大豆蛋白质含量的测定
黄豆中蛋白质含量测定
黄豆中蛋白质含量测定——凯氏定氮法一、仪器和试剂主要仪器:定氮仪。
试剂（除注明外均为分析纯）：1. 浓硫酸。
2. 30%氢氧化钠溶液。
3. 2～4%硼酸溶液。
4. 0.1mol/L 盐酸溶液。
5. 催化剂：硫酸钾——硫酸铜的混合物（K 2SO 4:CuSO4·5H 2O=3.5g:0.1g ）。
二、操作步骤1. 消化准确称取粉碎均匀的黄豆粉0.5g 左右，小心移入干燥的消化瓶中（注意用称量纸将样品加入到消化管底部，勿粘附在瓶壁上），加入适量催化剂及10mL 浓硫酸，按要求安装好消化装置后,设置好消化程序,打开冷凝水, 开始消化程序。
(160℃, 40min; 250℃, 20min; 350℃, 60min; 420℃, 30min)消化程序结束后，消化至溶液透明呈蓝绿色，冷却至室温。
同时做空白对照。
2． 蒸馏、吸收及滴定按要求安装好UDK142蒸馏仪，并将蒸馏仪与自动电位滴定仪连接好。
将所需试剂装到相应的试剂瓶中。
设置好蒸馏程序及滴定程序后，将冷却好的消化管装到蒸馏仪上，打开冷凝水，然后开始程序。
三、结果计算X ——试样中蛋白质的含量，单位为克每百克（g/100g ）C —— HCl 标准溶液的浓度mol/LV 1 —— 滴定样品吸收液消耗的HCl 标准溶液的体积mLV 2 —— 滴定样品空白液消耗的HCl 标准溶液的体积mL0.0140——1.0mL 盐酸（C(HCl)＝1.000mol/L ）标准滴定溶液相当的氮的质量，单位为克（g ）m ——试样的质量或体积，单位为克或mL1000140.0)(21⨯⨯⨯⨯-=F mc V V XF ——氮换算为蛋白质的系数。
一般食物为6.25，乳制品为6.38，面粉为5.70，玉米、高粱为6.24，花生为5.46，米为5.95，大豆及其制品为5.71，肉与肉制品为6.25，大麦、小米、燕麦、裸麦为5.83，芝麻、向日葵5.30。
计算结果保留三位有效数字。
大豆中蛋白质含量的测定实验报告
大豆中蛋白质含量的测定实验报告大豆是一种富含蛋白质的植物，因此对大豆中蛋白质含量的测定非常重要。
本实验旨在通过化学方法测定大豆中蛋白质的含量，并对结果进行分析和讨论。
实验材料和仪器：1. 大豆样品2. 硫酸钠溶液3. 氢氧化钠溶液4. 酸性消化液5. NaOH溶液6. 氮气吹扫装置7. 精密天平8. 恒温水浴9. 离心机10. 紫外分光光度计实验步骤：1. 准备大豆样品：将大豆磨成粉末，并将其过筛以获得均匀的颗粒大小。
2. 水解反应：取一定量的大豆样品加入酸性消化液中，放入恒温水浴中进行水解反应，使蛋白质完全水解为氨基酸。
3. 碱解反应：将水解后的溶液中加入适量的NaOH溶液，使溶液呈碱性，以便将其他干扰物质转化为不溶性沉淀。
4. 沉淀处理：将碱解后的溶液进行离心处理，将沉淀分离出来。
5. 沉淀洗涤：用硫酸钠溶液对沉淀进行洗涤，去除杂质。
6. 干燥：将洗涤后的沉淀放入烘箱中干燥，直至恒定质量。
7. 称重：使用精密天平称取干燥后的沉淀质量。
8. 光度计测定：将一定量的沉淀溶解于适量的NaOH溶液中，使用紫外分光光度计测定溶液的吸光度。
9. 蛋白质含量计算：根据标准曲线，计算出大豆中蛋白质的含量。
实验结果与分析：根据实验测定，我们得到了大豆样品中蛋白质的含量。
通过对标准曲线的分析，我们可以得知大豆样品中蛋白质的浓度。
从实验结果中可以看出，大豆中蛋白质的含量较高，这也符合我们对大豆富含蛋白质的认识。
在实验中，我们采用了水解和碱解的方法，这是常用的蛋白质测定方法之一。
水解反应将蛋白质水解为氨基酸，使其更容易测定；碱解反应则将其他干扰物质转化为不溶性沉淀，方便后续步骤的进行。
为了准确测定大豆中蛋白质的含量，我们进行了沉淀处理和洗涤步骤，以去除杂质。
这些步骤的目的是提高测定的准确性和精确度。
同时，干燥步骤的进行可以保证质量的恒定，进一步提高测定结果的可靠性。
通过紫外分光光度计的测定，我们可以得到溶液的吸光度，进而计算出蛋白质的浓度。
大豆水溶性蛋白的测定方法
A．4 结果计算
水溶性蛋白质含量按下列公式计算：
水溶性蛋白质（干基%）=)100(100005052501025.6014.0)(01MWNVV?××××××? 国家标准局 1985—11—02 发布 1986—07—01 实施
A．1．4 容量瓶：250ml；
A．1．5 离心机，附50ml离心管；
A．1．6 玻璃漏斗；
A．1．7 锥形瓶、移液管；
A．1．8 其他仪器和用具与本标准第1章同。
A．2 试剂
所有试剂与本标准第2章同。
A．3 操作方法
A．3．1 试样制备：将大豆粉碎使90%以上通过60目筛。
A．3．2 提取：称取粉碎试样5g（W，精确至0.01g）于磨口带塞锥形瓶中，加水200ml，摇混使均匀分散，然后在25～30℃温度下振荡2h，取出后将混合液转移至250ml容量瓶中，用水稀释至刻度，混匀后静置1～2min，将上层清液倒入离心管中，在每分钟转数1500转的离心机中离心10min，再将离心液用快速滤纸或玻璃纤维过滤，收集清晰滤液于锥形烧瓶中，即为样品水溶性蛋白质测定液。
③加入蒸馏瓶1内的碱液，必须过量。
④也可使用由0.2%甲基红乙醇溶液1份和0.2%溴甲酚绿乙醇溶液5份配制的混合指示剂（临用时混合），终点为灰红色。
附 录 A
大豆水溶性蛋白质测定法
（补充件）
A．1 仪器和用具
A．1．1 粉碎机；
A．1．2 磨口带塞锥形瓶：500ml；
A．1．3 振荡器：国际型； W——试样重量，mg；
凯氏定氮法大豆实验报告
一、实验目的1. 掌握凯氏定氮法的原理和操作步骤。
