生理实验报告蟾蜍骨骼肌生理
骨骼肌实验报告结果
一、实验目的1. 了解骨骼肌的兴奋收缩原理。
2. 掌握骨骼肌兴奋收缩的实验方法。
3. 观察不同刺激强度和频率对骨骼肌收缩的影响。
二、实验原理骨骼肌的收缩是由神经冲动引起的。
当神经冲动到达骨骼肌时，会引起肌肉细胞膜的去极化，从而触发肌肉收缩。
刺激强度和频率是影响骨骼肌收缩的两个重要因素。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍2. 实验器材：粗剪刀、玻璃分针、探针、木锤、镊子、培养皿、任氏液、娃板、保护电极、肌槽、张力转换器、锌铜弓、微机生物信号处理系统3. 实验试剂：生理盐水、1%的乙酰胆碱溶液、1%的肾上腺素溶液四、实验方法1. 准备蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本，将标本置于肌槽中，用任氏液维持生理状态。
2. 将标本与保护电极连接，用微机生物信号处理系统记录肌肉收缩曲线。
3. 分别给予不同刺激强度和频率的刺激，观察肌肉收缩的变化。
4. 分别给予阈下刺激、阈刺激和最大刺激，观察肌肉收缩曲线的变化。
5. 分别给予不同频率的刺激，观察肌肉收缩曲线的变化。
五、实验结果1. 刺激强度对骨骼肌收缩的影响- 阈下刺激：肌肉不发生收缩。
- 阈刺激：肌肉发生单收缩。
- 最大刺激：肌肉发生最大收缩。
- 随着刺激强度的增加，肌肉收缩幅度逐渐增大，直至达到最大收缩。
2. 刺激频率对骨骼肌收缩的影响- 低频率刺激：肌肉发生单收缩。
- 中等频率刺激：肌肉发生不完全强直收缩。
- 高频率刺激：肌肉发生完全强直收缩。
3. 阈刺激下，肌肉收缩曲线的变化趋势- 潜伏期：刺激后肌肉收缩前的短暂时间。
- 收缩期：肌肉收缩的时间。
- 舒张期：肌肉收缩后的短暂时间。
六、实验结论1. 骨骼肌的兴奋收缩是由神经冲动引起的。
2. 刺激强度和频率是影响骨骼肌收缩的两个重要因素。
3. 随着刺激强度的增加，肌肉收缩幅度逐渐增大，直至达到最大收缩。
4. 随着刺激频率的增加，肌肉收缩形式由单收缩转变为不完全强直收缩，最终变为完全强直收缩。
七、实验讨论本次实验验证了骨骼肌的兴奋收缩原理，并通过实验观察了不同刺激强度和频率对骨骼肌收缩的影响。
蟾蜍基本实验实验报告
一、实验名称蟾蜍基本实验二、实验目的1. 了解蟾蜍的解剖结构；2. 掌握蟾蜍生理实验的基本操作技术；3. 观察蟾蜍神经系统的反射活动；4. 探讨蟾蜍骨骼肌的兴奋收缩特性。
三、实验原理蟾蜍是一种常用的实验动物，其解剖结构和生理功能与哺乳动物有相似之处，因此常用于生理学、药理学等实验研究。
本实验通过对蟾蜍进行解剖和生理实验，了解其基本结构和生理功能。
四、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、解剖盘、解剖剪、镊子、解剖针、生理盐水、玻璃管、剪刀、刀片、酒精、烧杯、培养皿等；2. 实验仪器：显微镜、生物显微镜、电子天平、生理信号采集处理系统、刺激器等。
五、实验步骤1. 蟾蜍解剖（1）将蟾蜍置于解剖盘中，用解剖剪剪开蟾蜍的腹部，暴露内脏器官；（2）用解剖针分离内脏器官，观察蟾蜍的消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统、生殖系统等；（3）观察蟾蜍的神经系统，包括大脑、脊髓、神经节等。
2. 蟾蜍反射实验（1）制备脊蛙：将蟾蜍的脊髓与脑干分离，制成脊蛙；（2）观察脊蛙的屈肌反射和伸肌反射，观察反射弧的完整性和反射活动的敏感性；（3）观察脊蛙的膝跳反射，分析反射中枢的兴奋性和抑制性。
3. 蟾蜍骨骼肌兴奋收缩实验（1）制备坐骨神经-腓肠肌标本：将蟾蜍的坐骨神经与腓肠肌分离，制成标本；（2）观察不同刺激强度、频率对肌肉收缩的影响，分析阈水平和最大收缩；（3）观察收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期，分析刺激频度与肌肉收缩的关系。
六、实验结果与分析1. 蟾蜍解剖结果（1）消化系统：蟾蜍的消化系统包括口腔、咽、食道、胃、小肠、大肠、肛门；（2）呼吸系统：蟾蜍的呼吸系统包括皮肤、口腔、鼻腔、喉、气管、支气管、肺；（3）循环系统：蟾蜍的循环系统包括心脏、血管、血液；（4）泌尿系统：蟾蜍的泌尿系统包括肾脏、输尿管、膀胱、尿道；（5）生殖系统：蟾蜍的生殖系统包括卵巢、输卵管、子宫、阴道、睾丸、输精管、阴茎。
2. 蟾蜍反射实验结果（1）屈肌反射和伸肌反射：在适宜的刺激强度下，蟾蜍可以表现出屈肌反射和伸肌反射，反射弧完整，反射活动敏感；（2）膝跳反射：在适宜的刺激强度下，蟾蜍可以表现出膝跳反射，反射中枢兴奋性较强，抑制性较弱。
蟾蜍骨骼肌兴奋收缩实验 实验报告
生理科学实验报告实验1：蟾蜍骨骼肌兴奋收缩实验实验组成员：刘谨、杨莹莹、张敏霞浙江大学医学院临床医学（七年制）1008班【摘要】实验目的：学习使用RM6240多道生理信号采集处理系统和换能器的使用。
掌握制备具有正常兴奋收缩功能的蛙类坐骨神经-腓肠肌标本基本操作技术。
观察不同刺激强度、频率对肌肉收缩的影响。
观察神经-肌肉接头兴奋传递和骨骼肌兴奋的电变化与收缩之间的时间关系及其各自特点。
【关键词】神经-肌肉、刺激强度、频率、电位变化、张力变化【实验原理】蛙类的某些基本生命活动和生理功能与哺乳类动物有相似之处，而且其离体组织的生活条件比较简单，易于控制和掌握。
因此，蛙或蟾蜍的坐骨神经-腓肠肌标本常被用来观察神经-肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律及肌肉收缩特点等实验。
肌肉组织的兴奋主要表现为收缩活动，一个刺激是否能使组织发生兴奋，不仅与刺激形式有关还与刺激时间、强度、强度-时间变化三要素有关，若用方形电脉冲刺激则组织兴奋只与刺激强度、时间有关，终板电位可引起肌肉产生兴奋在宏观上表现为肌肉收缩。
肌肉的收缩形式不仅与刺激本身有关而且还与刺激频率有关。
若刺激频率较小，则表现为单收缩，逐渐增大刺激频率则变现为不完全强直收缩，继续增强则表现为完全强直收缩。
【实验步骤】1.实验材料1.1 实验动物：蟾蜍1.2 实验试剂：任氏液，甘油高渗任氏液1.3 实验器材：一维微调器，BB-3G屏蔽盒，针形引导电极，张力换能器，RM6240多道生理信号采集处理系统2. 实验方法2.1 蟾蜍坐骨神经神经-肌肉标本的制作取蟾蜍一只常规方法毁脑脊髓，剪断脊柱并且剪除蟾蜍躯干上部以及内脏，避开神经剥除蟾蜍的皮肤，于任试液中清洗，剪除骶骨分离坐骨神经于坐骨神经根部结扎，将标本固定于木板上，分离大腿部坐骨神经，直至分离至腘窝胫神经分叉处。
然后剪断股二头肌腱、半腱肌和半膜肌肌腱，并绕至前方剪断股四头肌腱。
用剪刀刮除股骨上的肌肉，在距膝关节约1cm处剪断股骨。
生理蟾蜍实验报告
一、实验目的1. 理解蟾蜍骨骼肌兴奋收缩的基本原理。
2. 学习使用生理学实验设备，如RM6240多道生理信号采集处理系统和换能器。
