临床微生物标本的送检与采样指南13页word文档
临床微生物标本规范化采集和送检
注意事项
✓ 虽粪便含有多种杂菌，但应尽量采用 无菌容器。
✓ 为提高检出率，要采集新鲜粪便作培 养，且应挑取其脓血、 粘液部分。
四、痰及上呼吸道标本的采集
采集痰标本作细菌培养，或涂 片后经特殊染色以检查细菌、真 菌或抗酸杆菌等，以助诊断；从 咽部及扁桃体采取分泌物作细菌 培养或病毒分离
痰及上呼吸道标本
尿液标本
➢ 采集时间： 一般原则 通常应采集晨起第一次尿 液送检。原则上应选择在抗菌药物应 用之前采集尿液。
尿液标本的采集时间
A. 结核分枝杆菌感染 留取晨尿或24小时 尿的沉渣部分10-15ml作涂片检查，若为 培养，患者应停药1-2天后再采样，以提 高阳性率
B. 沙门菌、钩端螺旋体感染 感染后2周左 右采集
采集方法
➢ 自然排便采集法 自然排便后，挑取其脓血、 粘液部分2-3g，液状粪便取絮状物2-3ml， 盛于灭菌容器内或保存液中送检
➢ 直肠拭子方法 如不易获得粪便时，或排 泄困难的患者及婴儿，可用直肠拭子采取， 即以无菌棉拭子用生理盐水湿润后，插入肛 门内4-5cm（幼儿2-3cm）轻轻转动取出， 插入无菌试管内送检。
标本采集--保留导管
• 经由导管抽取5-10ml血液， 进行血培养；
• 再由静脉端抽血进行另外 一套血培养。
标本采集--决定拔除导管 • 从2个独立的外周静脉部 位，无菌采集2套血培养， 同时无菌操作取出导管并 剪下5cm导管末梢送实验 室培养。
血培养标本采集与送检要求--4
2. 未留置深静脉导管者： （1）怀疑血流感染时，从2个不同的外周静脉穿刺部位无
➢ ④尽可能采集更多的液体，至少1ml
手术切口分泌物标本采集
➢ 1、涂片：常规检查+革兰染色 ➢ 先用无菌生理盐水擦拭切口2遍，再用含生
微生物送检标本的采集指南
微⽣物送检标本的采集指南微⽣物送检标本的采集指南微⽣物学检验标本的正确采集、运送及处理，与细菌的培养。
鉴定结果有⼗分密切的关系，对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、炭疽、肺⿏疫等）患者采集标本时，必须按国家规范化要求严格注意⽣物安全；医⽣、护⼠、检验⼈员均应重视微⽣物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进⾏正确采集标本的宣传和指导。
（⼀）微⽣物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项1.标本采集1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本采集、采集时间、检查项⽬、抗⽣素应⽤情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基；2）尽量在抗⽣素应⽤前采集标本，以提⾼阳性检出率和避免漏检；3）标本采集应严格执⾏⽆菌操作；4）咽拭、肛拭、伤⼝拭等拭⼦标本，应插⼊运送培养基送检；5）痰、尿液伤⼝拭⼦等混有正常菌群的标本，不可放⼊⾁汤培养基内送检；6）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可⽤消毒剂。
2.标本运送1）标本采集后应尽快送到微⽣物实验室；2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。
3.标本验收1）实验室只能接受和处理合格标本；2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。
4.注意事项1）微⽣物检验样本必须按要求采集转运，否则将影响检查结果，并给评价其意义带来⿇烦甚⾄误导；2)微⽣物样本极易被污染，污染的样本杂菌⼤量繁殖抑制病菌⽣长，条件致病菌也是致病菌，如污染条件致病菌将误导临床，造成对患者的损害以及经济和时间的浪费。
3)某些标本离体极易死亡，应在床边采取和接种或⽴即保温送⾄实验室检验。
室温放置或延迟送检，可使检出的阳性率降低，不能使⽤冷藏的标本检验。