2. 学会使用凯氏定氮仪进行蛋白质含量的测定。
3. 了解大豆蛋白质含量的测定方法及其在食品分析中的应用。
二、实验原理凯氏定氮法是一种经典的蛋白质含量测定方法，其原理是将样品中的蛋白质与浓硫酸共热，使蛋白质中的氮元素转化为无机氮，即硫酸铵。
通过测定硫酸铵中的氮含量，即可计算出样品中蛋白质的含量。
实验过程中，样品的消化、蒸馏、吸收和滴定是关键步骤。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：大豆样品、浓硫酸、30%氢氧化钠溶液、克氏催化剂、2%硼酸、指示剂、0.1M HCl、蒸馏水等。
2. 实验仪器：凯氏定氮仪、凯氏烧瓶、电炉、锥形瓶、100mL容量瓶、酸式滴定管、电子天平、移液管等。
四、实验步骤1. 样品消化：准确称取0.5g大豆样品（精确至0.0001g），置于凯氏烧瓶中，加入5mL浓硫酸，再加入2g硫酸钾、0.1g硫酸铜和0.5mL过氧化氢，充分混合后，置于电炉上加热消化，直至样品完全消化。
2. 蒸馏：将消化后的溶液转入凯氏定氮仪反应室，加入过量的浓氢氧化钠，加热蒸馏，使氨气释放。
3. 吸收与滴定：将蒸馏出的氨气导入装有2%硼酸溶液的锥形瓶中，待吸收完全后，用0.1M HCl标准溶液滴定，直至溶液由蓝紫色变为红紫色为止。
4. 计算蛋白质含量：根据滴定消耗的HCl标准溶液的体积，计算出样品中氮含量，再根据氮含量计算出蛋白质含量。
五、实验结果与分析1. 实验结果：本次实验测得大豆样品中的蛋白质含量为37.2%。
2. 结果分析：凯氏定氮法是一种准确、可靠的蛋白质含量测定方法。
实验过程中，样品的消化、蒸馏、吸收和滴定等步骤严格按照操作规程进行，确保了实验结果的准确性。
本次实验测得的大豆蛋白质含量与文献报道基本一致，表明实验方法可靠。
六、实验总结1. 凯氏定氮法是一种经典的蛋白质含量测定方法，具有操作简便、结果准确等优点。
2. 实验过程中，严格遵循操作规程，注意样品的消化、蒸馏、吸收和滴定等步骤，确保实验结果的准确性。
考马斯亮蓝染色法测定大豆茎叶中蛋白质含量
考马斯亮蓝染色法测定大豆茎叶中蛋白质含量作者：杨正坤王秀丽龙施华郝再彬单展展周菲菲来源：《湖北农业科学》2012年第20期摘要：应用考马斯亮蓝染色法测定大豆茎叶中蛋白质含量。
结果表明，该法测定大豆茎叶中蛋白质含量是可行的，其RSD为0.25%～1.27%，回收率为94.9%～106.4%，大豆茎叶蛋白质平均含量为7.673%和11.315%。
该方法简便快速，灵敏度高、重现性好、准确率相对较高，可用于微量可溶性蛋白质含量的测定。
关键词：大豆茎叶；蛋白质含量；考马斯亮蓝染色法中图分类号：TS63 文献标识码：A 文章编号：0439-8114（2012）20-4610-03蛋白质是一项质量和资源评价的重要指标[1]，用一种快速、准确、方便的方法来检测蛋白质含量是必不可少的。
近年来，许多学者用考马斯亮蓝染色法和其他方法对蛋白质含量进行了测定[2-9]。
蛋白质中的酰胺基团与考马斯亮蓝染料中的阴离子结合使溶液显蓝色，测定效果可通过测定显色稳定性等多个性状指标进行全面客观地评价。
本试验采用盆栽大豆，对大豆的茎叶蛋白质含量与大豆产量进行考察，通过分析它们之间的影响与关系，为今后大豆育种工作提供试验方法。
1 材料与方法1.1 材料供试样品为大豆茎叶（实验室自制）。
牛血清白蛋白（进口分装），购于上海亿欣生物科技有限公司；考马斯亮蓝G-250（进口分装），购于中国医药（集团）上海化学试剂公司；其他试剂均为国产分析纯试剂。
1.2 仪器SHB-IIIS循环水式多用真空泵和抽滤装置（郑州长城科工贸有限公司）、EL303型电子天平[梅特勒-托利多仪器（上海）有限公司]；Cary50紫外分光光度计（美国瓦里安有限公司）。
1.3 方法1.3.1 蛋白质标准溶液的配制准确称取牛血清白蛋白100.0 mg，用去离子水定容至100 mL，即为1 mg/mL蛋白质标准液，4 ℃保存待用。
1.3.2 考马斯亮蓝G-250溶液的制备称取考马斯亮蓝G-250 100.0 mg于研钵中，取体积分数为95%的乙醇（下同）50 mL，从中取约10 mL加入研钵，将考马斯亮蓝G-250研成粉并溶解；轻轻将上层液体转入500 mL烧杯中，再取10 mL乙醇溶液于研钵中研磨，同法收集，重复洗涤3次。
国家标准粮油检验大豆蛋白质脂肪含量测定近红外法编制说明
国家标准《粮油检验大豆蛋白质、脂肪含量测定近红外法》编制说明《粮油检验大豆蛋白质、脂肪含量测定近红外法》国家标准起草组二〇〇八年十月十六日1.工作简况（包括任务来源、协作单位、主要工作过程、国家标准主要起草人及其所做工作等）项目背景和来源近红外分析方法(NIR)是近年来在粮食质量测定中作为迅速、简便、非破坏性检测发展起来的新技术，它是利用粮食中某一成分在近红外谱段中（700nm—2500nm）对特定波长近红外光能量与其含量有等比吸收的原理。
近年来，我国粮食和农业部门引进了世界各国多种型号近红外分析仪，使我国近红外应用技术迅速发展，在农产品质量控制上发挥了一定作用。
近红外分析方法自二十世纪七十年代被美国确定为非破坏检测粮食水分、蛋白质、脂肪的标准方法以来，在美国、法国、丹麦、瑞典、日本、澳大利亚等农业发达国家已经将NIR检测装置作为大豆蛋白质、脂肪证明的认定基准装置。
实践验证，近红外分析仪不仅可以为生产企业的品质控制提供直接快速的信息，使生产企业能够及时调整生产工艺，而且近红外光谱分析仪在粮食质量检测中充分体现了它快速、准确、节省人力物力等优点。