3. 掌握制备具有正常兴奋收缩功能的蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的基本操作技术。
4. 观察不同刺激强度、频率对蟾蜍骨骼肌收缩的影响。
5. 分析神经肌肉接头兴奋传递和骨骼肌兴奋的电变化与收缩之间的时间关系及其各自特点。
二、实验原理蟾蜍作为一种经典的实验动物，其生理结构和功能与哺乳动物有相似之处，且其离体组织的生活条件简单，易于控制和观察。
蟾蜍骨骼肌兴奋收缩实验是生理学教学中的一个重要内容，通过观察不同刺激条件下的肌肉收缩反应，可以深入理解神经肌肉兴奋传导和肌肉收缩的生理机制。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、生理盐水、神经钩、镊子、剪刀、玻璃针、电极等。
2. 实验仪器：RM6240多道生理信号采集处理系统、换能器、放大器、示波器、计算机等。
四、实验方法1. 制备蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本：将蟾蜍处死后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的坐骨神经及小腿的腓肠肌。
将神经和肌肉端结扎后，离体。
2. 连接电极：将标本的膝关节固定于标本盒的记录电极R3和R4之间，神经中枢端接触刺激电极S1和S2，肌肉接触记录电极R3和R4，之间接触接地电极。
3. 连接换能器：将肌肉的结扎线从标本盒中穿出，连接张力换能器。
4. 设置刺激参数：使用RM6240多道生理信号采集处理系统设置刺激参数，包括刺激强度、频率等。
5. 实验操作：启动刺激器，观察不同刺激强度、频率对蟾蜍骨骼肌收缩的影响，并记录相关数据。
五、实验结果与分析1. 不同刺激强度对蟾蜍骨骼肌收缩的影响：随着刺激强度的增加，蟾蜍骨骼肌的收缩幅度也随之增大，但当刺激强度超过一定阈值后，肌肉收缩幅度不再增加。
2. 不同刺激频率对蟾蜍骨骼肌收缩的影响：低频率刺激下，肌肉表现为单收缩；随着刺激频率的增加，肌肉收缩表现为不完全强直收缩；继续增加刺激频率，肌肉收缩表现为完全强直收缩。
生理解剖蟾蜍实习报告
生理解剖蟾蜍实习报告一、实习背景及目的近年来，随着生物学研究的不断深入，人们对生物体的结构与功能有了更加全面的认识。
为了进一步提高我对生物学知识的理解和应用能力，学校组织了一次生理解剖蟾蜍的实习活动。
本次实习的主要目的是观察和了解蟾蜍的形态结构、生理功能及其生态环境，从而提高我们的实践操作能力和综合素质。
二、实习过程在实习过程中，我们首先接受了实习导师的指导，学习了蟾蜍的生物特征、生活习性以及解剖方法。
在导师的示范下，我们学会了如何使用解剖工具，如刀、剪、镊子等，以及如何进行蟾蜍的解剖操作。
在实际的解剖过程中，我们按照导师的指导，逐步进行了蟾蜍的解剖。
首先，我们观察了蟾蜍的外观特征，包括体型、皮肤纹理、颜色等。
然后，我们用刀切开蟾蜍的腹部，逐层解剖，观察其内部器官的形态和位置。
在解剖过程中，我们特别注意观察了蟾蜍的心脏、肝脏、肺部、胃等主要器官的结构和功能。
此外，我们还观察了蟾蜍的生殖系统，了解了其生殖特点。
在观察蟾蜍的皮肤时，我们发现其皮肤表面有许多疣状突起，这些突起是蟾蜍的特征之一。
我们还了解到，蟾蜍的皮肤具有毒性，可以用来防御天敌。
此外，我们还解剖了蟾蜍的尾部，观察了其内部的构造。
在实习过程中，我们不仅进行了实地的解剖操作，还学习了相关的理论知识。
导师为我们讲解了蟾蜍的生活习性、生态环境以及其对人类生活的影响。
我们了解到，蟾蜍是两栖动物，生活在水边或湿润的环境中。
它们主要以昆虫为食，对农业生产具有积极作用。
同时，蟾蜍也面临着栖息地破坏、环境污染等威胁，需要加强保护。
三、实习收获通过本次实习，我对蟾蜍的形态结构、生理功能和生态环境有了更加深入的了解。
在实际操作中，我们学会了如何进行动物解剖，提高了实践操作能力。
同时，我们也意识到动物保护的重要性，增强了自己的环保意识。
本次实习让我们亲身体验了生物学研究的乐趣，激发了我们进一步学习生物学的热情。
在今后的学习中，我们将更加努力地学习生物学知识，提高自己的综合素质，为保护生物多样性和生态环境做出贡献。
生理解剖蟾蜍实习报告
一、实习目的通过本次生理解剖蟾蜍实习，了解蟾蜍的解剖结构，掌握蟾蜍各器官系统的位置、形态和功能，为后续生物学、生理学等相关课程的学习奠定基础。
二、实习时间2021年X月X日三、实习地点XX学院生理解剖实验室四、实习内容1.蟾蜍外部形态观察蟾蜍身体呈椭圆形，分为头、躯干和四肢三部分。
头部扁平，吻端尖，眼大而突出，耳后腺明显。
躯干部较宽，皮肤粗糙，全身密布大小不等的疣状突起。
四肢粗短，指（趾）端有吸盘，善于吸附。
2.蟾蜍内部解剖（1）头部解剖头部主要器官包括大脑、小脑、眼、耳、鼻、舌、咽、喉、食道等。
1）大脑：位于颅腔内，分为大脑皮层、白质和基底神经节。
大脑皮层负责处理感觉和运动信息。
2）小脑：位于颅腔后部，负责协调运动和维持身体平衡。
3）眼：蟾蜍眼睛较大，具有较好的视觉功能。
眼球由角膜、晶状体、玻璃体和视网膜组成。
4）耳：蟾蜍有外耳和内耳。
外耳负责收集声波，内耳负责听觉和平衡。
5）鼻：蟾蜍鼻腔内有嗅觉器官，负责嗅觉功能。
6）舌：蟾蜍舌较大，呈舌状，用于捕食。
7）咽、喉、食道：蟾蜍的咽部与喉部相连，食道连接咽部和胃。
（2）躯干部解剖躯干部主要器官包括心脏、肺、肝、脾、胃、肠、肾脏、生殖器官等。
1）心脏：蟾蜍心脏为两心房、两心室，负责血液循环。
2）肺：蟾蜍肺为薄壁结构，位于胸腔内，负责呼吸功能。
3）肝、脾：蟾蜍肝、脾位于腹腔内，分别负责代谢和免疫。
4）胃、肠：蟾蜍胃位于腹腔内，分为胃底、胃体和胃窦。
肠分为小肠和大肠，负责消化和吸收。
5）肾脏：蟾蜍肾脏位于腹腔后部，负责排泄代谢废物。
6）生殖器官：蟾蜍生殖器官包括卵巢、睾丸、输卵管、输精管、子宫、阴道等，负责生殖功能。
（3）四肢解剖四肢主要由骨骼、肌肉和血管组成，负责运动和支撑。
1）骨骼：蟾蜍骨骼包括头骨、躯干骨和四肢骨。
2）肌肉：蟾蜍肌肉分为骨骼肌和平滑肌，负责运动。
3）血管：蟾蜍血管包括动脉、静脉和毛细血管，负责血液循环。
五、实习总结通过本次生理解剖蟾蜍实习，我对蟾蜍的解剖结构有了较为全面的了解。
生理实验：实验三 蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本制备及骨骼肌收缩性质观察
实验材料
1、实验动物（laboratory animal) • 蟾蜍（中华蟾蜍指名亚种，Zhuoshan Toad）
2、药品(drug) • 任氏液
• 任氏液由无机盐和蒸馏水配置而成，每 升溶液含NaCl 6.5g、KCl 0.14g、CaCl2 0.12g,、NaHCO3 0.20g、NaH2PO4 0.01g。 任氏液的理化特性与蛙的组织液近似。 可用于蛙的组织、器官润湿和营养。
动作电位以局部电流的形式传导
实验原理
-动作电位传导速度的测定
刺激器
输入通道
+－
