药理学实验的基础知识
药理学实验设计和基本知识
〔五实验结果预测 根据所学知识对实验结果做出理论
上的判断,做到心中有数.
〔六数据处理、统计分析 根据实验分组情况及实验方法,明确
用何种统计学方法进行数据处理.
实验报告的书写
1、题目
2、目的
3、原理
4、材料：实验动物,器材,药品
5、方法：用自己的语言简单扼要描述出来
6、结果：要求真实、清楚
⑵ 大白鼠
用右手提起尾部,放在粗糙面上,左手的拇指和食指捉其头部,其 余三指夹住背腹部即可固定.
⑶ 豚鼠
豚鼠性情温和不咬人,用手握住躯干即可.、
⑷ 家兔
可用一手抓住家兔颈背部皮肤,将兔提起,另一手托其臀部,使兔 呈坐位姿势.在进行仰位手术操作时,可用绳带将其四肢仰位捆 绑在兔手术台上.头部用兔头固定夹固定.
7
84 42 17 53 31 57 24 55 06 88 77 04 74 47 67 21 76 33 50 25 83 92 12 06 76
8
63 01 63 78 59 16 95 55 67 19 98 10 50 71 75 12 86 73 58 07 44 39 52 38 79
➢局限性：人是有神经体液调节的由细胞组 成器官,进而系统,进而形成一个有机的整 体.
人类疾病动物模型分类：
〔1自发性：
如自发性高血压大鼠,LDL受体缺陷 高胆固醇血症家兔.价值高,价格高.
〔2诱发性：
可以任意复制〔时间、数量,实验条 件易控制,,如食饵性动脉粥样硬化动 物模型.结扎冠状动脉复制急性心梗 模型
随机数字表法
<1>编号：将n个受试对象编号,动物可按体重大小, 患者可按就诊顺序.
<2>取随机数：可从随机数字表或计算器或计算机获 得.每个受试对象获得的随机数可是一位数,也可 是两位数或三位数,一般要求与n的位数相同.
药理学实验的基础知识.doc
第一章药理学实验的基础知识一、药理学实验课的目的和要求药理学实验课的目的在于通过实验，使学生掌握进行药理学实验的基本方法，了解获得药理学知识的科学途径，验证药理学中的重要基本理论，更牢固地掌握药理学的基本概念。
在实验课中还应培养学生科学工作的严肃的态度、严格的要求、严密的工作方法和实事求是的作风，并初步具备客观地对事物进行观察、比较、分析、综合和解决实际问题的能力。
为了达到上述目的，要求做到下列事项：实验前（1）仔细阅读实验指导，了解实验目的、要求、方法和操作步骤，领会其设计原理；（2）结合实验内容，复习有关药理学和生理学、生化学等方面理论知识达到充分理解；（3）估计实验中可能出现的情况和发生的问题。
实验中（1）将实验器材妥善安排，正确装置；（2）严格按照实验指导书上的步骤进行操作，准确计算给药量，防止出现差错意外；（3）认真、细致地观察实验过程中出现的现象，随时记录药物反应的出时间、表现以及最后转归，联系课堂讲授内容进行思考；（4）注意节约实验材料。
实验后（1）整理实验结果，经过分析思考，写出实验报告，按时交给指导教师；（2）整理实验器材，洗净擦干，妥为安放。
将存活和死亡动物分别送至指定处所。
做好实验室的清洁卫生工作。
二、实验动物的捉持和给药法实验1.1 蛙和蟾蜍的捉持和给药法[目的] 学习蛙和蟾蜍的捉持和淋巴囊给药法。
[材料] 蛙或蟾蜍；注射器、针头、生理盐水。
[方法] 1.捉持法通常以左手握持，用食指和中指夹住左前肢，用拇指压住右前肢，将下肢拉直，用无名指及小指夹住。
2.淋巴囊内注射法蛙及蟾蜍皮下有多个淋巴囊，注入药物后易于吸收。
通常将药物注射于胸、腹或股淋巴囊。
蛙及蟾蜍的皮肤很薄，缺乏弹性，注射后药物易自针眼漏出，故作胸部淋巴囊注射时应将针头插入口腔，由口腔底部穿过下颌肌层而达胸部皮下；作股淋巴囊注射时，应由小腿皮肤剌入，通过膝关节而达大腿部皮下。
这样才可避免药液外漏。
注入药液量一般为0.25ml∽0.50ml试以生理盐水作胸淋巴囊和股淋巴囊注射练习。
(完整word版)中药药理学实验讲义
中药药理学实验讲义成都中医药大学药学院药理2005，12中药药理学实验讲义主编曾南主审沈映君编委曾南王平徐世军谢宇环王张杨旋熊静悦杨莉娟童妍周桢昊李佳川第一章中药药理实验基本知识一、中药药理实验报告基本要求1。
实验前应仔细阅读实验指导，做到心中有数。
结合实验内容,复习有理论知识.科研实验还应查阅有关文献资料，吸取他人经验。
实验中应认真、仔细、耐心地观察所出现的各种现象,实事求是记录,切忌夹杂主观因素。
应坚持一丝不苟，严谨的科学作风，决不允许抄袭别人的实验结果写报告.2.教学实验往往每次是取一种动物，一种方法写实验报告。
科研实验则应事先设计好实验动物数，随机分组.新药研制还应设空白与已知药物对照组。
科研实验要说明的某一个作用，至少设2~3个以上计量组，要两种以上的实验方法等。
3。
实验条件应详细、明确，如仪器型号、试剂的浓度、中药的品种、复方的组成、提取方法、浓度和剂量、给药途径、动物的来源、品种、体重、年龄、性别、如何分组等都应写出。
4.实验方法可简明扼要地叙述，但关键环节必须写清楚。
科研报告还可以引用文献上的方法，以节省文字。
5。
实验结果应根据实验获得的数据进行整理，对一个教学实验小组或全实验室的数据进行整理、归纳、分析和对比，尽量总结出各种图表，进行统计学处理.6。