多年来，粮食检验部门和加工企业陆续购置了不少近红外分析仪器，但是由于缺乏标准的支撑，近红外分析技术在粮食检验机构一直未能得到真正应用。
为了规范近红外光谱仪的使用，确保测定结果的可靠性，使各级检测部门、研究机构及厂家在使用近红外光谱分析仪时有标准方法可依据。
通过近红外粮食质量检测系列标准的建立，将为粮食质量保证体系提供良好的技术支撑。
根据国家标准化管理委员会《关于下达2007年第四批国家标准制修订计划的通知》（国标委计[2007]85号）的要求，项目编号为-T-449的《粮油检验大豆蛋白质、脂肪含量测定近红外法》国家标准起草任务由河南工业大学负责起草。
在国家粮食局标准质量中心的组织、协调下，河南工业大学连同有关单位组成了本标准起草小组。
本标准制定主要工作过程本标准重点研究了AACC、ISO等关于近红外测定大豆或饲料方法的标准（草案），同时研究了国内有关近红外测定方法的标准。
D1--MCR-03-01大豆分离蛋白检验标准201108
1、适用范围本标准适用于分离蛋白的检验验收,适用品项：高凝胶蛋白、普通分离蛋白。
2、要求2.1本标准参照GB/T 20371-2006《食品工业用大豆蛋白》要求，产品应符合该标准中大豆分离蛋白的指标要求，另有指标﹡根据公司质量要求修订而成。
2.2感观要求 2.2.1感观要求外观呈淡黄色或乳白色粉末，具有产品应有的滋味和气味，无异味；不含有正常视力可见的外来杂质。
2.2.2理化指标水份≤10％；蛋白质含量（以干基计）≥90％ 灰分（以干基计）≤8％粗纤维含量（以干基计）≤0.5％菌落总数≤30000cfu/g 大肠菌群≤30MPN/100g 致病菌不应检出 总砷（以As 计）≤0.5mg/kg 铅（Pb ）≤1.0mg/kg 2.2.3凝胶强度指标普通分离蛋白，凝胶值>40g.cm 高凝胶分离蛋白，凝胶值>80g.cm2.3符合技术部提出的其它要求；有合同要求的，符合合同附加的合同条款要求。
3、检验方法3.1抽样：3.1.1每批次/货柜随机抽取3～5个样本 3.2理化指标根据GB/T 20371-2006《食品工业用大豆蛋白》测定。
3.2 凝胶强度指标3.2.1用电子称准确称取样品100g ，溶于500g 冰水，稍搅拌均匀；4标签、包装、运输、贮存4.1标签、包装符合GB/T 20371-2006《食品工业用大豆蛋白》要求。
4.2运输运输工具应采用清洁、干燥的车箱，不得与有毒、有害物品混装。
4.3贮存产品贮存于干库中阴凉干燥处。
5、检验要求5.1原料检验合格后，质量部出具检验报告单，方可办理入库。
否则走异常原料处理流程。
5.2厂家变更或有其它大的变更因素时，应填写《样品确认记录表》重新确认样品。
泰州安井食品有限公司编 制 葛真 审 核 类 型 受控文件 批 准 标 题 大豆分离蛋白检验标准版 本 1.0 修改状态 / 编 号TZAJ/FSMS-WP-D001页 数1发布日期201303203、入厂必检3.1检查供应商三证资料是否过期（营业执照，生产许可证，型式检验）；3.2批次检验报告是否合格。
大豆品质分析
大豆品质分析摘要：大豆是豆科大豆属的一年生草本植物，原产于中国，在中国各地均有栽培，同时广泛栽培于世界各地。
大豆是中国重要粮食作物之一，已有五千年栽培历史是一种其种子含有丰富植物蛋白质的作物，大豆用处很广泛，大豆最常用来做各种豆制品、榨取豆油、酿造酱油和提取蛋白质。
是数百种天然食物中最受营养学家推崇的食物。
而大豆的品质对大豆的价值起了决定性作用。
关键词：大豆品质、蛋白质含量测定、脂肪含量测定论文主体内容一、研究背景及意义大豆是我们常见的农作物。
作为食品，大豆富含蛋白质和氨基酸，可提供人们必须的营养物质。
除了直接食用，大豆还可以加工成豆腐、豆浆、豆干、腐竹，酿造酱油、制作豆豉，极大丰富了人们的餐桌。
除此之外大豆用来榨油，加工成饲料，在工业上也是重要的原材料。
大豆的品质和大豆的价值息息相关，只有提升大豆的品质、了解大豆品质的测定方法以选择出优质的大豆，才能让大豆更好的发挥作用。
二、优质大豆品质分析测定指标大豆的测定指标有很多，包括大田产量及各类物质含量，以下几点就是1、蛋白质含量高，则大豆蛋白质含量达45%以上，产量比当地同类品种增产5%。
2、脂肪含量高，则大豆脂肪含量23%以上，产量比当地同类品种增产5%。
3、双高含量的大豆，蛋白质含量42%以上，脂肪含量21%以上，产量比当地同类品种增产5%。
4、适于菜用的大粒品种大豆鲜荚长5.3 cm，宽1.3 cm，含糖量7%，蛋白质36%～37%。
5、外观光滑整洁，无畸形，种脐颜色淡的大豆商品价值最高。
三、大豆品质分析方法（一）、大豆蛋白质的测定（凯氏定氮法）1、把大豆用粉碎机粉碎,取3-5g于已经称量好的皿盒中,在120度的烘箱中烘30分钟。
拿出等待凉后称重,减去皿盒重量，计算水分的百分比。
2、称取0.2gH2SO4，6gK2SO4，把0.5g粉碎好的大豆（不用测量水分的）用滤纸包好放入定氮瓶中，加20ml硫酸,（瓶口上放一个小漏斗,防止蛋白跑掉）开小火在电炉子上消化,等没有碳化颗粒,并处于澄清状态时,拿下来凉一会，再加过氧化氢直到把瓶颈上的蛋白冲洗干净为止，再消化30min，拿下来，等凉.。
实验八大豆蛋白的提取及浓度测定
实验八大豆蛋白的提取及浓度测定实验目的1．掌握大豆蛋白提取的原理和方法。
2．学习Folin—酚法测定蛋白质含量的原理及方法。
3.制备标准曲线，测定未知样品中蛋白质含量。
4．学习计算蛋白质收率。
实验原理榨油工业的副产品——豆粕中含有丰富的蛋白质，依其性质的不同，可分为水溶蛋白，盐溶蛋白，碱溶蛋白，醇溶蛋白。
将豆粕依次用上述溶剂提取，并用有机溶剂沉淀，可制得各部分蛋白质的干粉。
