酚绿(BCG)和溴甲酚
蛋白质含量测定实验报告
蛋白质含量测定实验报告一、实验目的。
本实验旨在通过测定食物中蛋白质含量的方法，掌握蛋白质的测定原理和操作技能，加深对蛋白质的认识，为日常饮食提供科学依据。
二、实验原理。
本实验采用了比色法测定蛋白质含量。
比色法是根据蛋白质与双酚类物质在碱性条件下生成紫色化合物的原理，利用紫外可见光谱法测定其吸光度，从而计算出蛋白质的含量。
三、实验步骤。
1. 样品制备，将食物样品研磨成粉末状。
2. 蛋白质提取，取适量样品加入提取液，振荡离心，收集上清液。
3. 比色反应，将提取液与试剂混合，待反应完成后进行测定。
4. 吸光度测定，用紫外可见光谱仪测定吸光度。
5. 计算蛋白质含量，根据吸光度值计算出样品中蛋白质的含量。
四、实验结果。
经过实验测定，得出食物样品中蛋白质含量为Xg/100g。
五、实验分析。
通过本次实验，我们了解了蛋白质含量测定的原理和方法，掌握了比色法测定蛋白质含量的操作技能。
同时，也发现不同食物样品中蛋白质含量的差异，为我们科学合理地进行日常饮食提供了参考。
六、实验总结。
蛋白质是人体生命活动的重要组成部分，合理摄入足够的蛋白质对维持身体健康至关重要。
通过本次实验，我们不仅学会了测定蛋白质含量的方法，也增加了对蛋白质的认识，为我们的健康饮食提供了科学依据。
七、实验感想。
本次实验让我深刻认识到蛋白质在日常饮食中的重要性，也让我对科学实验有了更深的理解和体会。
希望通过今后的学习和实践，能够更好地运用所学知识，为自己和他人的健康提供帮助。
八、参考文献。
1. 《食品分析实验指导》，XXX，XXX出版社，XXXX年。
2. 《食品化学与分析》，XXX，XXX出版社，XXXX年。
以上就是本次蛋白质含量测定实验的报告内容，希望对大家有所帮助。
实验六 蛋白质的定量分析-双缩脲法测定血清总蛋白
牛血清白 蛋白(mg) 2mg/mL牛
血清白蛋白 体积(mL)
0 0
0. 1.8
4.8 2.4
6.0 3.0 －
待测液体 积(mL) 蒸馏水 (mL) OD540
－ 3.0
－ 2.7
－ 2.4
－ 1.8
－ 1.2
－ 0.6
－ 0
3.0* 0
2.各管混匀后，加入双缩脲试剂3.0mL,37oC反应30min。 3.以0号管调零，测定各管540nm光吸收值。
3.比色杯的使用。
四、分光光度计的使用
仪器操作键介绍 “方式设定”键（MODE）：用于设置测 试方式—— 透射比（T）、吸光度（A）、 已知样品浓度值（C）、已知标准样品斜 率（F） “100%”键：用于自动调整100.0%T(100.0 透射比)或0ABS(零吸光度) “0%”键：用于自动调整零透射比 “波长设置”旋钮：用于设置分析波长
三、分光光度法的主要研究方式
1. 比较吸收光谱曲线
2. 比较最大吸收波长 蛋白质的最大吸收波长为280nm， 核酸的最大吸收波长为260nm。
3. 比较吸光度的比值
纯DNA
A260 nm 1.8 A280 nm
四、分光光度仪的工作原理
五、分光光度仪进行定量的原理 Beer-Lambert（比尔）定律： T=I/I0 A=lg1/T=lgI0/I A=εCL 其中：T为透光率；A为吸光率； I0为入射 光强度；I为透射光强度； ε 为摩尔消光系数； C 为溶液浓度； L 为溶 液光程的厚度
双缩脲法测定蛋白质*
蛋白质含有两个以上的肽键(—CO—NH—)，因此 可以发生双缩脲反应：
H2N-CO-NH2 + NH2-CO-NH2 H2N-CO-NH-CO-NH2 ＋NH3
蛋白质测定实验报告
一、实验目的1. 理解蛋白质测定的原理和方法。
2. 掌握双缩脲试剂法测定蛋白质含量的基本操作步骤。
3. 学会使用分光光度计进行蛋白质定量分析。
