培养基及其配制

合集下载
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

MS salts reduced to 0.47 g. l-1
Some root growth but reduced development of shoots
MS salts increased to 9.52 g. l-1
Shoots developed on upper surface of
作用:促进幼苗茎的伸长生长,打破休眠, 促进种子、块茎、鳞茎等提前萌发。
激素配比模式
生长素/细胞分裂素 高:有利于根的形成 适中:有利于愈伤组织形成或根芽分化 低:有利于芽的形成
No 6-BA
Profuse development of roots and a reduced number of shoots. Undifferentiated callus is developing at the edges of the explant
肌醇:使用浓度一般为100mg/L 氨基酸:是很好的有机氮源,可直接被细胞吸收
利用,常用甘氨酸。
4、植物生长调节物质
1)生长素类: 作用:诱导愈伤组织形成、根的分化和促进细
胞分裂、伸长生长。 IAA(indo acetic acid吲哚乙酸) NAA(naphthalene acetic acid萘乙酸) IBA(indolebutyri acid吲哚丁酸) 2,4-D(2,4-二氯苯氧乙酸) 作用的强弱顺序:2,4-D > NAA > IBA >IAA
2)细胞分裂素类 ( cytokinin )
作用①诱导芽的分化促进侧芽萌发生长;②促 进细胞分裂与扩大;③抑制根的分化
6-BA(6-苄基氨基腺嘌呤) Kt (kinetin 激动素) Zt (zeatin 玉米素) 作用的强弱顺序:Zt>6-BA>Kt
3)GA(gibberellic acid赤霉素)
Poor shoot development and no roots
NAA reduced to 0.1 mg. l-1
Poor shoot development and no roots. Extensive callus generation
NAA increased to 5.0 mg. l-1
2)微量元素:浓度小于0.5mmol/L的元素
Fe B Mn Cu Mo Co
3、有机物质
碳源和能源:蔗糖、葡萄糖和果糖。蔗糖:2%— 5%,常用3%,可调节渗透压;
维生素:VBl(盐酸硫胺素)、VB6(盐酸吡哆醇)、 Vpp(烟酸)、Vc(抗坏血酸),生物素、叶酸、 VB12等。一般用量为0.1—10mg/L;
explant. No roots or callus.
5、培养材料的支持物
琼脂 用量:6—10g/L; 优点:操作简便,通气较好,便于观察; 缺点:含杂质,养分扩散慢,有毒物质聚集;
其他 有玻璃纤维、滤纸桥、海绵、卡拉胶等。
6、活性炭(active carbon)
用量:0.5—l0g/L。 作用:吸附 应用:
Profuse development of roots over the explant upper and lower surface, and few shoots. Some callus
No MS salts
No siwenku.baidu.comn of regeneration from explant
at all.
强铬酸洗涤液(强液):与浓硫酸加热的同时 缓慢加入磨碎的重铬酸钾,直到重铬酸钾达到 饱和为止。一般浓硫酸1L加入重铬酸钾50g
第二章 培养基及其配制
第一节 培养基的成分 第二节 培养基的配制 第三节 常用培养基的配方
第一节 培养基的成分
一、培养基的产生及名称 1、培养基的产生 1680年和1681年:Sacks和Knop 1943年:white 1962年:Murashige和Skoog (MS) 2、培养基的名称
沿用,多数以发明人的名字来命名
二、培养基的成分
水 无机营养 有机物质 植物生长调节剂 培养材料的支持物 活性炭 抗生素类 天然复合物
1、水
2、无机营养(无机盐类) 1)大量元素:浓度大于0.5mmol/L N:NO3-N和NH4-N两种形式供应,如KNO3、
NH4NO3 P:KH2P04或NaH2P04 K:Kcl、KN03 Ca、Mg、S:MgSO4·7H20、CaCl2
2、铬酸液的配制
① 配制步骤: 选用合适容器; 按配方称量好重铬酸钾和蒸馏水,然后
将重铬酸钾完全溶于蒸馏水中; 缓缓加入浓硫酸,切忌过急; 自然冷却、备用
②配制过程:
稀铬酸洗涤液(弱液):重铬酸钾50g+蒸馏水 1L,加热溶化,冷却后再缓慢加入浓硫酸90ml。
饱和铬酸洗涤液(中液):用重铬酸钾50g加 入蒸馏水100ml,加热溶化,冷却后再缓慢加 入浓硫酸875ml。
一、玻璃器皿的选择
4、培养皿 规格:9、12cm直径; 适于:游离细胞、 原生质体、花粉等的静置培养、 看护培养、无菌种子的发芽、植物材料的分离等。 5、果酱瓶 规格:200ml罐头瓶,加盖半透明的塑料盖; 特点:成本较低,操作方便,也减少了培养材料的
损伤;缺点是易引起污染。
6、瓶口封塞
要求:要具有一定的通气性和密闭性, 以防止培养基干燥和杂菌污染。
常用: 1) 棉塞; 2) 聚丙烯塑料薄膜; 3) 也可采用专用的封口膜
二、玻璃器皿的清洗
1、玻璃器皿的清洗步骤 浸泡:目的是软化和溶解附着物,新 5%盐酸 刷洗:放在洗涤剂中反复刷洗 浸酸: 酸液又称洗涤液;有强氧化作用 冲洗:“注满水-倒空”10次以上或注入“2/3
的水振荡冲洗”10次以上→蒸馏水冲洗2~3次
6-BA reduced to 0.1 mg. l-1
More balanced development of roots and shoots. However, undifferentiated callus is developing at the edges of the explant
No NAA
相关文档
最新文档