番茄果实品质测定

合集下载

西红柿硬度测定实验报告(3篇)

西红柿硬度测定实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 了解硬度测定的基本原理和方法。

2. 探究不同品种西红柿的硬度差异。

3. 分析西红柿硬度与品种、成熟度等因素的关系。

二、实验原理硬度是指材料抵抗局部变形、划伤、压痕等能力的大小。

硬度测试是衡量材料硬度的一种方法,常用的硬度测试方法有布氏硬度、洛氏硬度、维氏硬度等。

本实验采用布氏硬度法测定西红柿的硬度。

三、实验材料与仪器1. 实验材料:不同品种的西红柿若干(如红宝石、牛心、圣女果等)。

2. 实验仪器:布氏硬度计、电子秤、剪刀、镊子、平板玻璃、酒精棉球。

四、实验步骤1. 将西红柿洗净,用电子秤称取每个西红柿的质量,记录数据。

2. 用剪刀将西红柿沿横截面剪成两半,用镊子取出种子,并去除西红柿皮。

3. 将处理好的西红柿放在平板玻璃上,用酒精棉球擦拭表面,确保干净。

4. 将布氏硬度计的压头放在西红柿表面,施加一定压力,保持2秒。

5. 读取硬度计的示数,记录数据。

6. 重复步骤4-5,对每个西红柿进行3次测量,取平均值作为该西红柿的硬度值。

7. 对不同品种的西红柿进行硬度测定,并记录数据。

五、实验结果与分析1. 实验结果| 品种 | 红宝石 | 牛心 | 圣女果 || ------ | ------ | ------ | ------ || 硬度值 | 7.5 | 6.0 | 5.5 |2. 分析(1)从实验结果可以看出,红宝石西红柿的硬度最高,其次是牛心,圣女果硬度最低。

这可能与品种的遗传特性有关。

(2)硬度与西红柿的成熟度有关。

随着西红柿成熟度的提高,硬度逐渐降低。

这是因为西红柿在成熟过程中,细胞壁逐渐软化,导致硬度下降。

(3)硬度与西红柿的生长环境有关。

在适宜的生长条件下,西红柿的硬度较高;而在生长条件较差的情况下,西红柿的硬度较低。

六、实验结论1. 本实验采用布氏硬度法成功测定了不同品种西红柿的硬度。

2. 红宝石西红柿的硬度最高,其次是牛心,圣女果硬度最低。

3. 西红柿的硬度与品种、成熟度、生长环境等因素有关。

番茄中有机酸含量测定

番茄中有机酸含量测定

番茄果实中可溶性固形物含量的测定
用手持糖度仪计测定果实中可溶性固形物含量,每次取10个果,去掉最大值和最小值后,求其平均值。

番茄果实中有机酸含量的测定
所需试剂:酚酞指示剂
0.1mol/L 氢氧化钠:称取4克固体NaOH,用煮沸过且已制冷的水定容至1000ml 采用滴定法测定果实中有机酸含量,具体参照高俊凤[1]的方法进行:
(1)样品中游离有机酸的提取:称取新鲜番茄果实5~10g ,置于研钵中研成糊状,用蒸馏水洗入250mL 三角瓶中,使体积在100mL 以内。

于80℃恒温水浴中浸提30min ,不断搅拌。

取出,冷却后过滤或离心,用蒸馏水冲洗残渣2~3次,合并滤液或上清液,蒸馏水定容至100mL 。

混匀备用。

(2)滴定:根据样品中有机酸含量多少,决定提取液的稀释程度。

取稀释了的试液20mL ,转入100mL 三角瓶中,加酚酞指示剂2~3滴,用0.1mol/L 氢氧化钠标准液滴定至浅粉色不退为止。

记录滴定用去的氢氧化钠标准液的mL 数。

(3)结果计算:
一般水果蔬菜中的有机酸常以苹果酸为代表,1mL0.1mol/L 氢氧化钠标准液相当于苹果酸0.0067g ,由此可以按下式计算每克番茄果实中有机酸的百分含量。

有机酸含量(%)=
1000067.022⨯⨯⨯⨯⨯W V a v f 式中:
a ——滴定用去的氢氧化钠标准液的mL 数
V ——提取液总体积(mL );
v ——滴定时取用试液体积(mL );
W ——样品鲜重(g )
f ——稀释倍数
[1] 高俊凤.植物生理学实验技术[M].西安,世界图书出版公司,2000。

18quality manual Tomato西红柿质量手册验收标准

18quality manual Tomato西红柿质量手册验收标准
1.产品信息:西红柿/番茄/优质西红柿
原产地
国产
标准包装毛重
依具体品种而定
类别
花果类
标准包装净重
依具体品种而定
标准产品说明
外观一致,果形圆润无筋棱;成熟适度;色泽均匀,表面光洁;果腔充实;果实坚实,带萼片,蒂茎不超0.5cm,蒂切面不可以超过果肩。
UPC/PLU
89295/99817
包装类型
定量包装,整齐码放
拒收标准
严重缺陷
1
腐烂、变质、异味
可接受缺陷之和<3%
2
冻害
3
虫蛀
4
药斑
轻微缺陷
1
萎蔫
可接受缺陷之和<10%
2
机械损伤>2cm
3
裂果
4
枝伤
5
疤痕
6
畸形
7
产品规格不符
3.温度要求(℃):
产品接收
贮存
物流配送
销售
供应商
NA
0~5℃
0~5℃
NA
到仓
0~5℃
0~5℃
0~5℃
NA
门店
0~5℃
0~5℃
NA
常温
标 准 图 片
单品尺寸
>100g/个,每箱规格统一,单品重量差异±30%
供应期
全年
标签
品种/规格/生产商/产地
卡板说明
推荐热处理,有HT标志
颜色
鲜红碧透
品质
果实坚实,果味酸甜可口,
硬度
/
货架期
2-3天
2.验收标准:
程度水平
序号
缺陷描述
拒收标准
拒收
1

番茄等果实酸度的简易测定法

番茄等果实酸度的简易测定法

番茄等果实酸度的简易测定法
果实酸度是果实品质的重要指标之一,由于果实中所含的酸性物质的数量不同,所以它的酸度也具有明显的差异,其中西红柿、苹果等常见果实的酸度程度可达到2~4.6等,而青梅等某些果实酸度则高达6~7。

为了准确反映果实酸度水平,人们在实践中发展出一种简单有效的测定法,即pH法。

这种测试方式非常简便,只需简单的设备及试剂,即可完成果实酸度的测定。

pH测定方法的基本步骤如下:
1.将试样果汁、醋酸等冲入一定量的试管内;
2.放入一定量的pH液体,然后搅拌均匀;
3.将pH值计放入试管中,观察颜色变化,读出相应的数值;
4.根据颜色变化,可以得出果实酸度的具体值。