4)厌氧菌样本采取必须隔绝空⽓，混⼊空⽓的样本影响检验结果，不能使⽤。
（⼆）微⽣物学检验标本采集和处理1.尿液标本采集和处理通常留取晨起第⼀次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；不能及时送检和接种时，尿液应置4～8度冰箱保存；冷藏标本应于8h内接种；淋球菌培养的标本不能冷藏！怀疑沙门⽒菌感染时，应于发病2w 左右采集尿液，怀疑钩端螺旋体感染时，应于发病后2w采集尿液，上述世间此时阳性率⾼。
临床微生物标本规范化采集和送检
临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用，避免交叉感染。
2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。
（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。
（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。
（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。
如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。
标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（完整版）临床常见微生物标本的采集与运送
（完整版）临床常见微生物标本的采集与运送临床常见微生物标本的采集与运送唐玉英正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。
一标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。
2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。
采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。
3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。
4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。
5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。
二标本的运送1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。
2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。
三不同标本的采集，运送（一）血液标本采集，运送1.血培养指针当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。
临床微生物标本采集和送检指南
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
在临床微生物标本采集和送检过程中，可能会遇到以下挑战和问题： 1、如何正确采集微生物标本
二、临床微生物标本采集和送检的挑战
2、如何妥善保存标本，避免污染和交叉感染 3、如何及时、安全地将标本运送至实验室 4、如何与实验室保持密切，确保检测结果的准确性
三、临床微生物标本采集和送检 的具体方法和步骤
三、标本运送
2、防止污染：在运送过程中，应确保标本不受污染。使用清洁、干燥的容器 存放标本，并封闭容器以防止细菌、病毒等微生物的侵入。
三、标本运送
3、及时送达：标本应在采集后尽快送至实验室进行检测，以确保检测结果的 准确性。如有特殊情况需延迟送检，应告知实验室技术人员并妥善保存标本。
三、标本运送
四、临床微生物标本采集和送检的建议
3、建立有效的沟通渠道，加强与实验室、医生之间的协作和信息共享，及时 调整治疗方案。