二、实验原理蛋白质是由氨基酸通过肽键连接而成的大分子有机化合物，具有重要的生物学功能。
蛋白质含量是生物样品中的重要指标之一。
本实验采用双缩脲试剂法测定蛋白质含量，该法基于蛋白质分子中的肽键在碱性条件下与铜离子发生反应，生成紫红色络合物，其吸光度与蛋白质含量成正比。
三、实验材料与试剂1. 实验材料：鸡蛋清、牛血清白蛋白、牛血清、双缩脲试剂A、双缩脲试剂B、蒸馏水、分光光度计等。
2. 试剂：（1）双缩脲试剂A：称取硫酸铜0.1g，溶于50mL蒸馏水中；（2）双缩脲试剂B：称取酒石酸钾钠0.5g、碘化钾0.1g，溶于50mL蒸馏水中；（3）蛋白质标准溶液：配制浓度为0.1mg/mL的蛋白质标准溶液。
四、实验步骤1. 标准曲线绘制（1）取6支10mL具塞试管，分别加入0.0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5mL蛋白质标准溶液；（2）向各试管中加入1.5mL双缩脲试剂A；（3）混匀，室温放置10分钟；（4）加入5mL双缩脲试剂B；（5）混匀，室温放置10分钟；（6）以蒸馏水为空白，用分光光度计在540nm波长处测定吸光度；（7）以蛋白质浓度为横坐标，吸光度为纵坐标，绘制标准曲线。
2. 样品测定（1）取6支10mL具塞试管，分别加入0.0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5mL待测样品；（2）同标准曲线绘制步骤，测定吸光度；（3）根据标准曲线，计算样品蛋白质含量。
五、实验结果与分析1. 标准曲线绘制以蛋白质浓度为横坐标，吸光度为纵坐标，绘制标准曲线，得到线性方程为：y = 0.0019x + 0.0032，相关系数R² = 0.9986。
2. 样品测定根据标准曲线，计算各样品蛋白质含量如下：（1）鸡蛋清：0.5mg/mL；（2）牛血清：0.4mg/mL。
蛋白质含量的测定实验报告
蛋白质含量的测定实验报告一、实验目的。
本实验旨在通过测定食品中蛋白质含量的方法，掌握蛋白质含量的测定原理和操作技能，为食品质量的检验提供科学依据。
二、实验原理。
蛋白质含量的测定方法有多种，本实验采用的是经典的凯氏试剂法。
该方法是利用碱性铜溶液与蛋白质中的蛋白质结合成紫色沉淀，通过比色计算出蛋白质含量。
三、实验仪器和试剂。
1. 仪器，量筒、烧杯、比色皿、分析天平等。
2. 试剂，凯氏试剂、蛋白质标准品、硫酸铜溶液、碱液等。
四、实验步骤。
1. 样品制备，将待测样品称取适量，加入适量的硫酸铜溶液，摇匀后放置一段时间。
2. 沉淀分离，将沉淀转移到预先称量的滤纸上，用水洗涤至无碱性铜试剂残留。
3. 沉淀溶解，将沉淀与少量硫酸铜溶液混合，加入碱液溶解。
4. 比色计算，用比色皿盛放试液，通过比色计算出蛋白质含量。
五、实验结果。
通过实验测得样品的蛋白质含量为XXg/100g。
六、实验分析。
根据实验结果，可以初步判断样品的蛋白质含量符合标准要求。
但需要注意的是，蛋白质含量的测定结果受到多种因素的影响，如样品制备不均匀、操作不规范等，因此在实际应用中还需要结合其他分析方法进行综合判断。
七、实验结论。
本实验通过凯氏试剂法测定了样品的蛋白质含量，结果表明样品的蛋白质含量符合标准要求。
但仍需注意实验操作的规范性，以确保结果的准确性和可靠性。
八、实验总结。
通过本次实验，我们掌握了蛋白质含量的测定方法和操作技能，提高了对食品质量检验的能力，为今后的实验和工作积累了经验。
以上就是本次蛋白质含量的测定实验报告，希望对大家有所帮助。
生物分析实验六_紫外吸收法测定蛋白质含量
实验紫外吸收法测定蛋白质含量一、实验目的1．掌握紫外分光光度法测定蛋白质含量的原理。
2．学习紫外分光光度计的仪器原理及使用方法。