有了这种简易测定法,可以使果实酸度的测定更加准确有效,同时也可以粗略
地用来判断西红柿、苹果等果实的成熟程度及类型,以便及时采摘和运输,保证果实的最佳品质。

该测定方法非常实用,因此在果实加工成品的制作过程中也有着广泛的应用。

可见,pH法已成为衡量西红柿、苹果等果实酸度程度的有效方法。

它可以准
确反映果实酸度水平,不仅有效地控制果实加工成品的品质,而且易于操作,省时省力,经济实用,受到广大果农企业及果汁加工企业的青睐。

基于转录组学和代谢组学解析番茄果实品质形成过程

基于转录组学和代谢组学解析番茄果实品质形成过程

㊀山东农业科学㊀2023ꎬ55(2):9~19ShandongAgriculturalSciences㊀DOI:10.14083/j.issn.1001-4942.2023.02.002收稿日期:2022-04-08基金项目:山东省农业良种工程项目(2020LZGC005)ꎻ青岛市科技惠民示范引导专项科技特派员行动计划项目(21-1-4-ny-25-nsh)ꎻ山东省现代农业产业技术体系项目(SDAIT-05)ꎻ山东省重点研发计划(农业良种工程)项目(2021LZGC018)作者简介:苏璐璐(1995 )ꎬ女ꎬ山东青岛人ꎬ硕士ꎬ研究方向为蔬菜遗传育种与分子生物学ꎮE-mail:1343149784@qq.com通信作者:王富(1966 )ꎬ男ꎬ博士ꎬ教授ꎬ主要研究方向为蔬菜遗传育种与分子生物学ꎮE-mail:wangfuabcd@163.com基于转录组学和代谢组学解析番茄果实品质形成过程苏璐璐ꎬ朱文莹ꎬ陈旭ꎬ王辉ꎬ曹依林ꎬ王富(青岛农业大学园艺学院ꎬ山东青岛㊀266109)㊀㊀摘要:本试验以 Micro-Tom 番茄为试材ꎬ对其绿熟期(GR)㊁转色期(BR)及红熟期(RR)果实进行转录组学及代谢组学分析ꎮ转录组学分析结果表明ꎬGR至RR过程中果实内与可溶性糖相关的磷酸葡萄糖变位酶基因(PGM)㊁糖原磷酸化酶基因(GPH)等下调ꎬ1ꎬ4-α-葡聚糖分支酶基因(SBE)㊁蔗糖合酶基因(SuSy1)等上调ꎻ参与抗坏血酸合成途径的GDP-L-半乳糖磷酸化酶基因(GGP)㊁单脱氢抗坏血酸还原酶基因(MDHAR)一直呈现上调趋势ꎻ而参与叶绿素降解㊁类胡萝卜素合成的多数基因以及与细胞壁代谢相关的众多基因则呈现先上调后下调的趋势ꎻ番茄碱生物合成途径GAME家族基因呈先下调后上调的表达模式ꎮ代谢组学数据表明ꎬ与品质形成有关的D-果糖㊁古洛糖酸㊁异柠檬酸㊁L-谷氨酸和L-天门冬氨酸等在番茄成熟过程中含量呈现持续增加的趋势ꎬL-苹果酸呈下降趋势ꎬL-精氨酸㊁L-色氨酸㊁L-蛋氨酸在BR至RR过程中增加明显ꎻ槲皮素-3-O-葡萄糖苷㊁柚皮素在转色期明显增加ꎮ综合可见ꎬ Micro-Tom 番茄果实成熟过程中ꎬ可溶性糖㊁有机酸㊁氨基酸㊁黄酮类化合物等代谢物积累及关键基因表达均发生了规律性变化ꎬ可初步解析番茄果实品质形成过程ꎮ关键词:番茄ꎻ转录组学ꎻ代谢组学ꎻ果实品质中图分类号:S641.201:Q78㊀㊀文献标识号:A㊀㊀文章编号:1001-4942(2023)02-0009-11AnalysisofTomatoFruitQualityFormingBasedonTranscriptomicsandMetabolomicsSuLuluꎬZhuWenyingꎬChenXuꎬWangHuiꎬCaoYilinꎬWangFu(CollegeofHorticultureꎬQingdaoAgriculturalUniversityꎬQingdao266109ꎬChina)Abstract㊀Transcriptomicandmetabolomicanalyseswereconductedonthe Micro ̄Tom fruitsatgreenripening(GR)ꎬbreakripening(BR)andredripening(RR)stages.ThetranscriptomicanalysisresultsshowedthatintheprocessfromGRtoRRꎬthephosphoglucomutase(PGM)andglycogenphosphorylase(GPH)genesweredown ̄regulatedꎬandthe1ꎬ4 ̄α ̄glucanbranchingenzyme(SBE)andsucrosesynthase(SuSy1)geneswereup ̄regulatedꎬwhichwereallrelatedtosolublesugarmetabolism.TheGDP ̄L ̄galactosephosphorylasegene(GGP)andmonodehydroascorbatereductasegene(MDHAR)involvedinascorbicacidsynthesispathwaywereup ̄regulated.Manygenesrelatedtochlorophylldegradationꎬcarotenoidsynthesisandcellwallmetabolismwereup ̄regulatedfirstandthendown ̄regulated.TheGAMEfamilygenesrelatedtotoma ̄toalkaloidbiosynthesispathwaywerefirstdown ̄regulatedandthenup ̄regulated.Themetabonomicanalysisre ̄sultsshowedthatthecontentsofD ̄fructoseꎬgulonicacidꎬisocitricacidꎬL ̄glutamateandL ̄asparticacidre ̄latedtoqualityformationincreasedcontinuouslyduringtomatoripeningꎬbutthecontentofL ̄malicacidde ̄creasedꎻtheL ̄arginineꎬL ̄tryptophanandL ̄methionineincreasedsignificantlyfromBRtoRRꎬandthecon ̄tentsofquercetin ̄3 ̄O ̄glucosideandnaringinincreasedsignificantlyfromGRtoBR.Ingeneralꎬduringthefruitripeningprocessof Micro ̄Tom ꎬthemetabolitessuchassolublesugarꎬorganicacidsꎬaminoacidsandflavonoidsandtheexpressionofkeygeneschangedregularlyꎬwhichcouldpreliminarilyparsetheformingprocessoftomatofruitquality.Keywords㊀TomatoꎻTranscriptomicsꎻMetabolomicsꎻFruitquality㊀㊀番茄是一种重要的蔬菜作物ꎬ2018年我国番茄栽培面积110.9万公顷ꎬ其中设施番茄面积64.2万公顷[1]ꎮ随着人们生活水平的提高ꎬ番茄果实品质尤其是口感和风味品质受到更多关注ꎬ关于果实成熟过程中的品质形成机理已有较多报道[2]ꎬ利用多组学手段分析番茄果实品质的相关研究成为近年来的研究热点ꎮLu等研究发现ꎬ番茄果实成熟受MADS-type转录反馈回路的调控[3]ꎮ大规模番茄果实ChIP-chip和转录组数据的分析证实ꎬRIN通过直接结合和激活与成熟相关的关键结构和调控基因ACS2/4㊁SGR1㊁PSY㊁Cel2㊁EXP1㊁PAL1㊁C4H㊁LoxC㊁AAT1㊁CNR㊁NOR㊁AP2a及其自身ꎬ在番茄果实成熟过程中发挥着重要作用[4-6]ꎮ黄丽华等检测了樱桃番茄以及5份野生番茄的代谢物ꎬ并对其叶片和果实中有机酸㊁氨基酸及糖类含量进行了分析ꎬ结果显示樱桃番茄中含有丰富的营养成分ꎬ且除水分以外ꎬ各种营养成分均比大宗番茄高[7]ꎮFraser等研究表明ꎬ番茄果实中番茄红素脱氢酶基因的表达与β-胡萝卜素㊁叶黄素等的含量密切相关[8]ꎮMoco等比较了番茄果肉和果皮间代谢物的差异ꎬ并建立了包含上百种代谢物的番茄代谢组数据库[9]ꎮTie ̄man等研究显示ꎬ番茄成熟果实中28种代谢物与其品质风味和口感显著相关ꎬ其中3-甲基丁醇可显著提高果实的甜感[10]ꎮ上述研究多以成熟番茄果实为主ꎬ但对番茄果实品质形成过程的研究目前鲜有报道ꎬ且番茄果实成熟过程中物质代谢及基因表达的变化是高度复杂的ꎬ要明确番茄果实品质形成的机理仍需要大量研究ꎮ本研究以 Micro-Tom 番茄为试材ꎬ对绿熟期㊁转色期及红熟期的果实进行转录组学和代谢组学分析ꎬ以明确番茄果实成熟过程中品质形成的代谢物基础和转录水平的变化ꎬ探索番茄果实品质形成过程ꎬ为番茄优质栽培和育种提供理论依据ꎮ1㊀材料与方法1.1㊀试验材料供试番茄品种为 Micro-Tom ꎬ由青岛农业大学番茄育种课题组提供ꎮ于2021年3 7月开展试验ꎮ将番茄种子洗净后播种于72孔穴盘中ꎬ置于青岛农业大学人工气候室ꎬ待幼苗长至三叶一心时移栽至直径12cm的花盆继续培养ꎬ培养条件为光周期12h光/12h暗ꎬ光照强度8000lxꎬ温度25ħ/18ħꎬ空气湿度75%ꎻ分别在果实绿熟期㊁转色期和红熟期取样ꎬ将果实切碎ꎬ液氮冷冻ꎬ放于-80ħ冰箱保存ꎬ待用ꎮ绿熟期㊁转色期和红熟期样品分别标记为GR㊁BR和RRꎮ1.2㊀试验方法1.2.1㊀番茄果实转录组学测定及分析㊀取绿熟期㊁转色期㊁红熟期番茄果实混样进行转录组测序ꎬ每组处理设置3次生物学重复ꎬ提取RNA后进行纯化㊁建库ꎬ然后使用第二代高通量测序技术(NGS)ꎬ基于Illumina测序平台进行文库的双末端(PE)测序ꎬ该部分工作由上海派森诺生物科技有限公司进行ꎮ将测序得到的数据进行基因的差异表达㊁GO富集及KEGG富集分析ꎮ1.2.2㊀转录组数据的qRT-PCR验证㊀采用So ̄01㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第55卷㊀larbio试剂盒ꎬ提取不同时期的番茄果肉总RNAꎬ使用反转录试剂盒TaKaRa(北京宝日医生物技术有限公司)将总RNA反转录合成cDNAꎬ以cDNA为模板㊁Actin为内参进行qRT-PCRꎮ利用在线引物设计软件(https://quantprime.mpimp ̄golm.mpg.de/)对所筛选的差异基因设计定量引物(表1)ꎬ通过溶解曲线分析确认其特异性ꎮqRT-PCR采用TaKaRa试剂盒(北京宝日医生物技术有限公司)ꎬ在罗氏定量PCR仪上完成ꎬ程序设置为:95ħ10minꎬ95ħ15sꎬ60ħ60sꎬ40个循环ꎮ所有试验均设置3个生物学重复ꎬ相对表达水平的计算方法为2-әәCt法ꎮ1.2.3㊀番茄果实代谢组学测定及分析㊀取绿熟期㊁转色期和红熟期果实各6次重复共18个样本进行代谢组分析ꎮ该部分工作由上海派森诺生物科技有限公司进行ꎬ实验方法参照DeVos和San ̄gster[11ꎬ12]等的方法ꎮ将得到的数据进行代谢产物的差异分析及KEGG富集分析ꎮ㊀㊀表1㊀qRT-PCR引物序列序号基因正向引物(5ᶄ-3ᶄ)反向引物(5ᶄ-3ᶄ)1Solyc06g035940.3AAATTCCATTGGGCAAGAGCCACGGATGCGACAGGTTCTC2Solyc10g085540.1CCACTATCTGGTCCTTTATTTCCTATTGTCGTTCCATTCGGGTTA3Solyc09g008560.4CCTTCCTCCAACATCCACCATCTCCTATGCCTGTGAAAACTAT4Solyc04g012140.1GCAAGGAAGTCAAGGCCACTGCCCTAGCCATTCCGAGTAT5Solyc12g055730.3TCACCAACCTTCCATGCAATATGGAATGGAGTGGCTACTTCCTAG6Solyc11g069700.2TGGAAGACGCAAGGGTTTGTCCCATTTGTGCCGATTTCTG7Solyc12g006790.3TGAACTCGATGCAATTCGTAATCCCACTCCTGTCAGTGTGATTT8Solyc02g080670.3AGTGCTAACCACTACTGCCGTTTCCACTTGCAGTGAGATTCCAAC9Solyc06g069110.4ACACTACTCTGGCTCTTCAAATTGATGGGCAATCAGAGACTTTA10Solyc06g073080.4GATTTGCAAGTGGCTGGCCTTCACTCAACGCCTCCAATTGATCAC11Solyc10g007690.3ACTCCACCAGTCAAGCAAGGAAAACCAAAGTCACCGGGAAGAC12Solyc07g042440.3GCCTGTGGTGGTTTATTTCTACCTGAAGGCACATGCCTGTTTGG13ActinCAAACGAGAATTGCCTTGGTCTTAACATCCGCACCAACCT2㊀结果与分析2.1㊀不同时期番茄果实转录组学分析2.1.1㊀差异表达基因分析㊀3个时期两两之间共检测出18601个差异表达基因(DEGs)ꎬ其中GR与BR间(GRvsBR)存在6537个DEGsꎬ其中2057个上调ꎬ4480个下调ꎻBR与RR间(BRvsRR)出现4587个DEGsꎬ其中2042个上调ꎬ2545个下调ꎻGR与RR间(GRvsRR)检测到7477个DEGsꎬ其中2247个上调ꎬ5230个下调ꎮ而且GRvsBR与BRvsRR之间有2269个相同的DEGsꎬGRvsBR与GRvsRR之间有4537个相同的DEGsꎬBRvsRR与GRvsRR之间有2870个相同的DEGsꎬ而GRvsBR㊁BRvsRR与GRvsRR三者之间共有1240个相同的DEGs(图1A)ꎮ2.1.2㊀差异表达基因的GO富集分析㊀GRvsBR的GO富集结果显示ꎬ在细胞组分方面ꎬDEGs主要富集在细胞周边㊁细胞膜等条目上ꎻ在分子功能方面ꎬ主要富集在催化活性㊁单加氧酶活性等条目上ꎻ在生物过程方面ꎬ主要富集在碳水化合物代谢过程㊁单羧酸代谢过程等条目上(图1B)ꎮBRvsRR的GO富集结果显示ꎬ在细胞组分方面ꎬDEGs主要富集在光合系统㊁光合膜等条目上ꎻ在分子功能方面ꎬ主要富集在色素结合㊁叶绿素结合等条目上ꎻ生物过程方面主要富集在光合作用㊁蛋白质-发色团连接等条目上(图1C)ꎮGRvsRR的GO富集结果显示ꎬ在细胞组分方面ꎬDEGs主要富集在细胞外围㊁膜的固有成分等条目上ꎻ在分子功能方面ꎬ主要富集在色素结合㊁单加氧酶活性等条目上ꎻ在生物过程方面ꎬ主要富集在光合作用光系统Ⅰ中的光收集㊁光合作用光收集㊁次生代谢过程等条目上(图1D)ꎮ11㊀第2期㊀㊀㊀㊀㊀苏璐璐ꎬ等:基于转录组学和代谢组学解析番茄果实品质形成过程A㊁B㊁C㊁D分别为韦恩图及GRvsBR㊁BRvsRR㊁GRvsRR间的GO富集结果ꎮ柱状图中ꎬ标记CC指细胞组分ꎬMF指分子功能ꎬBP指生物过程ꎮ图1㊀不同成熟时期番茄果实DEG的韦恩图及GO富集结果2.1.3㊀差异表达基因的KEGG富集分析㊀KEGG富集分析结果显示ꎬGRvsBR共有1247个差异基因注释在119个通路上ꎬ富集较为显著且与番茄果实品质形成相关的通路主要有植物激素信号转导㊁淀粉和蔗糖代谢㊁半乳糖代谢㊁类黄酮生物合成等通路(图2A)ꎻBRvsRR共有848个差异基因注释在109个通路上ꎬ富集较为显著的有植物激素信号转导㊁淀粉和蔗糖代谢㊁丙氨酸和天冬氨酸及谷氨酸的代谢㊁光合作用㊁类黄酮生物合成㊁果糖和甘露糖代谢等通路(图2B)ꎻGRvsRR共有1440个差异基因注释在117个通路上ꎬ其中1111个差异基因被富集在87条代谢通路上ꎬ富集较为显著的有植物激素信号转导㊁淀粉和蔗糖代谢㊁半乳糖代谢㊁糖酵解/糖异生㊁类黄酮生物合成等通路(图2C)ꎮ番茄果实由绿熟向红熟转变的过程中ꎬ蔗糖21㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第55卷㊀和淀粉代谢通路中的蔗糖磷酸合酶基因随着果实的成熟一直呈现上调趋势ꎻ参与抗坏血酸合成途径的GDP-L-半乳糖磷酸化酶基因(GGP)㊁单脱氢抗坏血酸还原酶基因(MDHAR)一直呈现上调趋势ꎻ苯丙烷生物合成途径中合成木质素和柚皮素的反式肉桂酸4-单加氧酶表达呈现先上调后下调的趋势ꎻ类黄酮生物合成中5-O-(4-香豆酰)-D-奎宁酸3ᶄ-单加氧酶基因㊁查尔酮合酶基因表达先上调后下调ꎻ另外在糖降解及其他代谢途径中的一些与果实品质形成相关的基因如糖原磷酸化酶基因(GPH)㊁磷酸葡萄糖变位酶基因(PGM)㊁异柠檬酸脱氢酶基因㊁谷胱甘肽生物合成酶基因也有不同程度的表达差异ꎮ在果实由绿熟到转色再到红熟的过程中ꎬ与叶绿素降解关键基因SGR1㊁PPH均呈先上调后下调的趋势ꎻ由绿熟期向转色期转变的过程中ꎬ与类胡萝卜素生物合成相关的基因PSY1㊁PSY2㊁CRTISO㊁ZDS㊁PDS㊁BCH2㊁ZEP㊁NSY以及与细胞壁代谢相关的基因Exp1㊁PG㊁PL㊁TBG4㊁Cel1㊁Cel2㊁Xyl1等均呈现上调的趋势ꎻ与次级代谢产物形成相关的基因PAL㊁TomLoxC㊁PPEAT㊁AAT1㊁FLORAL4㊁LIP8等均表现为先上调后下调的趋势ꎻ多个参与花青素合成的基因如CHS1㊁CHI㊁F3H㊁F3 5 H㊁UGTs㊁F3HL等均表现为下调ꎻ参与生物碱合成的GORKY㊁SAMT以及GAME家族基因GAME1㊁GAME4㊁GAME5㊁GAME6㊁GAME11㊁GAME12㊁GAME17㊁GAME18均呈现先下调后上调的趋势ꎻ另外参与调控果实成熟与果实品质形成的相关转录因子在果实成熟过程中表达量也发生了较大的变化ꎬ如RIN表现为持续上调ꎬNAC4㊁NAP2表现为先上调后下调的趋势ꎮ31㊀第2期㊀㊀㊀㊀㊀苏璐璐ꎬ等:基于转录组学和代谢组学解析番茄果实品质形成过程A㊁B㊁C分别为GRvsBR㊁BRvsRR㊁GRvsRRꎮ图2㊀不同时期番茄果实差异基因的KEGG富集分析41㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第55卷㊀2.1.4㊀qRT-PCR验证结果㊀为了验证转录组数据的准确性ꎬ我们筛选了12个差异表达基因ꎬ利用qRT-PCR对其进行表达分析ꎬ结果表明ꎬ尽管转录组数据与qRT-PCR数据之间存在倍数上的差异ꎬ但是各个基因表达模式基本一致(图3)ꎬ这表明获得的转录组数据是可信的ꎬ可以用于后续分析ꎮ图3㊀RNA-seq数据的qRT-PCR验证2.2㊀不同时期番茄果实代谢组分析2.2.1㊀差异代谢物分析㊀结果发现ꎬGRvsBR㊁BRvsRR㊁GRvsRR共鉴定出154种主要差异代谢物ꎮ其中GRvsBR㊁BRvsRR㊁GRvsRR分别存在138㊁103㊁144种差异代谢物ꎬ上调的分别有95㊁76㊁105种ꎬ下调的分别有43㊁27㊁39种ꎮ差异代谢物中与番茄果实品质形成相关的重要糖类㊁有机酸㊁氨基酸㊁类黄酮等物质在番茄果实发育过程中的含量变化如表2所示ꎮ有机酸中反式肉桂酸在番茄果实成熟过程中呈现持续下降的趋势ꎬ异柠檬酸在果实发育过程中持续增加ꎬL-苹果酸在果实由BR至RR发育过程中明显下降ꎮ氨基酸类化合物中的L-谷氨酸和L-天门冬氨酸在发育过程中逐渐增加ꎬL-精氨酸㊁L-色氨酸㊁L-蛋氨酸在BR至RR转变过程中明显增加ꎻ槲皮素-3-O-葡萄糖苷㊁柚皮素在转色期明显增加ꎻ糖类物质D-果糖㊁D-麦芽糖在番茄果实从GR到BR的过程中含量增加ꎮ2.2.2㊀差异代谢产物的KEGG富集分析㊀利用KEGG数据库和MetPA数据库对果实不同时期差异代谢物参与的代谢通路进行富集ꎮGRvsBR㊁BRvsRR㊁GRvsRR的差异代谢物均富集到50多条代谢通路ꎬ并且共同富集到的与品质形成相㊀㊀表2㊀番茄果实不同成熟时期部分与果实品质形成相关代谢物的变化化合物种类化合物中文名称log2(FC_GR/BR)log2(FC_BR/RR)log2(FC_GR/RR)有机酸trans-Cinnamate反式肉桂酸-2.738-1.0951-3.8331Succinicacid琥珀酸-2.3612 -2.0656Gluconicacid葡萄糖酸-0.636841.0217Gulonicacid古洛糖酸2.51320.87183.3850L-MalicacidL-苹果酸 -1.4354-1.3963Fumaricacid延胡索酸 -1.0497-1.1982Isocitricacid异柠檬酸1.21561.24872.4643Pyruvicacid丙酮酸1.4170 1.3966氨基酸L-Phenylalanine苯丙氨酸-2.3511 -2.5310L-SerineL-丝氨酸-2.3382 -2.0627L-ValineL-缬氨酸-2.2548 -2.2276L-ThreonineL-苏氨酸-0.9832 -0.6244L-GlutamicacidL-谷氨酸1.22811.50152.7297L-ArginineL-精氨酸 0.90890.7598L-TryptophanL-色氨酸 1.03450.9943L-MethionineL-蛋氨酸 0.74430.6344beta-Alanineβ-丙氨酸-1.06350.9773D-ProlineD-脯氨酸3.5721-1.07732.4949L-AsparticacidL-天门冬氨酸3.02751.22434.2518醇类Galactitol半乳糖醇-1.65431.4924D-XylitolD-木糖醇2.4487 3.00272-Phenylethanol2-苯乙醇0.36490.79841.1632Tyrosol酪醇0.4521 0.7782酮类Coumarin香豆素-1.5981 -1.4297Pulegone胡薄荷酮0.5965 1.6460Quercetin-3-O-glucoside槲皮素-3-O-葡萄糖苷0.8447 0.7805Naringenin柚皮素7.4007-1.48925.9115Hesperetin橙皮素9.9088-0.87759.0313糖类D-FructoseD-果糖1.0537 0.9107D-MaltoseD-麦芽糖2.3365 1.5019Manninotriose甘露三糖 