四、临床微生物标本采集和送检的建议
4、针对具有传染性的标本，应严格遵守相关规定，确保运输、处理等过程的 安全性。
5、借助信息化手段，如电子病历、远程诊断等，提高临床微生物标本采集和 送检的效率和质量。
4、记录信息：在运送过程中，应记录标本的相关信息，包括采集时间、送检 时间、接收人员等，以便实验室技术人员对标本进行跟踪和管理。
四、常见问题及处理方法
四、常见问题及处理方法
1、采血困难：如遇采血困难，可适当调整采血部位或改变采血方式，如更换 采血针或调整患者体位。如仍无法采血，可咨询医生或实验室技术人员寻求帮助。
四、常见问题及处理方法
4、标识错误：如遇标识错误，应立即纠正并重新标识标本。同时，对可能造 成标识错误的原因进行分析和总结，以避免类似错误再次发生。
2022临床微生物标本的规范采集与送检(全)
极其错误的痰标本采集时机不方法
➢ 晨痰（错误！）：气管壁分泌物污染，唾液标本（唾液中口
咽部定植菌浓度可达108-109/ml），不能及时送检、接种，阳性 检出率和准确性受极大影响
➢ 痰培养×3 （错误！） ：不能提高检测率和准确性，误导、
浪费，是痰抗酸涂片要求的错误移植
采集量、增加病原菌的检出率 • 当采血量少于推荐值时，必须首先接种需氧瓶，将剩余接种入厌氧瓶
➢ 采集后立即送微生物实验室放入培养箱，最好1h内 ➢ 如确实不能立即送检，应室温保存，切勿冷藏
2022临床微生物标本的规范采集与送检（全）
菌血症病人血中细菌浓度
成年病人: ➢ 链球菌心内膜炎 ➢ 葡萄球菌心内膜炎 ➢ 革兰阳性菌血症 ➢ 革兰阴性菌血症
➢ 新生儿及对碘过敏的患者，只能用75%酒精消毒60s，待穿刺部位酒 精挥发干燥后穿刺采血。
➢ 培养瓶消毒程序： 1. 用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60秒 2. 用无菌纱布戒无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒精，然后注入血液
2022临床微生物标本的规范采集与送检（全）
要求：
✓ 严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手按压静脉，除非带有 无菌手套
2022临床微生物标本的规范采集与送检（全）
➢ 大肠埃希菌
➢ 沙门菌 ➢ 流感嗜血杆菌
➢ 敏感肺炎克雷伯菌 ➢ 敏感铜绿假单胞菌
➢ 其他肠杆菌科绅菌：变形杆菌 、肠杆菌属绅菌、柠檬酸杆菌 、沙雷菌、普罗威登菌等
血培养常见污染结果
➢ 凝固酶阴性葡萄球菌 ➢ 枯草杆菌 ➢ 棒状杆菌 ➢ 微球菌 ➢ 丙酸杆菌 ➢ 泛耐药鲍曼不动杆菌 ➢ 泛耐药铜绿假单胞菌 ➢ 耐碳青霉烯肺炎克雷伯菌 ➢ 其他耐药非发酵菌
临床微生物学检验标本采集
☆酒精消毒脓疱或水疱表面及周围皮肤 ☆干燥后用针头挑破脓疱，无菌拭子采集脓疱液和基底
部标本。
第三十四页，共64页。
◈ 厌氧菌感染的标本采集
☆针筒直接由病灶处抽取标本，床边接种或置 于厌氧运送培养基内送检。
☆避免接触空气。
第三十五页，共64页。
➢注意事项
◈ 采Байду номын сангаас前病灶局部应避免用抗菌药物或消毒剂，应 在用药前采取。
♦ 可疑菌血症或真菌菌血症，但血培养持续阴性，应改 变血培养方法，以获得罕见的或苛养的微生物。
♦ 可疑细菌性心内膜炎，在1～2h内采集3份血标本， 如果24h后阴性，再采集2份血标本。
第十一页，共64页。
常见病原体
G+球菌：葡萄球菌、链球菌、肠球菌 G+杆菌：结合分枝杆菌、产单核李斯特菌、阴道加特
◈特殊器械采集法
☆ 纤维支气管镜采集法 ☆ 防污染毛刷采集法（PSB） ☆ 支气管肺泡灌洗法（BAL）
☆ 环甲膜穿刺经气管吸引法（TTA） ☆ 经胸壁针穿刺吸引法(TNA)
第四十四页，共64页。
◈小儿取痰法
用弯压舌板向后压舌，将棉拭子伸入咽部，小儿经压 舌刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上。 幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。