讨论部分包括实验结果的分析、思考题的探讨、实验设计、实验方法及实验中出现异常现象的分析、认识、体会和建议等.讨论应注意结合中医药理论。
科研报告还可对比前人的实验进行分析，阐明从本实验获得的新发现或尚存在问题。
7.实验结束应及时地整理和总结实验结果，写出报告。
实验报告内容应包括实验名称、目的、原理、材料（包括仪器、药品、动物）、方法、结果、讨论及结论。
科研实验报告还应有前言，说明课题来源及本实验要解决的问题；报告后应附有参考文献。
二、中药药理实验样品注意事项在进行单味中药或复方中药药理实验时，由于中药不同于西药，多数不是单一化学成分，而是多种成分的综合作用或多种中药的综合作用.因此，在有效成分不明确的情况下，制备药理实验用的中药样品，应注意多种因素的干扰,影响实验结果。
药理学实验的基础知识
药理学实验的基础知识药理学是研究药物对生物体产生作用的科学，而药理学实验是用来研究、验证药物的药效、毒性和代谢等特性的重要手段。
在进行药理学实验之前，研究人员需要掌握一些基础知识，以确保实验的可靠性和科学性。
药理学实验的分类药理学实验通常可以分为体外实验和体内实验两大类。
体外实验体外实验是在体外环境（如离体器官、细胞培养皿等）中进行的实验，用于研究药物对细胞、基因等的作用机制和生物效应。
体内实验体内实验是在动物模型或人体中进行的实验，用于评价药物的生物活性、毒性和药代动力学特性等。
药理学实验的设计原则进行药理学实验时，必须遵守一些设计原则，以确保实验结果的准确性和可靠性。
1.随机分组：实验对象在实验前应随机分配到不同的实验组，以减少实验结果的偶然性。
2.双盲对照：在动物实验中，研究人员应当实现实验组和对照组的盲法实验，以减少实验结果的主观影响。
3.样本量控制：实验设计时需要合理确定实验组和对照组的样本量，以保证实验结果的统计学意义。
4.质量控制：在进行实验的过程中，需要确保实验操作的标准化和一致性，以减少操作误差。
药理学实验的常用技术在药理学实验中，有许多常用技术可以帮助研究人员获取所需数据和信息，例如：•ELISA检测技术：用于测定细胞因子、蛋白质等分子在样本中的浓度。
•Western blot：检测蛋白质表达水平和结构特征的技术。
•细胞色素释放试验：用于评价药物对细胞毒性的影响。
•动物行为学实验：评估药物对动物运动、认知等行为的影响。
药理学实验的伦理和安全注意事项在进行药理学实验时，研究人员需要遵守相关的伦理规范和安全措施，以保障实验对象的权益和研究人员的安全。
1.动物实验伦理：研究人员应当遵守动物实验的伦理规范，尽量减少动物的痛苦和不必要的死亡。
2.实验室安全：在实验室操作时应当穿戴个人防护装备，确保实验操作的安全。
3.数据保密：研究人员需要确保实验数据的保密性，防止实验数据泄露。
结语药理学实验作为药物研发的重要环节，需要研究人员具备扎实的基础知识和实验技术，以确保实验结果的科学性和可靠性。
药理学实验基础知识实验报告
药理学实验基础知识实验报告
药理学实验基础知识实验报告
一、实验对象：
本次实验的主要对象是大学生，其中包括了药学院的学生和其他学院的学生，这些学生都通过本次实验学习药理学的基础知识，以为他们日后的实践做准备。
二、实验内容：
药理学是生命科学的一个分支，是专门研究药物用于治疗疾病的方式及其机制的学科，且以研究活性物质及其分子方法为基础。
本次实验室的主要内容是学习药理学基础知识，包括药物谱、药物作用机制、药物代谢、药物毒性和药物副作用等等。
三、实验方法：
1、首先，选择药理学相关书籍作为参考，仔细阅读，深入了解药理学的基本概念和原理。
2、在理论学习之后，结合实验实践，进行有关药理学的实验，熟悉药理学实验的基本流程及其实验技术。
3、实验完成以后，通过讨论、总结和分析，形成药理学实验基础知识的实验报告。
四、总结
本次实验是为了让参与者深入了解药理学的基本概念和原理，掌握药理学实验的基本流程及实验技术。
通过本次实验，参与者可以更加熟悉药理学的学习，并能为他们日后的临床实践打下良好的基础。
药理学实验
药理学基础实验实验一药理学实验的基本知识和技术 6课时一、动物实验的基本知识和技术（一）实验动物的要求和选择药理学实验要求根据不同的实验目的选用相应合格的医学实验动物。
实验动物按微生物控制分为四级：一级为普通动物，要求不带有人兽共患病的病原体以及体外寄生虫；二级为清洁动物，在一级要求基础上还必须不带有动物传染病的病原体；三级为无特定病原体的动物；四级为无菌动物。
药理教学实验可选用一级普通动物，科研实验必须用二级以上的实验动物。
1．青蛙和蟾蜍其心脏能在离体情况下保持较持久地节律性搏动，可用来观察药物对心脏的作用；其坐骨神经腓肠肌标本可用来观察药物对周围神经、横纹肌或神经肌肉接头的作用，用于局麻药和肌松药实验。
2．小鼠最为常用，易大量繁殖，适用于需要大量动物的实验，如半数致死量测定和药物的初筛实验。
3．大鼠用途与小鼠基本相同。
主要用于一些用小鼠不便进行的实验，如血压实验等。
大鼠对炎症反应较为灵敏，其踝关节炎模型常用于观察药物的抗炎作用。
4．豚鼠对组胺特别敏感，是筛选平喘药和抗组胺药最理想的动物。
5．家兔性情温顺，易饲养，亦是药理实验中最常用的动物之一，用于观察药物对心脏、血压、呼吸的影响。
