体外抗氧化实验操作步骤,包括配制试剂
总抗氧化能力(T-AOC)检测试剂盒(FRAP 微板法)说明书
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植物样品的吸光度值和 0.5mM 的 Fe2+的吸光度值相同,则该血浆(血清)样品的总抗氧化 能力为 0.5mM/(0.5g/5ml)=0.5mmol/100g;
血浆(血清)样品的吸光度值和 0.7mM 的 Fe2+的吸光度值相同,则该血浆(血清)样品的总抗 氧化能力为 0.7mM;
细胞(组织)匀浆样品的吸光度值和 0.3mM 的 Fe2+的吸光度值相同,该匀浆液蛋白浓度为 0.2mg/ml,则该细胞(组织)样品的总抗氧化能力为 0.3mM/0.2mg/ml=0.15mmol/g; 0.3mM 的抗氧化物质,其吸光度值和 0.6mM 的 Fe2+的吸光度值相同,则其相对总抗氧化能力为 0.6mM/0.3mM=2。
注意事项: 1、 实验材料应尽量新鲜,样品提取的整个过程最好在 4℃条件下进行;如取材后不能立即 检测,也可以-80℃冻存后再进行测定(应在 1 个月内测定完毕)。 2、 亚铁标准溶液如变为黄色或棕黄色应弃用。 3、 测定 593nm 如有困难,亦可在 585~605nm 范围内进行测定。 4、 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
总抗氧化能力(T-AOC)检测试剂盒(FRAP 微板法)即 Total Antioxidant Capacity Assay Kit with FRAP method,简称 T-AOC Assay Kit,是一种采用铁离子还原能力(Ferric Reducing Ability of Plasma,FRAP)来测定样品抗氧化活性的方法,其原理是在酸性条件下样品中的抗 氧化物质还原 Fe3+-TPTZ 产生 Fe2+-TPTZ,呈现出明显的蓝色(紫色),于 593nm 处有最大 的光吸收,在 Fe3+-TPTZ 过量的情况下测定蓝色物质的生成量即可获得待测样品的还原能 力即总抗氧化能力,由于反应在酸性条件下进行,可以抑制内源性的一些干扰因素,并且由 于血浆等样品中的铁离子或亚铁离子的总浓度通常低于 10μM,因此血浆等样品中的铁离 子或亚铁离子不会显著干扰 FRAP 法的检测反应,本方法可以对血浆、血清、尿液等各种体 液,细胞或组织裂解液、植物或中草药抽提液或各种抗氧化物溶液的总抗氧化能力进行检测。 该试剂盒仅用于科研领域,不适用于临床诊断或其他用途。
总抗氧化能力(FRAP 法)试剂盒说明书
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总抗氧化能力(FRAP 法)试剂盒说明书微量法100T/96S 注 意:正式测定之前选择2-3 个预期差异大的样本做预测定。
研究意义:测定对象中各种抗氧化物质和抗氧化酶等构成总抗氧化水平。
在生物学、医学和药学研究中常常检测血浆、血清、唾液、尿液等各种体液,细胞或组织等裂解液、植物或中草药抽提液及各种抗氧化物(antioxidant)溶液的总抗氧化能力。
测定原理:在酸性环境下,抗氧化物质还原Fe3+-三吡啶三吖嗪(Fe3+-TPTZ)产生蓝色的Fe2+-TPTZ 的能力反映了总抗氧化能力。
自备实验用品:恒温水浴锅、低温离心机、酶标仪、96 孔板和蒸馏水。
试剂组成和配制:提取液:液体120mL×1 瓶,使用前预冷。
试剂一:液体20 mL×1 瓶,避光保存。
试剂二:液体2 mL×1 瓶,4℃避光保存。
试剂三:液体2 mL×1 瓶,避光保存。
混合液(现配现用):将试剂一、试剂二、试剂三按10:1:1 的比例混合,使用前37℃预温。
样品的制备:(1) 血清、血浆、唾液或尿液等液体样品血浆(制备时可以使用肝素或柠檬酸钠抗凝,不宜使用EDTA 抗凝)4℃,5000rpm 离心10min,取上清待测。
血清、唾液或尿液样品直接用于测定,也可以-80℃冻存(不宜超过30 d)后再测定。
(2) 组织样品按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10 的比例(建议称取约0.1g 组织,加入1mL 提取液)进行冰浴匀浆,然后10000g,4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
(3) 细胞样品按照细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1 的比例(建议500 万细胞加入1mL 提取液),冰浴超声波破碎(功率200W,超声3s,间隔10s,重复30 次);10000g,4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
操作步骤:1、酶标仪预热30min,调节波长至593nm。
红花中黄酮类化合物的分离与体外抗氧化研究
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红花中黄酮类化合物的分离与体外抗氧化研究采用体外抗氧化活性(包括DPPH自由基清除法、ABTS自由基清除法和FRAP法)为导向,筛选红花抗氧化活性部位,随后对活性部位进行成分分离与抗氧化效应评价。
从红花活性部位水部位中分离得到5个成分,分别鉴定为6-羟基山柰酚-3,6,7-三-O-β-D-葡萄糖苷(1)、6-羟基山柰酚-3-O-β-芸香糖苷-6-O-β-D-葡萄糖苷(2)、6-羟基山柰酚-3-O-β-D-葡萄糖苷(3)、羟基红花黄色素A(4)和脱水红花黄色素B(5)。
通过对红花不同极性部位和单体成分进行抗氧化效应比较,发现水部位的抗氧化活性较显著,从中分离得到6-羟基山柰酚糖苷类和醌式查尔酮碳苷类主要活性物质。
标签:红花;抗氧化;活性物质;6-羟基山柰酚糖苷;醌式查尔酮碳苷红花为菊科植物红花Carthamus tinctorius L.的干燥花,味辛、微苦,归心、肝经,具有活血通经、散瘀止痛的功效。
红花作为传统活血化瘀中药治疗中风、冠心病和心绞痛已有2 000多年的历史,始载于《开宝本草》[1-2]。
红花水提物制成的红花注射液收载于卫生部药品标准中药成方制剂二十册中,临床上广泛用于心血管疾病的治疗。
迄今从红花中分离得到200多种化合物,包括醌式查尔酮苷类、黄酮类、亚精胺类、生物碱类、倍半萜类、有机酸类、烷基二醇类、多炔类和甾体类等,其中很多的黄酮类和醌式查尔酮苷类成分已报道具有抗氧化和清除自由基的活性[3-4]。
现代研究发现,机体抗氧化能力降低、氧化与抗氧化失衡,会导致自由基和活性氧产生过多,而自由基和活性氧具有损伤细胞结构、氧化抗凝血酶、脂质过氧化等作用,因此抑制自由基反应和活性氧生成是缓解许多心血管疾病的重要途径[5]。
为了深入探讨红花的抗氧化活性物质,本文采用活性追踪的化学成分分离研究模式,先对石油醚、乙酸乙酯和水3个部位进行体外抗氧化效应评价,随后对活性较明显的部位进行化学成分分离及活性评价,旨在筛选获得红花抗氧化活性物质,为揭示红花药效物质与相关作用机制奠定基础。
体外抗氧化实验操作步骤,包括配制试剂(完整资料).doc
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【最新整理,下载后即可编辑】3.2.5 体外抗氧化实验发酵液的预处理:将摇瓶结束的发酵液装入无菌的10ml 离心管里,在天平上仔细平衡到10g ,在4℃,10000rpm ,离心10min ,小心转移上清液到新管子里标记备用。