二、实验意义牛奶是大众化的奶制品，蛋白质含量较高，近年来中国乳制品出现了很多的食品安全问题。
针对这些问题，我们小组使用紫外分光光度计来测定常见牛奶品牌中蛋白质含量。
紫外分光光度计操作简单，有较好的灵敏度，可用于乳制品生产线上质量检测。
三、实验原理由于蛋白质中存在着含有共轭双键的酪氨酸和色氨酸，因此蛋白质具有吸收紫外光的性质，吸收高峰在280纳米波长处。
在此波长范围内，蛋白质溶液的光密度值（O.D.280，或吸收值）与其浓度呈正比关系，可作定量测定。
该法迅速、简便、不消耗样品，低浓度盐类不干扰测定。
因此，已在蛋白质和酶的生化制备中广泛采用。
本法的缺点是：（1）对于测定那些与标准蛋白质中酪氨酸和色氨酸含量差异较大的蛋白质，有一定的误差。
故该法适于测定与标准蛋白质氨基酸组成相似的蛋白质。
（2）若样品中含有嘌呤、嘧啶等吸收紫外光的物质，会出现较大干扰。
例如，在制备酶的过程中，层析柱的流出液内有时混杂有核酸，应予以校正，核酸强烈吸收波长为280纳米的紫外光，它对260纳米紫外光的吸收更强。
但是，蛋白质恰恰相反，280纳米的紫外吸收值大于260纳米的紫外吸收值。
利用它们的这些性质，通过计算可以适当校正核酸对于测定蛋白质浓度的干扰作用。
但是，因为不同的蛋白质和核酸的紫外吸收是不相同的，虽然经过校正，测定结果还存在着一定的误差。
四、实验试剂和器材（一）、试剂：1.牛血清清蛋白溶液：购买市面上售卖的经过校正的结晶牛血清清蛋白，配制成浓度为1mg/mL的溶液。
氯化钠溶液。
2.待测蛋白质溶液：10月份沃尔玛超市购买伊利纯牛奶3盒，该货架有这种产品70盒左右。
在正式实验开始前的周末去沃尔玛超市购买3盒伊利纯牛奶，规格250mL（牛奶保存环境为温度20摄氏度左右的室内，货架对面为酸奶冷柜）。
记录购买时间，牛奶在货架所放位置（靠近地面，货架中层，货架上层）。
6种方法测定蛋白质含量
6种方法测定蛋白质含量一、微量凯氏（kjeldahl）定氮法样品与浓硫酸共热。
含氮有机物即分解产生氨（消化），氨又与硫酸作用，变成硫酸氨。
经强碱碱化使之分解放出氨，借蒸汽将氨蒸至酸液中，根据此酸液被中和的程度可计算得样品之氮含量。
若以甘氨酸为例，其反应式如下：NH2CH2COOH+3H2SO4――2CO2+3SO2+4H2O+NH3(1)2NH3+H2SO4――(NH4)2 SO4(2)(NH4)2 SO4+2NaOH――2H2O+Na2SO4+2NH3(3)反应（1）、(2)在凯氏瓶内完成，反应（3）在凯氏蒸馏装置中进行。
为了加速消化，可以加入CuSO4作催化剂，K2SO4以提高溶液的沸点。
收集氨可用硼酸溶液，滴定则用强酸。
实验和计算方法这里从略。
计算所得结果为样品总氮量，如欲求得样品中蛋白含量，应将总氮量减去非蛋白氮即得。
如欲进一步求得样品中蛋白质的含量，即用样品中蛋白氮乘以6．25即得。
二、双缩脲法（biuret法）（一）实验原理双缩脲（NH3CONHCONH3）是两个分子脲经180℃左右加热，放出一个分子氨后得到的产物。
在强碱性溶液中，双缩脲与CuSO4形成紫色络合物，称为双缩脲反应。
凡具有两个酰胺基或两个直接连接的肽键，或能过一个中间碳原子相连的肽键，这类化合物都有双缩脲反应。
紫色络合物颜色的深浅与蛋白质浓度成正比，而与蛋白质分子量及氨基酸成分无关，故可用来测定蛋白质含量。
测定范围为1-10mg蛋白质。
干扰这一测定的物质主要有：硫酸铵、tris缓冲液和某些氨基酸等。
此法的优点是较快速，不同的蛋白质产生颜色的深浅相近，以及干扰物质少。
主要的缺点是灵敏度差。
因此双缩脲法常用于需要快速，但并不需要十分精确的蛋白质测定。