R1- Rr1+ R2- R2+
S
Δt
传导速度测定 υ= SAC
Δt
实验步骤
1、制备坐骨神经干
1
• 蟾蜍下肢背面向上置于蛙板上，剪去
尾椎；
• 标本腹面向上，用玻璃分针分离脊柱
两侧神经丛，用线在近脊柱处结扎，
剪断神经；
• 将神经干从腹面移向背面。标本背面
刺激神经使神经细胞产生兴奋兴奋延神经纤维传到通过神经肌接头的化学传递使肌肉终板膜上产生终板电位终板电位可引起肌肉产生兴奋即动作电位传遍整个肌纤维再通过兴奋收缩偶联使肌纤维中粗细肌丝产生相对滑动宏观上表现为肌肉收缩
实验三 蟾蜍坐骨神经-腓 肠肌标本制备及骨骼肌收
缩性质观察
实验目的
• 掌握制备具有正常收缩功能的蛙类坐骨神经腓肠 肌标本的基本操作技术。掌握蛙类手术器械的使 用方法，制备完好的坐骨神经-腓肠肌标本。
向上固定，从大腿至跟腱分离坐骨神 经。坐骨神经标本置任氏液中备用。
2
3
实验步骤
2、仪器连接和参数
• 神经干标本盒两对引导电极分别接微机生物信号处理系统1、 2通道。 开机，选择实验-肌肉神经-神经干兴奋传导速度测 定。仪器参数：1、2通道时间常数0.02s、滤波频率3KHz、 灵敏度5mV，采样频率：100KHz，扫描速度：0.2ms/div。 单刺激激方式，刺激幅度1.0V，刺激波宽0.1ms，延迟1ms， 同步触发。
生理实验报告蟾蜍骨骼肌生理
人体解剖及动物生理学实验报告实验名称蟾蜍骨骼肌生理姓名学号系别组别同组姓名实验室温度实验日期2015年5月7日一、实验题目蟾蜍骨骼肌生理A蟾蜍腓肠肌刺激强度与骨骼肌收缩反应的关系B蟾蜍骨骼肌单个肌肉收缩分析（潜伏期、收缩期和舒张期的确定）C蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系二、实验目的确定蟾蜍骨骼肌收缩的（1）阈水平和最大收缩以及刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线（2）收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期（3）刺激频度与肌肉收缩的关系三、实验方法1、蟾蜍坐骨神经-骨骼肌标本的制作及电路连接1)双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的做个神经及小腿的腓肠肌，注意不要将胫神经与腓神经分离。
神经端结扎后，剪去无关分支后游离至膝关节处；肌肉端结扎在肌腱上，将腓神经也一起结扎，结扎线留长。
保留膝关节，剪去腿骨，将标本离体。
注意保持神经肌肉湿润。
2)用大头钉将标本的膝关节固定于标本盒R2和R3两记录电极之间的石蜡凹槽内，保证神经、肌肉与电极充分接触。
神经中枢端接触刺激电极S1和S2，肌肉接触记录电极R3和R4，之间接触接地电极。
3)肌肉的结扎线从标本盒中穿出，连接张力换能器。
注意连线尽量短，以减小阻力。
在实验过程中，注意标本的休息：将神经搭在肌肉上，用浸湿了任氏液的棉花覆盖神经肌肉，保持湿润。
但标本盒内避免有过多的液体，防止短路。
4)换能器插头接RM6240通道1。
刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极S1和S2，插头接刺激输出插口。
如果需要记录肌肉的动作电位，则在肌肉所搭置的记录电极上连接输入导线，注意接地，插头接通道2。
2、蟾蜍骨骼肌生理各项数据测定A蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系1)打开信号采集软件，从“实验”菜单中选取“刺激强度对骨骼肌收缩的影响”，出现软件自动设置界面，各项参数已设置好，但需要将“采集频率”修改成“20kHz”，扫描速度仍然是“1.0s/div”。
蟾蜍单收缩实验报告
一、实验目的1. 观察并记录蟾蜍骨骼肌在单一刺激下的收缩反应。
2. 分析蟾蜍骨骼肌单收缩的潜伏期、收缩期和舒张期。
3. 探讨刺激强度和频率对蟾蜍骨骼肌单收缩的影响。
二、实验原理蟾蜍骨骼肌在受到适宜的电刺激后，会发生收缩反应。
单收缩是指骨骼肌在单个刺激下发生的收缩。
本实验通过观察蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本在单一刺激下的收缩反应，分析其收缩特征，并探讨刺激强度和频率对单收缩的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本、刺激器、张力换能器、放大器、示波器、标本盒、石蜡、大头针、剪刀、镊子等。
2. 实验仪器：RM6240多道生理信号采集处理系统、RM6000系列刺激器、张力换能器、放大器、示波器等。
四、实验步骤1. 将蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本固定于标本盒，并连接好电极。
2. 使用刺激器对标本进行电刺激，观察并记录蟾蜍骨骼肌的收缩反应。
3. 逐渐增加刺激强度，观察并记录不同刺激强度下的单收缩特征。
4. 逐渐增加刺激频率，观察并记录不同刺激频率下的单收缩特征。
5. 分析并比较不同刺激强度和频率下的单收缩特征。
五、实验结果与分析1. 单收缩特征：在单一刺激下，蟾蜍骨骼肌表现出明显的潜伏期、收缩期和舒张期。
潜伏期是指从刺激开始到肌肉开始收缩的时间，收缩期是指肌肉收缩的时间，舒张期是指肌肉从收缩状态恢复到原始状态的时间。
2. 刺激强度对单收缩的影响：随着刺激强度的增加，单收缩的潜伏期逐渐缩短，收缩期和舒张期逐渐延长。
当刺激强度达到一定阈值时，单收缩的潜伏期和收缩期不再随刺激强度增加而改变。
3. 刺激频率对单收缩的影响：随着刺激频率的增加，单收缩的潜伏期逐渐缩短，收缩期和舒张期逐渐延长。
当刺激频率达到一定阈值时，单收缩的潜伏期和收缩期不再随刺激频率增加而改变。
六、实验结论1. 蟾蜍骨骼肌在单一刺激下表现出明显的潜伏期、收缩期和舒张期。
2. 刺激强度和频率对蟾蜍骨骼肌单收缩有显著影响，表现为潜伏期、收缩期和舒张期的变化。
蟾蜍骨骼肌兴奋收缩实验实验报告
生理科学实验报告实验1：蟾蜍骨骼肌兴奋收缩实验实验组成员：刘谨、杨莹莹、张敏霞浙江大学医学院临床医学（七年制）1008班【摘要】实验目的：学习使用RM6240多道生理信号采集处理系统和换能器的使用。
掌握制备具有正常兴奋收缩功能的蛙类坐骨神经-腓肠肌标本基本操作技术。
观察不同刺激强度、频率对肌肉收缩的影响。
观察神经-肌肉接头兴奋传递和骨骼肌兴奋的电变化与收缩之间的时间关系及其各自特点。
【关键词】神经-肌肉、刺激强度、频率、电位变化、张力变化【实验原理】蛙类的某些基本生命活动和生理功能与哺乳类动物有相似之处，而且其离体组织的生活条件比较简单，易于控制和掌握。
因此，蛙或蟾蜍的坐骨神经-腓肠肌标本常被用来观察神经-肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律及肌肉收缩特点等实验。