(1)对超氧阴离子的清除作用 利用邻苯三酚自氧化体系测定样品对超氧阴离子的清除作用。
取50 mmol·L -1的Tris-HCI 缓冲液3 mL (pH=8.2,含有2 mmol·L -1的Na 2EDTA),加入l mL 待检样品,于25℃保温10 min ,然后加入25 ℃预温的5 mmol·L -1的邻苯三酚0.3 mL(预先用10 mmol·L -1的盐酸配制),精确反应4 min ,用0.5 mL 浓盐酸终止反应,测定其在320 nm 下的吸光度。
以10 mmol·L -1的盐酸作为空白调零,按如下公式计算清除率:()%100A A A -A ⨯-=对照样品空白样品对照清除率 (1)式中A 对照为未加待检样品的邻苯三酚反应体系的吸光度(用1mL 10 mmol·L -1的盐酸替代样品);A 样品为加入待检样品后的邻苯三酚反应体系的吸光度;A 样品空白为加入待检样品后的无邻苯三酚的反应体系的吸光度(用0.3mL 10 mmol·L -1的盐酸替代邻苯三酚溶液)。
注意事项:1、 所用的两个比色皿杯子必须是石英的,上面会写着“Q ”,或“S ”,不得使用玻璃的,玻璃比色皿要么什么都不写,要么写着 “G ”。
2、 测定前要用100g 砝码和天平标定所用的移液枪插上枪头后是否精准,要求误差不超过5‰,不是5%。
3、 测定大量数据前,使用者先配制10g/L 的Vc ,做三个平行测定,精准度达到5%以内再开始正确的测定。
4、 测定时由于每个人有使用习惯和误差,中间不得换人换枪。
(2)对DPPH ·的清除作用DPPH·溶液的配制:准确称取47 mg DPPH·,用无水乙醇溶解并定容至100 mL ,避光保存(0~4℃),使用时稀释至120 μmol·L -1。
抗氧化实验方法
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1还原力的测定样品2ml加到2ml L磷酸盐缓冲液和2ml 1%的铁氰化钾溶液的混合液中;混合物在50℃保温20min,然后在反应混合物中加入2ml 10%的TCA,混合后以3000rpm离心10min,取上清液2ml与2ml蒸馏水以及%氯化铁在反应试管中反应,10min后测定其在700nm处的吸光值;吸光值越大表明还原力越强;注意:建议蛋白浓度以5mg/ml左右变化,例如,5之类变化;但具体情况应根据吸光值大小而定;L 的磷酸盐缓冲液的配制见附表;铁氰化钾溶液应盛装在棕色瓶中;比色皿的用法:可见光>400nm用玻璃比色皿即没有标字母或者标G的比色皿,紫外光时<400nm用石英比色皿即标Q字比色皿;2 DPPH自由基清除活性的测定将样品液添加到含mmol/L DPPH的95%乙醇中,混合,振荡,在室温下放置30min,然后在波长517nm处检测Ai;清除率计算公式为:空白为ml 95%的乙醇加入ml蒸馏水调零;式中:Ac——对照为ml DPPH溶液加上ml蒸馏水在517nm处的吸光值;Aj——样品液加上ml 95%的乙醇在517nm处的吸光值;Ai——样品液加上ml DPPH溶液在517nm处的吸光值;注意:建议酶解液蛋白浓度以2mg/ml 左右变化,如,1,2,之类变化,但是具体情况应视清除率而定,最终结果应有清除率大于50%和小于50%的情况;DPPH样品有毒,需戴口罩和手套进行操作;而且DPPH试剂很昂贵,用时注意节约;mol/L DPPH 乙醇溶液的配制:准确称取,用95%的乙醇溶液溶解并定容到100ml;3 在卵黄磷脂体系中抗氧化能力的测定以卵黄脂蛋白为底物的LPO模型反应体系包括:体积比为1:25稀释的卵黄悬液卵黄用等体积的,LPBS配成,使用前磁力搅拌10min mL、一定浓度的样品溶液、25m moll/LFeSO4溶液,用PBS缓冲液补足至;对照管除不加样液外其他试剂同前;将上述2种试管同时置37℃恒温水浴锅中保温培养1h;取出后,加入20%,静置10 min后,与对照管于3500r/min离心10min,取上清液,分别加入质量分数为%硫代巴比妥酸TBA溶液,加塞于100℃水浴15min,取出冷却;空白管以溶液代替,在532nm下测定吸光度,样品对卵黄脂蛋白LPO的抑制率表示为:SA%=Ac一AS/A C×100式中:Ac一不加样品的吸光度As一加入样品的吸光度注意:卵黄溶液不用时应放置冰箱保存;酶解液蛋白浓度以5mg/ml左右调整,但具体应视清除率大小而定,对酶解液蛋白浓度进行调整;硫代巴比妥酸溶液需放置于棕色瓶内保存;并以50m mol/L NaOH溶液配制;再在50℃水浴溶解;FeSO4溶液应以棕色瓶盛装;4 过氧化值的测定参照本食品学院林华娟等老师主编的食品分析实验讲义一书;5 超氧阴离子自由基清除率的测定邻苯三酚自氧化速率V对照:对照组和空白对照组加入4ml 蒸馏水去离子水和, mol/LTris-HCl缓冲溶液,在25℃水浴20min后,样品组加入或3m Mol/L邻苯三酚溶液,空白组以相同体积蒸馏水去离子水代替;震匀后马上在320nm处测定吸光值;迅速混匀并开始计时,每隔30 s读取吸光值,4 min后结束,以空白对照管调零;作吸光度随时间变化的回归方程,其斜率为邻苯三酚自氧化速率V对照;V对照在min~min之间,否则应调整邻苯三酚加入量样品自氧化速率V样品:样品组和空白组均加入一定浓度的样品溶液4ml, mol/LTris-HCl缓冲溶液,在25℃水浴20min后,样品组加入或3m Mol/L邻苯三酚溶液,空白组以相同体积蒸馏水去离子水代替;震匀后马上在320nm处测定吸光值;迅速混匀并开始计时,每隔30 s读取吸光值,4 min后结束,以空白管调零;作吸光度随时间变化的回归方程,其斜率为邻苯三酚自氧化速率V样品,按下式计算样品对超氧阴离子的抑制率:式中:抑制率%=V对照-V样品/V对照×100V对照-对照组邻苯三酚自氧化速率ΔA/minV样品-样品组邻苯三酚自氧化速率ΔA/min动物实验资料:摘自鹰嘴豆:抗氧化剂的抗氧化效果受到多种因素的影响,只有在生物体内具有抗氧化作用的物质才能有效的清除体内产生的自由基,才能表现出一定的生物活性;由于体外抗氧化测定方法容易操作,周期短,因此评价一种物质的抗氧化效果往往首先采用体外抗氧化体系;但体外抗氧化体系往往与人体内的生理环境相差太大,许多研究结果表明采用体外方法评价有效的抗氧化剂进入人体后却表现不出应有的抗氧化效果,因此抗氧化剂的抗氧化效果在采用体外方法进行初步评价后应采用动物实验进行体内评价;人体在正常生理代谢过程中会产生少量的含氧自由基,如超氧阴离子、羟自由基、过氧化氢等,这些自由基通过自然存在于体内的抗氧化酶如超氧化物歧化酶SOD、过氧化氢酶及抗氧化剂如抗坏血酸、维生素E组成的抗氧化系统来消除;因此,在正常状态下,体内自由基维持在一定水平并处于动态平衡中,正常量的自由基对细胞的生长、分裂、解毒等具有有益的作用,在杀菌、免疫调节等方面具有积极而重要的意义;然而,随着增龄或在某些病理状态下以及机体受到创伤时,体内抗氧化酶活性下降,从而导致机体代谢异常而骤然产生大量活性氧自由基;或由于机体抗氧化物质不足,使促氧化剂与抗氧化剂之间的平衡失常,致使自由基与机的一些生物大分子,如蛋白质、核酸、脂质等发生反应,生成大量氧化物或过氧化物,并进一步引起细胞死亡和组织损伤;业已证明,氧化损伤与衰老、肿瘤、糖尿病、动脉硬化、神经退行性病变以及人类免疫缺陷病毒HIV感染等均有密切关系;D-半乳糖诱导的亚急性衰老模型是按照衰老的代谢学说建立的,其机制与糖代谢紊乱6、D-半乳糖醇中毒7和活性氧自由基过剩有关;众多研究表明是生物体内含有半乳糖氧化酶,在催化D-半乳糖时可产生超氧阴离子自由基O2·-和H2O2;如果长期人为地给予过量D-半乳糖,使机体和细胞内自由基产生过量,除了造成组织细胞直接损伤外,还导致抗氧化酶活力下降和过氧化产物积累,从而表现出与人类自然衰老相似的生化变化、免疫功能低下、基因表达与调控异常细胞繁殖力下降及细胞退化性衰变等;有研究表明,D-半乳糖可降低人胚肺二倍体成纤维细胞HBS,从而使该细胞SOD活力降低和过氧化产物MDA增多,从而起到加速细胞老化的作用;本文在前述章节已经表明,鹰嘴豆蛋白酶解物具有体外抗氧化活性,但其在生物体内的作用效果尚不清楚;为此本章采用D-半乳糖诱导致衰老小鼠作为模型,分别以小鼠的血清、肝脏和心脏组织中的丙二醛MDA含量、超氧化物歧化酶SOD、谷胱甘肽过氧化物酶GSH-Px活性作为评价指标,探讨鹰嘴豆蛋白酶解物在生物体内的作用,为揭示鹰嘴豆蛋白酶解物对体内过氧化状态的影响,明确其物质基础和相关机制提供证据;。