（二）试剂与器材1.试剂：（1）标准蛋白质溶液：用标准的结晶牛血清清蛋白（bsa）或标准酪蛋白，配制成10mg/ml的标准蛋白溶液，可用bsa浓度1mg/ml的a280为0.66来校正其纯度。
实验六 蛋白质含量测定(考马斯亮蓝G-250法)
实验六蛋白质含量测定（考马斯亮蓝G－250法）一、目的蛋白质是细胞中最重要的含氮生物大分子之一，承担着各种生物功能。
蛋白质的定量分析是蛋白质构造分析的基础，也是农牧产品品质分析、食品营养价值比较、生化育种、临床诊断等的重要手段。
根据蛋白质的理化性质，提出多种蛋白质定量方法。
考马斯亮蓝G －250法是比色法与色素法相结合的复合方法，简便快捷，灵敏度高，稳定性好，是一种较好的常用方法。
通过本实验学习考马斯亮蓝G－250法测定蛋白质含量的原理，了解分光光度计的结构、原理和在比色法中的应用。
二、原理考马斯亮蓝G－250是一种染料，在游离状态下呈红色，当它与蛋白质结合后变为青色。
蛋白质含量在0～1000μg范围内，蛋白质一色素结合物在595nm下的吸光度与蛋白质含量成正比，故可用比色法测定。
三、仪器、试剂和材料1．仪器（1）分析天平（2）具塞刻度试管10ml×8（3）吸管0.lml×I，lml×Z，5ml×I（4）研钵（5）漏斗（6）离心管10ml（7）容量瓶10ml（8）离心机（9）721型分光光度计2．试剂（1）标准蛋白质溶液称取10mg牛血清白蛋白，溶于蒸馏水并定容至100ml，制成100 pg／ml的原液。
（2）考马斯亮蓝G－250蛋白试剂称取100mg考马斯亮蓝G－250，溶于50ml 90％乙醇中，加入85％（m／v）的磷酸100ml，最后用蒸馏水定容到1000ml。
此溶液在常温下可放置一个月。
3．材料绿豆芽四、操作步骤1盖上塞子，摇匀。
放置2min后在595 nm波长下比色测定（比色应在l h内完成）。
以牛血清白蛋白含量（μg）为横坐标，以吸光度为纵坐标，绘出标准曲线。
2．样品中蛋白质含量的测定（1）准确称取约200mg绿豆芽下胚轴，放入研钵中，加入5ml蒸馏水在冰浴中研成匀浆，离心（4000r／min，10min），将上清液倒入10ml容量瓶，再向残渣中加入2ml蒸馏水，悬浮后再离心10min，合并上清液，定客至刻度。
实验6——可溶性蛋白质的测定
0.0100g牛血清蛋白（BSA），溶于100mL蒸 馏水中。
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4. 实验步骤 （1）样品处理：
准确称取5g豆芽于研钵中，充分研磨 后转移至100mL容量瓶中，静置20min后过 滤，弃去初滤液后备用。
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（2）标准曲线的绘制
1 2 3 4 56 BSA（mL） 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1
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（3）样品的测定 另取3支10mL具塞试管，分别吸取样
品溶液0.6mL，各加入5mL考马斯亮蓝G250溶液，稀释至刻线10mL，充分混合， 放置5min后于595nm波长下比色，测定吸 光度，并通过标准曲线查得蛋白质含量。
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5. 结果计算
蛋白质含量（%）=
C×V2×V0 m×V1
× 100
式中： C——从标准曲线上查得的蛋白质浓度，g/mL
V0——样品溶液的总体积，mL V1——测定时加样量，mL V2——测定时定容体积，mL m ——样品的质量，g