第三十七页，共64页。
常见病原体
G+球菌：葡萄球菌、链球菌、肠球菌、消化链球菌、 四联球菌
G+杆菌：分枝杆菌、破伤风杆菌、产气荚膜梭菌、炭
疽芽胞杆菌 G-球菌：脑膜炎奈瑟菌、淋病奈瑟菌、卡他布兰汉菌 G-杆菌：肺炎克雷伯菌、变形杆菌、大肠埃希菌、铜绿
假单胞菌、流感嗜血杆菌、拟杆菌、梭杆菌
其 他：放线菌
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临床微生物标本的送检与采样指南呼吸道标本采集及运输一、上呼吸道标本1、送检指征上呼吸道感染包括咽炎、喉炎、会厌炎等，凡具有以下情况任何一项者疑似患者。
1.1 病毒性普通感冒伴有明显咽痛时，怀疑为咽部链球菌感染，应做细菌培养。
1.2 细菌性咽-扁桃体炎：明显咽痛、咽部发红、畏寒、发热，体温可达39°C以上。
1.3 喉咙痛、咳嗽、喉部有脓样分泌物等临床症状。
1.4 上呼吸道感染易并发鼻窦炎、中耳炎、气管-支气管炎，需送相应部位分泌物或痰液进行细菌培养。
2、标本采集上呼吸道标本包括鼻、鼻咽、咽拭子标本。
应根据临床表现和感染部位的不同有选择性的采集标本，以便更好地分离出病原菌。
采集时应选择无菌、不含抑制剂的棉拭子，预先用无菌生理盐水或营养肉汤蘸湿拭子，并直取感染部位，减少污染。
2.1 鼻拭子的采集：最好使用扩鼻器，先用拭子拭去鼻黏膜表面的分泌物并丢弃，用第2个试子蘸取无菌生理盐水或营养肉汤，插入鼻孔采集病灶标本。
2.2 咽拭子的采集：采集标本时患者先用清水漱口，由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，用无菌的鼻咽拭子（一端弯曲的金属棉拭）由口腔进入，越过舌根到咽后壁或腭垂后侧，采集鼻咽红肿处标本，取材后小心将试子退出，立即放人无菌试管内。
若咽部明显发红或有假膜存在时，应在局部擦拭取标本（最好拭子从膜底下擦拭）。
采集标本可在咽部多点采集标本，以提高检出率。
若无局部病变或做带菌者测试应于咽部或扁桃体上擦拭。
3、采集时间及频率3.1 检查时间：应于抗菌药物应用之前。
时间上无严格限制，但咽部是呼吸和食物的通路，也应晨起后采集为佳。
3.2 采集频率：重复采集标本的频率一般每日最多1次。
4、标本的运输标本采集后应立即送检，室温运送时间小于2小时，如果不能立即接种，必须装在无菌运送培养基中，避免由于干燥而使某些细菌死亡。
检测淋病奈瑟菌或脑膜炎奈瑟菌的拭子应放人含碳的转运培养基，采集后2小时内接种平板，以防细菌死亡。
5、注意事项5.1应于抗菌药物治疗前采集鼻咽喉拭子标本。
5.2标本采集前数小时不得用消毒药物漱口或涂抹病灶局部。
5.3用拭子采集标本时应小心、准确地在采集部位采取，避免触及舌、口腔黏膜和唾液，以防污染。
5.4疑为白喉杆菌感染时，应在咽部深沉组织中采取标本，避免咽部表面正常菌群污染。
5.5采集扁桃体标本时，应以晨起后采集为宜。
5.6采集标本时应戴口罩和手套，以防传染。
5.7咽部是呼吸和食物的通路，应以晨起后采集为宜。
5.8最好采集2份拭子，以方便直接涂片染色镜检和接种培养。
5.9采集标本用的拭子最好含藻酸钙或涤纶纤维的小头拭子采集。
人造丝或棉拭子不能用，因为其所含的脂肪酸对病原菌有害。
二、下呼吸道标本1、送检指征凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、黏稠或血性，并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿啰音，外周血白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X线检查提示有炎症性浸润或胸腔积液，甚至出现感染性休克和呼吸衰竭的患者，应采集痰液或下呼吸道的标本。
2、标本采集时间2.1以晨痰为好。
多数患者晨痰较多，即使对谈量少的患者，也以清晨采集最为容易。
对支气管扩张症与支气管相通的患者，清晨起床后进行体位引流，可采集大量痰液。