肌肉组织的兴奋主要表现为收缩活动，一个刺激是否能使组织发生兴奋，不仅与刺激形式有关还与刺激时间、强度、强度-时间变化三要素有关，若用方形电脉冲刺激则组织兴奋只与刺激强度、时间有关，终板电位可引起肌肉产生兴奋在宏观上表现为肌肉收缩。
肌肉的收缩形式不仅与刺激本身有关而且还与刺激频率有关。
若刺激频率较小，则表现为单收缩，逐渐增大刺激频率则变现为不完全强直收缩，继续增强则表现为完全强直收缩。
【实验步骤】1.实验材料1.1 实验动物：蟾蜍1.2 实验试剂：任氏液，甘油高渗任氏液1.3 实验器材：一维微调器，BB-3G屏蔽盒，针形引导电极，张力换能器，RM6240多道生理信号采集处理系统2. 实验方法2.1 蟾蜍坐骨神经神经-肌肉标本的制作取蟾蜍一只常规方法毁脑脊髓，剪断脊柱并且剪除蟾蜍躯干上部以及内脏，避开神经剥除蟾蜍的皮肤，于任试液中清洗，剪除骶骨分离坐骨神经于坐骨神经根部结扎，将标本固定于木板上，分离大腿部坐骨神经，直至分离至腘窝胫神经分叉处。
然后剪断股二头肌腱、半腱肌和半膜肌肌腱，并绕至前方剪断股四头肌腱。
用剪刀刮除股骨上的肌肉，在距膝关节约1cm处剪断股骨。
蟾蜍骨骼标本实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解蟾蜍骨骼系统的组成、结构和功能。
2. 熟悉骨骼标本的观察方法和技巧。
3. 培养实验操作能力和观察能力。
二、实验原理蟾蜍作为两栖动物，其骨骼系统与哺乳动物有相似之处，但也具有其独特的结构和功能。
通过观察蟾蜍骨骼标本，可以了解其骨骼系统的组成、形态和功能，为研究两栖动物骨骼系统提供基础。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍骨骼标本、解剖盘、解剖镊、解剖针、解剖剪、显微镜等。
2. 仪器：解剖显微镜、放大镜、计算机等。
四、实验内容与步骤1. 观察蟾蜍骨骼标本的整体结构（1）将蟾蜍骨骼标本放置在解剖盘上，用解剖显微镜观察其整体结构。
（2）注意观察骨骼标本的颜色、形状和大小，了解其骨骼系统的组成。
2. 观察骨骼标本的各个部位（1）头部骨骼：观察头骨、颅骨和颌骨等部位的结构和形态，了解其保护脑部和颌部的作用。
（2）躯干骨骼：观察脊椎、胸骨和肋骨等部位的结构和形态，了解其支持身体和保护内脏的作用。
（3）四肢骨骼：观察四肢骨（上肢骨和下肢骨）的结构和形态，了解其支持身体和提供运动功能的作用。
3. 观察骨骼标本的关节结构（1）观察关节的形态和结构，了解关节在运动中的作用。
（2）观察关节面的形状和大小，了解关节的承重和运动功能。
4. 观察骨骼标本的骨骼肌附着点（1）观察骨骼肌的附着点，了解骨骼肌在运动中的作用。
（2）观察骨骼肌的形状和走向，了解其与骨骼的关系。
5. 观察骨骼标本的骨骼系统与其他系统的关系（1）观察骨骼系统与神经系统、肌肉系统、消化系统等的关系，了解各系统之间的协同作用。
（2）观察骨骼系统在不同生长阶段的形态变化，了解其生长发育过程。
五、实验结果与分析1. 蟾蜍骨骼系统的组成：包括头部骨骼、躯干骨骼和四肢骨骼。
2. 蟾蜍骨骼系统的形态和功能：头部骨骼保护脑部和颌部，躯干骨骼支持身体和保护内脏，四肢骨骼提供运动功能。
3. 蟾蜍关节的结构和功能：关节连接骨骼，实现骨骼系统的运动。
蟾蜍实验报告
蟾蜍的解剖与观察生命科学院张茜 111070094一、实验目的意义两栖动物绝大多数都是对人类有益的，例如消灭害虫、作药用资源等等。
蟾蜍作为医学、生理学重要的实验动物则使用更为广泛。
通过观察两栖类外形、皮肤、消化、呼吸、泄殖和循环等系统，了解两栖动物z 在生理学、药理学、毒理学等实验中常用组的准确取材。
重点：了解在摄食方式、营养、呼吸、排泄、生殖及血液循环器官系统的形态特征。
难点：理解两栖动物了解两栖动物由水生发展到陆地生活的各个器官结构与功能的适应性。
二、实验对象的获得与麻醉获得途径主要是由野外捕获或从特种养殖场购买(如牛蛙养殖场)。
抓取方法: 抓住其后腿，有经验者也可抓住其身体或借助一块布来抓，因蛙体表粘滑且蟾蜍体表有毒液分泌。
麻醉：两栖类皮肤有渗透性，放入含麻醉剂的溶液中就很容易麻醉。
0.1％的甲磺酸—三卡因(ms—222)水溶液在几分钟内即可麻醉动物，所需时间因身体大小而异。
也可用呼吸性麻醉剂，将蛙或蟾蜍放进玻璃罩或标本瓶内，同时放人浸有乙醚的棉花，几分钟后，即可发生作用。
三、实验操作与观察(一)外形观察将活蛙(或蟾蜍)静伏于解剖盘内，观察蛙(蟾蜍)的身体，可区分为头部、躯干和四肢三部分。
1．头部头：呈扁等腰三角形。
眼睛：在头两侧，稍向背部突出，有上下眼睑。
瞬膜：在下眼睑的内侧，为一半透明的薄膜，该膜向上延展可覆盖眼球。
外鼻孔：两眼的前方，近于头的前端的一对小孔内鼻孔：拉开下颌，在口腔顶壁的前端有一小孔鼻膜：在外鼻孔外缘的一对瓣状膜口：头端腹面有一很大的横裂鼓膜：眼后有一明显的褐色而稍下凹的圆形膜，是中耳腔与外界接触的地方。
蟾蜍的鼓膜较小，不明显耳后腺：蟾蜍鼓膜后上方有一对椭圆形的隆起，是由若干毒腺集合而成的，故又叫毒腺。
在受到压挤时，可分泌出一种乳白色的粘稠液，经加工之后即为中药“蟾酥”舌：在下颌前端内侧着生一柔软粘滑的舌，折向口腔内部，用镊子轻轻将舌拉出展平，可以看到蟾蜍的舌尖钝圆状。
动物生理实验报告册
一、前言动物生理实验是生理学研究中不可或缺的环节，通过对动物生理过程的观察和测量，可以揭示动物生命活动的内在规律。
本报告册旨在记录动物生理实验的过程、结果及分析，为生理学研究和教学提供参考。
二、实验内容1. 实验一：蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）（1）实验目的确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）的临界值、最大值、传导速度及不应期。
（2）实验方法采用蟾蜍坐骨神经标本，通过生物信号采集系统记录CAP，分析其临界值、最大值、传导速度及不应期。
（3）实验结果与分析根据实验数据，得出蟾蜍坐骨神经干CAP的临界值、最大值、传导速度及不应期，并与理论值进行比较，分析误差原因。
2. 实验二：小鼠生理指标测定（1）实验目的掌握健康小鼠的外观检查方法、性别鉴定、捉拿和固定方法、小鼠灌胃给药与小鼠腹腔注射给药等技术。
（2）实验方法观察小鼠的外观、性别、捉拿、固定、给药等操作，记录相关数据。
（3）实验结果与分析根据实验数据，分析小鼠的生理指标，如体重、心率、呼吸频率等，并与正常值进行比较，判断小鼠生理状态。
3. 实验三：蟾蜍骨骼肌生理（1）实验目的确定蟾蜍骨骼肌收缩的阈水平和最大收缩，分析刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线，确定收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期，分析刺激频度与肌肉收缩的关系。
（2）实验方法采用蟾蜍腓肠肌标本，通过生物信号采集系统记录肌肉收缩，分析其阈水平和最大收缩、刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线、收缩的三个时期及刺激频度与肌肉收缩的关系。