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6. 注意事项 （1）考马斯亮蓝和皮肤中蛋白质通过范德 华力结合，反应快速，并且稳定，无法用 普通试剂洗掉。待一两周左右，皮屑细胞 自然衰老脱落即可无碍。
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（2）考马斯亮蓝有G-250和R-250两种。 蛋白质与考马斯亮蓝G-250结合在2min
左右的时间内达到平衡，完成反应十分迅速 ，其结合物在室温下1h内保持稳定。
考马斯亮蓝R-250与蛋白质反应虽然比 较缓慢，但可以被洗脱下去，所以可用来对 电泳条带染色。
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（3）不可使用石英比色皿（因不易洗去染 色），可用玻璃比色皿，使用后立即用少 量95%的乙醇荡洗，以洗去染色。
蛋白质含量测定方法
蛋白质含量测定方法
首先，我们来介绍最常用的蛋白质含量测定方法之一——比色法。
比色法是通过蛋白质与某种试剂发生化学反应产生有色产物，
然后利用分光光度计测定产物的吸光度来计算蛋白质含量的方法。
常用的试剂包括布拉德福试剂、伯里氏试剂等。
比色法操作简便，
结果准确，适用于多种类型的蛋白质样品。
其次，还有一种常用的蛋白质含量测定方法是BCA法。
BCA法
是利用蛋白质与BCA试剂在碱性条件下发生还原反应，生成紫色螯
合物，然后利用分光光度计测定其吸光度来计算蛋白质含量的方法。
BCA法对于含有还原剂、胶体物质和表面活性剂的样品具有较好的
适用性，同时也具有较高的灵敏度和线性范围。
另外，还有一种常用的蛋白质含量测定方法是Lowry法。
Lowry
法是通过蛋白质与碱性铜离子和菲罗啉在碱性条件下发生络合反应，生成蓝色络合物，然后利用分光光度计测定其吸光度来计算蛋白质
含量的方法。
Lowry法对于各种类型的蛋白质样品均有较好的适用性，但操作相对复杂，需要较长的实验时间。
除了上述介绍的常用方法外，还有其他一些蛋白质含量测定方
法，如紫外吸收法、荧光法等。
这些方法各有特点，适用于不同类
型的蛋白质样品，实验人员可以根据实际情况选择合适的方法进行
测定。
总的来说，蛋白质含量的准确测定对于科学研究和实验室工作
至关重要。
在选择测定方法时，需要考虑样品的性质、实验条件、
仪器设备等因素，并且在操作过程中要严格按照方法要求进行操作，确保测定结果的准确性和可靠性。
希望本文介绍的方法能为您的实
验工作提供一些帮助，祝您实验顺利！。
蛋白质的测定实验报告
一、实验目的1. 掌握蛋白质的测定原理和方法；2. 学会使用双缩脲试剂和凯氏定氮法测定蛋白质含量；3. 了解蛋白质在生物体中的重要作用。
二、实验原理蛋白质是由氨基酸通过肽键连接而成的大分子化合物，是生物体的重要组成部分。
蛋白质的测定方法有很多，本实验主要介绍双缩脲试剂法和凯氏定氮法。
1. 双缩脲试剂法：蛋白质分子中的肽键在碱性条件下与铜离子反应，生成紫红色络合物。
根据络合物颜色的深浅，可以测定蛋白质的含量。
2. 凯氏定氮法：蛋白质分子中的氮含量相对稳定，约为16%。
通过测定样品中的氮含量，可以计算出蛋白质的含量。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：鸡蛋清、硫酸铵、氯化钠、双缩脲试剂、凯氏定氮试剂、蒸馏水、滴定管、试管、烧杯、电炉、天平等。
2. 仪器：双缩脲比色计、凯氏定氮仪、分析天平、移液管、滴定管、酒精灯等。
四、实验步骤1. 双缩脲试剂法测定蛋白质含量（1）取一定量的鸡蛋清溶液，加入双缩脲试剂，观察颜色变化。
（2）用双缩脲比色计测定吸光度。
（3）根据标准曲线计算蛋白质含量。
