石蜡切片冰冻切片超薄切片
第四章-其他切片法
常用的固定剂 戊二醛、多聚甲醛、高碘酸-赖氨酸-多聚甲醛 (PLP)等,戊
二醛的常用浓度是0.05%〜1%,常与2%多聚甲醛混合使用,固 定的时间是15〜60 min。多聚甲醛的使用浓度是2%〜8%,固定 时间从1〜 96 h,需要在4〜 6 ℃冰箱中固定保存。高碘酸-赖氨 酸-多聚甲醛是效果较好的固定剂,固定时间在1〜 3 h左右。 冰冻超薄切片
片上,因为后续的制片过程还要经过许多步骤和多种溶液 的处理,切片容易脱落。除了用多聚-L-赖氨酸将细胞和组 织粘在载玻片上以外,还可以用明胶。做法:0.5%的明胶 在 去 离 子 水 中 加 热 融 化 , 把 干 净 的 载 玻 片 放 进 溶 液 中 15 min,然后取出风干24 h。
冰冻切片注意事项
切片时,刀口向内对着材料,然后用右手臂力(不要用手腕 力)自左向右均匀地斜向后拉切,材料应一次切下一片,中 途不要停顿,不要来回切,待连续切下数片后,用毛笔蘸水 轻轻地从刀口取下切片,放入盛水培养皿中。切片结束后, 仔细选择符合要求(平、薄、正、结构完整)的切片备用。
③用毛笔从培养皿中将挑选好的切片1〜2片转移到载玻片上。
制片效果:细胞壁上单纹孔清晰可见,细胞壁及细胞内淀 粉粒染为红玫瑰色:糊粉粒染为橘红色。
粘片 将有材料的载玻片稍加烘烤,便于材料紧贴,但不 能烤太久,以免材料翘起。
染色 ①滴注高碘酸(0.5%水溶液)约5〜10 min。 ②流水洗5 min,蒸馏水过一遍。 ③Schiff试剂(无色品红)染8〜10 min (可40℃温箱加速染色, 材料由无色渐转变为深玫瑰红色,镜检,淀粉粒着色适度时, 即停止染色,转入下一步)。 ④水洗去浮色(立式染色缸中进行,蒸馏水过一遍)。 ⑤以滴注方式,漂洗2次(每次 5 min)。 ⑥流水冲洗 5 min,蒸馏水冲洗1次。
从石蜡块及石蜡切片制备超薄切片的注意点
碳的双蒸水,染液配好后就分装成小瓶使用,如发现有沉淀就应更换。
染色操作时需十分小心,尽量避免接触到空气中的二氧化碳,铜网从染液中取出后,立即用大量流水冲洗,镊子夹住的部分更要冲洗干净。
4.电镜观察时切片遭电子束轰击而破损甚至被烧掉在下列情况下易发生。
(1)包埋剂聚合不完全或包埋剂不新鲜,放置时间过久导致强度不够。
(2)包埋剂配方不合适或配制时搅拌不充分。
(3)切片上本身已有破损,或切片上有污染物,在电子束轰击时受热不均匀而被烧。
(4)在电子显微镜观察时所用光栏过大,或聚光镜聚焦瞬间电子束聚焦过强,亮度过高。
五、从石蜡块及石蜡切片制备超薄切片的注意点有时某个标本用光学显微镜观察时难以确诊,或者在石蜡切片上发现有诊断价值的部位需要用电子显微镜作进一步观察,在标本已制成石蜡块或石蜡切片的情况下,必须设法把包埋在蜡块中或石蜡切片中的标本再制备成超薄切片。
经过这番处理过的标本,很多细微结构必然已遭到破坏,但还能找到一些有诊断价值的佐证。
如在电子显微镜下可以观察有无肌丝、桥粒、神经内分泌颗粒、黑色素颗粒以及病毒颗粒等存在,以便对诊断有所帮助。
在制备这类标本时,还可利用二甲苯既可溶解石蜡又可溶解锇酿、并能与环氧树脂相混合的特性,使标本不必经过水化就直接脱蜡、后固定、环氧树脂浸透,进行快速包埋。
(1)由于制作石蜡包埋标本的固定条件,没有制备电子显微镜标本的技术条件那样严格,尤其是对固定液的pH、渗透压等没有严格要求,再加上透明及浸蜡包埋时的抽提和组织收缩等因素的影响,因而再制成超薄切片后,在电子显微镜下观察的细胞结构已遭不同程度的破坏。