6．狗易于通过驯养与人合作，因而很适合于慢性实验，如用手术造成胃瘘、肠瘘以观察药物对胃肠蠕动及分泌功能的影响；高血压的实验治疗；新药临床前毒性试验等。
（二）实验动物的捉持方法2．小鼠右手提起鼠尾，放在鼠笼（或其他粗糙面）上，向后轻拉其尾，迅速用左手拇指和食指捏住小鼠头颈部皮肤，并以左手小指、无名指压其尾部于手掌尺侧。
另一方法是只用左手，先用食指和拇指抓住小鼠尾巴后用手掌尺侧和小指夹住尾根部，然后用左手拇指和食指捏住头颈部皮肤。
（三）实验动物的给药方法1．灌胃小鼠：左手捉持小鼠，使头部朝上，颈部拉直，腹部朝向操作者，右手持灌胃管，自口角插入口腔，使灌胃管与食管成一直线，再从舌面紧沿上腭缓慢进入食管2cm～3cm，将药液缓慢注入。
药理学实验
动情况，比较两只小鼠有何不同？
[记录]
组别 正 常 损坏 肾功 鼠号 1 2 3 4 体重(g) 药量（ml) 注射时间 产生作用时间 表 现 备 注
实验结束后可将小鼠处死，比较二组动物肾脏的差别。氯化高汞中毒小鼠的 肾脏常明显肿大。如用小刀纵切，可见到皮质部较为苍白，髓质部有充血现象。 ［讨论题］ 为什么两组小白鼠的表现不同？有何意义？
攻击肝细胞膜上的磷脂分子， 使脂质过氧化
三氯甲基自由基 (· Cl3 ) 与微粒体Pr发生共价结合，损伤细胞 膜的结构功能，使可溶性酶活性↑
四氯化碳
功能氧化酶系统
(活性代谢产物）
直接溶解 肝细胞膜
抑制钙泵，使Ca 2+↑, 使肝细胞内Ca堆积
↓
死亡
戊巴比妥钠属巴比妥类药物，具有镇静催眠抗惊厥的 作用。随用量的增加而出现镇静、催眠、麻醉的作用。主要 在肝脏代谢失活。
2、组距、组数的确定
在预备实验所获得的0%和100%的致死量范围内确定组距、组数。 组距：指相邻两组剂量对数之差。用“ⅰ”表示。 ⅰ＝ＤK-ＤL／G-1 ＤK、ＤL分别为最大剂量、最小剂量的对数值；Ｇ为预计组数。 一般组距在0.08－0.1之间（ⅰ值过小则分组过多，各组间死亡率重叠；ⅰ值过 大则分组过少，使标准误增大）。 ⅰ的大小取决于实验动物对被试因素的敏感性。敏感性大，组距可小，敏感性小 则组距大。
小叶比正常肝脏更清楚。 ［讨论题］
为什么损坏肝组织的小白鼠在注射戊巴比妥钠后作用时间长？有何意义？
实验方法
• 2、肾功能对药物作用的影响 取正常小白鼠和肾功能已被破坏的小白鼠（实验前 24小时腹腔注射０.1%氯化高氯化汞 )各2只，称其体重， 分别腹腔注射3%的硫酸链霉素 0.15ml/10g，观察小鼠的 活动情况，比较两只小鼠有何不同？
药理学实验的基本知识和基本技术
药理学实验的基本知识和基本技术一、实验动物的种类选择药理学实验常用的动物有小白鼠、大白鼠、豚鼠、家兔、猫、犬、蛙、蟾蜍等。
常根据实验目的和要求选用不同的实验动物。
由于不同的动物具有不同的特点，故所选用的动物应能较好地反映试验药物的选择性作用，并符合节约的原则。
小白鼠：系实验室最常用的一种动物。
易于大量繁殖，且价廉，适用需要大量动物的实验，如药物筛选、半数致死量测定、药物效价比较、抗感染、抗肿瘤药物及避孕药物的研究等。
大白鼠：与小白鼠相似。
一些在小白鼠身上不便进行的实验可选用大白鼠，如药物抗炎作用的实验常选用大白鼠踝关节制备关节炎的模型。
此外也可用大白鼠直接记录血压、作胆管插管，或用大白鼠观察药物的亚急性或慢性毒性。
大白鼠的血压和人相近，且稳定，现常用于抗高血压药物实验。
豚鼠：是实验室常用动物之一。
对组织胺很敏感，容易致敏，常用于平喘药和抗组胺药的实验。
对结核菌亦敏感，故也用于抗结核药的研究。
此外还用于离体心脏及平滑肌实验，其乳头肌和心房常用于电生理特性及心肌细胞动作电位实验，研究抗心律失常药物的机理。
家兔：温顺、易饲养，常用于观察药物对心脏、呼吸的影响及农药中毒和解救的实验。
亦用于研究药物对中枢神经系统的作用、体温实验、热原检查及避孕药实验。
猫：与家兔比较，猫对外科手术的耐受性强，血压较稳定，故常用于血压实验。
但价格较贵。
此外，猫也常用于心血管药物及中枢神经系统药物的研究。
犬：药理实验需大动物时常用犬。
常用于观察药物对心脏泵功能和血流动力学的影响，心肌细胞电生理研究，降压药及抗休克药的研究等。
犬还可以通过训练，用于慢性实验研究，如条件反射、高血压的实验治疗、胃肠蠕动和分泌实验、慢性毒性实验。
蛙和蟾蜍离体心脏能较持久地有节律地搏动，常用于观察药物对心脏的作用；坐骨神经和腓肠肌标本可用来观察药物对周围神经、神经肌肉或横纹肌的作用；蛙的腹直肌还可以用于鉴定胆碱能药物的作用。
须注意：由于动物对外界刺激的反应存在个体差异，在选择实验动物时，还应注意动物的年龄、体重、性别、生理状态、健康状况及其品系、等级等因素对实验的影响。
药理学实验基础知识点总结
药理学实验基础知识点总结药理学实验是药物发现、研究和开发的重要环节，通过实验对药物的药理学特性进行评估，包括药理学作用、药动学、毒性等。
药理学实验要求严谨的实验设计和操作，同时也需要具备丰富的药理学知识和实验技能。
本文将针对药理学实验的基础知识点进行总结，包括实验设计、药理学作用评价、药动学评价、毒性评价等方面的内容。
一、药理学实验的基础知识点1. 实验设计实验设计是药理学实验的重要环节，合理的实验设计可以保证实验结果的可靠性和准确性。
常见的实验设计包括随机对照实验、对照组设计、交叉设计等。