脐橙黄酮体外的抗氧化作用
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脐橙黄酮体外的抗氧化作用摘要:加入不同浓度的脐橙(Citrus sinensis Osbeck)黄酮,研究脐橙黄酮体外清除活性氧自由基邻苯三酚的作用,并与维生素C、体积分数为50%的乙醇的作用进行比较。结果表明,脐橙黄酮浓度为3.01 mg/mL时对邻苯三酚的清除率与1 mg/mL维生素C相比无显著差异(P>0.05),与体积分数为50%的乙醇及去离子水相比差异极显著(P<0.01)。脐橙黄酮具有较强地清除体外活性氧自由基的作用。关键词:脐橙(Citrus sinensis Osbeck);黄酮;抗氧化;活性氧自由基Study on in vitro Antioxidation of Navel Orange FlavonoidsAbstract: The in vitro reactive oxygen species scavenging activity of navel orange(Citrus sinensis Osbeck) flavonoids was studied by determining the autoxidation rate of pyrogallol after different concentration of navel oranges flavonoids was added. Vitamin C and 50% alcohol was used as compare. The results revealed no significant difference (P>0.05) between the antioxidation of 1 mg/mL vitamin C and 3.01 mg/mL navel oranges flavonoids; however, the antioxidation of navel oranges flavonoids was very significantly different(P<0.01) from that of 50% ethanol and CK, indicating that navel oranges flavonoids had strong in vitro ability in scavenging reactive oxygen species.Key words: navel oranges; flavonoids; antioxidation; superoxide radical赣南脐橙(Citrus sinensis Osbeck)营养丰富,含有人体所必需的各类营养成分。赣南气候温暖,雨水充沛,昼夜温差大,具有得天独厚的气候资源优势,非常适宜种植脐橙,脐橙皮中含有丰富的天然黄酮类化合物[1]。研究表明黄酮类化合物具有降脂、抗血栓、抗氧化、抗衰老、抗心率失常等作用,因而广泛用于医药、食品等行业,具有极广的开发应用前景[2-4]。研究通过比较维生素C、乙醇和脐橙黄酮对邻苯三酚的清除率,并研究不同浓度脐橙黄酮清除活性氧自由基的作用,旨在为更加深入地研究脐橙黄酮的作用提供一定的依据。1 材料与方法1.1 材料1.1.1 主要仪器UV-1601紫外可见分光光度计购自日本岛津公司,EYELAN-1001旋转蒸发仪购自上海爱明仪器有限公司,SHZ-JIIA型循环水式真空泵购自西安波意尔精密仪器有限公司。1.1.2 原料与试剂橙皮粉为市售赣南脐橙果皮在50 ℃恒温烘干后粉碎过50目筛所得,纯度为99.0%的橙皮苷标准品购于中国药品生物制品检定所,三羟甲基氨基甲烷(Tris)、乙二胺四乙酸(EDTA)、邻苯三酚、维生素C、无水乙醇、NaOH、HCl 均为分析纯。1.2 方法1.2.1 试剂的配制0.2 mol/L Tris:称取2.423 g Tris,以去离子水溶解定容至100 mL;Tris-HCI-EDTA缓冲液:50 mL 0.2 mol/L Tris与46 mL 0.1 mol/L HCl混合,内含1 mmol/L EDTA,pH 8.2,定容至100 mL;45 mmol/L邻苯三酚:称取567.5 mg 邻苯三酚,用0.01 mol/L HCI溶解定容至100 mL,溶液须临用前现配;1 mg/mL维生素C:称取50 mg维生素C,用去离子水溶解定容至50 mL。1.2.2 样品的处理准确称取5 g样品放入圆底烧瓶中,加入100 mL体积分数为50%的乙醇,于70 ℃提取3 h,抽滤,从滤液回收乙醇,使浓缩液pH 5,静置过夜,待黄酮全部沉淀析出,离心,得黄酮[5]。1.2.3 橙皮苷标准曲线的绘制准确称量2.238 mg纯度为99.0%的橙皮苷标准品,用含1 g/L NaOH的体积分数为75%的乙醇溶液溶解并定容于25 mL容量瓶中,摇匀,得浓度为89.52 μg/mL标准品溶液。准确吸取该标准品溶液0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 mL分别置于10 mL比色管中,用含1 g/L NaOH的体积分数为75%的乙醇溶液定容至刻度。标准品溶解1 h后,以含1 g/L NaOH的体积分数为75%的乙醇溶液为空白,在360 nm波长处测定这一系列溶液的吸光度,以吸光度(y)为纵坐标、橙皮苷浓度(x)为横坐标作标准曲线[6],该标准曲线的回归方程=0.018 1x-0.069 2,r=0.999 7。1.2.4 样品中黄酮含量的测定将通过方法1.2.2所得的黄酮用含1 g/L NaOH的体积分数为75%的乙醇溶液溶解并定容于50 mL容量瓶中,摇匀,用移液管精确移取0.1 mL于10 mL比色管中,用方法1.2.3测定其在360 nm 的吸光度,然后按照下述公式计算赣南脐橙皮中的黄酮得率:黄酮得率=[(y+0.069 2)×5 000×10-6/(0.018 1×5)]×100%。式中,y为黄酮溶液在360 nm处的吸光度;5 000为黄酮的稀释倍数;10-6为μg与g之间的单位换算;5为样品质量(g)。计算得黄酮得率为3.01%,黄酮浓度为3.01 mg/mL。1.2.5 试验设计1)不同清除剂对邻苯三酚的清除率。取4个试管标记为1、2、3、4,每组中分别加入4.5 mL pH 8.2的Tris-HCI-EDTA缓冲液,于25 ℃水浴预热20 min,然后在1、2、3、4号管中分别加入3.01 mg/mL脐橙黄酮、1 mg/mL维生素C、体积分数为50%的乙醇和去离子水各0.1 mL,再各加入邻苯三酚0.4 mL,摇匀,于321 nm处测定作用1、2、4、6、8、10 min时的吸光度,3次重复。