2. 凯氏定氮法测定蛋白质含量（1）取一定量的鸡蛋清溶液，加入硫酸铵和氯化钠，混匀。
（2）将混合液转移到凯氏烧瓶中，加入硫酸和硫酸铜，加热消化。
（3）将消化液转移到蒸馏瓶中，加入过氧化氢和氢氧化钠，进行蒸馏。
（4）收集蒸馏液，用滴定管滴定剩余的酸液。
（5）根据滴定结果计算氮含量，进而计算出蛋白质含量。
五、实验结果与分析1. 双缩脲试剂法测定蛋白质含量通过双缩脲比色计测定吸光度，得到蛋白质含量为x g/L。
2. 凯氏定氮法测定蛋白质含量通过滴定计算，得到氮含量为y g/L，进而计算出蛋白质含量为z g/L。
六、实验结论1. 通过双缩脲试剂法和凯氏定氮法，可以测定蛋白质含量。
2. 蛋白质在生物体中具有重要作用，是生命活动的基础。
3. 本实验操作简便，结果可靠，为蛋白质的测定提供了有效方法。
七、注意事项1. 在进行双缩脲试剂法测定时，应确保试剂的准确性，避免误差。
考马斯亮蓝染色法测定牛奶中蛋白质含量
实验六考马斯亮蓝染色法测定牛奶中蛋白质含量一、目的要求学习考马斯亮蓝染色法测定牛奶中蛋白质含量的方法和原理，标准曲线的绘制和回归方程的使用，分光光度计的使用。
二、基本原理考马斯亮蓝所含疏水基团在酸性条件下与蛋白质的疏水微区具有亲和力。
通过疏水作用与蛋白质相结合，形成的蓝色蛋白质染料复合物，在595 am处有最大吸光度，在一定的蛋白质浓度范围内，蛋白质染料复合物在595 nm处的吸光度与蛋白质含量成正比，因此可用于蛋白质含量的测定。
分光光度法的原理：通过测定被测物质在特定波长处或一定波长范围内光的吸收度，对该物质进行定性和定量分析。
三、器材和试剂1．器材可见分光光度计，玻璃比色皿，试管2．试剂考马斯亮蓝G一250溶液：精确称取考马斯亮蓝G一250 100 mg，溶于50 mL 95％的乙醇，再加入100 mL 85％的磷酸，稀释定容至1 000 mL备用。
标准蛋白质溶液：精确称取牛血清白蛋白10 mg，加水溶解并定容至10 ml，冰冻，用时吸取上述溶液1 ml，用蒸馏水稀释至10 ml，即为100 μg/ml的标准蛋白质溶液。
样品的制作：准确吸取2 ml牛奶(市场上现买)加水至1000 ml制作样品。
四、操作1．工作曲线的确定在试管中分别精确移取牛血清白蛋白标准溶液0、0.1、0．2、0．4、0．6、0．8、1．0 mL，加蒸馏水至1．0 mL，然后在各支试管中分别加入4．0 mL考马斯亮蓝G-250溶液，摇匀，室温下反应5 min，在595 nm波长处测定吸光度，以牛血清白蛋白标准溶液浓度为横坐标，以吸光度为纵坐标，绘制标准曲线。
2. 样品的测定分别准确移取一定量的乳与乳制品样品于试管中，用蒸馏水定容至1．0 mL加入4．0 mL考马斯亮蓝G一250溶液，摇匀，在室温下反应5 min，以空白(不加乳制品)溶液作参比溶液，分光光度计595 nm波长处测定样品组的吸光度。
注意：比色应在1h内完成。
五、计算：根据牛血清白蛋白标准溶液标准曲线得出回归方程(可用EXCEL工具作图给出公式)，以样品吸光度为X代入方程求得Y蛋白浓度。
测蛋白质含量实验报告
一、实验目的1. 熟悉蛋白质含量测定的原理和方法；2. 掌握双缩脲法和凯氏定氮法测定蛋白质含量的操作步骤；3. 了解不同方法测定蛋白质含量的优缺点；4. 培养实验操作能力和数据处理能力。
二、实验原理1. 双缩脲法：蛋白质分子中含有大量彼此相连的肽键（-CO-NH-），在碱性溶液中能与Cu2+发生双缩脲反应，生成紫红色络合物。
此反应和两个尿素分子缩合后生成的双缩脲（H2N-OC-NH-CO-NH2）在碱性溶液中与铜离子作用形成紫红色的反应相似，故称之为双缩脲反应。
这种紫红色络合物在540nm处的吸光度与蛋白质含量在一定范围内呈正比关系。
2. 凯氏定氮法：蛋白质中的氮含量相对稳定，约为16%左右。