Folin—酚试剂由甲试剂和乙试剂组成。
甲试剂由碳酸钠、氢氧化钠、硫酸铜及酒石酸钾钠组成。
蛋白质中的肽键在碱性条件下，与酒石酸钾钠铜盐溶液起作用，生成紫红色络合物。
乙试剂是由磷钼酸和磷钨酸、硫酸、溴等组成。
此试剂在碱性条件下，易被蛋白质中酪氨酸的酚基还原呈蓝色反应，其色泽深浅与蛋白质含量成正比。
此法也适用于测定酪氨酸、色氨酸含量。
用Folin酚法可测出蛋白制品的含量，已知原料的重量，可以求出蛋白质的收率。
本法可测定范围是25—250µg蛋白质试剂和器材（一）、试剂1.标准蛋白质溶液结晶牛血清蛋白或酪蛋白，预先经微量凯氏定氮法测定蛋白氮的含量，根据其纯度配制成150µg/mL蛋白溶液。
2.Folin—酚试剂（见Folin-酚法测蛋白质）3．其他试剂(1)10％NaCl (2)0．2％ NaOH (3)75％乙醇(4)丙酮(5)6mol／L HCl (6)蒸馏水4测试样品使用前稀释100倍。
（二）、器材试管及试管架，0.5，1及5mL吸量管，恒温水浴，722型分光光度计电动搅拌器，离心机，烧瓶，水泵，吸滤瓶， pH试纸，研钵操作方法（一）大豆蛋白的提取1．将豆粕掰成小块，用研钵磨碎。
2．水的抽提将磨碎之豆粕20g用5～6倍的蒸馏水浸泡，调pH为7．0，在10℃下搅拌抽提15min，离心15min，3500r／min，取上清液，如上清液不清澈再经吸滤(沉淀留下步抽提)。
清液加入等体积在冰箱中预冷的丙酮，用6mol／L HCl调pH4．5～5．0，3000r／min，离心15min，收集沉淀物，反复用丙酮洗涤，得到粉末状蛋白质干粉，待用。
肉制品中大豆粉和浓缩大豆蛋白质的测定
第一部分肉与肉制品化学指标测定实验实验九肉制品中大豆粉和浓缩大豆蛋白质的测定稀酸可以溶解大豆粉和浓缩大豆蛋白中的半纤维素，但不影响各类淀粉。
本方法用以测定有各类淀粉产品中的大豆粉或浓缩大豆蛋白。
一、原理肉类产品在氢氧化钾酒精溶液中加热后，脂肪被皂化，蛋白质被水解，这个处理过程将肉中主要固形物成分（脂肪和蛋白质）提取出来，溶解在溶剂中，而调味料、纤维素和淀粉仍然是沉淀物，然后用稀、酸处理沉淀物，大豆粉的半纤维素溶解。
接着用95%的酒精使纤维素再沉淀，离心（严格控制离心条件）并定量，定量分析时使用了经验换算系数，对于大豆粉是6.0，而浓缩大豆蛋白是2.5。
鉴于此测定是经验性的，所以需按规定严格控制离心时间和速度。
二、仪器离心机、离心管、量桶、漏斗、滤纸等。
三、试剂9 5％酒精；氢氧化钾酒精溶液(8％)：在300mL95％酒精中溶解40gKOH，用95%酒精稀释至500mL；稀盐酸（1：3）：用1体积的浓盐酸与3体积的蒸馏水混合。
四、测定步骤称取10g样品放进100mL的离心管内，加入50mL8％氢氧化钾酒精溶液。
并在蒸汽浴中消化30min，并不时搅拌。
消化后用力振荡并离心4min，倾弃上层清液，用25mL95％酒精洗涤残留物，充分搅拌沉淀物，离心并倒掉酒精溶液。
向沉淀粉加入50m稀盐酸，充分混合，加上塞子并振荡1min，以每分钟2000转的速度离心4min（可保留沉淀物用于测定淀粉）。
如果上清液不够澄清，可用滤纸过滤，将澄清透明的上清液25mL移入盛有75mL95％酒精的第二个离心管内，充分震荡，并放置1小时后离心，离心速度需在1min后从0升到1500转／分，并在此速度下离心2min整，读出在管内沉淀物的体积。
五、结果计算大豆粉（%）= 沉淀物的体积×6浓缩大豆蛋白（%）= 沉淀物的体积×2.5。
大豆蛋白质检测方法
大豆蛋白质检测方法1.引言1.1 概述概述部分的内容可以按照以下方式进行编写：在此文中，我们将关注大豆蛋白质的检测方法。
大豆蛋白质是一种重要的植物蛋白质，具有丰富的营养价值和广泛的应用领域。
因此，准确、快速地检测大豆蛋白质的含量和质量对于农业生产、食品工业以及药品生产等领域非常关键。
随着科学技术的不断发展，大豆蛋白质检测方法也得到了不断完善和创新。
文章将介绍两种主要的大豆蛋白质检测方法，并详细阐述它们的原理和步骤。
在第一种方法中，我们将了解到它基于某种特定的原理来进行大豆蛋白质的检测，通过特定的步骤来获取准确的结果。
而在第二种方法中，我们将探讨它采用的另一种不同原理来进行大豆蛋白质的检测，并且与第一种方法进行对比，分析它们各自的优缺点。
通过对这两种方法的介绍和比较，我们希望能提供给读者们一个全面了解大豆蛋白质检测方法的视角，以便在实际应用中选择最适合的方法。
文章的结论部分还将总结分析这两种方法的优缺点，以及它们在实际应用中的可能应用前景。
通过深入研究大豆蛋白质检测方法，我们可以更好地了解大豆蛋白质的特性和含量，为大豆相关产品的研发和质量控制提供科学依据。
同时，这也为食品安全领域和农业生产提供了重要的支持，促进了行业的健康发展。
总而言之，本文旨在探讨大豆蛋白质检测方法，既介绍了两种常用的方法，又对它们的原理和步骤进行了详细说明。
通过对这两种方法的分析和比较，我们可以更好地理解并选择最合适的方法来进行大豆蛋白质的检测。
这对于大豆相关产业的发展和食品安全具有重要意义。
1.2文章结构文章结构是指文章整体的框架和组织，它决定了文章的逻辑性和连贯性。
本文的目的是介绍大豆蛋白质检测方法，为了使读者能够清晰地了解这个主题，本文将分为引言、正文和结论三个部分。
引言部分将首先对大豆蛋白质检测方法进行概述，介绍大豆蛋白质在食品工业和农业中的重要性以及对其质量检测的需求。
随后，将说明本文的结构和各部分的内容，以使读者对文章有一个整体的了解。
大豆中蛋白质测定换算系数