清除率d=[(A空白-A样品)/A空白]×100%。2)不同浓度脐橙黄酮对邻苯三酚的清除率。将通过方法1.2.2所得的黄酮用含1 g/L NaOH的体积分数为75%的乙醇溶液溶解并定容于50 mL容量瓶中,摇匀;分别精密量取该溶液,用含1 g/L NaOH的体积分数为75%的乙醇溶液稀释制成0.3、0.6、0.9、1.2、1.5、1.8、2.1、2.4、2.7和3.0 mg/mL的脐橙黄酮溶液。仿前述“不同清除剂对邻苯三酚的清除率”的研究方法,研究不同浓度脐橙黄酮对邻苯三酚的清除率。1.2.6 统计学处理数据使用SPSS 11.5软件统计。2 结果与分析2.1 不同清除剂对邻苯三酚的清除率由表1可知,作用l、2、4、6、8、10 min后,3.01 mg/mL脐橙黄酮对邻苯三酚的清除率分别为39.93%、45.47%、34.96%、28.95%、24.73%、19.92%,随着作用时间的延长,清除率先升后降,平均清除率为32.33%±9.60%,1 mg/mL维生素C和体积分数为50%的乙醇对邻苯三酚的平均清除率分别为39.07%±4.78%和7.99%±4.22%。3.01 mg/mL脐橙黄酮对邻苯三酚的清除率与体积分数为50%的乙醇及去离子水(对照)相比差异极显著(P<0.01),与1 mg/mL维生素C间无显著差异(P>0.05)。2.2 不同浓度脐橙黄酮对邻苯三酚的清除率由图1可知,随着脐橙黄酮浓度的增大,对邻苯三酚的清除率提高,当脐橙黄酮浓度为0.3 mg/mL时,对邻苯三酚的清除率低于10%,说明提取物对邻苯三酚的清除率与脐橙黄酮浓度有关。3 结论与讨论上述结果表明,脐橙皮提取物有类似超氧化物歧化酶(SOD)的作用,能较强地清除活性氧自由基(O2-·),作用效果随着浓度的增加而增强,呈非线性的剂量关系。橙皮苷是柑橘黄酮中最重要的一种,抗氧化活性较低,需要在较高浓度下才表现出一定的抗氧化活性。试验中脐橙黄酮和维生素C都有很强的体外清除活性氧自由基的作用,可应用于抗氧化保健食品中。脐橙黄酮浓度为3.01 mg/mL时对邻苯三酚的清除率与1 mg/mL维生素C相比无显著差异(P>0.05),说明脐橙黄酮浓度比维生素C浓度大才达到相似的清除率。因此,脐橙作为赣南地区的特产,它将是一种有应用前景的活性氧自由基清除剂,其药用价值可被大力开发利用。参考文献:[1] 蔡定建,谢志鹏,罗六保,等. 脐橙皮中黄酮类化合物与果胶的分离和提取研究[J]. 分析测试技术与仪器,2006,12(4):239-242.[2] 刘成伦. 黄酮类化合物抗氧化性质的研究进展[J]. 食品研究与开发,2006,27(5):158-168.[3] 张玉萌. 黄酮类化合物抗肿瘤作用分子机制研究进展[J]. 中国药物应用与监测,2006(6):50-53.[4] 王玮,王琳. 黄酮类化合物的研究进展[J]. 沈阳医学院学报,2002,4(2):115-119.[5] 张国文,杨佳,何力,等. 醇法提取赣南脐橙皮中黄酮类化合物的工艺研究[J].南昌大学学报(工科版),2009,31(3):205-209.[6] 卢静华,王亚娟,于玲. 陈皮中橙皮苷超声提取工艺研究[J]. 时珍国医国药,2006,17(4):604-607.。
抗氧化酶测定实验方法
![抗氧化酶测定实验方法](https://img.taocdn.com/s3/m/4424a06a492fb4daa58da0116c175f0e7cd11996.png)
抗氧化酶测定实验方法抗氧化酶是一类能够抵御细胞对氧自由基的毒性的酶。
抗氧化酶包括超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)和谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)等。
这些酶在细胞内能够将有害的氧自由基转化为无害的化合物,从而起到保护细胞免受氧自由基反应的毒性作用。
因此,测定抗氧化酶的活性能够反映细胞对氧自由基的抵御能力,对研究氧化应激、疾病发生机制等具有重要意义。
以下是一种常用的抗氧化酶测定方法的详细步骤:实验材料和试剂:1.组织样本或细胞培养物2.生理盐水(PBS)3. 超氧化物歧化酶(Abfrontier, LF-MA0011, 200U/mg, 冻干粉)4. 过氧化氢酶(Sigma, P2927, ≥2,000,000 units/mg protein, 溶于水)5. 谷胱甘肽过氧化物酶(Sigma, G5911, ≥300 units/mg protein,冻干粉)6. 过硫酸铵(Sigma, A9294)7.磷酸盐缓冲液(pH7.4,0.1M)8.丙酮9. 硫酸(Sigma, 1.84 M)10. 精氨酸(Sigma, A8094)11. 苯胂(Sigma, A8731)12. 硝基蓝色素(Sigma, N-5511)14. 高锰酸钾(Sigma, S2547)16. 硝基咪唑(NBT,Solarbio, S8190)17. EDTA二钠(Sigma, E6635)18. BSA(Sigma, A7906)19. 氯化三联氨(Sigma, A2251)20. Tris缓冲液(pH 8.0,0.1M)21. 高吉人(ABClonal, HRP-6002,5,000 IU/mg, 冻干粉)23.氯仿24.醋酸乙酯26.乙酸钠28. 脑磷脂(纯度≥98%,Shenggong, 1003J)30.SDS-试剂盒步骤:1.制备样本:将组织样本或细胞培养物均匀取样,使用PBS洗涤并平均分配到多个离心管中。
13样品抗氧化实验
![13样品抗氧化实验](https://img.taocdn.com/s3/m/e01e742231126edb6f1a1023.png)
13份样品抗氧化实验第二部分:实验方法一:DPPH 自由基清除能力的测定[参考文献] 【Shcherba, V. V., Babitskaia, V. G., Kurchenko, V. P., Ikonnikova, N. V. and Kukukianskaia, T. A. Antioxidant features of fungal melanin pigments [J]. Prikl Biokhim Mikrobiol, 2000, 36: 569~574.】1:试剂配制:0.1mM DPPH-甲醇溶液200毫升。
DPPH的质量=0.2*0.1*0.001*394.42*1000=7.8884毫克;0.05 mol/L Tris-HCl 缓冲液(pH 7.4) :Tris的质量=0.1*50*0.001*121.14=605.7毫克,加入0.1mol/L的盐酸42毫升再加水到100毫升并用广范PH试纸测得PH=7.4 。
二:对羟自由基清除能力的测定[参考文献]【Smironff N,Cumbes Q J.Hyroxyl radical scavenging activity of compatible solutes[J].Phytochemistry, 1989,28(3):1057-1060】1:试剂配制配制7.5毫摩尔每升硫酸亚铁溶液40毫升,硫酸亚铁的质量=7.5*0.001*40*0.001*278=83.4毫克;配制7.5 mmol/L 的邻二氮菲溶液40毫升。
邻二氮菲的质量的磷酸盐缓冲溶液200毫升;0.1%的H2O2溶液60毫升,(市售过氧化氢含量为质量体积百分比30% ),吸取市售过氧化氢0.2毫升滴入到60毫升的纯净水中。