1.02810.7320Glucosamine氨基葡萄糖1.39441.19652.590951㊀第2期㊀㊀㊀㊀㊀苏璐璐ꎬ等:基于转录组学和代谢组学解析番茄果实品质形成过程关的代谢通路主要有类黄酮生物合成和柠檬酸盐循环途径(图4)ꎮGRvsBR和GRvsRR所富集的与品质形成相关的代谢通路还包含有谷氨酸㊁甘氨酸㊁丝氨酸和苏氨酸的代谢ꎬ以及淀粉和蔗糖代谢等途径ꎮ另外ꎬBRvsRR还富集到磷酸戊糖途径等ꎮ61㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第55卷㊀A㊁B㊁C分别为GRvsBR㊁BRvsRR㊁GRvsRR的富集结果ꎮ图4㊀不同成熟时期果实差异代谢物KEGG富集通路分析3㊀讨论与结论如何提高番茄果实品质以及探究提高番茄果实品质的分子机理已成为热门研究课题ꎮ番茄果实中可溶性糖及有机酸的种类㊁含量㊁比例以及次生代谢物(多酚㊁挥发性有机化合物和生物碱)的种类和含量在果实成熟过程中均会发生较大的变化ꎬ这也对番茄果实口感及风味品质的形成起着决定性作用ꎮ本研究采用转录组学与代谢组学相结合的方法ꎬ通过研究不同时期番茄果实中糖类㊁有机酸㊁氨基酸㊁维生素㊁色素等物质及相关代谢通路的变化ꎬ初步探索番茄成熟后果实品质形成的原因ꎮ前人研究表明ꎬ番茄果实可溶性糖含量随果实发育和成熟会发生明显变化ꎬ且含糖量在一定程度上会影响果实的硬度和挥发性香气物质ꎬ是影响果实品质的重要因素ꎮ果糖和葡萄糖是成熟番茄果实中的主要可溶性糖[12]ꎬ蔗糖合成酶㊁酸性转化酶和蔗糖磷酸合成酶是参与蔗糖代谢的重要酶ꎬ在果实中糖的积累中起重要作用[13]ꎮ本研究中ꎬ番茄果实中的氨基葡萄糖含量从绿熟期到转色期再到红熟期呈现不断升高的趋势ꎬ在红熟期达到最高ꎻ影响糖降解的磷酸葡萄糖变位酶基因㊁糖原磷酸化酶基因下调ꎬ控制合成糖原和海藻糖的1ꎬ4-α-葡聚糖分支酶基因(SBE)㊁介导蔗糖从韧皮部向果实输送的SUT1基因(蔗糖转运蛋白基因)以及控制蔗糖卸载的基因SuSy1(蔗糖合酶基因)在果实成熟过程中也呈现上升的趋势ꎻAGPL1在果实由转色期向红熟期转变过程中也显著上调ꎬ该基因调控果实成熟过程中的淀粉含量ꎬ促进可溶性固形物含量的增加ꎮ说明番茄果实由绿熟向红熟转变的过程中ꎬ己糖的合成㊁积累以及输送和卸载相关通路的关键基因表达量的变化ꎬ最终导致果实内糖分含量的增加ꎬ为番茄果实口感品质的形成奠定了物质基础ꎮ果实内有机酸的种类和含量对番茄果实口感也非常重要ꎬ在果实发育过程中ꎬ有机酸的总含量呈现降低趋势ꎮ抗坏血酸是番茄果实品质中重要的指标ꎮ目前已报道的抗坏血酸生物合成途径有4种:L-半乳糖途径㊁古洛糖途径㊁D-半乳糖醛酸71㊀第2期㊀㊀㊀㊀㊀苏璐璐ꎬ等:基于转录组学和代谢组学解析番茄果实品质形成过程途径以及肌醇途径[14]ꎮ古洛糖途径是在酶的作用下ꎬ将GDP-D-甘露糖经一系列反应催化生成古洛糖酸ꎬ最后生成抗坏血酸ꎻ岳东的研究证明了这条途径的准确性[15]ꎮ本研究中ꎬ作为中间产物的古洛糖酸在整个发育时期含量持续增加ꎬ为番茄果实中抗坏血酸的合成提供了充足的底物ꎻ参与抗坏血酸合成途径的GDP-L-半乳糖磷酸化酶基因(GGP)㊁单脱氢抗坏血酸还原酶基因(MDHAR)也一直呈现上调趋势ꎮ前人研究显示ꎬ番茄果实中抗坏血酸含量在绿熟期至转色期显著增多ꎬ转色期后上升速度逐渐下降ꎻ苹果酸含量在番茄果实的整个发育阶段都呈现逐渐降低的趋势[16]ꎮ本试验结果显示 Micro-Tom 番茄果实成熟过程中苹果酸含量一直呈现下降趋势ꎬ与前人研究结果基本一致ꎮ由上述结果我们推测ꎬ Micro-Tom 番茄果实发育的整个过程中糖类物质含量上升ꎬ酸类物质总量下降ꎬ果实糖酸比值增加ꎬ番茄口感逐渐提升ꎬ是番茄果实品质形成的重要原因ꎮ挥发性芳香物质的组分及含量是番茄果实的重要特征品质指标ꎬ主要由萜烯㊁醛㊁醇㊁酯㊁酮等复杂混合物组成ꎮ根据不同的前体ꎬ挥发性有机物可以分为四大类:脂肪酸挥发物㊁氨基酸衍生的挥发物㊁萜类挥发物以及类胡萝卜素衍生的挥发物[17ꎬ18]ꎮ本试验代谢组学分析结果显示ꎬ番茄果实由转色期到红熟期转变的过程中ꎬ大部分氨基酸的含量呈现先下降后上升的趋势ꎬ氨基酸为芳香化合物合成的主要前体物质ꎬ果实绿熟期到转色期过程中多数氨基酸含量下降ꎬ可能是因为绿熟期积累的氨基酸到了转色期后主要进入下游途径合成芳香化合物ꎮRNA-seq数据显示ꎬ与脂肪酸挥发物生物合成相关的基因LIP8㊁TomLoxC㊁Lecithin:cholesterol在果实成熟过程中表达量呈现上调趋势ꎬ这些基因均与短链脂肪酸衍生物的合成密切相关ꎻ与氨基酸衍生的挥发物生物合成相关的基因FLORAL4㊁AADC1也呈现不同程度的上调ꎮ该结果也进一步证实了 Micro-Tom 番茄果实成熟过程中ꎬ氨基酸㊁脂肪酸的降解与代谢通路中关键基因表达水平的变化有关ꎬ促使果实中的挥发性芳香物质逐渐积累并散发ꎬ最终决定番茄果实成熟后香味品质的形成ꎮ颜色作为番茄果实外观品质的最重要性状之一ꎬ在果实成熟过程中发生着显著变化ꎬ随着叶绿素的降解和类胡萝卜素/类黄酮的生物合成ꎬ最终形成番茄果实独特的颜色[18]ꎮ本研究发现ꎬ Mi ̄cro-Tom 番茄果实成熟过程中胡薄荷酮㊁槲皮素-3-O-葡萄糖苷㊁柚皮素㊁橙皮素等与果实颜色形成相关的代谢产物呈现上调趋势ꎬ参与叶绿素降解的基因SGR1㊁PPH以及参与类胡萝卜素合成的基因PSY1㊁PSY2㊁CRTISO㊁ZDS㊁PDS㊁BCH2㊁ZEP㊁NSY在果实成熟过程中均呈现先上调后下调的趋势ꎬ由此推测 Micro-Tom 番茄果实成熟过程中果实叶绿素的降解和番茄红素的合成主要发生在绿熟期向转色期转变的过程中ꎬ且随着果实的成熟ꎬ叶绿素降解和番茄红素合成的速度逐渐减弱ꎮ综上所述ꎬ通过对不同成熟时期番茄果实的代谢组学及转录组学分析ꎬ发现番茄果实从绿熟期向红熟期转变过程中ꎬ果实内可溶性糖㊁有机酸㊁氨基酸㊁黄酮类化合物㊁醇类㊁酚类等多种化合物含量和种类以及相关通路中关键基因表达水平发生明显变化ꎬ多种因素相互作用ꎬ形成了 Micro-Tom 成熟番茄果实的品质ꎮ本研究为番茄品质调控和优质番茄生产提供了理论依据ꎮ参㊀考㊀文㊀献:[1]㊀李君明ꎬ项朝阳ꎬ王孝宣ꎬ等. 十三五 我国番茄产业现状及展望[J].中国蔬菜ꎬ2021(2):13-20. [2]㊀ZhuFꎬWenWꎬChengYꎬetal.Themetabolicchangesthateffectfruitqualityduringtomatofruitripening[J].MolecularHorticultureꎬ2022ꎬ2:2-19.[3]㊀LuPꎬYuSꎬZhuNꎬetal.Genomeencodeanalysesrevealthebasisofconvergentevolutionoffleshyfruitripening[J].Nat.Plantsꎬ2018ꎬ4(10):784-791.[4]㊀FujisawaMꎬShimaYꎬHiguchiNꎬetal.Directtargetsofthetomato ̄ripeningregulatorRINidentifiedbytranscriptomeandchromatinimmunoprecipitationanalyses[J].Plantaꎬ2012ꎬ235(6):1107-1122.[5]㊀FujisawaMꎬNakanoTꎬShimaYꎬetal.Alarge ̄scaleidentifi ̄cationofdirecttargetsofthetomatoMADSboxtranscription81㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀山东农业科学㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀第55卷㊀factorRIPENINGINHIBITORrevealstheregulationoffruitripening[J].ThePlantCellꎬ2013ꎬ25(2):371-386. [6]㊀IrfanMꎬGhoshSꎬMeliVSꎬetal.Fruitripeningregulationofalpha ̄mannosidaseexpressionbytheMADSboxtranscriptionfactorRIPENINGINHIBITORandethylene[J].Front.PlantSci.ꎬ2016ꎬ7(10):10.[7]㊀黄丽华ꎬ李芸瑛.樱桃番茄果实营养成分分析[J].中国农学通报ꎬ2005ꎬ21(10):91-92.[8]㊀FraserPDꎬPintoMESꎬHollowayDEꎬetal.Applicationofhigh ̄performanceliquidchromatographywithphotodiodearraydetectiontothemetabolicprofilingofplantisoprenaids[J].PlantJ.ꎬ2000ꎬ24(4):551-558.[9]㊀MocoSꎬForshedJꎬVosRꎬetal.Intra ̄andinter ̄metabolitecorrelationspectroscopyoftomatometabolomicsdataobtainedbyliquidchromatography ̄massspectrometryandnuclearmag ̄neticresonance[J].Metabolomicsꎬ2008ꎬ4(3):202-215. [10]TiemanDꎬZhuGTꎬResendeMFRJrꎬetal.Achemicalge ̄neticroadmaptoimprovedtomatoflavor[J].Scienceꎬ2017ꎬ355(6323):391-394.[11]DeVosRCHꎬMocoSꎬLommenAꎬetal.Untargetedlarge ̄scaleplantmetabolomicsusingliquidchromatographycoupledtomassspectrometry[J].NatureProtocolsꎬ2007ꎬ2(4):778-791.[12]SangsterTꎬMajorHꎬPlumbRꎬetal.ApragmaticandreadilyimplementedqualitycontrolstrategyforHPLC ̄MSandGC ̄MS ̄basedmetabonomicanalysis[J].Analystꎬ2006ꎬ131(10):1075-1078.[13]王同林ꎬ叶红霞ꎬ郑积荣ꎬ等.番茄果实中主要风味物质研究进展[J].浙江农业学报ꎬ2020ꎬ32(8):1513-1522. [14]丁剑ꎬ田园ꎬ张喜春.番茄品系不同时期果实糖酸含量的变化[J].北京农学院学报ꎬ2017ꎬ32(2):5.[15]岳冬.番茄果实主要风味特征成分测定及品质形成机理研究[D].南京:南京农业大学ꎬ2015.[16]褚莹倩ꎬ陈溪ꎬ崔妍ꎬ等.色谱质谱分析技术在快速筛查检测领域的研究进展[J].食品安全质量检测学报ꎬ2018ꎬ9(24):19-25.[17]VogelJTꎬTiemanDMꎬSimsCAꎬetal.Carotenoidcontentimpactsflavoracceptabilityintomato(Solanumlycopersicum)[J].J.Sci.FoodAgric.ꎬ2010ꎬ90(13):2233-2240. [18]KleeHJꎬGiovannoniJJ.Geneticsandcontroloftomatofruitripeningandqualityattributes[J].Annu.Rev.Genet.ꎬ2011ꎬ45:41-59.91㊀第2期㊀㊀㊀㊀㊀苏璐璐ꎬ等:基于转录组学和代谢组学解析番茄果实品质形成过程Copyright©博看网. All Rights Reserved.。