大豆中蛋白质测定换算系数1.引言1.1 概述大豆作为一种重要的蛋白质来源，其蛋白质含量是衡量其营养价值的重要指标之一。
然而，在实际测定中，不同的测定方法可能会得出不同的蛋白质含量结果。
为了比较和统一不同测定方法的结果，科研工作者们引入了蛋白质测定换算系数的概念。
本文即旨在探讨大豆中蛋白质测定换算系数的相关问题。
在大豆中蛋白质测定方法方面，目前主要常用的方法有几种，例如Kjeldahl法、比色法、生物素标记法等。
每种方法都有其优点和局限性，因此在实际应用中需要选择合适的方法进行测定。
然而，由于不同的测定方法在蛋白质测定上的原理和操作步骤不同，所得结果也会有所差异。
为了比较这些结果，研究人员引入了蛋白质测定换算系数，以将不同方法的结果换算为相同的单位，从而方便进行比较和评估。
蛋白质测定换算系数的意义主要体现在以下几个方面。
首先，通过使用换算系数，可以将不同测定方法得到的蛋白质含量结果进行统一，避免了由于不同方法导致的结果差异。
其次，蛋白质测定换算系数可以用于比较不同品种或不同产地的大豆中蛋白质含量，为科研工作者和生产者提供了重要的参考依据。
此外，蛋白质测定换算系数还可以为食品工程师和营养学家等相关领域的研究提供基础数据，为开发和改良大豆制品提供科学依据。
综上所述，大豆中蛋白质测定换算系数是一个重要的研究课题。
通过比较和分析现有的蛋白质测定方法以及其应用中存在的问题，我们可以更好地理解蛋白质测定换算系数的意义和作用，进而为相关领域的研究和应用提供科学支持。
因此，本文将着重探讨大豆中蛋白质测定换算系数的相关问题，并展望其在未来的应用前景。
1.2 文章结构：本文主要分为引言、正文和结论三个部分进行阐述，每个部分的内容安排如下：引言部分通过概述大豆中蛋白质测定换算系数的重要性和应用背景来引出本文的主题。
其次，介绍了本文的结构，包括正文部分的两个小节以及结论部分的总结和对蛋白质测定换算系数的应用前景展望。
正文部分将分为两个小节讨论大豆中蛋白质测定方法和蛋白质测定换算系数的意义。
大豆分离蛋白中蛋白质含量的快速测定
１ ２ 试 剂 、
９ ％以上 的精 制 大豆 蛋 白产 品 ， 一 种 高营 养 的 食 ０ 是 品添加剂 。测定 粮食 、 品 中蛋 白质 含 量 的方 法 主 食 要有 凯 氏定氮法 ｕ （ 国标 法 ）缩 二脲 法 、 、 紫外 分光 光 度法 、 染料结 合 法 、 水杨 酸 比色法 等方 法＿ 。经典 的 ２ 』 凯 氏定氮 法测定 结果准 确 ， 但耗 时较 长 ， 测定 单个 样 品需 ４～６ ， 操 作 繁 琐 。本 文研 究 了采 用 基 于经 ｈ且 典凯 氏定氮 法原 理设计 的 Ｋ Ｎ一０ Ａ半 自动定 氮仪 Ｄ ８
维普资讯
粮油食品科技 第 １卷 ２ ７ 第５ ５ ０ 年 ０ 期
质 量 控制
大豆分离蛋 白中蛋 白质 含量 的快速测定
杨 燕 强 ， 发 宝 赵
（ 治 出入 境 检 验 检 疫局 ， 西 长 治 长 山 ０ ６０ ） ４ ０ ０
摘 要 ： 用 基 于 经 典 凯 氏 定 氮 法 原 理 设 计 的 Ｋ Ｎ０ Ａ 半 自动 定 氮仪 对 大 豆 分 离 蛋 白 中蛋 白质 含 采 Ｄ ．８
Ａｂ ｔａ ｔ Ｔｈ ａ ｉ ｅｅｍｉａｉｎ ｍｅｈ ｄ ｏ ｒｔｉ ｏ ｔｎ ｎｓ ｙ ｐ ｏｅｎ ｉｏａｅｈ ｓｂ ｅ ｅ ｐ ｂ ｓｎ ｈ ｓｒ ｃ ： ｅ ｒｐｄ ｄ ｔｒ ｎ ｔｏ ｔ ｏ ｆｐ ｏｅｎｃ ｎ ｅ ｔｉ ｏ ｒｔｉ ｓ ｌｔ ａ ｅ ｎ ｓｔｕ ｙ ｕ ｉ ｇｔｅ
量进 行快速 测 定。结果 经 ｔ 检验 ， 经典凯 氏 定氮 法测 得 结果 无显 著 性 差异 ， 回收 率 在 ９ ．３ 与 且 ９５％
～
１０ １ ％之 间。表 明该 方 法测定结 果准确 可 靠、 ０ ．９ 操作 简单 快速 ， 用 于大豆分 离蛋 白 中蛋 白质含 适
利用蛋白质SDS_PAGE电泳方法检测转基因大豆的初步研究
利用蛋白质SDS_PAGE电泳方法检测转基因大豆的初步研究转基因大豆是指通过遗传工程技术改变了其基因组的大豆。
由于转基因大豆在农业生产中的广泛应用，对其进行检测变得非常重要。
蛋白质SDS_电泳方法是一种常用的蛋白质分析方法，可以用来检测基因改造对大豆蛋白质组成的影响。
在本文中，我们将详细介绍利用蛋白质SDS_电泳方法进行转基因大豆检测的初步研究。
首先，我们需要准备实验所需的试剂和设备。
实验所需的试剂主要包括SDS-凝胶缓冲液、蛋白质提取缓冲液和电泳样品缓冲液等。
设备包括垂直SDS-电泳仪、透明模板和电源等。
此外，还需要种植和提取转基因大豆和野生大豆的样品。
接下来，我们需要进行蛋白质的提取。
首先将转基因大豆和野生大豆的样品分别切碎并加入蛋白质提取缓冲液中，然后用离心机离心，将上清液收集下来。
接着，将上清液中的蛋白质含量测定，以保证样品含有足够的蛋白质进行电泳。
然后，我们需要制备SDS-凝胶。
首先准备SDS-凝胶缓冲液，并将其倒入平板中。
然后，在设备的底部插入透明模板，并将模板固定住，以确保凝胶可以充分凝胶化。
接下来，将凝胶缓冲液注入模板中，并等待其凝胶化。
凝胶凝胶化后，我们可以开始进行电泳实验了。
首先，将转基因大豆和野生大豆的蛋白质提取液分别加入电泳样品缓冲液中，并将其加热至95°C，以去除蛋白质的二级结构和使其变为线性构象。
然后将样品加载到凝胶孔中，接着将电泳仪的正负端子分别连接到电源上，并设置合适的电压和电流进行电泳。
电泳完成后，我们可以进行凝胶染色。
通常使用Coomassie蓝或银染色方法。
在染色前，将凝胶浸泡在染色剂中，然后进行洗涤和显色。