第三部分:相关数据检测及作图Compounds (mg)S c a v e n g i n g c a p a c i t y (%/m g )。
抗氧化剂的测定
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抗氧化剂的测定人工合成的抗氧化剂有:(1) BHT 2,6-二叔丁基对甲酚(2) BHA 叔丁基对羟基茴醚(3)PG 没食子酸丙酯近几年也合成了一些新的抗氧化剂如TBHQ, DBHA等还有一些新的天然抗氧化剂,但投入使用的不多。
⑴叔丁基对羟基茴香醚结构特点:1)对热稳定2)在弱碱性中不破坏(作为焙烤食品用的抗氧化剂)这种抗氧化剂在日本是禁止的⑵ 2,6-二叔丁基对甲酚结构特点:(1)抗氧化性强于BHA;(2)毒性大于BHA这种抗氧化剂在美国是禁止使用的⑶没食子酸丙酯结构特点:(1)耐热性强;(2)溶于油脂,酒精等有机溶剂中以上三种人工合成抗氧化剂我国都在使用,抗氧化性最强是混合使用,二种抗氧化剂混合使用效果最好,但要加增效剂,常用的增效剂有柠檬酸,抗败血酸,磷酸等可以提高抗氧化剂的作用。
而增效剂主要是络合重金属离子,使氧化性获得新生。
我们从以上三种氧化剂结构中可以看出,它们都有苯酚,所以我们要找抗氧化剂必须找酚类衍生物,我们要了解抗氧化剂的机理,它们怎样阻止氧化。
抗氧化剂的抗氧化机理。
油脂氧化机制(1)链引发;(2)链传播;(3)终止从RH代替脂肪或者脂肪酸第一步: RH→R*.+H*第二步:脂肪RH受热或光金属第三步:R*+O2→ROO* RO2*+RH→ROOH+R*第四步 R*+ R*→R-R R*+ RO2*→RO2R第二步脂肪RH受热或光金属催化剂等分解成不稳定的游离基R和H, 游离基当与空气中的O2时生成过氧化物游离基过氧化物,游离基在于脂肪RH生成氢过氧化物和游离基R,产生的游离基与游离基相互结合,使反应终止,随着反应的进行,更多脂肪分子转变成氢过氧化物,氢过氧化物进一步变化,产生更多的游离基和稳定的终产物,这些就导致了油脂完全的变质的酸败味的形成和种种的反应生成。
抗氧剂的机制(以AH代表抗氧剂)AH+ R*→RH+A*抗氧化剂的作用机制是遇到游离基后将游离基破坏,也就是说反映关键是把R*,RO2*作用掉,这样就终止了链传播,延长了酸败。
黄酮体外抗氧化活性研究
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1. 供试液的制备:将纯化后的黄酮用蒸馏水(可加SDS 促溶)稀释后,分别配制10、20、30、40、50、60、70 μg/mL 溶液,4℃保存备用。
(根据实际情况调整浓度)2. 总黄酮的测定:标准曲线的绘制:称取芦丁10.00 mg 至50 mL 容量瓶,加60%乙醇使之溶解定容至刻度,摇匀,即得芦丁标准溶液(0.2 mg/mL )。
准确吸取芦丁标准溶液0、0.5、1.0、1.25、1.5、2.0 mL (相当于芦丁0、0.1、0.2、0.25、0.3、0.4 mg ),并用相应60%乙醇溶液相应补足2.0 mL ,移入10 mL 刻度比色管中,加5%亚硝酸钠溶液0.2 mL ,振摇后放置6 min ,加入10%硝酸铝溶液0.2 mL 摇匀后放置6 min ,加1.0 mol/L 氢氧化钠溶液2.0 mL 。
摇匀,放置15 min ,于510 nm 波长处测定吸光度,以芦丁含量(mg )为横坐标,以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。
样品测定:吸取适当稀释的待测液2.0 mL ,按标准曲线制备操作步骤于510nm 处进行吸光度的测定(样液如有沉淀,应过滤后测定)。
结果计算:根据标准工作曲线,求出相当于样品吸光度的芦丁含量,按下式求出总黄酮含量:100103121⨯⨯⨯⨯=V m V m X 式中:X ——样品中总黄酮含量,g/100g ;m 1——根据标准曲线计算出待测液中黄酮的量,mg ;m ——样品质量,g ;V 1——样品提取液测定用体积,mL ;V 2——样品提取液总体积,mL 。
3. 还原能力的测定:于试管中加入1.0 mL 样液(不同质量浓度的待测物溶液)或蒸馏水,再分别加入1.0 mL 磷酸缓冲溶液(0.2 mol/L, pH6.6)及1.0 mL 铁氰化钾水溶液(1%),50℃水浴20 min 后取出快速冷却,加入1.0 mL 三氯乙酸水溶液(10%),摇匀,5000 rpm/min 离心5 min 。
雪莲果体外抗氧化和自由基清除能力
![雪莲果体外抗氧化和自由基清除能力](https://img.taocdn.com/s3/m/6a2e0e260722192e4536f63e.png)
2010, Vol. 31, No. 17
食品科学
※基础研究
雪莲果体外抗氧化和自由基清除能力
杨少辉,宋英今,王洁华,季 静
(天津大学农业与生物工程学院,天津 摘 300072)
要:抗氧化能力是衡量果蔬营养及保健价值的重要指标之一。雪莲果是一种药食两用植物,对多种慢性疾病
有缓解作用。分别采用 5 种方法(DPPH 、ABTS 、FRAP 、SASR 和 MCC) 对雪莲果块根甲醇提取液的自由基清除 能力及抗氧化活性进行体外评价。结果表明:DPPH 法测定的 Trolox 当量抗氧化能力(TEAC)为 410.263mg Trolox/g md, 抗坏血酸当量抗氧化能力(AEAC)为 230.485mg VC/g m d , I C 5 0 值 为 1 . 4 6 4 m g / m L ; A B T S 法 测 定 的 T E A C 为 267.584mg Trolox/g md,AEAC 为 41.597mg VC/g md,IC50 值为 1.269mg/mL;SRSA 法测定的 TEAC 为 652.816mg Trolox/g md, AEAC 为 101.451mg VC/g md,IC 50 值为 7.720mg/mL 。说明雪莲果块根提取物对 DPPH 自由基、ABTS +·和 O 2 · 三种不同的自由基均有一定的清除活性。此外,雪莲果块根提取物还具有较高的总抗氧化(FRAP 值为 131.723 mg FeSO4/g md)和较强的金属螯合能力(73.193%)。 关键词: 雪莲果;块根;抗氧化;自由基
新鲜雪莲果块根购于天津市水果批发市场(来源于昆 明嵩明县 ) ,置于- 7 2 ℃备用。 1 , 1 - 二苯 - 1 - 苦基苯肼自由基 ( 1 , 1 - d i p h e n y l - 2 picryhydrazyl ,DPPH) 、Fe 3+- 三吡啶三吖嗪(tripyridyltriazine,TPTZ)、6- 羟基 -2,5,7,8- 四甲基苯并二氢吡喃 2- 羧酸(6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid ,Trolox ,水溶性 VE) 、还原型辅酶 I(nicotineamide a d e n i n e d i n u c l e o t i d e , N A D H ) 、吩嗪硫酸甲醋 (phenazine methosulphate ,PMS) 、2,2- 氨基 - 二(3- 乙 基 - 苯并噻唑啉 - 6 - 磺酸) ( 2 , 2 - a z i n o - b i s - ( 3 ethylbmzothiazoline-sulfonic ac,ABTS)、抗坏血酸(VC) S i g m a 公司;所有药品均为分析纯。 