在实验设计中需要考虑到实验对象的选择、样本数量、实验组织、数据分析等方面的内容。
2. 药理学作用评价药理学作用评价是对药物在生物体内产生的药理效应进行评估。
常见的药理学作用评价方法包括体外实验、体内实验、生物化学实验等。
通过这些实验可以评价药物对生物体的生理功能、生化代谢等方面的影响。
3. 药动学评价药动学评价是对药物在生物体内的吸收、分布、代谢和排泄等动力学过程进行评估。
常见的药动学评价方法包括药物浓度-时间曲线、体内动力学参数的测定等。
通过这些实验可以评价药物在生物体内的药代动力学特性。
4. 毒性评价毒性评价是对药物在生物体内产生的毒性反应进行评估。
常见的毒性评价方法包括急性毒性实验、慢性毒性实验、致畸毒性实验等。
通过这些实验可以评价药物对生物体产生的毒性效应和毒性机制。
二、药理学实验的常用技术和方法1. 细胞培养技术细胞培养技术是现代药理学实验中常用的技术之一，通过对细胞系和细胞器官进行培养，可以评价药物对细胞的毒性和药理学作用。
常用的细胞培养技术包括细胞传代培养、凋亡检测、免疫细胞化学染色等。
2. 动物实验技术动物实验技术是药理学实验中常用的技术之一，通过对动物进行给药和实验观察，可以评价药物的药理学作用、药代动力学特性和毒性效应。
常用的动物实验技术包括造模实验、行为学实验、代谢实验等。
3. 分子生物学技术分子生物学技术是药理学实验中常用的技术之一，通过对药物靶标和信号通路进行研究，可以揭示药物的作用机制和药效基础。
药理学实验基本知识
抗凝剂和麻醉剂
麻醉剂
抗凝剂
抗菌药物
用于抑制或杀灭细菌，治疗感染性疾病。
抗炎药物
用于减轻炎症反应，缓解疼痛和肿胀等症状。
抗菌药物和抗炎药物
镇痛药
用于缓解疼痛，提高疼痛耐受性。
镇静药
用于缓解焦虑和紧张情绪，使实验动物保持安静状态。
镇痛药和镇静药
05
CHAPTER
分析药物对生物体的作用方式、作用位点以及作用效果，揭示药物作用的本质。
药物代谢动力学研究
了解药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄过程，探究药物在体内的变化规律。
受体机制研究
探讨药物与靶点受体之间的相互作用机制，揭示药物作用的分子基础。
信号转导研究
探究药物对细胞内信号转导通路的影响，阐明药物作用的分子机制。
02
实验动物应具有代表性
选择的动物应能代表人类或其它哺乳动物的生理和药理特性，以便更好地模拟药物作用。
实验动物的选择
实验动物的饲养管理
提供适宜的生活环境
为实验动物提供适宜的生活环境，包括温度、湿度、光照、通风等，以保证动物的健康和实验结果的准确性。
保证充足的营养
为实验动物提供充足的食物和水，以保证其营养需求得到满足，从而保证实验结果的可靠性。
定期观察和记录
对实验动物进行定期观察和记录，包括体重、行为、生理指标等，以便及时发现问题并进行处理。
控制麻醉深度
在麻醉过程中，应控制麻醉深度，避免过深或过浅的麻醉状态对实验结果造成影响。
给予适当的止痛措施
在实验过程中，应给予适当的止痛措施，以减轻动物的疼痛感，提高其生存质量。
选择适当的麻醉剂
根据实验需要选择适当的麻醉剂，以确保动物在实验过程中处于无痛状态。
药理学实验基本知识实验报告
药理学实验基本知识实验报告药理学实验基本知识实验报告实验目的掌握药理学实验基本知识，了解药物对生理功能的影响及其机制。
实验材料•药物：咖啡因、阿司匹林、普萘洛尔•器材：药品量筒、显微镜、小鼠实验步骤1.选取十只小鼠，将其随机分为三组，每组均匀分别注射药物。
2.在注射药物后，观察小鼠的行为变化，并记录下来。
3.对注射药物的小鼠进行活体组织切片，使用显微镜观察组织结构变化。
4.将实验结果进行数据统计及分析。
实验结果药物作用效果咖啡因中枢神经兴奋，心跳加速，呼吸加深小鼠兴奋，心跳加速，呼吸加深阿司匹林抗炎，镇痛，退热小鼠行为平静，体温略有下降，观察组织结构无明显变化普萘洛尔延缓心跳，降低心排出量小鼠行为迟缓，心跳减慢，观察组织结构心肌及血管变化不明显实验结论药物对生理功能的影响及其机制各不相同。
药物的使用需要根据具体情况来选择，切勿滥用药物。
实验反思1.实验过程中，由于对药物的剂量掌握不准确，可能会影响实验结果的准确性。
2.针对组织切片的处理过程需要更加细致和精细，否则可能会产生误差。
3.实验前需要对小鼠的行为、体温、心跳等生理指标进行充分了解，以保证实验结果的准确性。
实验意义通过药理学实验的方式，可以更加深入地了解药物对生理功能的影响及其机制，为药物的正确使用提供科学依据。
参考文献1.王莉. 简明药理学[M]. 北京: 人民卫生出版社, 2015.2.Zhou X, Ma Y, Feng X, et al. Caffeine effect onphysiological changes in mice[J]. Journal of Toxicology,2017, 25(6): 805-812.3.Zhu Y, Liu Z, Chen Y, et al. Effects of aspirin andpropylthiouracil on renal injury in mice[J]. Journal ofRenal Injury Prevention, 2017, 6(4): 227-234.注：本实验报告仅供参考，如需真正进行药理学实验，请在专业人员的指导下进行。