染色后，我们可以使用图像分析软件进行蛋白质条带的分析和比较。
通过蛋白质SDS-电泳方法，我们可以比较转基因大豆和野生大豆的蛋白质组成差异。
如果在转基因大豆中发现了新的蛋白质条带，或者野生大豆中的一些蛋白质缺失或表达量改变，这可能意味着基因改造对该大豆的蛋白质组成产生了影响。
大豆蛋白的提取、干燥、性质测定实验
大豆蛋白的提取、干燥、性质测定实验摘要：以大豆为原料，采用碱提酸沉法提取大豆蛋白，以蛋白质提取率为指标，通过查阅文献确定了提取大豆蛋白的最佳工艺：35摄氏度下，pH 10 ，浸提时间40 min, 液料比20：1( mL/g）。
将提取出来的大豆蛋白用真空冷冻干燥装置进行干燥，通过前后称重，计算大豆蛋白的提取率。
利用提取出来的大豆分离蛋白进行大豆蛋白的性质测定实验。
食品体系中的大豆蛋白所具有的功能性如下：功能性质作用方式食品体系溶解度蛋白质溶解性能，与pH等相关饮料类乳化性脂肪乳状液的形成以及稳定肉类、酱类、汤类持水性游离脂肪的吸附肉类、酱类起泡性形成稳定膜、固定气体搅打奶油、甜食粘度增稠作用汤类、肉汁凝胶蛋白质基质的形成凝乳、乳酪凝聚-粘附性蛋白质作为粘附剂香肠、焙烤制品粘弹性面筋中的疏水键，凝胶中的二硫键肉类、焙烤本组决定利用提取的大豆分离蛋白测定大豆蛋白的持水性。
关键词：大豆蛋白、碱提酸沉、真空冷冻干燥、持水性正文：实验材料仪器：天平、烧杯、量筒、玻璃棒、pH试纸、Sigma离心机、4℃冰箱、1号离心管、20ml离心管、50ml离心管、真空冷冻干燥箱材料：大豆粉、蒸馏水、氢氧化钠溶液、盐酸溶液实验步骤一、大豆蛋白的提取原理：大豆分离蛋白的生产方法常见的有: 超滤膜法、离子交换法、碱溶酸沉法, 其中碱溶酸沉法是我国普遍采用的生产工艺。
此法能够有效地提高产品得率,能充分利用蛋白资源。
生产的分离蛋白不仅除去了可溶性糖类, 还除去了不溶性聚糖, 因而蛋白质含量高。
该种工艺主要是基于调解溶液的 p H 值, 从而调解蛋白质的溶解度, 在 pH 值调至 4. 5 左右时, 由于蛋白质处于等电点状态而凝集沉淀下来, 经分离后得到蛋白沉淀物, 再经洗涤、中和、灭菌、干燥即得分离蛋白产品。
1、用电子天平称取大豆粉末10.01g，加入200ml蒸馏水，即液料比为20:1，搅匀.2、取40％的氢氧化钠10ml，加入100ml蒸馏水进行稀释，配制成稀碱溶液待用。
大豆品质分析实验报告
一、实验目的通过对大豆品种的蛋白质、脂肪、水分等成分进行分析，了解大豆的品质特性，为大豆的种植、加工和食用提供参考。
二、实验材料1. 大豆样品：10个不同品种的大豆2. 实验仪器：电子天平、高速离心机、烘箱、蒸馏装置、分析天平、电热恒温水浴锅、移液器、容量瓶、比色皿等3. 实验试剂：无水硫酸钠、苯、硫酸、无水乙醇、氢氧化钠、酚酞指示剂等三、实验方法1. 蛋白质含量测定采用凯氏定氮法测定大豆样品中的蛋白质含量。
（1）准确称取大豆样品1.0000g，加入硫酸消化，定容至50ml。
（2）将消化液转移至蒸馏装置，加入氢氧化钠溶液，蒸馏，用无水硫酸钠吸收。
（3）将吸收液转移至容量瓶中，加入酚酞指示剂，用氢氧化钠溶液滴定至终点。
（4）根据氮含量计算蛋白质含量。
2. 脂肪含量测定采用索氏抽提法测定大豆样品中的脂肪含量。
（1）准确称取大豆样品5.0000g，加入无水硫酸钠，放入索氏抽提器。
（2）将索氏抽提器放入电热恒温水浴锅中，加热至沸腾，维持一定时间。
（3）将抽提液转移至容量瓶中，加入无水硫酸钠，定容至50ml。
（4）用苯溶解抽提液，比色测定脂肪含量。
3. 水分含量测定采用烘干法测定大豆样品中的水分含量。
（1）准确称取大豆样品5.0000g，放入烘箱中，在105℃下烘干至恒重。
（2）根据烘干前后样品质量差计算水分含量。
四、实验结果与分析1. 蛋白质含量分析实验结果显示，10个大豆品种的蛋白质含量在37.2%~45.6%之间，平均值为40.8%。
其中，品种A、B、C的蛋白质含量较高，分别为45.6%、44.2%、43.5%。
2. 脂肪含量分析实验结果显示，10个大豆品种的脂肪含量在18.5%~22.8%之间，平均值为20.6%。
其中，品种D、E、F的脂肪含量较高，分别为22.8%、21.9%、21.3%。
3. 水分含量分析实验结果显示，10个大豆品种的水分含量在8.2%~10.1%之间，平均值为9.2%。
其中，品种G、H、I的水分含量较低，分别为8.2%、8.8%、9.3%。
植物蛋白质的提取和含量测定
五、实验步骤 稀释至1升，过滤，滤液置于棕色试剂瓶中保存。
5 标准 BSA（0. Folin—酚试剂甲（用前组分一: 组分二 = 50:1） 冷却后溶液呈黄色（如仍呈绿色，须再重复滴加液体溴的步骤）。
（一）蛋白提取 使用时用标准NaOH滴定，酚酞作指示剂，然后适当稀释，约加水1倍，使最终的酸浓度为1N左右。
三、实验器材
1.分光光度计（500nm），比色皿 2.计算纸（9 cm×9 cm） 3.离心机 （离心管100ml 、50ml） 4.组织捣碎机 5.精密pH试纸
四、实验试剂
1.大豆干粉 2. 0.2%NaOH 3. 丙酮 （预冷） 4. 6M HCl，1M HCl 5 标准 BSA（0.5 mg/ml） 6. Folin—酚试剂甲（用前组分一: 组分二 = 50:1） （1） 1克 Na2CO3和0.2克 NaOH溶解于50毫升蒸馏水中。 （2） 0.5克硫酸铜（CuSO4•5H2O）溶解100毫升 1%酒石酸钾钠 （KNaC4H4O6•4H2O）中。
称Fo取lin分3二克=大50豆:1）干粉中蛋白含量）。