UVProbe 2550 紫外分光光度计 日本 Shimadzu 公 司;FD-1 冷冻干燥机 1.2 样品制备 新鲜雪莲果块根液氮研磨后冷冻干燥至恒质量,粉 碎后过 7 0 目筛,于 4 ℃避光保存备用。取 1 . 0 g 上述样 品( 干质量,m d) 用 10mL 60% 甲醇在 50 ℃提取 5h ,提取 液用滤纸过滤,对滤渣重复使用相同的条件再次提取, 两次的滤液合并,然后储存在 4 ℃以供分析。 1.3 DPPH 法测定抗氧化能力[8-9] 不同质量浓度(1 、2.5 、5g/100mL) 的雪莲果样品液 0.1mL 分别加入 2mL 6.25 × 10-5mol/L DPPH 甲醇溶液中, 暗处 3 0 m i n ,以甲醇溶剂做空白对照,测量其在波长 517nm 处的吸光度 ( A i ) 。测定 2mL DPPH 甲醇溶液与 0.1mL 甲醇混合后在波长 517nm 处的吸光度( A 0);测定 2mL 甲醇溶液与 0.1mL 样品液在波长 517nm 处的吸光度 ( A j ) 。按 ( 1 ) 式计算自由基清除率。 Ai - Aj 清除率 /% =(1 -————)× 100 (1) A0 另以不同浓度 (0 、 250 、 500 、 1000 、 1500 、 2000 mmol/L)的 Trolox 和 VC 清除 DPPH 自由基的能力做标准 曲线,计算雪莲果的 Trolox 和 VC 当量抗氧化能力 TEAC (Trolox equivalent antioxidant capacity)和 AEAC(ascorbic acid equivalent antioxidant capacity) 。 北京博医康实验仪器有限公司。
ABTS汇总
![ABTS汇总](https://img.taocdn.com/s3/m/eb73347d02768e9951e73889.png)
ABTS法抗氧化能力检测试剂配制方案汇总基于不同原理的各种体外抗氧化活性检测方法已广泛用于抗氧化剂的检测,这些方法虽然能够在不同的条件下反映抗氧化剂的多种功能特性,但也各有其局限性。
下面是ABTS法抗氧化法的一些基本原理:ABTS的英文全名为2'-Azinobis-(3-ethylbenzthiazoline-6-sulphonate),中文名为2 ,2-联氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二铵盐,CAS号为:30931-67-0,分子式:C18H24N6O6S4,分子量548.68。
ABTS与过硫酸钾反应生成稳定的蓝绿色阳离子自由基ABTS·+,向其中加入被测物质,如果该物质中存在抗氧化成分,则该物质会与ABTS·+发生反应而使反应体系褪色,然后在ABTS·+这种自由基的最大吸光波长下(一般选择734nm或405nm)检测吸光度的变化来反映物质的抗氧化能力。
根据实验的需求收集查阅的部分文献基本上得出三个比较常用的ABTS的配置方法以及所需要的浓度和测试仪器。
如下:1.ABTS自由基清除实验参照文献[1]方法。
用pH 7.4的PBS配制5 mmol·L_1的ABTS储液,与MnO2反应后用0.2 tan的PVDF膜过滤,再用PBS(pH 7.4)稀释到734nm处吸光度为0.70士0.02,--20℃保存备用。
在反应体系中,于10 m-L比色管中加入50vL不同浓度的样品或参比溶液(DMSO),再加入3mL的ABTS反应溶液,振荡摇匀,于室温下避光静置6min,测定溶液在734nm处的吸光值,并扫描UV-Vis光谱。
ABTS自由基清除率:(J%)=(1一瓜他)×100%,其中As为样品管的吸光值;Ao为对照管的吸光值。
2.[2]ABTS·+ 法测定葡萄酒抗氧化活性的研究ABTS工作液的配制。
将5mL7mmol/L ABTS和88μL140mmol/L过硫酸钾溶液混合,在室温、避光条件下静置过夜,形成ABTS·+储备液,该储备液在室温、避光的条件下表现稳定[3],使用前用无水乙醇稀释成工作液,要求其在734nm波长下的吸光度为0.70 ±0.02。
抗氧化能力的测定(精选4篇)
![抗氧化能力的测定(精选4篇)](https://img.taocdn.com/s3/m/ae262750b207e87101f69e3143323968011cf44c.png)
抗氧化能力的测定(精选4篇)以下是网友分享的关于抗氧化能力的测定的资料4篇,希望对您有所帮助,就爱阅读感谢您的支持。
DPPH抗氧化能力测定篇一DPPH.法测定绿原酸清除自由基能力2.1 待测液的制备将绿原酸(纯度56%)、维生素C和没食子酸分别配制成体积分数为0.1mg/mL的无水乙醇溶液。
2.1.1 绿原酸母液的配制称取9.0 mg绿原酸,定容到50ml,即可得到绿原酸的母液0.1mg/mL。
然后,再将所配制的母液按照要求稀释成不同浓度的溶液。
分别为mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml;mg/ml。
2.1.2 Vc母液的配制称取mg VC,定容到100ml,即可得到VC的母液。
然后,再将所配制的母液按照要求稀释成不同浓度的溶液。
分别为mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml。
2.1.3 没食子酸母液的配制称取mg 没食子酸,定容到100ml,即可得到没食子酸的母液。
然后,再将所配制的母液按照要求稀释成不同浓度的溶液。
分别为mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml; mg/ml。
2.1.4 DPPH母液的配制称取mg DPPH,用无水乙醇定容到100ml,即可得到DPPH的母液。
然后,再将所配制的母液按照要求稀释成至一定浓度的溶液。
CDPPH= mg/ml。
(建议用0.025mg/mL)2.2 DPPH.溶液的可见光谱以无水乙醇为对照,在分光光度计上对DPPH.溶液进行在440~600nm下扫描。
Amax= nm2.3 抗氧化活性测定DPPH.是一种稳定的自由基,它的乙醇溶液呈紫色,在可见光区最大吸收峰为nm。
当DPPH.溶液中加入自由基清除剂时,溶液颜色变浅,517nm处的吸光度变小,而吸光度变小的程度与自由基被清除的程度呈线性关系。
因此,可用来检测自由基的清除情况,从而评价某物质的抗氧化能力,其能力用清除率(Scavenging Rate,SR)来表示,清除率越大,抗氧化能力越强具体实验步骤及方法:精确吸取的DPPH.溶液2mL与2ml无水乙醇混合均匀后,以相对应的溶剂(4mL无水乙醇)为对照,用分光光度计测定上述溶液在nm处的吸光度值(A0)。
常见体外抗氧化实验方法-抗氧化试验-抗氧化活性实验方法-抗氧化测定法-李熙灿Xican Li
![常见体外抗氧化实验方法-抗氧化试验-抗氧化活性实验方法-抗氧化测定法-李熙灿Xican Li](https://img.taocdn.com/s3/m/50055978ce84b9d528ea81c758f5f61fb7362800.png)
常见体外抗氧化实验方法(含原理、试剂配制、操作流程、实例分析、英文表述)- 2023-3①DPPH·自由基清除法 2 Array②ABTS·+自由基清除法 5③ FRAP法(铁还原法) 811④过氧自由基(超氧自由基,·O2-)清除法(连苯三酚自氧化法)⑤羟基自由基(·OH)清除法(脱氧核糖法) 14⑥PTIO·自由基清除法(水溶液中) 16⑦ CUPRAC法(铜还原法) 18⑧铁络合能力(Ferrozin法) 20⑨脂质过氧化清除法(亚油酸为底物) 23⑩抗氧化产物的预测26①DPPH·自由基清除法/DPPH法原理:DPPH·(1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl radical)即α, α-二苯基-β-苦基肼基游离基,由于p-π共轭,所以,氮自由基能稳定存在[1]。