（3）实验结果与分析根据实验数据，得出蟾蜍骨骼肌收缩的阈水平和最大收缩、刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线、收缩的三个时期及刺激频度与肌肉收缩的关系，并与理论值进行比较，分析误差原因。
4. 实验四：实验动物学实验（1）实验目的熟悉实验动物的操作流程，包括抓取、固定、编号、给药、取血、麻醉、绝育、解剖等。
（2）实验方法按照操作流程，对实验动物进行各项操作，记录相关数据。
生理蟾蜍腓肠肌实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 熟悉蟾蜍腓肠肌标本的制备方法。
2. 掌握刺激强度、频率对肌肉收缩的影响。
3. 观察神经肌肉接头兴奋传递和骨骼肌兴奋的电变化与收缩之间的时间关系及其各自特点。
4. 理解神经肌肉兴奋性的生理机制。
二、实验原理蟾蜍腓肠肌标本是生理学实验中常用的实验材料，因其离体组织生活条件易于掌握，且与哺乳类动物生理功能相似。
通过观察蟾蜍腓肠肌在不同刺激强度、频率下的收缩反应，可以了解神经肌肉兴奋性的生理机制，以及刺激与反应之间的关系。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、任氏液、生理盐水、手术刀、剪刀、镊子、电刺激器、换能器、记录仪等。
2. 实验仪器：显微镜、电刺激器、换能器、记录仪、生理盐水浴槽等。
四、实验步骤1. 制备蟾蜍腓肠肌标本：a. 将蟾蜍处死，用生理盐水冲洗干净。
b. 用手术刀沿脊柱两侧剪开皮肤，暴露腰骶丛神经。
c. 游离坐骨神经和腓肠肌，剪去无关分支。
d. 将腓肠肌和坐骨神经分别结扎，用生理盐水浸泡。
2. 连接仪器：a. 将坐骨神经连接到电刺激器。
b. 将腓肠肌连接到换能器。
c. 将换能器连接到记录仪。
3. 观察刺激强度对肌肉收缩的影响：a. 调整电刺激器的输出强度，从低到高依次刺激坐骨神经。
b. 观察并记录腓肠肌的收缩反应，分析刺激强度与肌肉收缩之间的关系。
4. 观察刺激频率对肌肉收缩的影响：a. 调整电刺激器的输出频率，从低到高依次刺激坐骨神经。
b. 观察并记录腓肠肌的收缩反应，分析刺激频率与肌肉收缩之间的关系。
5. 观察神经肌肉接头兴奋传递和骨骼肌兴奋的电变化与收缩之间的时间关系：a. 观察并记录腓肠肌在刺激前后的电位变化。
b. 分析电位变化与肌肉收缩之间的关系。
五、实验结果与分析1. 刺激强度与肌肉收缩的关系：实验结果显示，随着刺激强度的增加，腓肠肌的收缩幅度也随之增加。
当刺激强度达到一定阈值时，肌肉收缩达到最大幅度。
当刺激强度继续增加时，肌肉收缩幅度不再增加。
2. 刺激频率与肌肉收缩的关系：实验结果显示，随着刺激频率的增加，腓肠肌的收缩幅度逐渐减小。
蟾蜍阈刺激实验报告
一、实验目的1. 了解阈刺激的概念及其在神经肌肉兴奋中的作用。
2. 观察并记录蟾蜍骨骼肌在不同刺激强度下的反应，确定阈刺激水平。
3. 分析刺激强度与肌肉收缩之间的关系，绘制刺激强度-反应曲线。
二、实验原理阈刺激是指能够引起肌肉发生收缩的最小刺激强度。
在神经肌肉兴奋过程中，当刺激强度达到一定阈值时，肌肉会产生兴奋，进而产生收缩反应。
通过改变刺激强度，可以观察并记录肌肉收缩的情况，从而确定阈刺激水平。
三、实验材料1. 蟾蜍一只2. 粗剪刀、玻璃分针、探针、木锤、镊子、培养皿3. 任氏液、娃板、保护电极、肌槽、张力转换器、锌铜弓4. 微机生物信号处理系统5. 刺激器、电流计四、实验步骤1. 制备标本：将蟾蜍处死，剪去头部，取出坐骨神经和腓肠肌，置于任氏液中。
2. 连接仪器：将坐骨神经和腓肠肌分别连接到刺激器和张力转换器上，将张力转换器的输出信号输入微机生物信号处理系统。
3. 单刺激：使用刺激器以不同强度（从小到大）对坐骨神经进行刺激，观察并记录腓肠肌的收缩情况。
4. 记录数据：记录每次刺激的强度和腓肠肌的收缩情况，包括收缩幅度、持续时间等。
5. 绘制曲线：根据记录的数据，绘制刺激强度-反应曲线。
五、实验结果1. 阈刺激水平：在实验过程中，当刺激强度达到一定值时，腓肠肌开始出现明显的收缩反应。
经过多次实验，确定阈刺激水平为X mV。
2. 刺激强度-反应曲线：根据记录的数据，绘制刺激强度-反应曲线。
曲线呈现上升趋势，表明随着刺激强度的增加，肌肉收缩反应逐渐增强。
六、实验分析1. 阈刺激是引起肌肉收缩的最小刺激强度，是神经肌肉兴奋的基础。
在实验中，阈刺激水平的确定对于研究神经肌肉兴奋过程具有重要意义。
2. 刺激强度-反应曲线反映了刺激强度与肌肉收缩之间的关系。
随着刺激强度的增加，肌肉收缩反应逐渐增强，表明肌肉具有可塑性。
3. 本实验结果与理论相符，验证了阈刺激在神经肌肉兴奋过程中的重要作用。
七、实验结论1. 阈刺激是引起肌肉收缩的最小刺激强度，是神经肌肉兴奋的基础。
机能学肌肉收缩实验报告
一、实验目的1. 了解骨骼肌的生理特性，包括刺激强度、频率对肌肉收缩的影响。
2. 掌握蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的制备方法。
3. 观察并分析不同刺激强度和频率对肌肉收缩的影响，理解肌肉收缩的基本原理。
二、实验原理骨骼肌的收缩受刺激强度和频率的影响。
在一定范围内，刺激强度越大，肌肉收缩力量越强；刺激频率越高，肌肉收缩速度越快。
当刺激频率达到一定程度时，肌肉收缩形式会发生改变，如单收缩、不完全强直收缩和完全强直收缩。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：蟾蜍2. 实验药品：任氏液3. 实验仪器：蛙类手术器械、张力换能器、刺激电极、生物信号记录分析系统、铁支架、肌槽等四、实验方法与步骤1. 制备蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本：（1）处死蟾蜍，剥皮去内脏，剪去头和四肢。
（2）用任氏液冲洗腓肠肌，用玻璃分针分离坐骨神经。
（3）将坐骨神经和腓肠肌固定在肌槽中，连接张力换能器和生物信号记录分析系统。
2. 实验步骤：（1）调整刺激强度，观察不同强度刺激下肌肉的收缩反应。
（2）调整刺激频率，观察不同频率刺激下肌肉的收缩反应。
（3）改变刺激强度和频率的组合，观察肌肉收缩形式的改变。
五、实验结果与分析1. 刺激强度对肌肉收缩的影响：随着刺激强度的增加，肌肉收缩力量逐渐增强。
当刺激强度达到一定阈值时，肌肉收缩达到最大力量。
2. 刺激频率对肌肉收缩的影响：随着刺激频率的增加，肌肉收缩速度逐渐加快。
当刺激频率达到一定阈值时，肌肉收缩形式发生改变。
3. 肌肉收缩形式的改变：（1）单收缩：刺激频率较低时，肌肉表现为一连串的单收缩。
（2）不完全强直收缩：刺激频率较高，刺激间隔大于一次肌肉收缩舒张的持续时间，肌肉产生不完全强直收缩。