番茄种质资源果实外观性状与内在品质性状的通径分析

番茄种质资源果实外观性状与内在品质性状的通径分析
依 照《 茄 种 质 资 源 描 述 规 范 和 数 据 标 准 》 番 [ 的要 3 求, 观测 单 花 序 果 数 、 果 重 、 梗 洼 大 小 、 实 硬 度 、 单 果 果 果
通 讯作 者 : 梁燕( 9 3) 女 , 1 6一 , 陕西 渭 南人 , 士 , 博 教授 , 士 生 导师 , 博
收 稿 日期 :OO O 一O 21— 3 9
以 3次重复 的平均值作为统计分析指标进行通径分析 。


试验研 究 ・
北 方 园 艺 2o1 : 2 o ( )~1 l 19
番茄品种时应 以上 述性状 为首选 目标 性状 。番茄红 素
14 数据处理 . 数据 处 理 和 分 析 应 用 D S数 据 处 理 分 析 软 件 P ( 70 版) E cl 03 软件进行分析_ 。 V .5 和 xe( 0) 2 4 ]
Orgn No. ii Org n No ii . Or i i. g No . Odgn No i . odg n i
物含量与番茄 红素含 量等 内在 品质性状 进行 了较 为全
面 的研 究 。在 相 关 性 分 析 的 基 础 上 , 影 响 番 茄 果 实 外 对
2 7日开始分苗 , 4月 2 9日定植于大 田, 肥施腐熟鸡 粪 底 120k / 6 , 酸 二 铵 1 g 67 ; 区 面 积 为 0 g 6 7 磷 5 k/ 6m2 小 13mX5 . m=65m2每小 区定植 2 , . , 0株 株行距 3 mX 5c
6 T 0C I 1。采用随机区组设计 , 次重复 。 3 13 试验指标 .
现 主 要 从 事 番 茄 新 品 种 选 育 与 蔬 菜种 质 资 源创 新 研 究 工 作 。

不同番茄品种果实品质比较分析

不同番茄品种果实品质比较分析

不同番茄品种果实品质比较分析陈嘉旭;郭蕴璋;吴楚丽;陈泽炬;连丽强;李常保;杨瑞;孙路路【期刊名称】《北京农学院学报》【年(卷),期】2022(37)3【摘要】【目的】为筛选适合北京地区推广的高品质水果番茄品种和菜用番茄品种。

【方法】对5个水果番茄品种和6个菜用番茄品种的果形指数、硬度、裂果率、单果质量、可溶性固形物、可溶性糖、可滴定酸、糖酸比、维生素C含量等外观、风味和营养品质指标分别进行单项评价和综合分析。

【结果】所有番茄品种中,除P05、P61和P28外,绝大部分的品种果形指数在0.8~0.9之间,为近圆形,属于较优果形。

水果番茄中P01硬度最低,P09裂果率最低,P04、P07和P09的单果质量符合市场偏好,P09和P05可溶性固形物含量较高,P01的可溶性糖含量最高、可滴定酸含量最低、糖酸比最高,P07维生素C含量最高;菜用番茄中各品种硬度均大于水果番茄且不裂果,其中P28硬度最低,除P59外其余品种的单果质量都符合市场偏好,P22和P44可溶性固形物含量较高,P44的可溶性糖含量最高、可滴定酸含量最低、糖酸比最高、维生素C含量最高。

对番茄果实品质进行综合评价,水果番茄中排名最靠前的为P01,该品种果实大小适中,硬度低,裂果率低,商品性好;可溶性固形物、可溶性糖等风味物质含量高,可滴定酸含量低,鲜食口感佳。

菜用番茄中P44果实为大果,外形美观,硬度适中,适宜储运和销售;可溶性固形物、可溶性糖和维生素C含量高,酸甜适度,营养丰富。

【结论】筛选出P01和P44分别为最佳水果番茄品种和最佳菜用番茄品种。

【总页数】6页(P43-48)【作者】陈嘉旭;郭蕴璋;吴楚丽;陈泽炬;连丽强;李常保;杨瑞;孙路路【作者单位】北京农学院植物科学技术学院/农业应用新技术北京市重点实验室;北京市农林科学院蔬菜研究所【正文语种】中文【中图分类】S641.2【相关文献】1.5种不同果色樱桃番茄品种果实挥发性物质及品质特性分析2.十六个樱桃番茄品种果实风味品质相关指标比较分析3.不同品种砧木抗病性鉴定及嫁接对番茄植株生长和果实品质的影响4.不同种源树番茄果实品质比较及综合分析5.不同品种番茄的果实品质及感官评价因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

用色差仪法定量分析番茄果实番茄红素的含量

用色差仪法定量分析番茄果实番茄红素的含量

cnetnrda do g u s a ote vn t t a e o a bad(/ ) rsete . ee r, h ges neu tn otn i e n r ef i s m s rl ato h v us f / n a b , epcvl T rf e ter rs o q ao s n a rtW e e l i yh o e i i
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
果实番茄红素含量间的相关性。结果表 明, 色果 实的番茄红素含 量与 a b间的相 关性 最大 , 色果 实的番茄红 素含量与 红 / 橙
(/ ) a b 间的相关性最大。据此分别建立了红 色和橙 色果 实番茄 红素含量 与最佳颜 色系数 间的回归方程。经过验证 , 所建立
的 回 归方 程 对番 茄 红 素含 量 的估 测值 与 实 际测 定傲 间差 异 不显 著 。
t n ewe n t e lc p n o tn n tmao f i a d t e a o e f ec lrfco sw r n y e .T e rs l h w d t a e lc p n i s b t e h y o e e c ne ti o t u t o r h v v oo tr e e a a zd h e u t s o e h tt y o e e n b i a l s h
we ee t l h d t s s h c p n o t n n r d a d o a g o t r i c od n h e t oo co s h r u h v l ain, r sa i e o a e s te l o e e c n e ti e n r n et mao f t a c r ig t t e b s c lrf tr .T o g ai t b s s y us o a d o te ewa osg i c n i ee c ew e e a t a au f y o e e c ne t n t e t t n v u a e n te e t l h d r g e — h r sn in f a t f r n eb t e n t cu v e o c p n o tn d i si i a eb s d o s i e rs i d h l l l a s ma o l h b a s e

番茄的国家标准

番茄的国家标准
1.2.11成熟度适宜:指果实发育到适合不同需要的成熟度。如当日上市鲜销的果实,成熟度应在红熟后期,一等品应无绿肩;隔1日上市鲜销的,收购时应在红熟中期;隔2日上市鲜销的,收购时应在红熟前期;超过2日的,应根据贮运时间和条件,参照第3章贮藏条件和第4章运输条件,选择合适的成熟度。
1.2.12整齐度较高:指同批商品中,果实的形状、大小、色泽较一致。
(3)特小果:单果重<50g
1、2两项不合
格个数之和不得
超过10%,其中
软果和烂果之和
不得超过1%;
第3项不合格个
数不得超过10%
1.2用语解释
1.2.1品种特征:主要指该品种应有的典型性状,如果形、色泽等。
1.2.2相似的品种特征:指具有相似果形、色泽的品种可以相混,但扁圆形品种不得与长圆形品种相混,红色、粉红色及黄色品种不得相混。
d.果脐过大,大果果脐直径>1.0cm,中果果脐直径>0.5cm,小果果脐直径>0.3cm,凡占有上述一条者为畸形果。
1.2.16空腔:指植株营养不良,引起果实发育不充分,心室空隙大,果面出现棱角现象。
1.2.17裂果:指梗洼及其周围出现的纵裂和环裂,裂口总长度大于果实横径一半的果实。
1.2.18疤痕:指果面的疤痕直径为0.5~1.0cm,大于1.0cm为大疤痕。
2包装及标志
盛装番茄的容器(箱、筐等)必须大小一致,整洁、干燥、牢固、透气、美观,无污染,无异味,内部无尖凸物,外部无钉及尖刺,无虫蛀、腐朽、霉变现象,纸箱无受潮、离层现象。塑料箱参见中华人民共和国国家标准GB 8868─88《蔬菜塑料周转箱》。
2.1应按等级分别包装。
2.2每批报验的番茄,其包装规格、单位重量须一致。
1.2.6果面清洁:指果实表面不附有泥土、脏斑、虫斑、药迹等外来物。

河西荒漠绿洲区加工番茄果实品质综合评价

河西荒漠绿洲区加工番茄果实品质综合评价

河西荒漠绿洲区加工番茄果实品质综合评价李有福;张欢欢;段惠敏;万麻才郞;马向科;王玉萍【期刊名称】《西北农林科技大学学报:自然科学版》【年(卷),期】2022(50)10【摘要】【目的】对选育的14份番茄品系果实品质进行多元分析及综合评价,为适宜河西荒漠地区栽培的加工番茄新品种选育和杂交亲本选配提供理论依据。

【方法】以河西荒漠绿洲区的215,511,512,513,515,516,517和L8,L9,L10,L11,L12,L13、L14共14份番茄品系的成熟果实为材料,测定其单果质量、果实硬度、果实横径、果实纵径和可溶性蛋白、可溶性糖、番茄红素、V_(C)、可滴定酸、总酚、类黄酮含量等11项指标,用相关性分析、主成分分析和聚类分析方法,综合评价番茄果实品质。

【结果】(1)不同番茄品系间果实品质性状差异较大,变异系数为15.45%~41.99%,其中单果质量变异系数最大。

相关性分析表明,可溶性糖与番茄红素含量、果实硬度和类黄酮含量均呈显著正相关(P<0.05),果实纵径与横径和单果质量呈极显著正相关(P<0.01),可溶性蛋白与总酚含量呈显著正相关(P<0.05)。

(2)主成分分析显示,提取的5个主成分为果实纵径和可溶性糖、总酚、V_(C)、番茄红素含量等品质因子,其累积贡献率为88.542%,包含了全部指标的大部分信息。

(3)聚类分析结果显示,在欧氏距离为7.5时,14个番茄品系可分为3类,各类群间果实品质差异较大,聚类结果与主成分分析结果基本一致。

(4)215果实品质综合评价得分最高,其次为516和L8,三者适宜作为加工型番茄品种选育、遗传改良和加工的材料。

【结论】14份番茄品系果实品质表现出丰富的遗传多样性,具备筛选优良加工型种质的可能。

【总页数】10页(P125-134)【作者】李有福;张欢欢;段惠敏;万麻才郞;马向科;王玉萍【作者单位】甘肃省天祝县种业中心;南京农业大学园艺学院;甘肃农业大学园艺学院;青海省海西州都兰县宗加镇林业站【正文语种】中文【中图分类】S641.2【相关文献】1.模糊数学和CI_GSMCM在加工番茄品质综合评价中的应用2.河西荒漠区加工型番茄品种比较试验3.灰色关联分析法综合评价不同品种加工番茄的品质4.河西绿洲区加工型胡萝卜不同密度对产量及加工品质的影响5.基于温室番茄产量和果实品质对加气灌溉处理的综合评价因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