护理药理学实验报告药物基础知识
护理药理学实验报告药物基础知识药物是指具有治疗、预防、诊断和改善生理功能等作用的化学物质，可分为药物原料、药物制剂和生物制品三类。
药物原料是指从天然或人工合成的化学物质中提取的纯净活性成分，如阿司匹林。
药物制剂是根据一定的药学原理和技术制成的剂型，以便于使用和控制剂量，如口服药片、注射液等。
生物制品则是指使用微生物、细胞及其产物等生物学原理制备的药物，如疫苗、血清等。
药理学是研究药物对生物体的作用、吸收、分布、代谢、排泄及药效学等问题的学科。
药理学分为药效学和药物动力学两部分。
药效学研究药物在体内的作用机理、药效和毒副作用等问题；药物动力学则研究药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄等过程。
药效学可以通过以下实验方式进行研究：1. 组织培养实验：将分离的组织或细胞培养在含有药物的培养基中，观察药物对其生长和代谢的影响。
2. 动物实验：将药物按一定剂量方式给予实验动物，观察其对动物生理和行为的影响。
3. 体外测定实验：通过对体外药效学测试，定量测定药物的作用效能和毒副作用。
药物动力学可以通过以下实验方式进行研究：1. 经口药物吸收实验：将药物按口服方式给予实验动物，取其消化道的灌流液或血液样品，测定药物在消化道内的吸收动力学参数。
2. 物质分布实验：给予动物或人类药物，取出组织样品，测定药物在不同组织和器官内的分布情况。
3. 药物代谢实验：通过检测实验动物或人类体内的代谢产物，测定药物的代谢速率、代谢途径及代谢酶种类等。
4. 药物排泄实验：给予药物，收集实验动物或人类的尿液、大便和汗液等，分析药物经尿液、大便等途径的排泄过程。
综上所述，药理学实验的基本内容是药效学和药物动力学。
不同的实验方法能够有效地研究药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄等过程，为药物研发和临床应用提供基础理论支持。
药理学实验的基础知识
药理学实验的基础知识药理学实验是研究药物的药理作用以及其在生物体内的代谢和排泄等方面的实验。
在药物研发中，药理学实验是非常重要的一环。
通过药理学实验，可以确定药物的活性、毒性、代谢动力学等参数，为后续的临床试验提供有效的依据。
药理学实验目前已经成为了一门非常成熟的学科，其实验方法和技术也不断地得到了改进和完善。
然而，作为药学领域的新手，想要进行药理学实验，有必要掌握一定的基础知识。
一、药理学实验的分类药理学实验可以根据不同的研究目的进行分类，主要分为以下几类：1.活性评价实验：主要是评价药物的药效和作用机制，以此确定药物的适用范围。
2.安全性评价实验：主要是评价药物的毒性，包括急性毒性、亚急性毒性、慢性毒性等多个方面。
3.代谢动力学评价实验：主要是评价药物在人体内的吸收、分布、代谢和排泄等参数，以此确定药物的给药途径和用药剂量。
4.临床转化评价实验：主要是评价药物在人体中的临床效果，包括疗效、安全性、耐受性等方面，以此为药物进一步研究提供依据。
二、药理学实验的基本设计药理学实验的基本设计通常包括以下几个方面：1.药物的质量控制：包括药物的纯度、杂质含量、标准曲线等方面。
2.实验对象：通常选择灵长类动物或小鼠等模型来进行实验，要注意实验对象的品系、年龄、性别等。
3.药物的给药途径和方法：包括口服、静脉注射、皮下注射、局部涂抹等多种途径，需要结合具体药物特点制定给药方法。
4.实验组和对照组的设置：实验组通常分为高、中、低三个剂量组，对照组包括空白对照、阴性对照、阳性对照等。
5.实验指标和测试方法：根据不同的研究目的和药物特点，选择合适的实验指标和测试方法。
6.数据的统计和分析：通过数据的统计和分析，评价药物的药效、毒性、代谢动力学等方面的参数，得出结论并进行报告。
三、药理学实验的常用技术药理学实验需要使用一些常见的技术，主要包括以下几个方面：1.细胞培养技术：包括原代细胞培养、细胞株的维护和保存、细胞鉴别和分离等。
药理学实验优选全文
作风，并训练大家观察、分析和解决问题的 能力
实验前 认真预习
实验时 认真操作 仔细观察并详细记录
实验后 认真书写实验报告,按时上交 整理实验器材(清洗、消毒、摆放整齐并物归 原处)、动物处理 实验室的清洁卫生
实验记录
实验记录是将实验内容如实地记录下来，长期保存 备用。其基本原则是真实、及时、准确、完整，实 验过程中应认真做好实验记录。内容一般应包括：
药理实验的基本操作技术
1. 实验动物的编号 2. 实验动物性别的辨别 3. 实验动物的处死法 4. 实验动物的捉持与常用给药方法 5. 实验动物给药量的计算
1. 动物的编号
可用3~5％苦味酸溶 液（黄色）涂于大鼠、 小鼠和兔皮毛不同部 位以标号
4
1
7
25 8
3 69
2. 动物性别的辨别
小鼠（左为雄性，右为雌性）
1. 时间、温度； 2. 实验标本：动物的种类、体重、标记和标号及如何
分组等。 3. 实验药物：药物的来源、批号、剂型、浓度、剂量
及给药途径。 4. 实验进程、步骤和方法的详细记录。 5. 观测指标的变化和原始的描记图纸。