如果标本原先系用中性福尔马林固定,则其超微结构的保存要好得多。
(2)制备石蜡标本时使用的二甲苯对组织成分的抽提作用很大,有时使用的石蜡硬度大、熔点高,更易使细胞收缩变形,使细胞质及胞核内部结构常呈现空化,也易造成切片困难,切片容易破碎。
如果缩短标本在二甲苯中的时间,包埋时使用熔点较低的软石蜡,则其结构保存会相对好得多。
冰冻切片详细说明解读
冰冻切片详细说明切片技术最早期是从冰冻切片开始,后来逐步有了发展和更新,冰冻切片弥补了石蜡切片和火棉胶切片之不足,石蜡切片和火棉胶切片需时太久,且在制片中要使用许多化学试剂,石蜡切片还需要加温过程,因而某些重要的不稳定的组织成分如脂类、酶以及抗体等,可能被溶解和破坏。
冰冻切片过程较简单,无须经过上述步骤,组织中的水分起着包埋剂的作用,组织经固定或不固定即可进行冰冻切片,切片厚度一般可在6-8微米,组织没有收缩,易保持生活时原有状态,是保存脂肪组织,许多神经组织特殊染色方法和组织化学方法,特别是酶的活性十分理想的切片方法,对于外科临床诊断和现代免疫荧光诊断,冰冻切片也很重要。
其缺点是组织过大不易冰冻,连续切片困难。
5微米以下切片不易成功。
但是随着现在冰冻包埋液的不断改进,已经能切出少于3微米的切片一、直接冰冻切片法冰冻切片多用于新鲜组织、甲醛固定组织和冰箱冷藏组织等。
组织块不经任何包埋剂而直接放在制冷台上冷却后再进行切片。
1.恒冷箱切片就是将组织在恒冷箱的切片机切片。
目前恒冷箱切片机的品种较多。
此种切片适用于科研和教学上的连续切片。
要求预先开动电源(预冷准备),配多种固定组织台,以便更换组织。
2.甲醇制冷器制冷箱为附有带导管的制冷台和制冷刀的甲醇循环装制,其冷却速度比较快,属于开放式,作一般常规冰冻切片用。
3.二氧化碳冰冻法将组织用蒸馏水洗后,放在冰冻切片机的冷冻台上,加蒸馏水少许。
打开冷冻台的二氧化碳开关,二氧化碳气体喷出,待组织出现冷霜时,将二氧化碳关闭,即可切片。
若组织冷冻过硬则切片易碎;组织冷冻硬度不足,则切片呈粥糜状,需用间歇方法继续冷却。
硬度一般在刚开始解冻时最合适,应迅速切片。
4.半导体致冷冰冻切片法将组织置半导体致冷台上,滴加少许蒸馏水,调好切片机的厚度。
先接通热器的循环流水,然后接通电源,电源的正负极切勿接反,用整流电源控制温度。
二、明胶冰冻切片法明胶包埋法一般多用于冰冻切片易破碎的组织,特别是某些有树枝状突起的组织,当其切片后投入水中时,常常引起分散,甚至发生丢失,某些间隙较多的组织,有时会因发生散乱而失去相互间的联系,可形成移位现象。
学习做切片
形态学方法免疫组织化学实验对象:冰冻切片步骤1、室温下复温30min,0.01MPBS清洗5min×3;2、加入配好的0.3% Triton X100(30% Triton X100+0.01MPBS 100ml)30min,以增加细胞的通透性,0.01MPBS清洗5min×3;3、5%小牛血清封闭1h0.01MPBS清洗5min×3;3、加入用血清稀释液(牛血清白蛋白1.00g+0.01MPBS 100ml)稀释的一抗,4℃存放24-48h;吸去抗体,0.01MPBS洗5min×3;4、加入配好的0.3%的过氧化氢甲醇溶液(甲醇80ml+0.01MKPBS 100ml+30%过氧化氢)3 0min,以消除内源性过氧化物酶的影响,0.01MPBS清洗5min×3;5、加入0.01MPBS稀释的的二抗,室温孵育2h。