通过凯氏定氮法测定样品中的氮含量，再乘以 6.25，即可得到蛋白质含量。
该方法包括样品的消化、蒸馏、滴定等步骤。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：鸡蛋清、牛肉、花生、大豆、玉米粉等蛋白质样品；标准蛋白质溶液；NaOH溶液；双缩脲试剂；凯氏定氮试剂等。
2. 实验仪器：分光光度计、电子天平、移液器、试管、锥形瓶、凯氏烧瓶、电炉、蒸馏装置、滴定管等。
四、实验步骤1. 双缩脲法（1）配制标准蛋白质溶液：准确称取一定量的标准蛋白质，用蒸馏水溶解并定容至100ml，得到浓度为1mg/ml的标准蛋白质溶液。
（2）制备样品溶液：准确称取一定量的蛋白质样品，用蒸馏水溶解并定容至10ml，得到浓度为0.1mg/ml的样品溶液。
（3）测定吸光度：分别取标准蛋白质溶液和样品溶液各1ml，加入2ml双缩脲试剂，混匀后放置10分钟，用分光光度计在540nm处测定吸光度。
2. 凯氏定氮法（1）样品消化：准确称取一定量的蛋白质样品，加入适量的浓硫酸和硫酸钾，放入凯氏烧瓶中，加热消化至无色透明。
（2）蒸馏：将消化后的溶液转移到蒸馏装置中，加入适量的浓氢氧化钠溶液，加热蒸馏，用硼酸溶液吸收蒸馏出的氨气。
（3）滴定：待吸收完全后，用0.1mol/L盐酸标准溶液滴定至终点，记录消耗的盐酸体积。
实验 6.考马斯亮蓝法测蛋白质的含量
在一定蛋白质浓度范围内 (1～1000µg/ml）, 蛋白质－染料复合物在595nm处的光吸收与蛋白 质含量成正比，故可用于蛋白质的定量测定。 蛋白质与考马斯亮蓝G250的结合十分迅速， 约2min即可反应完全，其复合物在1h内保持稳 定。由于蛋白质－染料复合物具有很高的消光系 数，因此大大提高了蛋白质测定的灵敏度（最低 检出量为1µg）。由于染色法简单迅速，抗干扰 性强，灵敏度高，线性关系好，近年来在某些方 面有取代经典的Lowry法的趋势，是一种较好的 蛋白质快速微量测定方法。
（二） 样品提取液中蛋白质含量的测定
1.蛋白质提取: 称取样品400mg，加蒸馏水5ml，匀 浆，4000rpm离心10min， 取上清液。 残渣用2.0ml蒸馏水悬浮，4000rpm离 心10min，合并上清液并定容至10ml。
2. 蛋白质含量测定:
取3支试管，各吸取样品提取液0.1ml，
加入考马斯亮蓝G250试剂3.0ml，充分振荡
枪头（吸液嘴）的装配 在将枪头（pipette tips）套上移 液枪时，正确的方法是将移液枪 （器）垂直插入枪头中，稍微用力 左右微微转动即可使其紧密结合。
移液的方法
1.吸取液体时，用大拇指将按钮按下至第一 停点，移液器保持竖直状态，将枪头插入液 面下2－3毫米。 2.然后慢慢松开按钮回原点。 3.接着将按钮按至第一停点排出液体，稍停 片刻继续按按钮至第二停点吹出残余的液体。 最后松开按钮。
1. NaCl、KCl、MgCl2、(NH4)2SO4、乙醇等物 质对测定无影响，而大量的去污剂如Triton X100、SDS等严重干扰测定，少量的去污剂及 Tris、乙酸、2-巯基乙醇、蔗糖、甘油、 EDTA有少量颜色干扰，可很容易地通过用适 当的溶液对照而消除。同时注意，比色应在显 色2min～1h内完成；如果测定很严格，可以 在试剂加入后的5～20min内测定光吸收，因 为在这段时间内颜色最稳定。
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考马斯亮蓝G－250法测定蛋白质含量
一、目的
蛋白质是细胞中最重要的含氮生物大分子之一，承担着各种生物功能。
蛋白质的定量分析是蛋白质构造分析的基础，也是农牧产品品质分析、食品营养价值比较、生化育种、临床诊断等的重要手段。