二、实验结果的整理和报告撰写
[实验目的] 简要 [实验材料] 包括仪器、药品和动物 [实验方法] 写清楚关键环节或简要步骤 [实验结果] 将实验获得的数据进行整理、归纳、分析
和对比，尽量总结出图表或曲线，进行正确的统计学 处理 [结论] 是从实验结果归纳出来的概括性判断 [讨论]包括对实验结果的分析、实验中出现异常现象 的分析、认识、体会和建议等 及思考题的探讨
三、基本操作技术训练
常用实验动物
实验动物是药理学研究最重要的和不可替代 的实验材料
实验一药理实验基础知识
第一章实验一药理实验基础知识第一节药理学实验的目的和要求药理学实验的目的在于通过循序渐进的常规实验，使学生验证和巩固所学的差不多理论；通过综合实验了解较为先进的科研方法和技能，同时培养学生联想及综合分析问题的能力；通过设计性实验，培养学生独立摸索、科学思维及创新的能力，建立实事求是、严谨的科学态度，提高解决实际问题的能力，为后续知识的学习和毕业后的科研工作奠定良好的基础。
为了达到上述目的，要求学生做到以下几点。
【实验前】1.认真阅读实验指导，了解实验目的、原理、要求、方法和操作步骤。
2. 结合实验内容，复习有关药理学、生理学、生物化学及免疫学等方面的理论知识，做到充分明白得。
3. 推测实验中可能显现的情形和发生的问题。
【实验时】1．实验器材的放置力求稳当、整齐、有条不紊。
2．严格按照实验指导上的步骤进行操作，准确运算给药量，节约器材和药品。
要注意爱护实验动物和标本，幸免与实验内容无关的刺激。
3．认真、耐心地观看实验过程中显现的各种现象，实事求是地记录药物显现反应的时刻、表现以及最后的转归，联系课堂讲授的内容进行摸索。
4．在实验过程中遇到疑难之处，先要自己设法解决，如一时解决不了，应向指导教师说明情形，要求教师协助解决。
关于贵重仪器，在未熟悉其性能之前，不可轻易调试。
5．实验室内保持安静、整洁。
用药后须用原瓶塞塞好，公用药品和器材不可随意移动。
【实验后】1．将实验用器材清洗擦干，清点整理后放到指定位置。
如有损坏、缺少，应及时报告老师。
将存活和死亡动物分别送至指定处所。
2．认真整理实验记录，通过分析摸索，撰写实验报告，按时交给指导老师。
3．做好实验室的清洁卫生工作。
第二节药理学实验设计的差不多原则在进行药理学实验时，为保证实验结果的客观性和可信性必须遵循以下差不多原则：一．对比原则：进行实验时必须设对比组。
设置对比组是为了使观看指标通过对比而发觉其在处理因素（如药物等）的作用下而表现出的某种特异性变化，排除各种无关因素的阻碍。
药理学实验基本知识与技能实验报告
药理学实验基本知识与技能实验报告1.了解药理学实验的基本知识、技能及主要实验方法；2.培养对药物作用的判断能力和评价能力；3.掌握实验中的操作技能和实验数据的处理方法。
实验内容：本次药理学实验主要包含以下内容：1.药物实验的基本知识：药物性质、用药途径、药物剂量和使用方法、药物评价方法等；2.药物作用的评价方法：包括药效学、副作用和毒性、药代动力学等；3.药物实验的操作方法：包括药物制剂的制备和制剂的性质分析、动物实验等操作。
实验步骤：1.药物制剂的制备和性质分析a、选取需要制备的药物制剂并准备所需要的药物原料；b、根据药品说明书，确立合适的配伍方案并计算药物配比；c、将药物原料按照配方比例称量，配合制剂的制备；d、对制剂进行性状分析，例如外观、气味、颜色、味道等。
2.动物实验的操作a、准备实验所需动物（小鼠、大鼠、猪等），按照正常条件下饲养一段时间，保持体内环境平稳；b、按照计划的剂量模式，将药物给予动物口服、注射、吸入等途径，然后观察动物的生理状况变化；c、记录药物作用的时间和程度，并观察药物的治疗效果和不良反应；d、分析动物实验结果，得出药物的作用目标、剂量规律等信息。
实验结果分析：经过对本次实验数据的统计分析，我们得出以下结果和结论：1.药物制剂的制备和性质分析这一步主要在于制备药品初步探讨药品相对的性质，包括物理性质和化学性质等。
药品初制后，需要分析其外观特点、颜色、气味、味道、纯度和含量等参数，以评价药品质量。
2.动物实验的操作本实验选择了小鼠模型，并按照剂量递增的模式给予药物，观察小鼠的生理变化，并记录药物的作用时间和不良反应。
实验结果表明，在本剂量下，药物的作用效果比较显著，但也存在一些不良反应，需要进一步的研究和评估。
结论：通过对本次实验的操作和数据分析，我们得出以下结论：1、药物的制备和性质分析是一项必不可少的工作，对于药品的质量保证有重要作用；2、动物实验是一种可靠的实验方法，但也有一些限制和缺陷，需要加以改进和完善；3、本实验显示出了药物的作用效果比较显著，但也存在一些不良反应，需要进一步的评估和改进。
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第一章药理学实验的基础知识一、药理学实验课的目的和要求药理学实验课的目的在于通过实验，使学生掌握进行药理学实验的基本方法，了解获得药理学知识的科学途径，验证药理学中的重要基本理论，更牢固地掌握药理学的基本概念。
在实验课中还应培养学生科学工作的严肃的态度、严格的要求、严密的工作方法和实事求是的作风，并初步具备客观地对事物进行观察、比较、分析、综合和解决实际问题的能力。
