琼脂糖凝胶电泳-完整整理版

注意：溴化乙锭是一种致癌物质。使用含有溴化乙锭的 溶液时，请戴用手套。溴化乙锭在可见光下会分解。
5. 将琼脂糖溶液倒入制胶模中，然后在适当位臵 处插上梳子。凝胶厚度一般在3－5 mm 之间。
注意：不要产生气泡，溶液温度太高(>60℃)，会使得水 分过分蒸发，改变凝胶离子浓度，影响电泳效果。
6. 在室温下使胶凝固（大约30 分钟），然后放臵 于电泳槽中进行电泳。
使用的电压
等量的空间结构，紧密的电泳快（超螺旋>线 性DNA） 5
琼脂糖的种类 电泳缓冲液
一般来说，分子带的电荷量越大、直径越小、 6 形状越接近球形，则其电泳迁移速度越快。
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嵌入染料的存在
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影响电泳迁移率的因素 DNA分子的大小 凝胶的浓度
DNA的构象
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4 简言之，浓度越大，分子孔径就越小，DNA迁 使用的电压 移速率就越低，反之迁移速率就大。
琼脂糖凝胶载样缓冲液
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影响电泳迁移率的因素 DNA分子的大小 凝胶的浓度
DNA的构象 使用的电压 琼脂糖的种类 电泳缓冲液
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嵌入染料的存在
1
影响电泳迁移率的因素 DNA分子的大小 凝胶的浓度
DNA的构象
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DNA分子大小迁移速率U与logN成反比（N为 3 碱基对数目）。分子越大，摩擦阻力越大，同时 大分子通过凝胶孔径的效率也低于较小的分子， 所以分子大的迁移慢。 4
4) DNA链巨大，常规凝胶电泳 在脉冲凝胶电泳上分析 不合适
分子生物学实验技术 专题
分子生物学实验技术专题
凝胶电泳技术
• 琼脂糖凝胶电泳
• 聚丙烯酰胺凝胶电泳
分子杂交技术
• Southern blot • Northern blot
质粒提取、细菌总DNA提取
电泳技术简介
什么是电泳技术？ 电泳法，是指带电荷的供试品（蛋白质、 核苷酸等）在惰性支持介质（如纸、醋酸纤维 素、琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等）中，于 电场的作用下，向其对应的电极方向按各自的 速度进行泳动，使组分分离成狭窄的区带，用 适宜的检测方法记录其电泳区带图谱或计算其 百分含量的方法。
嵌入染料的存在
DNA电泳常见问题分析
问题 原因
1) DNA降解 避免核酸酶污染
解决办法
2) 电泳缓冲液陈旧
电泳缓冲液多次使用后，离子强度降低，pH值上升，缓冲能力减弱， 从而影响电泳效果。建议经常更换电泳缓冲液
电泳时电压不应超过20V/cm，温度＜30℃；巨大DNA链电泳，温度 应＜15℃；核查所用电泳缓冲液是否有足够的缓冲能力 减少凝胶中DNA上样量
DNA的构象
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包括标准琼脂糖和低熔点琼脂糖以及正在研制 的介于二者之间的琼脂糖。其分辨率等各有不同。 3
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使用的电压 琼脂糖的种类 电泳缓冲液
嵌入染料的存在
琼脂糖凝胶的浓度
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影响电泳迁移率的因素 DNA分子的大小 凝胶的浓度
DNA的构象
2 溶液pH值距离其等电点愈远，其所带净电荷量 就越大，电泳的速度也就越大，尤其对于蛋白质 等两性分子，缓冲液pH还会影响到其电泳方向; 3 溶液的离子强度过低，会使电导率降低，DNA 不是全然不动就是迁移极慢；而离子过强时，电 导率上升，会产生大量热能，使凝胶变化甚至熔 4 化，也会使DNA变性。
•琼脂糖支持层上的区带易于 扩散，电泳后必须立即固定 染色。
•与PAGE相比，分子筛作用小， 区带少。
琼脂糖凝胶的配置
1. 根据电泳需要，配臵合适浓度的电泳及制胶 缓冲液。一般为 1× TAE或0.5×TBE。
注意：用于电泳的缓冲液和用于制胶的缓冲液必须是相 同的。
2. 根据制胶量及凝胶浓度，在加有一定量的电 泳缓冲液的三角锥瓶中，加入准确称量的琼脂 糖粉。
琼脂糖凝胶缓冲液
琼脂糖凝胶缓冲液
琼脂糖凝胶缓冲液
TBE可以使用10次左右，而TAE用2~3次就要 更换。电泳缓冲液多次使用后，离子强度降低， pH值上升，缓冲性能下降，可能使DNA条带 模糊或不规则DNA带迁移。 电泳缓冲液刚好没过凝胶1mm为好，太多则电 流加大，凝胶发热。
琼脂糖凝胶载样缓冲液
电泳技术的分类
电泳法可分为自由电泳（无支持体）及区带电 泳（有支持体）两大类。
自由电泳包括 Tise-leas式微量电泳、显微电泳、等 电聚焦电泳、等速电泳及密度梯度电泳。 区带电泳则包括滤纸电泳（常压及高压）、薄层 电泳（薄膜及薄板）、醋酸纤维薄膜电泳、非凝 胶性支持体区带电泳（支持体有：淀粉，纤维素 粉，玻璃粉，硅胶等)、凝胶支持体区带电泳（琼 脂、琼脂糖、淀粉胶、聚丙烯酰胺凝胶）等。
使用的电压
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琼脂糖的种类 电泳缓冲液
嵌入染料的存在