2.2在应用抗菌药物之前采集标本。
3、采集方法合格的标本采集是取得正确检验结果的关键，因此临床工作人员要教会患者如何采集或亲自去采集，取得深部的痰液而不是唾液。
3.1自然咳痰法：患者清晨起床后，用冷开水（无菌生理盐水）反复漱口（用湿牙刷刷口腔黏膜、舌头和牙龈5至10分钟，勿用牙膏）后用力自气管咳出第一口痰（戴假牙者取出假牙后漱口）。
对于痰量少或无痰的患者可进行诱导咳痰，及采用雾化吸入加温至45°C的100g/LNaCl溶液，使痰液易于排出。
将痰采集于无菌容器中尽快送检。
3.2支气管镜采集法：用支气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得标本。
此法患者常不愿接受。
3.3胃内采痰法：该方法于清晨空腹时，将胃管插入胃内，用注射器抽取胃液。
适用于无自觉症状的肺结核患者尤其是婴幼儿不会咳嗽，常将痰吞入胃，可采集胃内容物做结核分支杆菌培养，其阳性率比咳痰高10%左右。
3.4 人工气道采痰法：通过气管切口插管，负压吸引取得痰液，可用于厌氧菌培养。
3.5小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，用棉拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上，尽快送检。
4、标本的运送4.1标本采集后尽快（小于2小时）送至实验室，不及时运送可导致肺炎链球菌、流感嗜血杆菌等苛养菌由于不适应外界环境和自溶现象而死亡。
4.2延迟送检或待处理标本应置于4°C冰箱保存（疑肺炎链球菌感染、流感嗜血杆菌等苛养菌感染标本不能冷藏），以免杂菌生长，但保存标本应在24小时内处理。
4.3对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、肺鼠疫等）的患者检验标本，在采集、运输或保存过程中必须注意生物安全防护。
5、注意事项5.1采集标本以清晨为佳，采集前应先用冷开水充分漱口，以免口腔正常菌群污染标本。
5.2标本采集后应立即送检。
5.3结核分枝杆菌检查，痰量要多。
5.4肺部感染的患者可能患有菌血症，应同时做血液培养。
5.5一般不主张采用肉汤增菌或高选择性培养基来对标本进行增菌或分离培养。
5.6气管插管24h后会有定值菌，仅当出现临床肺炎症状（发热和浸润）时，否则切勿培养气管吸出物，因培养结果可能与疾病不符。
附注：Lentino and Lucks评价用于临床痰培养的标本有如下情况：1. Bartlett和Murray及Washington的痰质量分级系统，48%的送往实验室的痰培养未通过质量分级，而较多的是口腔分泌物；2. 26.5%的脓痰标本来自未显示出反射学和临床症状证据的病人；3. 40%的痰标本来自未深入祛痰而较多的是口腔分泌物的病人;4. 只有56.8%有症状的病人产生脓痰。
临床血液培养标本采集、运输、处理血流感染的发生发展可以严重威胁患者的生命，其正确诊断不仅可以减少抗菌药物的误用和滥用，同时可以大大地改善患者的预后，降低患者的病死率，减少医疗花费。
本指南详细介绍血培养标本采集时间、套数、血量要求、标本运输、皮肤消毒注意事项、导管相关性血流感染以及感染性心内膜炎诊断规范、快速鉴定血培养中的念珠菌、MRSA、葡萄球菌等新方法。
提醒广大医务工作者严格执行血流感染的诊断规范，快速报告实验结果，强调实验室及时与临床沟通，提高血流感染诊断水平的重要意义。
1、采血时间研究表明，细菌大量入血的时间为患者寒颤发热前1小时，在此期间，应同时（或间隔30-60 min）采集2-3套血培养，只有在怀疑患者有感染性心内膜炎或其它血管内感染（如导管相关性感染）时，才有必要间隔较长时间多次采集血培养。
2、血培养数量在每次败血症期间，推荐采集2-3套血培养。
对于****，不应仅做1套血培养，不仅因为采血量不足，而且1套血培养的结果较难解释。
由于在开始抗菌治疗后，患者血液中的致病菌不会立即清除，2-5天内无须重复进行血培养。