根据蛋白质的理化性质，提出多种蛋白质定量方法。
考马斯亮蓝G－250法是比色法与色素法相结合的复合方法，简便快捷，灵敏度高，稳定性好，是一种较好的常用方法。
通过本实验学习考马斯亮蓝G－250法测定蛋白质含量的原理，了解分光光度计的结构、原理和在比色法中的应用。
二、原理
考马斯亮蓝G-250（Coomassie brilliant blue G-250）测定蛋白质含量属于染料结合法的一种。
考马斯亮蓝G-250在游离状态下呈红色，最大光吸收在488nm；当它与蛋白质结合后变为青色，蛋白质-色素结合物在595nm波长下有最大光吸收。
其光吸收值与蛋白质含量成正比，因此可用于蛋白质的定量测定。
蛋白质与考马斯亮蓝G-250结合在2min左右的时间内达到平衡，完成反应十分迅速；其结合物在室温下1h内保持稳定。
该法是1976年Bradford建立，试剂配制简单，操作简便快捷，反应非常灵敏，灵敏度比Lowry 法还高4倍，测定蛋白质浓度范围为0～1 000μg／mL，是一种常用的微量蛋白质快速测定方法。
三、仪器、试剂和材料
1．仪器
（1）分析天平
（2）具塞刻度试管10ml×8
（3）吸管0.lml×I，lml×Z，5ml×I
（4）研钵
（5）漏斗
（6）离心管10ml
（7）容量瓶10ml
（8）离心机
（9）721型分光光度计
2．试剂
（1）标准蛋白质溶液称取10mg牛血清白蛋白，溶于蒸馏水并定容至100ml，制成100ug／ml的原液。
（2）考马斯亮蓝G－250蛋白试剂称取100mg考马斯亮蓝G－250，溶于50ml 90％乙醇中，加入85％（m／v）的磷酸100ml，最后用蒸馏水定容到1000ml。
此溶液在常温下可放置一个月。
3．材料
绿豆芽
四、操作步骤
1．标准曲线的制作取6支具塞试管，编号后，按下表加入试剂。
操作项目
管号
1 2 3 4 5 6
标准蛋白质溶液(ml) 0 0.2 0.4 0. 6 0.8 1.0
蒸馏水(ml) 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2 0
G-250试剂(ml) 各5
蛋白质含量（μg）0 20 40 60 80 100
盖上塞子，摇匀。
放置2min后在595 nm波长下比色测定（比色应在l h内完成）。
以牛血清白蛋白含量（μg）为横坐标，以吸光度为纵坐标，绘出标准曲线。
2．样品中蛋白质含量的测定
（1）准确称取约200mg绿豆芽下胚轴，放入研钵中，加入5ml蒸馏水在冰浴中研成匀浆，离心（4000r／min，10min），将上清液倒入10ml容量瓶，再向残渣中加入2ml蒸馏水，悬浮后再离心10min，合并上清液，定客至刻度。
（2）另取1支具塞试管，准确加入0.l ml样品提取液，再加入0.9 ml蒸馏水，5ml考马斯亮蓝G－250试剂，充分混合，放置2min后，以标准曲线1号试管做参比，在595 nm 波长下比色，记录吸光度。
五、结果处理
根据所测样品提取液的吸光度，在标准曲线上查得相应的蛋白质含量（μg），按下式计算：
样品蛋白质含量（μg／g鲜重）＝（查得的蛋白质含量（μg）×提取液总体积（ml））／（样品鲜重（g）×测定时取用提取液的体积（ml））
六、注意事项
1）如果测定要求很严格，可以在试剂加入后的5-20 min内测定光吸收，因为这段时间内颜色最稳定。
2）测定中，蛋白-染料复合物会有少部分吸附于比色杯壁上，但此复合物的吸附量可以忽略。
测定完后可用乙醇将蓝色的比色杯洗干净。
参考文献
鲁子贤。
蛋白质化学。
北京：科学出版社，1981
文树基。
基础生物化学实验指导。
西安：陕西科学技术出版社，1994
张龙翔．生物化学实验技术。
北京：人民教育出版社，1981。