（3）完全强直收缩：刺激频率继续增加，刺激间隔小于一次肌肉收缩的收缩时间，肌肉产生完全强直收缩。
六、实验结论1. 刺激强度和频率对骨骼肌收缩有显著影响。
2. 肌肉收缩形式受刺激强度和频率的影响，表现为单收缩、不完全强直收缩和完全强直收缩。
蟾蜍机能学实验报告
一、实验目的1. 观察蟾蜍的呼吸、心跳和神经反射等基本生理现象。
2. 掌握蟾蜍生理实验的基本操作方法。
3. 了解蟾蜍机体机能的基本规律。
二、实验原理蟾蜍作为一种两栖动物，具有与哺乳动物相似的生理功能。
通过观察蟾蜍的呼吸、心跳和神经反射等现象，可以了解蟾蜍的生理机能，为进一步研究哺乳动物的生理学提供参考。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、解剖器械、生理盐水、任氏液等。
2. 实验仪器：显微镜、解剖显微镜、生理信号采集系统、张力换能器、刺激电极等。
四、实验步骤1. 蟾蜍麻醉与解剖（1）将蟾蜍置于解剖盘中，用生理盐水浸泡，使其麻醉。
（2）沿蟾蜍背部剪开皮肤，暴露心脏、气管和神经系统。
（3）解剖出蟾蜍的心脏、气管和神经，分别进行观察。
2. 呼吸观察（1）观察蟾蜍的呼吸运动，记录呼吸频率和深度。
（2）通过显微镜观察蟾蜍的气管，观察气管内气体的流动情况。
3. 心跳观察（1）用生理盐水浸泡蟾蜍的心脏，观察心脏的跳动频率和节律。
（2）通过显微镜观察心脏的瓣膜运动，了解心脏的泵血功能。
4. 神经反射观察（1）用刺激电极刺激蟾蜍的坐骨神经，观察蟾蜍的足部肌肉收缩反应。
（2）观察蟾蜍对电刺激、光刺激和温度刺激的反应。
5. 数据记录与分析（1）记录实验过程中观察到的各项生理现象。
（2）对实验数据进行统计分析，得出结论。
五、实验结果与分析1. 呼吸观察结果蟾蜍的呼吸频率为每分钟30-40次，呼吸深度适中。
显微镜下观察，气管内气体流动明显。
2. 心跳观察结果蟾蜍的心跳频率为每分钟60-80次，节律规律。
显微镜下观察，心脏瓣膜运动正常，泵血功能良好。
3. 神经反射观察结果电刺激蟾蜍的坐骨神经，足部肌肉出现明显的收缩反应。
光刺激和温度刺激也能引起蟾蜍的反应。
六、实验结论通过本次实验，我们成功观察了蟾蜍的呼吸、心跳和神经反射等基本生理现象，掌握了蟾蜍生理实验的基本操作方法。
实验结果表明，蟾蜍的呼吸、心跳和神经反射等生理机能与哺乳动物有相似之处，为后续研究哺乳动物的生理学提供了参考。
蟾蜍实验报告目的
一、实验背景蟾蜍作为一种常用的实验动物，因其生物学特性丰富、实验操作简便、成本较低等优点，在生理学、药理学、神经科学等领域的研究中扮演着重要角色。
为了深入了解蟾蜍的生理机制，本实验旨在通过一系列实验操作，探讨蟾蜍骨骼肌的收缩特性，分析刺激强度、刺激频度等因素与肌肉收缩之间的关系，为相关领域的研究提供实验依据。
二、实验目的1. 确定蟾蜍骨骼肌收缩的阈水平和最大收缩，以及刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线。
（1）通过测定不同刺激强度下蟾蜍骨骼肌的收缩情况，找出引起肌肉收缩的最小刺激强度，即阈强度。
（2）分析不同刺激强度下蟾蜍骨骼肌的最大收缩程度，绘制刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线。
2. 观察蟾蜍骨骼肌收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期。
（1）记录肌肉收缩开始到出现最大收缩的时间段，确定潜伏期。
（2）记录肌肉收缩过程中，收缩速度和力量逐渐增加至最大值的时间段，确定缩短期。
（3）记录肌肉收缩过程中，收缩力量逐渐减小至恢复原状的时间段，确定舒张期。
3. 分析刺激频度与肌肉收缩的关系。
（1）通过改变刺激频度，观察蟾蜍骨骼肌的收缩情况，探讨刺激频度对肌肉收缩的影响。
（2）分析刺激频度与肌肉收缩的关系，为实际应用提供理论依据。
4. 探讨蟾蜍骨骼肌收缩的生理机制。
（1）结合实验结果，分析蟾蜍骨骼肌收缩过程中涉及的生理过程。
（2）探讨影响蟾蜍骨骼肌收缩的因素，为相关领域的研究提供参考。
5. 提高实验操作技能，培养严谨的科学态度。
（1）通过本次实验，使实验者掌握蟾蜍骨骼肌实验的操作方法。
（2）培养实验者严谨、细致的科学态度，提高实验操作的准确性。
三、实验方法1. 实验材料：蟾蜍、刺激器、肌电图仪、电极、剪刀、镊子、生理盐水等。
2. 实验步骤：（1）蟾蜍处死，取出后肢，去除肌肉表面的脂肪和结缔组织。
（2）将肌肉固定在肌电图仪上，连接电极。
（3）调整刺激器，进行不同刺激强度、刺激频度的实验。
（4）观察并记录肌肉收缩的三个时期。
蟾蜍刺激反应实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解蟾蜍的生理特性，掌握蟾蜍刺激反应的基本原理。
2. 掌握蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
3. 观察并分析不同刺激强度、频率对蟾蜍肌肉收缩的影响。
二、实验原理蟾蜍作为一种两栖动物，其神经系统相对简单，易于进行生理实验。
蟾蜍的坐骨神经-腓肠肌标本可以用来观察神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律及肌肉收缩特点等实验。
肌肉组织的兴奋主要表现为收缩活动，一个刺激是否能使组织发生兴奋，不仅与刺激形式有关还与刺激时间、强度、强度-时间变化三要素有关。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、蛙板、镊子、解剖剪、生理盐水、玻璃针、电极、示波器、信号采集处理系统等。
2. 实验仪器：显微镜、手术显微镜、生物信号采集处理系统、换能器、刺激器等。
四、实验步骤1. 制备蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本（1）取蟾蜍，置于解剖盘中，用剪刀剪开腹部皮肤，暴露内脏。
（2）用镊子轻轻提起坐骨神经，剪断神经的远端，使其与腓肠肌分离。
（3）将坐骨神经和腓肠肌浸入生理盐水中，去除多余的脂肪和结缔组织。
（4）将坐骨神经和腓肠肌固定在蛙板上，用玻璃针将神经的近端与电极连接。
2. 刺激实验（1）将电极与生物信号采集处理系统连接，打开示波器观察神经肌肉活动。
（2）调整刺激器参数，进行不同强度、频率的刺激实验。
（3）观察并记录蟾蜍腓肠肌的收缩情况，分析刺激强度、频率对肌肉收缩的影响。
3. 数据分析（1）分析不同刺激强度下，蟾蜍腓肠肌的收缩幅度、收缩速度等指标。
（2）分析不同刺激频率下，蟾蜍腓肠肌的收缩幅度、收缩速度等指标。
（3）绘制刺激强度-收缩幅度曲线、刺激频率-收缩幅度曲线。
五、实验结果与分析1. 不同刺激强度对蟾蜍腓肠肌收缩的影响实验结果显示，随着刺激强度的增加，蟾蜍腓肠肌的收缩幅度逐渐增大，收缩速度逐渐加快。
当刺激强度达到一定阈值时，腓肠肌出现最大收缩。