番茄果品测定方法

番茄果品测定方法
称取 1.0 g 酚酞,加入到 100 mL 50%的乙醇溶液中溶解。 二、实验步骤 (一)提取
称取混合均匀的果蔬样品 10.0 g(或吸取 10.0 mL 汁液),置于研钵中磨碎,转移到 100 mL 容量瓶中,再 min 后过滤。 (二)测定
T-AsA含量测定反应体系:0.8ml 0.2mol/L磷酸钾缓冲液(pH 7.4),加入0.2ml 待测样
品 上 清 液 , 再 加 入 0.2ml 6mM/L DTT 并 且 42℃ 水 浴 15min , 取 出 后 加 入 0.1ml 0.5% N-ethylmaeimide(NEM) 室温静置2min,依次分别加入1ml 10%的TCA,0.8ml 42%的磷酸, 0.8ml 2%的2,2’-双吡啶,0.4ml 3% FeCl3溶液,充分混匀42℃水浴60min,取上清液在525nm 处测定其吸光值,其中以0.2ml磷酸缓冲液代替样品提取液作为空白对照。根据T-AsA的标 准曲线计算待测样品中的T-AsA含量。
这个算出来是浓度,再根据样品的鲜重算含量
I.2,6-二氯酚靛酚滴定法 一、试剂 1.2%草酸溶液
称取 20.0 g 草酸,用蒸馏水溶解,并稀释至 1 000 mL。 2.0.1 mg/mL 标准抗坏血酸溶液
称取 50.0 mg 抗坏血酸(应为洁白色,如变为黄色则不能用),用 2%草酸溶液溶解,定 容至 500 mL,即 1 mL 溶液含 0.1 mg 抗坏血酸,现用现配,贮于棕色瓶中,低温保存。 3.2,6-二氯酚靛酚溶液
可滴定酸含量的测定
一、试剂 1.0.1 mol/L 氢氧化钠溶液
称取 4.0 g 分析纯氢氧化钠,加新煮沸过的蒸馏水溶解,待冷却后,再用新煮沸过的蒸 馏水定容至 1 000 mL,保存到带塑料盖的玻璃瓶中。

GLKs转录因子调控番茄果实品质的研究

GLKs转录因子调控番茄果实品质的研究

西北植物学报,2019,39(2):0234-0239Acta Bot.Boreal.-Occident.Sin. doi:10.7606/j.issn.1000-4025.2019.02.0234 http://xbzwxb.alljournal.net收稿日期:2018-09-15;修改稿收到日期:2019-02-14基金项目:国家自然科学基金(No.31760581);国家现代农业产业技术体系建设专项资金项目(No.CARS-23-G-25);国家重点研发专项(No.2017YFD0101906);新疆自治区科技重大专项(No.2016A01001-2);新疆自治区“天山创新团队”项目(No.2018D14005)作者简介:唐亚萍(1986-),女,助理研究员,主要从事加工番茄遗传育种研究工作。

E-mail:tangyaping624@sina.com*通信作者:余庆辉,研究员,博士生导师,主要从事加工蔬菜遗传育种工作。

E-mail:yuqinghui98@sina.comGLKs转录因子调控番茄果实品质的研究唐亚萍,杨生保,杨 涛,王柏柯,帕提古丽,余庆辉*(新疆农业科学院园艺作物研究所,乌鲁木齐830091)摘 要:以AC番茄及转化GLKs(Golden-Like)转录因子的AC转基因后代(过表达SlGLK2植株,共抑制SlGLK1植株和共抑制SlGLK2植株)为研究材料,通过对各番茄材料的表型观察、未成熟果实外表皮叶绿素的检测和果实叶绿体发育相关基因SlGLK1、SlGLK2、TKN2(Transcription Factor of Knotted Like Gene)、TKN4和APRR2(Arabidopsis Pseudo Response Regulator 2-Like)的表达分析,以及对成熟果实可溶性固形物、总糖含量进行检测,分析GLKs转录因子对番茄果实品质的影响。

结果显示:(1)在表型方面,共抑制SlGLK1基因植株的叶片颜色明显变浅,过表达SlGLK2果实的颜色明显变为深绿色,与之相对应,共抑制SlGLK1基因植株果实顶部叶绿素的含量最低,过表达SlGLK2的果实底部叶绿素含量是AC的5~6倍。

果实品质测定实验报告(3篇)

果实品质测定实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的本实验旨在通过测定果实的各项品质指标,了解不同品种果实的品质特点,为果品选育、种植和销售提供科学依据。

二、实验材料1. 果实样品:选取不同品种的苹果、梨、桃等水果作为实验材料。

2. 仪器设备:电子天平、果实硬度计、色差仪、折光仪、PH计等。

3. 试剂:标准溶液、缓冲液、显色剂等。

三、实验方法1. 外观品质测定(1)色泽:采用色差仪测定果实表面的L(亮度)、a(红绿度)、b(黄蓝度)值,评价果实的色泽。

(2)形状:观察果实形状,记录形状描述。

(3)大小:用电子天平称量果实重量,计算果实直径或半径。

2. 质地品质测定(1)硬度:采用果实硬度计测定果实的硬度。

(2)脆度:将果实切成小块,观察果肉是否容易破碎。

(3)多汁度:观察果肉汁液多少。

3. 风味品质测定(1)糖度:采用折光仪测定果实的糖度。

(2)酸度:采用PH计测定果实的酸度。

(3)口感:邀请品尝小组品尝果实,评价果实的口感。

4. 营养品质测定(1)维生素C:采用高效液相色谱法测定果实中的维生素C含量。

(2)矿物质:采用原子吸收光谱法测定果实中的钙、镁、钾等矿物质含量。

四、实验结果与分析1. 外观品质通过色差仪测定,不同品种果实的L、a、b值存在差异,表明果实色泽存在差异。

观察果实形状,发现不同品种果实的形状也存在差异。

通过电子天平称量果实重量,计算果实直径或半径,发现不同品种果实的体积存在差异。

2. 质地品质通过果实硬度计测定,不同品种果实的硬度存在差异。

观察果肉是否容易破碎,发现不同品种果实的脆度存在差异。

观察果肉汁液多少,发现不同品种果实的多汁度存在差异。

3. 风味品质通过折光仪测定,不同品种果实的糖度存在差异。

通过PH计测定,不同品种果实的酸度存在差异。

邀请品尝小组品尝果实,评价果实的口感,发现不同品种果实的口感存在差异。

4. 营养品质通过高效液相色谱法测定,不同品种果实的维生素C含量存在差异。

通过原子吸收光谱法测定,不同品种果实的钙、镁、钾等矿物质含量存在差异。

番茄果实风味品质研究报告

番茄果实风味品质研究报告

番茄果实风味品质研究报告番茄果实风味品质研究报告概述:番茄是一种常见的蔬菜水果,被广泛应用于日常饮食中。

为研究番茄果实的风味品质,本次实验通过对不同品种番茄的品尝和调查问卷调查的方式,对番茄的风味品质进行研究。

实验方法:1. 实验材料:本次实验选取了6种常见的番茄品种,包括普通番茄、樱桃番茄、葡萄番茄、牛脖子番茄、金爵番茄和黑美人番茄。

2. 实验步骤:a. 将每种番茄品种样本随机编号,并进行记录。

b. 将每个品种的番茄样本切成均匀的小块,并放置在不同的盘子中,以确保每个品种的样本不会混淆。

c. 邀请一组志愿者进行品尝。

志愿者们将根据自己的口感品尝每个品种的番茄,并根据自己的感觉对其风味进行评价。

d. 为了更好地了解志愿者对番茄风味的态度和偏好,我们还设计了一份调查问卷。

志愿者需要根据自己的真实感受回答问题。

实验结果:1. 口感评价:a. 志愿者们普遍认为普通番茄和樱桃番茄的风味较为平淡,没有特别鲜明的味道。

b. 葡萄番茄被大部分志愿者称赞为清甜可口,口感象吃葡萄一样。

c. 牛脖子番茄的风味较为浓郁,有些志愿者认为其具有一定的酸味。

d. 金爵番茄和黑美人番茄被认为具有丰富的口感,口味浓烈,略带甜味。

2. 问卷调查:a. 通过问卷调查,我们了解到大部分志愿者认为番茄是他们饮食中必不可少的一部分。

b. 志愿者们普遍喜欢葡萄番茄的清甜味道,认为它们适合直接食用和制作沙拉。

c. 志愿者们对黑美人番茄和金爵番茄的浓烈口感有较高的接受度,认为它们适合用于煮汤和炖菜等烹饪方法。

d. 一部分志愿者表示对于牛脖子番茄的酸味有些接受困难,但也有些志愿者喜欢它的独特口感。

结论:通过本次实验,我们对番茄的风味品质进行了初步研究。

不同品种的番茄果实具有明显的风味差异,口感评价和问卷调查结果显示,葡萄番茄具有清甜可口的口感,适合作为生食或沙拉的原料;牛脖子番茄具有较强的酸味,适合用于制作酱料或炖菜;金爵番茄和黑美人番茄具有浓烈口感,适合用于烹饪。

番茄性状调查的时期和方法

番茄性状调查的时期和方法

串番茄性状调查的时期和标准1产量相关性状的调查(Yield characters)1.单果重:(Fruit weight)随机取30个有代表性的果实称重,取平均值(g)2.单株花数:(Flower number per plant)全生育期单株开花数.每个小区采用间隔取样调查10株。

取平均值.3.单株结果数:(Fruit number per plant)全生育期单株座果数. 每个小区采用间隔取样调查10株。

取平均值4.座果率:(Percentage of fruit setting)单株结果数与单株花数的比值(%).每个小区采用间隔取样调查10株取平均值.5.单株产量:(Yield per plant)全生育期单株采收商品果总重量(g). 每个重复采用间隔取样调查10株。

取平均值.6.小区总产量:(pot yield),测定整个生育期整个小区的总产量(kg)7.折算产量:(discount yield).用相应的小区产量来折算的亩产(kg).2. 品质性状的调查标准(Quality characters)1. 可溶性固形物:(Total soluble solids)用手持测糖仪于盛果期测定.每小区取四个果,混合取样测定。

重复三次2. 可滴定酸:(Titrable acid)取样同上,用NaOH 滴定法测定(μmol/g). 重复三次.3. Vc(Vitamin C):取样同上,2.6-二氯酚靛酚滴定法(mg/100g). 重复三次.4.还原糖的测定:取样同上。

蒽酮比色法。

重复三次.3. 早熟性状的调查(Early maturity characters)1. 始花期(Period from transplanting to first flowering)从定植到第一花开放所需要的天数(d),有一半的植株第一花开放2. 座果期(Period from transplanting to first fruit setting)从定植到第一果座住所需要的天数(d),有一半的植株第一果坐住3. 成熟期(ripe period)从定植到第一果座住所需要的天数(d),有一半的植株第一果转红4. 第一花序节位(Node of first anthotaxy)从第一片真叶到第一花序所在节位的节数(不包括子叶节位)。

番茄果实品质测定

番茄果实品质测定

可溶性糖含量测定(蒽酮法)材料仪器:分光光度计、天平、水浴锅、大试管、三角瓶、容量瓶100ml、量筒25ml、移液管5ml一支、1ml一支、小漏斗药品:标准葡萄糖溶液、准确城区无水葡萄糖200mg,放入200ml容量瓶中,加入蒸馏水定容,使用时稀释10倍(100ug/ml)蒽酮试剂:称取0.1g蒽酮溶于100ml稀硫酸中(76ml浓硫酸稀释成100ml),贮于棕色瓶内,冰箱保存,可用数日。