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影响电泳迁移率的因素 DNA分子的大小 凝胶的浓度
DNA的构象 使用的电压
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染色剂溴化乙锭插入双链DNA造成其负电荷减少、 刚性和长度增加，因此，线性DNA-染料复合物在凝 5 胶中的迁移率约降低15%。
琼脂糖的种类 电泳缓冲液
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载样缓冲液是上样时与样品一起加入泳道的。 载样缓冲液有三个作用：
增加样品密度以保证DNA沉入加样孔内； 使样品带有颜色便于上样操作； 其中的染料在电场中以可以预测的泳动速率向阳 极迁移。
上样缓冲液有几种，但基本都包括溴酚蓝和二 甲苯氰FF。
琼脂糖凝胶载样缓冲液
溴酚蓝在琼脂糖凝胶中迁移速率是二甲苯氰 FF的2.2倍，这一特性与琼脂糖凝胶的浓度无 关； 在0.5×TBE琼脂糖凝胶电泳中溴酚蓝的速率 约与长约300bp的线性双链DNA相同，而二甲 苯氰FF约与长4kb的DNA相同。在0.5%-1.4% 浓度的琼脂糖凝胶中基本不会变化。
3) DNA变性
1) DNA的3) DNA走出凝胶
4) 对于EB染色的DNA，所用光源 应用短波长（254nm）的紫外光源 不合适
DNA电泳常见问题分析
问题 原因
1) 小DNA带走出凝胶
解决办法
缩短电泳时间，降低电压，增强 凝胶浓度
2) 分子大小相近的DNA带不 增加电泳时间，核准正确的凝胶 易分辨 浓度 DNA带缺失 3) DNA 变性 电泳前请勿高温加热DNA链，以 20mM NaCl Buffer稀释DNA
另外，浓度也跟凝胶的分辨率有关，浓度越大， 分辨率越高，但分离的ＤＮＡ片段就越小。 5
琼脂糖的种类 电泳缓冲液
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嵌入染料的存在
琼脂糖凝胶的浓度
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影响电泳迁移率的因素 DNA分子的大小 凝胶的浓度
DNA的构象 使用的电压
一般迁移速率超螺旋环状>线状DNA>单链开环。
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琼脂糖的种类 电泳缓冲液
琼脂糖与琼脂的区别
琼脂是由琼脂糖（agarose）和琼脂果胶 （agaropectin）组成的。琼脂糖的结构单元是 D半乳糖和3.6-脱水-L-半乳糖；琼脂果胶是由许多 更小的分子组成的异质混合物。它们的结构相似， 但琼脂果胶带硫酸根和羧基组分，凝胶能力差。 在琼脂糖制备过程中需要把琼脂果胶尽量去除， 否则琼脂糖有可能存在极微量硫酸根和丙酮酸取 代电离基团，就会造成电内渗，电内渗对质点的 移动产生影响。质量较好的琼脂糖硫酸根含量比 较低，通常在0.2%以下，电内渗比较小，通常在 0.13%以下。 简言之，琼脂糖是从琼脂中精细提取的，有自身 独特的性质，所以琼脂糖要比琼脂贵得多。
注意：总液体量不宜超过三角锥瓶的50%容量。
3. 在微波炉中加热溶解琼脂糖
注意：必须保证琼脂糖充分完全溶解，否则，会造成电 泳图像模糊不清。加热时如胶液剧烈沸腾发泡，停止加 热。微波炉中加热时间不宜过长。
琼脂糖凝胶的配置
3. 使溶液冷却至60℃左右，如需要可在此时加入 溴化乙锭(EB)溶液使其终浓度为0.5ug/ml，并充 分混匀——不提倡使用。
琼脂糖凝胶电泳特点
优 点 缺 点
•因不含硫酸根和羧基，几乎消 除了琼脂的电渗
•对蛋白质吸附极微，故无拖尾 现象。
•机械强度差，易破碎，浓度 不能太低。
•易被细菌污染，不易保存， 临用前配制。
•凝胶结构均匀，孔径较大，可 用来分离酶的复合物、核酸、 病毒等大分子物质。
•透明度较好，可直接或干燥成 薄膜后进行染色。 •不吸收紫外光，可直接利用紫 外光吸收法作定量测定 •有热可逆性
凝胶电泳技术
琼脂糖凝胶电泳
聚丙烯酰胺凝胶电泳
琼脂糖凝胶电泳：实验原理
琼脂糖是由琼脂分离制备的链状多糖。其结构单元 是 D-半乳糖和3.6-脱水-L-半乳糖。许多琼脂糖链依 氢键及其它力的作用使其互相盘绕形成绳状琼脂糖 束，构成大网孔型凝胶。其本身不带有电荷。因此 该凝胶适合于免疫复合物、核酸与核蛋白的分离、 鉴定及纯化。
解决办法
电泳前于65℃加热DNA 5分钟，然后 在冰上冷却5分钟
电泳电压不超过20V/cm；温度＜30℃； 经常更换电泳缓冲液 以20mM NaCl Buffer稀释DNA，电泳 前勿加热 增加DNA的上样量；聚丙烯酰胺凝胶 电泳比琼脂糖电泳灵敏度稍高，上样 量可适当降低 避免DNA的核酸酶污染 缩短电泳时间，降低电压，增强凝胶 浓度
嵌入染料的存在
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影响电泳迁移率的因素 DNA分子的大小 凝胶的浓度
DNA的构象 使用的电压 琼脂糖的种类 电泳缓冲液
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低电压时，线状DNA片段的迁移速率与所加电 6 压成正比。使分辨效果好，凝胶上所加电压不应超 过5-8V/cm
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嵌入染料的存在
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影响电泳迁移率的因素 DNA分子的大小 凝胶的浓度
注意： 凝胶不立即使用时，用保鲜膜将凝胶包好在4℃ 下保存，或者放在制胶的缓冲液中，一般可保存2～5 天。
琼脂糖凝胶缓冲液