灰葡萄孢菌的细胞形态观察及菌种保存
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野生型与突变型灰葡萄孢菌的细胞形态观察及菌种保存
1.实验目的
通过灰葡萄孢菌的培养实验,观察灰葡萄孢菌生长过程中菌丝形态的变化及孢子的萌发过程;
通过对灰葡萄孢菌孢子的活化与复壮,保存活力强的菌种。
2.实验内容
野生型及突变体灰葡萄孢菌的培养、菌丝形态的观察;
野生型及突变体灰葡萄孢菌的活化、复壮及保存。
3.实验材料
3.1实验菌株
灰葡萄孢菌是从典型的患灰霉病的番茄上分离并进行了单孢培养,由浙江大学农业与生物技术学院李红叶教授实验室提供;灰葡萄孢菌突变体由本实验室通过紫外诱变获得。3.2仪器
电子天平,高压灭菌锅,酸度计,蒸馏水器,超净工作台,恒温培养箱,显微镜
3.3 试剂
PDA培养基:称取马铃薯200g,洗净,去皮,切成小块,加入1000ml水中煮沸30分钟,再用纱布过滤煮过的马铃薯,弃残渣,在滤液中加入蔗糖20g,1.5%琼脂粉,充分溶解,再用蒸馏水定容至1000ml,分装三角瓶,置高压蒸汽灭菌锅中,0.1Mpa的大气压、121℃条件下,灭菌20min,室温冷却待用。
4 .实验方法与步骤
4.1血球计数板的使用
血球计数板是一个大方格分成25个中方
格,而每个中方格又分成16个小方格,总共
400小格。
(1)将孢子从培养皿的菌丝上洗下来。
(2)稀释孢子至每小方格内含有4-5个孢子为宜,
一般稀释10倍即可。
(3) 将血球计数板用擦镜纸擦净,在中央的计数
室上加盖专用的盖玻片。
(4)将稀释后的孢子悬液,用移液器吸取一滴置
放大后的计数室
于盖玻片的边缘,使孢子悬液液缓缓渗入,多余
的菌液用吸水纸吸取,稍待片刻,使孢子悬液全部沉降到血球计数室内。
(5)计数时,除了取其4个对角方位外,还需再数中央的一个中格(即80个小方格)的细胞数。
(6) 位于大格线上的孢子,一般只计数大方格的上方和右方线上的孢子(或只计数下方和左方线上的孢子)。
(7)对每个样品计数三次,取其平均值,按下列公式计算每1ml菌液中所含的酵母菌个数。
细胞数/ml=(80小格内的细胞数/80)×400×1000×稀释倍数。
4.2野生型灰葡萄孢菌的活化
取PDA 培养基在超净工作台内倒平板,培养基冷却凝固后将野生型和突变体灰葡萄孢菌
的菌种用接种环挑取少量分别放入各个培养皿中,记号笔标记菌种、接种时间,将培养皿放入28℃培养箱中倒置培养,第一次活化时间为一周,待其菌丝变为灰绿色长满平皿后,再按照上述方法进行二次活化。
4.3菌株的培养与观察
在紫外灯灭菌20min后的超净工作台中,对已制备培养基进行编号,并将已灭菌培养
基移取少许置于已备载玻片上制成固体培养基。培养基凝固后将野生型灰葡萄孢菌孢子悬液
接种于已置培养基的载玻片上,为防止培养基干燥接种前可用移液枪移取适量灭菌水于培养
皿底部滤纸上,用记号笔作标记,记下接种日期与时间,将其置于恒温培养箱(28℃)中进
行培养。培养期间每隔12h,重复上述操作,直至第六号培养菌培养12h后,打开培养皿盖,取出载玻片,将1至6号培养菌依次置于显微镜下观察并拍照。观察野生型灰葡萄孢菌孢子
萌发、芽管、菌丝和菌落形态。
4.4灰葡萄孢菌孢子悬液的制备
活化后的灰葡萄孢菌再培养7天(28 ℃),待菌体产生孢子即可。用无菌水洗菌体数次得到孢子悬液,孢子悬液用血球计数板计数,将孢子悬液的浓度稀释到2×105个孢子/ml待用。
4.5灰葡萄孢菌的复壮
选取四个大小相近、相对成熟、无损伤的番茄,在超净工作台内用解剖刀分别撕去一平方厘米区域大小的表皮,并在这些区域用分别接野生型和突变体灰葡萄孢菌孢子悬液,用记号笔分别标记(野生型CK,突变体TG)。找一长方体或正方体盒子,去掉盖子用细线将其缠绕形成网状顶部,取适量无菌水倒至底部,将接有孢子悬液的番茄置于其网状顶平面,保鲜膜将其密封,于28℃下培养二至三天,观察菌种生长情况,并拍照。
5实验结果
通过观察野生型灰葡萄孢菌在培养基上的萌发状态,发现野生型灰葡萄孢菌生长12h
萌发长出单极性芽管,24h菌丝分支,36h后长满菌丝,分支增多, 48h时形成分生孢子头,部分开始散发分生孢子,60h时散发分生孢子,72h时分生孢子散发完,部分还在散发分生
孢子(图1)。通过观察不同时段野生型灰葡萄孢菌在培养基上的菌落生长状态,发现24h
时培养基上无肉眼可见菌落长出,36h时有明显的菌落长出,48h长满整个培养基,60h长
至培养基边缘,72h有更多菌丝长出,菌落颜色加深(图2)。野生型和突变体孢子侵染番茄,置室温下均有菌丝长出,说明两类孢子均具有侵染活性(图3)。
12h 24h 36h
图1野生型灰葡萄孢菌不同时段的细胞生长形态
图2 野生型灰葡萄孢菌不同时段菌落生长形态
图3野生型和突变体灰葡萄孢菌侵染番茄
48h 60h 72h
12h 24h 36h 48
h 60h 72h
A B