方法记录光密度值,绘制标准曲线。

2、样品中可溶性糖的提取称取减碎新鲜样品0.5~1g,放入三角瓶50ml中,再加入25ml 蒸馏水,放入沸水浴中煮沸20min,取出冷却,过滤入100ml容量瓶中,用热水冲洗残渣数次,定容至刻度。

在分光光度计上比色,测出光密度值,在标曲上查出相应含糖量(ug)4、结果计算可溶性糖含量%=【(糖含量(ug)×稀释倍数)/(样品质量×106)】×100有机酸测定仪器:天平、刀、研钵、漏斗、玻璃棒、水浴锅、滴定管、滤纸、移液管10ml一支,容量瓶50ml、三角瓶50ml,量筒25ml1个药品:0.1mol/L氢氧化钠,1%酚酞,石英砂步骤1、城区5g番茄果肉,放入研钵中,加少许石英砂研磨成匀浆,用蒸馏水洗入50ml三角瓶中,加水约30ml,放在80°水浴锅中浸提30分钟,每隔5分钟搅拌一次。

取出冷却,过滤入50ml容量瓶中,并用蒸馏水洗残渣数次,定容至刻度,充分摇匀作测定用。

2、两区10ml样液放入50ml三角瓶中,加三滴酚酞指示剂,用0.1mol/L 氢氧化钠滴定至微红色,摇1min不褪色为终点,取3次平均值计算结果有机酸含量=(A×0.1×K×C)÷(W×D)×100A滴定时消耗的氢氧化钠量,0.1=4×10-3 g/mlK=0.67C稀释总量W样品质量D测定时所取样液量ml抗坏血酸测定(2,6-二氯酚靛酚法)仪器 研钵、漏斗、玻璃棒、定量滤纸、滴定管、移液管、容量瓶、三角瓶 药品 2%草酸溶液:溶解20g 草酸结晶与200ml 水中,然后稀释至1000ml 。

萼片促进番茄果实的发育成熟及品质

萼片促进番茄果实的发育成熟及品质

快 / 3 0 、 3 5 和4 0 天去除萼片,以不去- g片的果实为对照, 在果实转色 6天后采

萼片的正 常果 实为对照 采后放置 2 5 q C 贮藏 室 内观 察测定 结果表 明. 在花 后 3 0 天之前. 去除 萼片处理 果实 的乙烯产量 与对 照相 比减少 了一半 而在 花后 3 5天 以后, 处 理与对 照 间的 乙烯产 量无显著 差异 综上所述 萼 片对番茄 果买 的发 育 、
萼片促进番茄果实的发育成熟及品质为了解萼片对番茄果实发育及品质形成的影响分别在初花后101520253035和40天去除萼片以不去萼片的果实为对照在果实转色6天后采摘进行分析测定


长期 贮 藏不 利 于 高 良姜 种 子 萌发
mI 【 定不同贮藏时间的种子发芽率和幼苗整齐度 , 研究不 同贮藏时间对高 良
成熟及 品质形成起 着促进 作用。囵( 中国农 业 大 学 农 学 与生 物 技术 学 院 , 北 京
1 0 0 1 9 3 赵 博等 发表 于 《 中 国农 业 大 学学 报 } 2 0 1 5年第 2期 )
土壤施硒有利于花生生长发育
、 过 盆栽 试 验, 研 究 施硒 对 花育 2 5 、 山花 7号和 山花 8号 3个 花 生 品种 营
1 - J姜种 子发 芽 的影响 结果 表 明 . 高 良姜种 子 活性对 含水 量较 为敏 感 , 应属 于顽拗 型种 子 ; 随着贮 藏 时 间越 长 , 种子含 水 量越少 , 种 子 活力越 弱 , 种 子 发芽 率越低 : 在 室 内正常贮 藏条 件 下 , 种 子 贮藏 1 1天 发 芽率 9 0 %, 贮藏 3 0天 发芽 率8 0 %. 贮藏 5 1天发 芽 率 7 3 %. 贮藏 7 3 天发 芽 率 仅 6 5 %, 贮 藏在 l 1 1天 以 上, 种 子丧 失生 活力 。种 子育 苗应 随采 收随播 种 , 提高 发芽 率。囵 f 中 国医学 科 学 院药用 植 物 研究 所 海 南 分所

番茄果实多酚类物质检测方法的优化与品质综合评价

番茄果实多酚类物质检测方法的优化与品质综合评价

番茄果实多酚类物质检测方法的优化与品质综合评价番茄果实多酚类物质检测方法的优化与品质综合评价摘要:番茄富含多酚类物质,这些物质对人体健康具有重要意义。

因此,开发出高效准确的番茄果实多酚类物质检测方法,并对其品质进行全面评价具有重要的研究价值。

本文针对目前常用的番茄果实多酚类物质检测方法进行了优化,并通过综合评价方法对其品质进行了全面评估。

结果表明,通过优化后的检测方法及综合评价可以高效准确地测定番茄果实多酚类物质的含量,为其品质评估提供了重要参考。

1.引言番茄(Lycopersicon esculentum Mill.)是一种重要的蔬菜作物,具有丰富的多酚类物质,如番茄红素、类黄酮和维生素C等。

这些物质在保护心血管、抗氧化、减少慢性炎症等方面具有重要的作用,对人体健康具有积极意义。

因此,开发出高效准确的番茄果实多酚类物质检测方法,并对其品质进行全面评价,对于番茄果实的质量控制和市场竞争具有重要意义。

2.材料与方法2.1 材料本研究收集了市场上的新鲜番茄果实样品,共计50个样品,保持完整、无损和新鲜状态。

同时,还准备了同样品种、生长环境相同的番茄果实作为对照组,以确保检测结果的准确性。

2.2 方法首先,选取番茄果实样品的前期处理方法,包括去除果皮、去除果肉中的种子等步骤。

然后,选取合适的提取方法,如超声波提取、液液萃取等,以获得番茄果实中的多酚类物质。

接下来,选取适宜的检测方法,如高效液相色谱法(HPLC)或紫外分光光度法(UV-vis)等,对多酚类物质进行定量检测。

最后,通过统计学方法对检测结果进行分析,计算得出各样品中多酚类物质的含量。

3.结果与讨论经过前期处理、提取和检测,我们成功地获得了番茄果实中多酚类物质的含量。

通过对50个样品进行检测和分析,我们发现番茄果实中多酚类物质的含量存在较大差异。

这表明番茄果实的品质受到多种因素的影响,如品种、生长环境、采摘时间等。

因此,对于番茄果实多酚类物质的检测和品质评价,需要关注这些因素的影响,并进行相应的控制。

加工番茄品质性状的鉴定指标和筛选方法

加工番茄品质性状的鉴定指标和筛选方法

加工番茄品质性状的鉴定指标和筛选方法韩泽群;姜波【摘要】确定加工番茄(Lycopersicon esculentum Mill)果实特殊性状的鉴定指标,为筛选具有较好特殊性状番茄品种的亲本种质资源提供决策支持.通过2012年新疆吉木萨尔县庆阳湖乡试验田的22种(系)加工番茄的品比试验,分析、测定了17项农艺性状,依据灰色育种理论,采用目标性状灰色关联分析法对加工番茄的产量性状、营养性状、风味品质、加工贮运品质这4个特殊目标性状进行分析.结果表明,可溶性固形物含量与其他农艺性状的关联序为平均分枝数>横径>平均产量>纵径>果形指数=生育期>总酸含量>色差>平均幅宽>单果重>糖酸比>平均株高>总糖含量>番茄红素含量>病毒病抗性>单果耐压力;番茄红素含量与其他农艺性状的关联序为平均株高>总糖含量>平均幅宽>总酸含量>色差>生育期>糖酸比>单果重>平均产量>平均分枝数>果形指数>横径>纵径>病毒病抗性>可溶性固形物含量>单果耐压力;糖酸比与其他农艺性状的关联序为总糖含量>平均幅宽>单果重>色差>生育期>平均株高>果形指数>纵径>平均产量>横径>总酸含量>番茄红素含量>平均分枝数>可溶性固形物含量>病毒病抗性>单果耐压力;单果耐压力与其他农艺性状的关联序为番茄红素含量>平均株高>病毒病抗性>总糖含量>糖酸比>平均幅宽>色差>生育期>总酸含量>单果重>平均产量>果形指数>纵径>平均分枝数>横径>可溶性固形物含量.在选育特殊性状(高产、营养佳、良好风味、耐贮运)的加工番茄品种时,应高度关注与这些特殊性状(可溶性固形物含量、番茄红素含量、糖酸比、单果耐压力)关联度大的农艺性状,并兼顾关联度低的其他农艺性状是否满足选种要求.【期刊名称】《湖北农业科学》【年(卷),期】2014(053)016【总页数】5页(P3812-3816)【关键词】加工番茄(Lycopersicon esculentum Mill);特殊性状;目标性状灰色关联分析法;选种;育种【作者】韩泽群;姜波【作者单位】新疆大学电气工程学院,乌鲁木齐830047;新疆大学电气工程学院,乌鲁木齐830047【正文语种】中文【中图分类】S641.2加工番茄(Lycopersicon esculentum Mill)原产自南美洲西部太平洋沿岸,兼具蔬菜和水果双重身份,其果实及加工制品颇受人们的青睐[1]。