2. 不同刺激频率对蟾蜍腓肠肌收缩的影响实验结果显示，随着刺激频率的增加，蟾蜍腓肠肌的收缩幅度先增大后减小，收缩速度先加快后减慢。
细胞生理蟾蜍实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解蟾蜍细胞生理学的基本原理和方法。
2. 通过实验，观察蟾蜍细胞在不同条件下的生理现象，加深对细胞生理学的理解。
3. 培养学生运用实验方法解决实际问题的能力。
二、实验原理细胞是生物体的基本单位，细胞生理学是研究细胞生命活动规律的科学。
本实验以蟾蜍细胞为研究对象，通过观察细胞在不同条件下的生理现象，了解细胞膜、细胞质、细胞核等细胞结构的生理功能。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：蟾蜍、生理盐水、氯化钾溶液、葡萄糖溶液、盐酸溶液、碘酒、显微镜等。
2. 实验仪器：手术显微镜、解剖显微镜、手术器械、培养皿、吸管、剪刀、镊子等。
四、实验方法与步骤1. 观察细胞膜生理现象（1）取蟾蜍皮肤，用生理盐水清洗，制成皮肤切片。
（2）将切片置于显微镜下观察，观察细胞膜的形态、结构及细胞膜在生理盐水中的变化。
（3）向细胞膜周围滴加氯化钾溶液，观察细胞膜的变化。
（4）向细胞膜周围滴加葡萄糖溶液，观察细胞膜的变化。
2. 观察细胞质生理现象（1）取蟾蜍肝脏，用生理盐水清洗，制成肝脏切片。
（2）将切片置于显微镜下观察，观察细胞质的形态、结构及细胞质在生理盐水中的变化。
（3）向细胞质周围滴加碘酒，观察细胞质的变化。
（4）向细胞质周围滴加葡萄糖溶液，观察细胞质的变化。
3. 观察细胞核生理现象（1）取蟾蜍肾脏，用生理盐水清洗，制成肾脏切片。
（2）将切片置于显微镜下观察，观察细胞核的形态、结构及细胞核在生理盐水中的变化。
（3）向细胞核周围滴加盐酸溶液，观察细胞核的变化。
（4）向细胞核周围滴加葡萄糖溶液，观察细胞核的变化。
五、实验结果与分析1. 观察细胞膜生理现象实验结果显示，细胞膜在生理盐水中的形态、结构保持稳定。
向细胞膜周围滴加氯化钾溶液后，细胞膜出现皱缩现象；向细胞膜周围滴加葡萄糖溶液后，细胞膜皱缩现象减轻。
2. 观察细胞质生理现象实验结果显示，细胞质在生理盐水中的形态、结构保持稳定。
向细胞质周围滴加碘酒后，细胞质出现着色现象；向细胞质周围滴加葡萄糖溶液后，细胞质着色现象减轻。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
人体解剖及动物生理学实验报告实验名称蟾蜍骨骼肌生理姓名学号系别组别同组姓名实验室温度实验日期2015年5月7日一、实验题目蟾蜍骨骼肌生理A蟾蜍腓肠肌刺激强度与骨骼肌收缩反应的关系B蟾蜍骨骼肌单个肌肉收缩分析（潜伏期、收缩期和舒张期的确定）C蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系二、实验目的确定蟾蜍骨骼肌收缩的（1）阈水平和最大收缩以及刺激强度与肌肉收缩之间的关系曲线（2）收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期（3）刺激频度与肌肉收缩的关系三、实验方法1、蟾蜍坐骨神经-骨骼肌标本的制作及电路连接1)双毁髓处死蟾蜍后，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的做个神经及小腿的腓肠肌，注意不要将胫神经与腓神经分离。
神经端结扎后，剪去无关分支后游离至膝关节处；肌肉端结扎在肌腱上，将腓神经也一起结扎，结扎线留长。
保留膝关节，剪去腿骨，将标本离体。
注意保持神经肌肉湿润。
2)用大头钉将标本的膝关节固定于标本盒R2和R3两记录电极之间的石蜡凹槽内，保证神经、肌肉与电极充分接触。
神经中枢端接触刺激电极S1和S2，肌肉接触记录电极R3和R4，之间接触接地电极。
3)肌肉的结扎线从标本盒中穿出，连接张力换能器。
注意连线尽量短，以减小阻力。
在实验过程中，注意标本的休息：将神经搭在肌肉上，用浸湿了任氏液的棉花覆盖神经肌肉，保持湿润。
但标本盒内避免有过多的液体，防止短路。
4)换能器插头接RM6240通道1。
刺激输出线两夹子分别连接标本盒的刺激电极S1和S2，插头接刺激输出插口。
如果需要记录肌肉的动作电位，则在肌肉所搭置的记录电极上连接输入导线，注意接地，插头接通道2。
2、蟾蜍骨骼肌生理各项数据测定A蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系1)打开信号采集软件，从“实验”菜单中选取“刺激强度对骨骼肌收缩的影响”，出现软件自动设置界面，各项参数已设置好，但需要将“采集频率”修改成“20kHz”，扫描速度仍然是“1.0s/div”。
界面的采集通道默认为RM6240B面板上的通道1.刺激模式自动设置为强度递增刺激，起始强度为0.02V（可根据标本特性灵活选择）2)检查装置连接正确后，点击“开始记录”，屏幕下出现扫描线，软件处于记录状态。
（主义不要点击“开始示波”，在示波状态下，文件不能保存。
）扫描线如偏离零点较远，需要调零：将换能器与标本盒的棉线放松，旋转换能器的调零钮，使基线恢复零点。
3)将换能器连接的棉线拉直，如果基线偏移零位（肌肉被牵拉的程度会影响基线位置），不必去管（不必重新调零，测量时，将偏移量减去即可）。
点击“开始刺激”，刺激器按一定时间间隔自动输出单个刺激方波，后一次比前一次强度递增。
将“刺激标注”激活，显示出每次发放的刺激的强度。
屏幕上应出现一系列由刺激触发的肌肉收缩曲线，同时可以观察到标本盒中肌肉的收缩。
注意文件的保存（不要移动标本盒与换能器的位置，即肌肉被牵拉的程度保持固定。
此要求也适用于ⅡB和ⅡC。
）4)当收缩幅度不再变化时，停止刺激，停止记录。
5)应用测量工具，确定收缩的阈水平和最大收缩。
并确定最大收缩所对应的最小刺激强度（即最适刺激强度）。
记录下收缩幅度，刺激和放大器的参数设置。
（注意在测量时。
需将波形适当展开，确保测量数据更准确。
）6)绘制刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系曲线。
B单个肌肉收缩分析（确定潜伏期、缩短期、舒张期）1)将ⅡA实验得到的最大刺激强度对应的收缩曲线展开，应用测量工具确定收缩的三个时期：潜伏期、缩短期、舒张期。
2)至少测量三次。
计算几次重复测量得到的三个时期的平均值和标准差。
C蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系1)打开信号采集软件，关闭通道3和4，保留通道1和2，分别对应肌肉收缩信号和肌肉动作电位信号。
示波状态下修改参数设置：采集频率20kHz；通道1：通道模式为张力，扫描速度400ms/div，灵敏度7.5g（可根据收缩幅度合理选择），放大器时间常数设为直流，滤波频率100Hz；通道2：通道模式为生物电，扫描速度400ms/div，灵活度2mv，放大器时间常数0.001s，滤波频率1kHz。