但对于感染性心内膜炎患者，应多次进行血培养以评估和指导治疗；由金葡球菌引起的败血症（非感染性心内膜炎），应在48-96 小时重复培养以判断其是否为复杂性金葡菌败血症。
3、血培养采血量采血量对于败血症的检测非常重要。
对于****，采血量在2-30 ml时致病菌的检测与血量成正比，虽然采血量增长至40 ml（甚至更高）时血培养阳性率仍在提高，但已经不再与采血量成正比。
对于婴幼儿，采血量不应超过患儿总血量的1%。
4、血标本在需氧瓶和厌氧瓶间的分配在常规血培养中，推荐成对使用需氧瓶和厌氧瓶。
如果采血量低于推荐血量，应将血标本先注入需氧瓶，再将剩余血液注入厌氧瓶，因为大部分败血症是由需氧或兼性细菌及酵母菌引起的。
如果仅做需氧培养，每套培养应使用2个需氧瓶并保证有足够的血量。
5、皮肤消毒以避免污染为减少皮肤菌群对血培养的污染，应对静脉穿刺点进行消毒。
研究表明碘酊、过氧化氯和葡萄糖酸洗必泰优于聚维酮碘，碘酊与葡萄糖酸洗必泰效果相近。
碘酊应作用30 s，碘伏应作用1.5-2 min。
葡萄糖酸洗必泰也应作用30 s，它较少引起过敏，因而在静脉穿刺后不需擦掉，但不能用于2个月以内的新生儿皮肤消毒。
6、血培养采集和运输血标本采集应严格遵守无菌操作，从静脉采血。
留置导管血通常比静脉穿刺血培养污染率高。
若分析导管相关性感染，应在采集导管血的同时，静脉穿刺采集外周血进行对比。
如果从静脉管道采血，不需要弃去开始段的血液，也不需要使用生理盐水冲洗管道以消除抗凝剂，因为其抗菌作用通常可以被培养基有效稀释消除。
静脉穿刺点选定后，去除血培养瓶的瓶帽，然后再对静脉穿刺点消毒自然干燥后进行采样。
采血人员除非佩戴无菌手套，在患者皮肤消毒后不得触碰其静脉。
血液注入血培养瓶前更换针头对于污染率的减少作用甚微，且易引发针刺伤。
血标本注入血培养瓶后应轻轻翻转数次，以免凝血。
无论使用什么方法采集血培养，应尽量减低血培养的污染率至≤3%。
血培养瓶应在2小时内送至实验室，延迟上机会延缓甚至阻碍病原菌生长。
培养瓶在室温仅能存放数小时。
切忌将培养瓶冷藏或冷冻，冷藏或冷冻会导致部分病原菌死亡，冷冻可能导致培养瓶破裂。
7、血培养标本拒收原则标识错误或没有标识的培养瓶；破损或渗漏的培养瓶；凝血。
临床尿液标本采集1、送检指征尿路感染、肾结核、泌尿系结石、膀胱排空受损或前列腺增生等患者，出现尿频、尿急、尿痛等膀胱刺激症状，肉眼脓尿或血尿，尿常规检查有白细胞或亚硝酸盐阳性，不明原因的发热、尿道口有脓性分泌物等症状，以及泌尿系统疾病术前等情况应采集尿液标本送检。
2、标本采集2.1采集时间：应选择在抗菌药物应用之前采集尿液。
通常应采集晨起第1次尿液送检，确保尿液在膀胱内停留4小时以上。
疑似沙门菌感染、钩端螺旋体感染时，一般在发病2周左右采集尿液培养。
2.2采集方法2.2.1 清洁中段尿采集法：嘱患者留取标本前一天晚上少饮水，晨起女性用肥皂水清洗外阴部（男性翻转包皮，清洗尿道口），再以灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段，留取中段尿10-15ml于灭菌容器内，立即加盖送检。
2.2.2膀胱穿刺采集法：严格无菌操作消毒耻骨联合上皮肤，用无菌注射器穿刺入膀胱抽取5-10ml尿液送检。
此法有一定的痛苦，患者难以接受。
主要用于厌氧菌培养或留取标本标本困难的婴儿尿标本采集。
此法可避免尿液标本污染。
2.2.3导尿法：直接导尿采集法：按常规方法做会阴局部消毒后，用导尿管直接经尿道插入膀胱，先弃去前段15ml，再留取10-15ml膀胱尿液于灭菌容器内送检。
次法可减少尿液标本的污染，准确地反映感染情况。
但有可能将下尿道细菌引入膀胱，导致继发感染，一般不提倡使用。
留置导尿采集法：可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用联空针筒的细针斜穿管壁抽吸尿液5-10ml，置于灭菌容器中送检；或消毒后解开接口，弃去导尿管前段尿，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检，长期留置导尿管者，应在更换新导尿管后留取尿标本。