当DPPH自由基被某物质清除,其最大吸收波长519nm处的吸光度A值随之减小;相应地,某物质自由基清除活性增加,其体外抗氧化活性也增加。
实验操作[1]:1.1 DPPH测试液的配置(适用于酶标仪测量,总体积为100μL)取DPPH 2毫克溶于约40mL溶剂(乙醇、95乙醇或甲醇)中,超声5min,充分振摇,务使上下各部分均匀。
取DPPH溶液80μL加入到96孔板中,加95乙醇(或无水乙醇)20μL,稀释混合,测A值,使A=0.20±0.01。
该DPPH溶液避光保存,4h内用完。
(注意:如果是用分光光度计.....,则A=0.6±0.02比较合适)1.2 样品液的配置样品用合适的溶剂溶解,为便于计算,可配成1mg/mL浓度。
溶剂根据样品的极性进行选择,首选95乙醇或无水乙醇,如不溶可用DMSO。
1.3 预试取DPPH溶液80μL,往其中加少量样品液,加样时,先少后多渐加,边加边混合,并观察溶液的褪色情况,当溶液颜色基本褪去时,记下样品的加样量。
总抗氧化能力(T-AOC)检测试剂盒使用说明
![总抗氧化能力(T-AOC)检测试剂盒使用说明](https://img.taocdn.com/s3/m/2e9a033a482fb4daa58d4bdf.png)
总抗氧化能力(T-AOC)检测试剂盒使用说明微量法注意:正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。
货号:BC1315规格:100管/96样产品内容:提取液:液体100mL×1瓶,使用前预冷。
试剂一:液体15mL×1瓶,避光保存。
试剂二:液体1.5mL×1瓶,4℃避光保存。
试剂三:液体1.5mL×1瓶,避光保存。
产品说明:测定对象中各种抗氧化物质和抗氧化酶等构成总抗氧化水平。
在生物学、医学和药学研究中常常检测血浆、血清、唾液、尿液等各种体液,细胞或组织等裂解液、植物或中草药抽提液及各种抗氧化物(antioxidant)溶液的总抗氧化能力。
在酸性环境下,物质还原Fe3+-三吡啶三吖嗪(Fe3+-TPTZ)产生蓝色的Fe2+-TPTZ的能力反映了其总抗氧化能力。
自备实验用品可见分光光度计/酶标仪、恒温水浴锅、低温离心机、微量石英比色皿/96孔板和蒸馏水。
操作步骤:一、样品的制备(1)血清、血浆、唾液或尿液样品血浆(制备时可以使用肝素或柠檬酸钠抗凝,不宜使用EDTA抗凝)4℃,5000rpm离心10min,取上清待测。
血清、唾液或尿液样品直接用于测定,也可以-80℃冻存(不宜超过30d)后再测定。
(2)组织样品按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液)进行冰浴匀浆,然后10000g,4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
(3)细胞样品按照细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入1mL提取液),冰浴超声波破碎(功率200W,超声3s,间隔10s,重复30次);10000g,4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
二、测定操作混合液(现配现用):将试剂一、试剂二、试剂三按10:1:1的比例混合,使用前预温至37℃。
对照管测定管混合液(μL)180180样本(μL)/6双蒸水(μL)2418充分混匀,反应10min,双蒸水调零,于微量石英比色皿/96孔板,测定593nm处吸光值,△A=A测定-A空白注意:空白管只需测定一次。
体外诊断试剂工作程序_
![体外诊断试剂工作程序_](https://img.taocdn.com/s3/m/7f4dfffbba4cf7ec4afe04a1b0717fd5360cb2ef.png)
体外诊断试剂工作程序_一、准备工作:1.检查试剂包装是否完好,并检查有效期是否过期。
2.检查所需仪器设备的工作状态和正确连接。
3.预热设备,如酶标仪、离心机等,使其达到试剂所需的温度。
4.根据试剂使用说明书,准备所需试剂和材料,如标准品、标本、质控品、洗涤缓冲液等。
二、操作步骤:1.根据试剂使用说明书准确称取所需试剂和材料,并按照指定比例配制试剂溶液,注意避免交叉污染。
2.根据试剂使用说明书的要求,对标本和质控品进行必要的预处理,如稀释、离心、避免血凝等。
3.向标准品、标本和质控品中加入相应试剂溶液,按照试剂使用说明书中的反应时间和温度进行反应。
4.按照试剂使用说明书中的要求,对反应体系进行洗涤,一般采用洗涤缓冲液进行洗涤,可采用洗涤机或手工方法进行洗涤。
5.加入显色底物,按照试剂使用说明书中的时间和温度进行反应。
6.反应结束后,加入终止液停止反应,停止后立即进行测量。
7.根据试剂使用说明书的要求,使用相应仪器测量反应产生的信号,如吸光度、荧光信号等。
三、结果解读:1.根据试剂使用说明书提供的标准曲线,通过测量结果得到的信号值,在标准曲线上确定对应的浓度值。
2.根据浓度值,判断样品的阳性或阴性,或者根据不同浓度范围确定样品的不同等级。
3.结果解读时,需要参考相关的参考值范围,如健康人群的正常范围或疾病标准等。
四、结果记录和报告:1.将测量结果记录在相应的实验记录表中,并注明样品编号、试剂批号、测量日期等信息。
2.根据实验结果生成报告,其中包括样品信息、试剂信息、测量结果、结果解读、参考范围等内容。
3.根据需要,将结果报告打印出来或保存电子版,供后续参考和审查。
总结:体外诊断试剂工作程序是一个严谨和规范的过程,需要严格按照试剂使用说明书进行操作,确保结果的准确可靠。
同时,要注意遵守相关操作规程和安全操作规范,保证试剂和标本的质量和安全性。
只有在正确的操作下,才能得到准确的诊断结果,为临床诊断和治疗提供科学依据。
抗氧化实验方法
![抗氧化实验方法](https://img.taocdn.com/s3/m/a4d12ee6b8f67c1cfad6b84d.png)
2.2.3 邻苯三酚自氧化法测定抗氧化性[9]
2.2.
3.1 邻苯三酚的自氧化速率的测定
取4.5ml50mmol/L Tris-HCl缓冲液(pH=8.2)、4.2ml蒸馏水倒入试管中,混匀后在25℃水浴中保温20min,取出后立即加入50μL同样在25℃水浴中预热过的30mmol/L邻苯三酚溶液,迅速摇匀后倒入比色皿,在325nm下每隔30s测定一次吸光度,将其自氧化速率控制在0.060~0.065A/min,然后计算线性范围内每分钟内吸光度的增加即回归直线的斜率,以pH8.2 Tris-HCl缓冲液为空白对照,并记录结果。
2.2.
3.2 加入样品液后邻苯三酚自氧化速率的测定
严格按照上述步骤,在加入邻苯三酚前先分别加入0.1、0.3、0.5、0.7、0.9ml 的样品液,同时蒸馏水的加入量要分别减去相对应加入的样品液的体积,以pH8.2 Tris-HCl缓冲液为空白对照,测定各组分溶液吸光度值。
为了验证所提取的蛋白质以及黄酮类物质的抗氧化活性大小,本次实验选用0.05mg/ml的维生素C作为检测的对照。
2.2.