番茄非接触式单果质量估测方法

番茄非接触式单果质量估测方法

@!A fs3±õÌá°±ëµõ55$ ëÔÕôñ¿ä.úq {|]©³2ès6*l"!ð °± ëÔÕ¿ä>g ô * zY ; " 9YY @6*à2j{T B F x ä © 6 * Ó > g ú ò í » ÷ º 4 ] " ! ð à 2 ° ± ë Ó 2ÓI{T{»6*O U++?)* ,U O .++?)* ,. O 7++?)* ,7lO 7+imÏ­¯5t Þ , Ì Y G´ZÜÝGñ zÈêÀ 9 F8uðP à2[î 2KSblT¡ÁûÀÏuX¸ ëÔ Õ¿äòþ ÏI í» #E: @Y 6*sj{Tòþvwä zvwòþÎ2hlKhï¿y iëO k Æ°± 뵪ÔÕú ¼¢ì 9A8 ^YA: + ¼sì 9A)YZ 2gh/ïÑy>g L<= L È]$:·õ55$ ëÔÕ¿ä{.º BCD °± ès6* Æ£T¡ õ55 ÔÕ¿ä EFGHI FEY"A#!!JKLMN *!!JOPI #)BG7"8BG#)#")#7))#E7):
67#2%$&2 *-=-3+10./,,430R-UU-./&0-4>-3 3%37.%301.0U1>04>0-=10-%3 %U0K4D4-+K0%U3%37R401.K4R 0%=10%U,/-0> 1=40K%R U%, 4>0-=10-%3 %U0%=10%U,/-0D4-+K061>4R %3 &%.1&T%-30.&%/R 13R .%3S%&/0-%31&34/,1&340D%,f D1>T,%T%>4R' b1f-3+;K4543 8)# 0%=10%1>4WT4,-=4301&%6C4.0 U-,>0&[ 99E %,-+-31&T%-30.&%/R>%UG) >-3+&40%=10%U,/-0>D4,4.%&&4.04R 6[1R4T0K .1=4,1 13R 0K43 43K13.4R 0%" 9YY T%-30.&%/R>U%,.%3>0,/.0-3+1R101>40' * S1,-40[%UT%-30.&%/R >4+=43010-%3 =40K%R>D4,4.%=T1,4R 13R >4&4.04R 0K,447R-=43>-%31&.%30-3/%/>.%3S%&/0-%31&34/,1&340D%,f D1>/>4R U%,0%=10%>-3+&4U,/-0>4+=43010-%3'c1>4R %3 >4+=4304R R101 10%01&%UY >T10-1&U410/,4-3U%,=10-%3 T%-30.&%/R D4,44W0,1.04R DK-.K D4,41W-1&>-d4,U 1&%3+U1W-> 1W-1& >-d4,.1&%3+.1W-> 11W-1&>-d4,71&%3+71W->13R =-3-=/=.-,./=>.,-64R .-,.&4R-1=404,, 1&%3+71W->T,%C4.0-%3'bK4[D4,4U4R 0%0K,447&1[4,,4+,4>>-%3 340D%,f U%,0,1-3-3+ R404,=-3-3+%T0-=-d4,13R D4-+K04>0-=10-%3 =%R4&DK43 &41,3-3+,104,41.K4R %T0-7 =1&.%3R-0-%3'5-31&&[ #E: 43K13.4=430>T%-30.&%/R D4,4>4&4.04R 0%04>0.%3>0,/.04R =10K4=10-.1&=%R4& 4S1&/10413R 1317 &[d41../,1.[13R >016-&-0[%U0K4=%R4&'V4>/&0>>K%D4R 0K10.%=T1,4R D-0K 1.0/1&D4-+K0%U1>-3+&40%=10% 1S4,1+4R4S-10-%3 D1>9A8 ^YA: + 13R 1S4,1+4,4&10-S44,,%,D1>16%/09A)YZ DK-.K D1>64004,0K13 0,1R-0-%31&-=1+4T,%.4>>-3+=40K%R>' bK->,4>41,.K .%/&R T,%S-R404.K3-.1&,4U4,43.4U%,3%37.%301.0D4-+K04>0-=10-%3 %U%0K4,1+,-./&0/,1&13R &-S4>0%.f T,%R/.0>' 8"9:)%;# 0%=10% T1,0-1&T%-30.&%/R R44T &41,3-3+ 3%37.%301.0 D4-+K04>0-=10-%3
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

可溶性糖含量测定(蒽酮法)
材料
仪器:分光光度计、天平、水浴锅、
大试管、三角瓶、容量瓶100ml、量筒25ml、移液管5ml一支、1ml一支、小漏斗
药品:标准葡萄糖溶液、准确城区无水葡萄糖200mg,放入200ml容量瓶中,加入蒸馏水定容,使用时稀释10倍(100ug/ml)
蒽酮试剂:称取0.1g蒽酮溶于100ml稀硫酸中(76ml浓硫酸稀释成100ml),贮于棕色瓶内,冰箱保存,可用数日。

方法
记录光密度值,绘制标准曲线。

2、样品中可溶性糖的提取称取减碎新鲜样品0.5~1g,放入三角瓶50ml中,再加入25ml 蒸馏水,放入沸水浴中煮沸20min,取出冷却,过滤入100ml容量瓶中,用热水冲洗残渣数次,定容至刻度。

在分光光度计上比色,测出光密度值,在标曲上查出相应含糖量(ug)
4、结果计算
可溶性糖含量%=【(糖含量(ug)×稀释倍数)/(样品质量×106)】×100
有机酸测定
仪器:天平、刀、研钵、漏斗、玻璃棒、水浴锅、滴定管、滤纸、移液管10ml一支,容量瓶50ml、三角瓶50ml,量筒25ml1个
药品:0.1mol/L氢氧化钠,1%酚酞,石英砂
步骤
1、城区5g番茄果肉,放入研钵中,加少许石英砂研磨成匀浆,用蒸馏水洗入50ml三角瓶中,加水约30ml,放在80°水浴锅中浸提30分钟,每隔5分钟搅拌一次。

取出冷却,过滤入50ml容量瓶中,并用蒸馏水洗残渣数次,定容至刻度,充分摇匀作测定用。

2、两区10ml样液放入50ml三角瓶中,加三滴酚酞指示剂,用0.1mol/L 氢氧化钠滴定至微红色,摇1min不褪色为终点,取3次平均值
计算结果
有机酸含量=(A×0.1×K×C)÷(W×D)×100
A滴定时消耗的氢氧化钠量,0.1=4×10-3 g/ml
K=0.67
C稀释总量
W样品质量
D测定时所取样液量ml
抗坏血酸测定(2,6-二氯酚靛酚法)
仪器 研钵、漏斗、玻璃棒、定量滤纸、滴定管、移液管、容量瓶、三角瓶 药品 2%草酸溶液:溶解20g 草酸结晶与200ml 水中,然后稀释至1000ml 。

200ml0.01% 2,6-二氯靛酚钠溶液:称区2,6-二氯靛酚钠60mg ,放入容量瓶中,加热的蒸馏水100-150ml ,滴加0.01mol/L 的氢氧化钠4-5滴,强烈震动10分钟,冷却后加水至刻度,摇匀后用精密滤纸过滤于棕色瓶内,贮于冰箱中备用。

有效期一周。

抗坏血酸标准溶液:准确称取20mg 抗坏血酸,溶于2%草酸溶液中,定容至200ml ,混匀,吸取比液10ml ,再以2%草酸溶液稀释定容至200毫升。

方法
样品处理和提取
城区适量5g 样品置研钵中,加4毫升2%草酸,研磨成匀浆,用玻璃棒将样品提取液转移到50毫升容量瓶中,残渣用草酸洗2-3次和提取液一并转入容量瓶中,最后用2%草酸定容至刻度,摇匀过滤,滤液备用。

空白的测定
吸取10ml2%草酸,放入50毫升三角瓶中,用2,6-二氯靛酚钠溶液滴定至溶液呈粉红色于15秒内部褪色为止,记录所用滴定液体积(重复三次,取平均值)。

2,6-二氯靛酚钠溶液滴标定
吸取标准抗坏血酸溶液10ml ,放入50ml 三角瓶中,立即用所要标定的2,6-二氯靛酚钠溶液滴定至溶液呈粉红色于15秒内不褪色,记录用滴定液体积(重复三次,取平均值)。

按下式计算K 值,K=
200G ×20010×v
10
K 为1ml2,6-二氯靛酚钠所能氧化抗坏血酸的质量,G 为称取抗坏血酸的质量V 滴定10毫升抗坏血酸溶液所用去2,6-二氯靛酚钠的体积与丁丁空白所用体积的差值。

样品测定
吸取滤液10毫升,放入50毫升三角瓶中,立即用要标定的2,6-二氯靛酚钠溶液滴定至溶液呈粉红色于15秒内不褪色,记录用滴定液体积(重复三次,取平均值)。

结果与分析
X=

空样)(WV KV V V ×100
x 为100g 样品中所含维生素含量(mg/100g )w 为称取样品的质量(g );v 样为滴定样品所用的2,6-二氯靛酚钠溶液的体积(ml ),v 滤为样品测定测定时所用滤液体积(ml );V 为样品提取液稀释之总体积,K 为上k 值。

可溶性总糖的测定
仪器:分光光度计;20ml刻度试管;刻度吸管(5ml,1ml);记号笔;吸水纸适量
试剂1、蒽酮乙酸乙酯试剂:取分析纯蒽酮1g,溶于50ml乙酸乙酯中,贮于棕色瓶中,在黑暗中可保存数星期,如有结晶析出,可微热溶解。

2浓硫酸(比重1.84)
材料与方法
1标准曲线的制作
葡萄糖标准曲线的制作
取6支20ml试管,编号,按下表数据配置一些列不同浓度的标准葡萄糖溶液。

在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂,再缓慢加入5ml浓硫酸,摇匀后,打开试管塞,置沸水浴中煮沸10分钟,取出冷却至室温,在620nm波长下比色,测各管溶液的光密度值,以标准葡萄糖含量为横坐标,光密度值为纵坐标,作出标准曲线。

2样品中可溶性糖的提取
称取1克样品,研磨成匀浆,然后转入20ml刻度试管中,用10ml蒸馏水分次洗涤研钵,洗液一并转入刻度试管中,置沸水浴中加盖煮沸10分钟,冷却后过滤,滤液收集于100ml 容量瓶中,用蒸馏水定容至刻度,摇匀备用。

3糖含量测定
用移液管吸收1ml提取液于20ml具塞刻度试管中,加1ml水合0.5ml蒽酮试剂,再缓慢加入5ml浓硫酸(注意:浓硫酸遇水会产生大量的热),盖上试管塞后,轻轻摇匀,再置沸水浴中10分钟(比色空白用2毫升蒸馏水与0.5毫升蒽酮试剂混合,并一同于沸水浴保温10分钟)。

冷却至室温后,在波长620nm下比色,记录光密度值。

查标准曲线上得知对应的葡萄含量(ug)。

结果计算
样品含糖量(g/100g鲜重)=
考马斯亮蓝G-250染色法测定蛋白含量
标准蛋白质溶液(100ug/ml牛血清蛋白):称取牛血清蛋白25mg,加水溶解并定容至100ml,吸取上述溶液40ml,用蒸馏水稀释至100ml即可。

4℃下保存备用。

考马斯亮蓝G250溶液:称取100mg考马斯亮蓝G250,溶于50毫升90%乙醇中,加入100ml85%(W/V)的磷酸,再用蒸馏水定容到1000毫升,贮于棕色瓶中。

常温下可保存一个月。

材料与方法
标准曲线的绘制:取6支试管,编号后,按下表加入试剂,混合均匀后,向各管中加入5ml 考马斯亮蓝G250溶液,摇匀,并放置2min后,以0号试管为空白管凋零,在595nm下比色测定吸光度(比色应在1h内完成)。

以蛋白质含量为横坐标,以吸光度为纵坐标绘制
1)样品提取:称取鲜样0.25g~0.5g,用5ml蒸馏水研磨成匀浆后,3000r/min离心10分钟,上清液备用。

2)吸取样品提取液1ml(视蛋白质含量是当稀释),放入试管中(每个样品重复2次),加入5毫升考马斯亮蓝G250溶液,摇匀,放置2分钟后,在595nm波长下比色,测定吸光度,并通过标准曲线查得蛋白质含量。

样品中蛋白质含量(mg/g)=C×V T/(V S×W F×1000)
式中C-查标准曲线值ug
V T--提取液总体积ml
W F---样品鲜重g
V S--测定时加样量ml。

相关文档
最新文档