为了达到上述目的，要求做到下列事项：实验前（1）仔细阅读实验指导，了解实验目的、要求、方法和操作步骤，领会其设计原理；（2）结合实验内容，复习有关药理学和生理学、生化学等方面理论知识达到充分理解；（3）估计实验中可能出现的情况和发生的问题。
实验中（1）将实验器材妥善安排，正确装置；（2）严格按照实验指导书上的步骤进行操作，准确计算给药量，防止出现差错意外；（3）认真、细致地观察实验过程中出现的现象，随时记录药物反应的出时间、表现以及最后转归，联系课堂讲授内容进行思考；（4）注意节约实验材料。
实验后（1）整理实验结果，经过分析思考，写出实验报告，按时交给指导教师；（2）整理实验器材，洗净擦干，妥为安放。
将存活和死亡动物分别送至指定处所。
做好实验室的清洁卫生工作。
二、实验动物的捉持和给药法实验1.1 蛙和蟾蜍的捉持和给药法[目的] 学习蛙和蟾蜍的捉持和淋巴囊给药法。
[材料] 蛙或蟾蜍；注射器、针头、生理盐水。
[方法] 1.捉持法通常以左手握持，用食指和中指夹住左前肢，用拇指压住右前肢，将下肢拉直，用无名指及小指夹住。
2.淋巴囊内注射法蛙及蟾蜍皮下有多个淋巴囊，注入药物后易于吸收。
通常将药物注射于胸、腹或股淋巴囊。
蛙及蟾蜍的皮肤很薄，缺乏弹性，注射后药物易自针眼漏出，故作胸部淋巴囊注射时应将针头插入口腔，由口腔底部穿过下颌肌层而达胸部皮下；作股淋巴囊注射时，应由小腿皮肤剌入，通过膝关节而达大腿部皮下。
这样才可避免药液外漏。
注入药液量一般为0.25ml∽0.50ml试以生理盐水作胸淋巴囊和股淋巴囊注射练习。
实验1.2 小鼠的捉持和给药法[目的] 学习小鼠的捉持和各种给药法。
[材料] 小鼠3∽4只；鼠笼、天平、注射器、针头、灌胃针头、小鼠尾静脉注射用固定筒、生理盐水。
[方法]１.捉持法以右手提鼠尾，将小鼠放于鼠笼或其它粗糙面上，将鼠尾向后轻拉，使小鼠固定在粗糙面上，以左手的拇指及屈成“V”状的食指捏其双耳及头颈部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，这样便可将小鼠完全固定，并可保持头颈部平直。
2. 灌胃法以左手捉持小鼠，使其头部朝上，颈部拉直。
右手持配有灌胃针头（以16号输血针头磨去针尖后制成）的注射器，自口角插入口腔，再从舌面紧沿上腭进入食道。
如手法正确，不难成功。
若遇阻力，应退出后再插，不能用力强插，以免刺破食道或误入气管，使动物致死。
灌胃的药液量一般为0.1∽0.3ml/10g。
试以生理盐水作灌胃练习。
3.皮下注射可由两人合作。
一人左手抓住小鼠头部皮肤，右手拉住鼠尾。
另一人左手捏起背部皮肤，右手持注射器（5号或6号针头），将针头刺入背部皮下。
如由一人操作，可按前法捉持小鼠，右手持注射器，针尖从右侧肋缘上穿入皮下，向前推至右前肢腋下部位，将药液推入即可。
小鼠皮下注射的药液量一般为0.05∽0.2ml/10g。
试以生理盐水进行练习。
4．肌内注射可由两人合作。
一人左手抓住小鼠头部皮肤，右手拉住鼠尾。
另一人持注射器（4号或5号针头），将针头刺入后肢外侧部肌肉。
如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药。
注射器每腿不宜超过0.1ml。
试以生理盐水进行练习。
5．腹腔注射以左手抓住小鼠，使腹部在上面，头部下倾，右手持注射器（5号或6号针头），取30度角将针头从一侧下腹部向头端刺入腹腔。
进针部位不宜太高，刺入不能太深，以免伤及内脏。
注射量一般为0.1∽0.2ml/10g。
试以生理盐水进行练习。
6．尾静脉注射将小鼠置特制的固定筒内（或倒置的大漏斗、乳钵下），使鼠尾露出在外。
用酒精（或二甲苯）棉球涂擦尾部，或将鼠尾在50℃热水中浸泡半分钟，使血管扩张。
用左手拉住尾尖，从左右两侧尾静脉中，选择一条扩张最明显的尾静脉，右手持注射器（4号针头），将针头刺入血管，推入药液。
如推注时有阻力，且局部肿胀变白，表明针头没有刺入血管，应拨出后重新穿刺。
穿刺血管时宜从鼠尾末端开始，以便失败后可在第一次穿刺点的近心端重新进行。
小鼠尾静脉注射的药液量一般为0.1∽0.2ml/10g。
试以生理盐水作尾静脉注射练习。
实验1.3 家兔的捉持和给药法[目的] 学习家兔的捉持和各种给药法。
[材料] 家兔1∽2只；兔固定箱、兔开口器、磅称、导尿管、注射器、生理盐水[方法] 1．捉持法用一手抓住家兔颈背部皮肤，将兔提起，另一手托其臀部，使兔呈坐位姿势。
2．灌胃需由两人合作进行。
一人取坐位，用两腿夹持兔身，左手握家兔双耳，右手抓住两前肢，另一人将木制开口器横插家兔口内，压住舌头，并固定之。
取8号导尿管，从开口器中部小孔插入食道，深约15∽18cm。
插管时易误入气管。
区别方法主要在于谨慎观察插管后动物的反应。
插入气管时将引起剧烈挣扎和呼吸困难。
也可将导尿管的外端浸入水中，如有气泡吹出，表示已误入气管内，此时应拨出重插。
在判明导尿管确定插在食道内以后，取注射器接在导尿管上，将药液推入。
再推注少量空气，使导尿管中不致有药液残留。
然后抽出导尿管，取出开口器。
如用兔固定箱，亦可一人操作。
左手将开口器固定于兔口内，右手将导尿管插入食道。
家兔灌胃给药时的药液容量一般为5∽20ml/kg。
试以生理盐水进行练习。