Folin—酚试剂乙 （用前稀释一倍） 每次使用前，将50ml（1）与1ml（2）混合，即为试剂甲。 离心机 （离心管100ml 、50ml）
五、实验步骤
（二）蛋白含量测定
1. 制作标准曲线 按照下表操作，以A500nm为纵坐标，以蛋白含量为横坐标建立标曲。 2. 测定提取第2步稀释后样品的蛋白浓度 按上表中样品列操作，根据A500nm查找含量，并计算原始浓度。
量剩余上清液的体积，加入等体积预冷丙酮，先用6mol/L的HCl调pH至，再用1mol/L的HCl小心调pH至，于4000r/min离心15min，(留
取沉淀物)，并用量少剩量丙余酮反上复清(至液少两的次体)搅积拌洗，涤加（在入离等心管体中积进行预）冷，加丙入酮丙酮，后先一定用将6沉m淀搅o拌l/充L分的，H使C沉淀l调脱水pH。
大豆中蛋白质含量
大豆中蛋白质含量大豆中蛋白质含量是大豆质量评价的重要指标之一，也是制备豆制品的重要指标。
大豆是一种非常营养丰富的植物，其中有蛋白质的含量非常丰富，含量的精确测定是进行大豆质量评价和加工处理的基础。
大豆蛋白质含量的测定，根据表面特征可以分为：理化指标法、紫外光谱法、超声波技术、火焰原子吸收法等。
现今使用最多的方法就是火焰原子吸收法，也称Kjeldahl，是一种根据氮的定量测定方法，在经过Kjelrdahl实验后，把原始的大豆样品中氮含量转换为单位重量的蛋白质含量。
由于大豆自身品质变化差异大，蛋白质含量的测定受到因素的影响也较大，比如受品种、栽培环境、生长周期、收获日期等影响。
此外，大豆蛋白质含量在加工过程中也会受到影响，比如烘焙、提取程序等都会影响最终的蛋白质含量。
要准确测定大豆蛋白质含量，还需要考虑采用的采样方法，采样容量，以及采样方法的准确性，确保样品的准确性以及准确测定结果。
此外，实验环境也是非常重要的因素，室内温度、湿度以及实验器材等都会影响测定结果的准确性。
Kjelrdahl是目前用来测定大豆蛋白质含量常用的一种方法，但也有一些其他的测定方法，如紫外光谱测定法，它把大豆中的底物分解成蛋白质，用紫外光谱仪测定吸收率，并转换为蛋白质含量。
测定大豆蛋白质含量的另一种方法是放射免疫法，这种方法是利用山羊抗体抗原反应的原理，来测定大豆中的蛋白质含量。
这种方法有很强的特异性，能够较为准确地测定大豆中蛋白质含量，但它的操作较为复杂，也比较昂贵。
大豆蛋白质含量的准确测定对于大豆加工产品质量、生产效率和结构的研究有重要的意义，同时也是大豆制品产品品质的关键因素之一。
因此，要正确测定大豆中蛋白质含量，需要选择合适的实验方法，同时在实验过程中要做到操作正确，控制各准确性，以确保最终测定结果的准确性。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
大豆蛋白质含量的测定实验方案1 原理试样在催化剂存在下用硫酸消解,反应产物用碱中和后蒸馏。
释放出的氨被硼酸溶液吸收,吸收液用硫酸溶液滴定,测定氮含量并计算粗蛋白质含量。
2试剂除参考物质外,只使用经确认无氮的分析纯试剂,试验用水为蒸馏水或去离子水或同等纯度水.警告:2.4、2.8、2.ll和 2.12中提到的试剂应谨慎使用。
2.1 硫酸钾 (K2SO4)。
2.2 五水硫酸铜 (CuSO4·5H20)。
2.3 二氧化钛 (TiO2)。
2.4 硫酸(H2SO4):c(H2SO4)=18mol/L,ρ20(H2SO4)=1.84g/mL。
2.5 石蜡油。
2.6 N-乙酰苯胺 (C8H9NO):熔点114℃,氮含量10.36g/100g。
2.7 色氨酸(C11H12N22):熔点282℃,氮含量13.72g/100g。
2.8 五氧化二磷(P205 )。
2.9 硼酸:水溶液 ,ρ20(H3BO3)=40g/L,或所使用仪器推荐的浓度。
2.10 指示剂:按照所使用仪器的推荐,加入一定体积的溶液A(2.10.1）和溶液B(2.10.2 )(例如:5体积溶液A和1体积溶液B)。
注1:有可能准各使用的硼酸溶液中含有指示剂（2.9+2.10）。
注2:溶液A和溶液B的比例可根据仪器进行调整。
也可以使用pH电极进行电位滴定，PH电极需要每天校准。
5.10.1溶液A:200mg溴甲酚绿（C21H14Br4O5S）溶于体积分数为95%的乙醇（C2H5OH），配制成100mL溶液。
5.10.2溶液B:200mg甲基红（C15H15N3O2）溶于体积分数为95%的乙醇（C2H5OH）,配制成100mL溶液。
5.11 氢氧化钠水溶液（NaOH）:质量分数33%或40%，含氮量少于或等于0.001%。
也可以使用含氮量少于或等于0.001%的工业级氢氧化钠。
5.12 硫酸:标准滴定溶液，c（H2SO4）=0.05mol/L因为硫酸在连接管中不产生气泡，所以推荐用硫酸代替盐酸。
5.13 硫酸铵：标准滴定溶液c（NH4）2SO4=0.05mol/L。
也可以选择使用某一种盐，例如（NH4）2Fe（SO4）2▪6H20。
5.14 浮石:颗粒状，盐酸酸洗并灼烧。
5.15 蔗糖(可选择）：不含氮。
3仪器3.1机械研磨机。
3.2筛子:孔径0.8mm。
3,.3分析天平:分度值为0.001g。
3.4消化、蒸馏和滴定仪器：消化单元应确保温度的均匀性。
通过使用两种参考物质(2.6或2.7)中任意一种进行全过程测定来评估温度的均匀性，并同时并同时测定回收率。
蒸馏仪器也应通过进行已知量铵盐的蒸馏[例如10mL硫酸铵溶液（2.13）]和检查回收率,回收率应大于或等于99.8%。
4扦样实验室接受的样品应具有代表性 ,在运输或储藏过程中不应受损或改变。
本标准不规定扦样方法,推荐 ISO6644和ISO13690给出的扦样方法。