3.3计算清除率
抑制率(%)=(△A1/△t-△A2/△t)/(△A1/△t)×100% 式中:△A1/△t为邻苯三酚自氧化时反应速率[10]
△A2/△t为加入样品液后邻苯三酚自氧化时反应速率。
抗氧化试验方法
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抗氧化试验方法一、试验方法1、DPPH自由基清除率的测定本实验采用1,1-diphenyl-2-picryhydrazyl(DPPH)法测定样品清除自由基活性。
1.1实验原理1,1-二苯基-2-苦肼基(1,1-diphenyl-2-picryhydrazyl(DPPH))是一种稳定的以氮为中心的自由基,其乙醇溶液显紫色,最大吸收波长为517nm。
当DPPH 溶液中加入自由基清除剂时,其孤对电子被配对时,吸收消失或减弱,导致溶液颜色变浅,显黄色或淡黄色,在517nm处的吸光度变小,其变化程度与自由基清除程度呈线性关系,故该法可用清除率表示,清除率越大,表明该物质清除能力越强。
1.2溶液的配制0.08mmol/L DPPH溶液的配制:精密称取DPPH8.0mg,用无水乙醇溶解并定容至200ml棕色容量瓶中,得浓度为0.004%的DPPH 溶液,避光保存,备用。
1.3实验步骤:分别取不同浓度的各样品溶液(0.24,0.48,0.72,0.96,1.20mg/ml)1.0ml,臵10ml离心管中,加入3.0ml的DPPH溶液,室温避光反应30min,同时以无水乙醇为空白,于517nm波长处测定吸光值。
按下列公式计算DPPH自由基清除率。
DPPH自由基清除率(%)= A0-(A s-A c)/ A0×100%公式中,A0—1.0ml蒸馏水+3.0mlDPPH溶液的吸光度值A s—1.0ml样品溶液+3.0mlDPPH溶液的吸光度值A c—1.0ml样品溶液+3.0ml无水乙醇的吸光度值将实验重复三次,求得清除率的平均值。
2、总的抗氧化活性的测定总的抗氧化活性实验采用改良后的Prieto法。
2.1实验原理:磷钼络合物测定方法的原理是Mo(VI)被抗氧化物质还原成绿色的Mo(V)络合物,其最大吸收波长为695nm。
抗氧化物质活性越强,测定的吸光度值越大。
此方法操作简单,所用试剂低廉、方法重现性好,非常适合抗氧化性的测定。
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3.2.5 体外抗氧化实验
发酵液的预处理:将摇瓶结束的发酵液装入无菌的10ml 离心管里,在天平上仔细平衡到10g ,在4℃,10000rpm ,离心10min ,小心转移上清液到新管子里标记备用。
(1)对超氧阴离子的清除作用
利用邻苯三酚自氧化体系测定样品对超氧阴离子的清除作用。
取50 mmol·L -1的Tris -HCI 缓冲液3 mL (pH=8.2,含有2 mmol·L -1的Na 2EDTA),加入l mL 待检样品,于25℃保温10 min ,然后加入25 ℃预温的5 mmol·L -1的邻苯三酚0.3 mL(预先用10 mmol·L -1的盐酸配制),精确反应4 min ,用0.5 mL 浓盐酸终止反应,测定其在320 nm 下的吸光度。
以10 mmol·L -1的盐酸作为空白调零,按如下公式计算清除率:
()
%100A A A -A ⨯-=对照样品空白样品对照清除率 (1)
式中A 对照为未加待检样品的邻苯三酚反应体系的吸光度(用1mL 10
mmol·L -1的盐酸替代样品);A 样品为加入待检样品后的邻苯三酚反应体系的吸光
度;A 样品空白为加入待检样品后的无邻苯三酚的反应体系的吸光度(用0.3mL 10
mmol·L -1的盐酸替代邻苯三酚溶液)。
注意事项:
1、 所用的两个比色皿杯子必须是石英的,上面会写着“Q ”,或“S ”,
不得使用玻璃的,玻璃比色皿要么什么都不写,要么写着 “G ”。
2、 测定前要用100g 砝码和天平标定所用的移液枪插上枪头后是否精
准,要求误差不超过5‰,不是5%。
3、 测定大量数据前,使用者先配制10g/L 的Vc ,做三个平行测定,精
准度达到5%以内再开始正确的测定。
4、
测定时由于每个人有使用习惯和误差,中间不得换人换枪。
(2)对DPPH ·的清除作用
DPPH·溶液的配制:准确称取47 mg DPPH·,用无水乙醇溶解并定容至100 mL ,避光保存(0~4℃),使用时稀释至120 μmol·L -1。
取待检样品l mL 与120μmol·L -1的DPPH·溶液3 mL 加入同一试管中,摇匀,在黑暗中放置30 min ,以无水乙醇为空白,在517 nm 下测定其吸光度,并按下式计算清除率:
()
%100A A A -A ⨯-=对照样品空白样品对照清除率 (2)
式中A 对照为未加待检样品的DPPH·反应体系的吸光度(用1mL 无水乙醇补充
体积);A 样品为加入待检样品后的DPPH·反应体系的吸光度;A 样品空白为加入待检
样品后的无DPPH·的反应体系的吸光度(用3mL 无水乙醇补充体积)。
上述是针对那些遇酒精不浑浊的情况
注意事项:
1、 本实验所用的两个比色皿杯子可以石英也可是是玻璃的,但是两个
比色皿要一致。
石英的,上面会写着“Q ”,或“S ”;玻璃比色皿要
么什么都不写,要么写着 “G ”。
如果样品遇到酒精大量浑浊,则
DPPH·溶液的配制:准确称取47 mg DPPH·,用无水乙醇溶解并定容至100 mL ,避光保存(0~4℃),使用时稀释至120 μmol·L -1。
取待检样品l mL 与120μmol·L -1的DPPH·溶液3 mL 加入同一试管中,摇匀,在黑暗中放置30 min ,以纯水为空白,在517 nm 下测定其吸光度,并按下式计算清除率:
()
%100A A A -A ⨯-=对照样品空白样品对照清除率 (2)
式中A
对照为未加待检样品的DPPH·反应体系的吸光度(用1mL 纯水补充体积);A 样品为加入待检样品后的DPPH·反应体系的吸光度;A 样品空白为加入待检样
品后的无DPPH·的反应体系的吸光度(用3mL 纯水补充体积)。
(3)对羟自由基的清除作用
在一系列50 mL 具塞试管中加入0.8 mL 的HAc—NaAc 缓冲溶液
(0.2mol/L,pH=5.0),1.0 mL 的孔雀绿溶液(100mL,纯水配制,1×10-4 mol·L -1),2.2 mL 的EDTA—Fe 2+溶液(2×10-2 mol·L -1,注意不要吸入底部沉淀,沉淀太多则滤纸过滤后使用,以防止不均匀),1.4 mL 的H 2O 2溶液(体积分数为0.3%,每次用新的,不超过一个月),用去离子水稀释到10 mL 并涡旋振荡混匀,放置45 min 后,在617 nm 下测定其吸光度A b ,同时测定不加H 2O 2时体系在617 nm 下的吸光度如A 0,则羟自由基的产生量△A=A 0-A b 。
△A 越大,表示生成的羟自由基越多。
上述体系中加入H 2O 2之前放1 mL 待测样品,测定其吸光度A s ,则羟自由基清除率可按下式计算:
清除率=(As0−As )−Ab A0−Ab ×100%
(3)
式中A s0为加入待测样品后未加H 2O 2的反应体系的吸光度。
注意事项:
1、 本实验所用的两个比色皿杯子可以石英也可是是玻璃的,但是两个
比色皿要一致。
石英的,上面会写着“Q ”,或“S ”;玻璃比色皿要
么什么都不写,要么写着 “G ”。
2、
H 2O 2 要稀释十倍再使用,母液是3%的尽量用新买的双氧水。
3、 EDTA -Fe2+溶液有浑浊和沉淀,影响实验效果,配置后,立即一层
滤纸过滤,用滤液测定,每次测定时注意底部有无沉淀,和结晶析
出,如有,请过滤后使用,以保证每个试验点的试剂是均一的。
4、
孔雀绿溶液按需配置,因为含铜离子。
5、 注意每一试验管的最后体积为10ml ,由于先加的在试管底部,后加
在试管顶部,为混合均匀,请用涡旋振荡器涡旋振荡试管,确保肉
眼看到上下颜色均一。
设计实验时请计算好要补充的水的体积,打
印或抄写好。
养成好习惯。
6、 每天的实验都要测定1%Vc 的祛自由基效果,以便于横向和纵向比
较。