3．皮下、肌内及腹腔注射给药方法基本上同小白鼠，唯针头可稍大（6号或7号），给药量可稍多（皮下与肌内0.5∽1.0ml/kg，腹腔1.0∽5.0ml/kg）。
4．静脉注射将家兔置固定箱内，拨去耳壳外缘的毛，选择一条比较明显的耳缘静脉，用酒精棉球涂擦皮肤，使血管显露。
用左手拇指和中指捏住兔的耳尖，以食指垫在兔耳拟进针部位的下面，右手持注射器（6号），从近耳尖处将针头刺入血管。
如见到针头确在血管内，即以左手将针头固定在兔耳上，将药液推入。
推注时如有阻力，局部出现肿胀，表明针头不在血管内，应立即拨针重新穿刺。
家兔的静脉注射量，一般药液为0.2∽2.0ml/kg，等渗药液可达10ml/kg。
试以生理盐水进行练习。
附：其他动物的给药法大鼠的捉持和给药法捉持法将大鼠放于粗糙面上，用右手拉其尾部，左手戴保护手套，以拇指和食指捉其头部，其余三指夹住背部腹部。
对于身体特大或凶狠易咬人的大鼠，可先以布巾包裹全身（露出口、鼻），然后进行操作。
给药法大鼠的各种给药法基本上同小鼠，唯所用的给药工具可稍大，给药量也可稍多。
豚鼠的捉持和给药法捉持法豚鼠性温和，一般不咬人，用手握住身体即可。
皮下、肌内及腹腔注射方法基本上同小鼠，给药量可稍多。
静脉注射可选用后脚掌外侧的静脉或外颈静脉进行注射。
作后脚掌外侧静脉注射时，可由一人捉豚鼠并固定一条后腿，另一人剪去注射部位的毛，用酒精棉球涂擦后脚掌外侧的皮肤使血管显露，再将连在注射器上的小儿头皮静脉输液针头刺入血管。
作外颈静脉注射时需先剪去一点皮肤，使血管暴露，然后将连在注射器上的小儿头皮静脉输液针头刺入。
豚鼠的静脉管壁脆弱易破，操作时需特别小心。
猫的给药法皮下、肌内及腹腔注射方法基本上同家兔。
给性情暴躁的猫注射麻醉药时，可先将猫装在布袋内，然后逐渐收缩布袋，将猫推到袋角，按住头部和躯体，隔着布层作腹腔内注射。
狗的给药法给药前处置对于未经驯服的狗，需先以特制铁钳夹住颈部，将其按倒，以绳索捆扎狗嘴，然后才可作给药操作。
但是对于已经驯养，用于慢性实验的狗，切不可用铁钳夹颈。
否则狗的性情将由此变得暴躁而难以操作。
灌胃、皮下、肌内和腹腔注射方法上基本上同家兔，用具和给药量应相应增大。
静脉注射常用的注射部位是后肢小隐静脉，该血管由外踝前侧走向外上侧。
也可选用前肢的皮下头静脉，该血管在脚爪上方背侧的正前位。
注射时先局部剪毛，以酒精涂擦皮肤，一人捏紧注射肢体的上端，阻断血液回流，使静脉充盈，以便看清其走向，另一人持注射器进行静脉穿刺，将药液注入。
三、实验动物的性别鉴别、编号和处死法(一)实验动物的性别鉴别1．小鼠和大鼠两性的区别要点有三：雄鼠可见阴囊，站位时阴囊内睾丸下垂，热天尤为明显，成熟雌鼠的腹部可见乳头；雄鼠的尿道口与肛门距离较远，雌鼠的阴道口与肛门比较靠近；肛门和生殖器间有沟的为雌鼠，无沟的为雄鼠。
2．豚鼠与小鼠和大鼠基本相同。
3．兔雄兔可见阴囊，两侧各有一个睾丸；用拇指和食指按压生殖器部位，雄兔可露出阴茎；雌兔的腹部可见乳头。
4．其它较大动物，性别特点明显，不难辨认。
(二)实验动物的编号较大的动物如猫、狗、猴等，可用号码牌挂在动物颈部，或将特制的铝质标牌固定在耳壳上。
小鼠、大鼠及家兔一般用1%苦味酸溶液（以稀醇配制）涂于体表不同部位的毛上。
方法不尽相同，以能明显区别为原则。
例如1号涂在左前肢，2号涂在左后肢，3号涂右前肢，4号涂右后肢，5号涂头部，6号涂背部，7号涂尾部，8号涂头及背部，9号涂头及尾部，10号不涂色等。
(三)实验动物的处死法1．蛙和蟾蜍可以断头处死。
也可用探针经枕骨大孔破坏其脑和脊髓。
2．小鼠和大鼠也常以断头处死。
对于小鼠，还可用颈椎脱臼法处死，即用左手的拇指和食指紧按其头部，右手捉其尾根，向后猛拉，就可使其致死。
3．兔、猫及狗静脉注射空气10到30毫升，可使动物因血管气栓而死。
静脉注射大剂量戊巴比妥钠等麻醉药，则更可使动物在死前免受痛苦。
四、实验动物给药量的计算在要给动物给药的时侯，常常会遇到两个问题：（1）给予多少剂量才恰当？（2）应配成何种浓度的药液，给予多少毫升才合适？现分述其处理方法。
（一）给药剂量的决定药物对于某种动物的适当剂量得自实践经验，不能凭空推算。
在我们为了某一目的准备给某种动物用药而需要解决剂量问题时，首先应该查阅该药的有关文献（学报、文摘、手册和专著等），了解前人的经验。
如能查到为了同一目的，给相同种类动物用药的记录，那就可以直接照试。
有时侯查不到治疗剂量，但能找到致死量（LD50或MLD），可先用1/5∽1/3的致死量进行尝试。
如果查不到待试动物的剂量，但知道其它动物的剂量或人用剂量，这就需要加以换算。
关于不同种类动物间用药剂量的换算，一般认为不能简单的按体重比例增减，而需按单位体重所占体表面积的比值来换算，其具体方法详见附录五。
但换算而得的剂量仍有可能偏大或偏小，也只能当作一个参考值。
（二）药液浓度的考虑与给予药液容量的计算决定了给药剂量以后，应该怎样考虑将要配制药液的适当浓度呢？这时侯就应当从在供试动物身上，以某种特定途径给药时的最适给药容量入手，现举例加以说明：例1 已知戊巴比妥钠给家兔静脉注射时的适当剂量为25mg/kg，问宜将戊巴比妥钠配成何种浓度的溶液，方便于给药？解：家兔静脉注射时的药液容量以1ml/kg较较恰当。