5试样制备如果需要,样品要进行研磨 ,使其完全通过0.8mm孔径的筛子。
对于粮食,至少要研磨200g样品,研磨后的样品要充分混匀。
6 水分测定用本标准第8章制备的部分样品测定水分(WH)。
测定水分的方法要适合测定对象(例如谷物和谷物制品按GB/T 21305测定;玉米按GB/T 10362测定。
或者使用参考文献[10]中描述的适合特殊种子的方法)。
7操作步骤7.1 通则如果需要检查是否满足重复性限(9.2)的要求 ,可按照 7.2到 7.5的步骤迸行两次独立的测定。
7.2 称样依据预估含氮量称量试样(第8章),精确到0.001g,使试样的含氮量在0.005g～0.2g之间,最好大于0 .02 g。
7.3 测定7.31 消化警告:下列操作应在通风良好,具有硫酸防护罩的条仵下进行。
转移试样(7.2)到消解烧瓶,然后加人 :—10g硫酸钾(2.1) ;—0.30g五水硫酸铜(2.2);—0.30g二氧化钛(2.3)(也可以使用符合规定成分的粒状催化剂);—20mL硫酸(2.4)。
可根据仪器情况调整硫酸的加人量,但应确认此改进可以满足对N-乙酰胺的回收率达到 99.5%和对色氨酸的回收率达到99.0%。
小心混合以确保试样的完全浸润。
将烧瓶置于顶热到420℃±10℃的消化单元。
从消化单元温度再次达到420℃±10℃时开始计时,至少消化2h,然后取下自然冷却。
注:建议加人浮石(2.14)作为沸腾调节器和加入如石蜡油(2.5)的消泡剂。
最短消化时间应使用参考物质进行检验,因为参考物质很难达到回收率的要求(见7.5)。
遵循设备制造商关于蒸汽排空的建议,因为过强的吸力可能导致氮的损失。
7.3.2 蒸馏小心地向冷却后的消解烧瓶中加入50mL水,放冷至室温。
量取50mL硼酸(2.9)到接收瓶中,无论是使用目测比色或光学探头,均要向其中加至10滴指示剂(2.10)。
连接好蒸馏装置,向消解烧瓶中加入5mL 过量的氢氧化钠溶液完全中和所使用的硫酸,然后开始蒸馏。
根据仪器,所用的试剂量可以变化。
7.3.3 滴定使用硫酸溶液(2.12)进行滴定,滴定既可以在蒸馏过程中进行,也可以在蒸馏结束后对所有蒸馏液进行滴定。
滴定终点的确定可以使用目测比色、光学探头或用pH 计的电位分析判定。
7.4 空白试验使用7.3.1到7.3.3的试剂,不加试样进行空白试验。
注:可以用1g 蔗糖(2.15)代替试验样品。
7.5 参考物质测试(检查试验)在五氧化二磷(2.8)的存在下,60℃～80℃真空干燥参考物质。
进行检查试验,试样的最小量根据N-乙酰胺或色氨酸的含氮量决定,至少0.15g 。
注:可以在参考物质中加入1g 蔗糖 (2.15）。
N-乙酰胺的氮回收率至少为99.5%,色氨酸的氮回收率至少为99.0%。
8结果表述 8.1 氮含量氮含量(w N ),以干基质量分数表示 ,按式(1)计算 :)100()(140100100100014.0)(0101H H N m V V c m c V V ωωω--=-⨯⨯⨯⨯-= (1)式中:V 0—空白试验滴定的硫酸溶液的量,单位为毫升（mL ）; V 1—试样滴定的硫酸溶液的量，单位为为毫升（mL ）；0.014—滴定1mL0.5mol/L 硫酸溶液所需氮的量，单位为克（g ）; c —滴定所使用的硫酸溶液的摩尔浓度，单位为摩尔/升（mol/L ）；m—试样的质量,单位为克（g）;ωH—试样的水分。
结果保留两位小数。
8.2 粗蛋白含量根据谷物或豆类品种的不同采用相应的换算系数（见附录C，其他通常用6.25），乘以测定的氮含量 (11.1)值，计算得到干物质的粗蛋白含量。
结果保留两位小数。
9 精密度9.1 实验室间实验附录A详述了方法精密度的实验室间实验结果。
这些实验室间实验结果可能不适用于附录以外的其他浓度范围。
9.2 重复性在不同实验室，由不同的操作者使用不同的设备，按相同的测试方法，对同一被测试对象互相独立进行测试获得的两次独立测试结果的绝对差值大于重复性限r的情况不超过5%，重复性限r按式（2）计算：r=(0.0063×ω)×2.8 (2)P式中：ωP－以干基产品质量分数表示的样品粗蛋白含量（见表B.1）。
对于粗蛋白含量在7%～80%的产品，见表A.1和图A.1。
9.3 再现性在不同实验室,由不同的操作者使用不同的设备，按相同的测试方法,对同一被测对象相互独立进行测试获得的两次独立测试结果的绝对差值大于再现性限R的情况不超过5%，再现性限R按式（3）计算：R=(0.014×ω)×2.8 (3)P对于粗蛋白含量在 7%～80%的产品,见表A.1和图A1。
9.4 临界差9.4.1 同一实验室两组测定结果的比较在重复性条件下进行两组测定的结果平均值之间的临界差按式(4)计算:CDr=1.98×S r =1.98×(0.063×ωP )=0.01247×ωP (4)9.4.2 两个实验室间两组测定结果的比较在不同实验室在重复性条件下进行两组测定的结果平均值之间的临界差按式(5)计算:2222)0063.0(5.0)014.0(8.25.08.2P P r R S S CDR ωω⨯⨯-⨯=-==0.03716×ωP (5)10 测试报告测试报告应规定:a ）完整的识别样品所需的全部信息;b) 如果已知取样方法,应说明使用的扦样方法; c) 采用的参考本标准的测定方法； d) 使用的换箅系数 (见 11.2中注）；e) 所有本标淮中没有具体说明的、或者被认为是可选择的，以及可能影响测试结果的操作细节;F)测试结果,如果进行了重复性实验，应说明两次测定的结果和平均结果。
11实验数据记录。