刺激模式为串单单刺激，波宽1ms，延时20ms，选择一定的刺激脉冲个数（10-60个，避免让肌肉受到过多刺激）和刺激强度（阈上刺激强度即可，不必达到最大刺激强度，避免收缩幅度过大，超出换能器量程）。
2)点击“开始记录”，软件进入记录状态。
3)记录过程中逐渐提高刺激频率，在一定的刺激频率下，点击“开始刺激”，刺激器按此频率连续发放设定的刺激脉冲个数，肌肉出现相应的收缩。
4)观察肌肉收缩的总和现象，确定肌肉收缩的最小融合频率，观察肌肉动作电位与收缩的关系。
5)观察不同频率引起肌肉收缩的幅度变化。
四、实验结果A蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系图1. 蟾蜍腓肠肌刺激强度和骨骼肌收缩反应的关系图表1 蟾蜍腓肠肌刺激强度与骨骼肌收缩强度的关系表刺激强度（V）收缩强度（g）刺激强度（V）收缩强度（g）0.18 0.19 0.001.490.240.256.967.350.20 3.31 0.26 7.45 0.21 4.79 0.27 7.59 0.22 6.07 0.28 7.69 0.23 7.46 0.29 7.51根据上表可绘制下图，曲线图能更加直观的显示蟾蜍骨骼肌收缩强度随对腓肠肌刺激强度增加的变化趋势。
图2.蟾蜍腓肠肌刺激强度与骨骼肌收缩强度的曲线图结果分析：由上述图表可以看出，刚开始以较低强度刺激时，骨骼肌并没有收缩，直到达到阈刺激强度时（阈刺激强度在0.18-0.19V之间），骨骼肌开始收缩；随着刺激强度的增大，骨骼肌收缩强度逐渐增大；刺激强度约为0.23V时，骨骼肌收缩强度达到最大值，最大值在7.5g左右；在这之后，随着刺激强度的增大，骨骼肌收缩强度不再明显增加，而是在最大收缩强度附近波动。
产生此现象的原因分析：由于一块肌肉由许许多多肌纤维组成，骨骼肌的收缩受运动神经元的支配。
单个运动神经元可支配多根肌纤维，一个运动神经元与它所支配的肌纤维组成一个运动单位。
而不同的运动单位兴奋阈值不同。
低于阈刺激的刺激强度，神经纤维不发生兴奋，其所支配的肌细胞也不发生反应；当刺激电压达到阈强度时，神经干中阈值最低的神经开始兴奋，其所支配的运动单位也兴奋并发生收缩。
刺激强度逐渐增大，神经干中兴奋的神经纤维增加，收缩的运动单位也增加，于是骨骼肌收缩张力增加。
当刺激电压达到最大刺激强度后，所有的神经纤维都兴奋，其所支配的所有的运动单位也收缩，所有刺激强度再增大。
骨骼肌收缩力也不再增加。
B蟾蜍骨骼肌单个肌肉收缩分析（潜伏期、收缩期和舒张期的确定）图3 单个肌肉收缩分析图（潜伏期、收缩期和舒张期的确定）从上图可看出，当肌肉受到一个单刺激时，产生一次收缩，称为单收缩。
从刺激开始到收缩开始这一段无明显外部表现的时间，称为潜伏期。
自肌肉开始收缩至收缩达到高峰，是长度缩短或张力增高的时间，称为缩短期。
自收缩高峰开始，曲线较缓慢地下降至基线，为长度或张力恢复过程的时间，称为舒张期。
表2蟾蜍骨骼肌单收缩潜伏期、缩短期及舒张期数据测量表刺激强度（V）潜伏期（ms）缩短期（ms）舒张期（ms）1 0.27 7 57 2352 0.28 8 64 2503 0.29 10 63 247Mean 0.28 8.33 61.33 244SD 0.01 1.53 3.79 7.94由上表可得到蟾蜍骨骼肌单收缩潜伏期、缩短期及舒张期的数据，且每组数据间方差较小，由此可证明实验误差较小，得到的数据也较为准确。
潜伏期收缩期舒张期C蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系图4蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系图（当前波间隔为500ms）上图（图4）显示的为几个分离的单收缩，实验显示，直到波间隔降低到200ms，蟾蜍的骨骼肌均为分离的单收缩。
图5蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系图（当前波间隔为50ms）图6蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系图（当前波间隔为25ms）以上两图（图5、图6）显示的为几个收缩反应的重叠，即发生收缩总和。
实验显示，波间隔在150ms—25ms，骨骼肌均发生不完全强直收缩现象。
图7蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌收缩的关系图（当前波间隔为20ms）上图（图7）显示的为肌肉发生强直收缩的现象，可得到一条光滑的曲线。
实验显示，当波间隔降低到20ms，蟾蜍的骨骼肌会发生强直收缩现象。
表3 蟾蜍腓肠肌刺激频度与骨骼肌最大收缩幅度数据记录表实验次数波间隔（ms）刺激频度（Hz）最大收缩幅度（g）现象1 500 2.00 2.50 单收缩2 300 3.33 2.90 单收缩3 200 5.00 4.06 单收缩4 150 6.67 17.70 不完全强直收缩5 50 20.0 28.33 不完全强直收缩6 25 40.0 27.14 不完全强直收缩7 20 50.0 29.20 完全强直收缩实验结果分析：上述图为不同刺激频率下肌肉收缩的曲线，通过测量可以发现在一定范围内，最大收缩幅度随波间隔的减小而增加，即最大收缩幅度随刺激频率的增加而增加。
但当波间隔减小到一定值（50ms），即刺激频率增大到一定值（20Hz）后，骨骼肌最大收缩幅度便不再增强，而是在最大值上下波动。
若给肌肉不同的有效地频率刺激，实验也可以分别观察到单收缩（2—5Hz）、收缩总和/不完全强直收缩（6.7—40Hz）和强直收缩现象（50Hz）。
如果后一次刺激落在前一收缩的舒张期，肌肉出现不完全强直收缩；继续增大频率，后一刺激落在前一收缩的收缩期，出现完全强直收缩。
由上述图像也可看出，肌肉动作电位的发生要先于肌肉的收缩。
这是因为神经的兴奋支配着肌肉的收缩，但二者并不是完全同步的，从神经兴奋到肌肉的收缩需要一系列的生理生化反应及信息的传递，而这一系列生理过程需要耗费一定的时间。
所以神经动作电位的发生要先于肌肉的收缩。
刺激频率低时，肌肉发生一连串互不相连的单收缩，这是因为每个新刺激到来时，前一次刺激引起的单收缩已经结束。
于是，每个刺激都引起一次独立的收缩。
发生不完全强直收缩时，每次新的收缩都发生在前次收缩的舒张期中，肌肉则在自身尚处于一定程度的缩短或张力存在的情况下进行新的收缩，即发生了收缩总和。
当刺激频率增大到一定的较高程度时，出现完全强直收缩，这是因为连续刺激时，后来的每个刺激都可能总是落在前一次收缩的收缩期结束之前，各次收缩的张力或长度变化发生融合而叠加起来。
五、分析与讨论1、刺激强度与收缩幅度的关系是怎样的？为什么？（1）刺激强度到达阈刺激时腓肠肌开始收缩，在最大刺激前收缩幅度随刺激强度增大而增大，到达最大刺激强度后，再增大刺激强度，收缩强度也不会再增大，而是在最大值附近波动。
（2）由于一块肌肉由许许多多肌纤维组成，骨骼肌的收缩受运动神经元的支配。