0.01MKPBS洗5min×3;6、加入ABC复合物之类的抗体,室温孵育2h,0.01MPBS洗5min×3;蒸馏水迅速冲三次;7、加入显色液,进行免疫组织化学显色,时间一般不超过30min,可不时在显微镜下进行观察,待细胞着色而背底颜色较淡时马上吸去显色液,用蒸馏水迅速冲三次后加入0.01MKPBS终止反应;8、梯度酒精脱水之后,封片,拍照。
细节将消除内源性过氧化物酶这一步放在后面,能避免双氧水对目的蛋白的影响1)实验技术大类:形态学(2)具体实验技术名称:冰冻切片(3)实验对象:脑组织(4)简要实验步骤1. 经心脏生理盐水灌注取脑,对半切开,4%多聚甲醛浸泡固定(4℃)2. 20%、30%蔗糖/0.1M PB溶液梯度脱水、直至标本在标本瓶中沉底。
3. 标本在30%蔗糖/0.1 mol/L PB溶液脱水至沉底后取出,滤纸吸干表面水分。
4. 标本经OCT包埋剂包埋,连续冠状位切片(5)我的经验或者心得体会:1. 脑组织相对于其它器官含水量尤其丰富,冰冻切片时冷冻的速度要快,冻结的速度越慢,冰晶形成越多。
石蜡切片VS冰冻切片
石蜡切片V S冰冻切片石蜡切片不仅用于观察正常细胞组织的形态结构,也是病理学和法医学等学科用以研究、观察及判断细胞组织的形态变化的主要方法,而且也已相当广泛地用于其他许多学科领域的研究中。
冰冻切片是一种在低温条件下使组织快速冷冻到一定的硬度,然后进行切片的一种方法。
制作过程较石蜡切片快捷、简便,因而多应用于手术中的快速病理诊断。
实验步骤一、石蜡切片1.?固定:将新鲜组织切成小块,固定于4%多聚甲醛过夜。
凝固组织中的物质成分,尽可能保持其活体时的结构。
同时能使组织硬化,有利于切片的进行。
2.脱水:为了减少组织材料的急剧收缩,应使用从低浓度到高浓度递增的顺序进行经70%、85%、95%直至纯酒精(无水乙醇),每次时间为1小时。
固定后的组织材料需除去留在组织内的固定液及其结晶沉淀,否则会影响后期的染色效果。
3.透明:常用的透明剂有二甲苯,二甲苯是石蜡的溶剂。
纯酒精不能与石蜡相溶,还需用能与酒精和石蜡相溶的溶剂,替换出组织内的酒精。
材料块在透明剂浸渍过程称透明。
?4.浸蜡:先把组织材料块放在熔化的石蜡和二甲苯的等量混合液浸渍1小时。
先后移入2个熔化的石蜡液中浸渍1小时左右。
5.包埋:以少许热蜡液将其底部迅速贴附于包埋盒内上,然后置于速冻台,让石蜡固定。
6.切片:切片刀的锐利与否、蜡块硬度是否适当都直接影响切片质量,可将蜡块至于冷水中改变蜡块硬度。
通常切片厚度为3-5um,用毛笔轻托轻放在37度水浴中展片。
7.贴片与烤片:一般使用恒温水浴锅,温度控制在37-40℃左右,有利于石蜡切片的展开,贴好的切片置于60℃恒温箱内干燥2小时,蛋白质凝固后即可染色。
8.切片脱蜡及水化:干燥后的切片置于二甲苯中进行脱蜡,然后依次使用从高浓度到低浓度递减的顺序进行经纯酒精、95%、85%、70%进行水化。
9.染色:经典的苏木精和伊红:细胞核被苏木精染成紫蓝色,多数细胞质及非细胞成分被伊红染成粉红色。
实验操作简单。
免疫组化:指带显色剂标记的特异性抗体在组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈色反应。
石蜡切片和冷冻切片制作流程
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1. 固定,将组织浸泡在固定液中(如福尔马林),使组织蛋白凝固。
石蜡切片
石蜡切片制作一、苏木精-伊红对染法一、器材及试剂:1.器材:切片刀,切片机,恒温箱,蜡杯,酒精灯,解剖刀,解剖剪,解剖盘,培养皿,镊子,单面刀片,毛笔,包埋盒,染色缸,盖玻片,载玻片,玻片盘,树胶,树胶瓶,显微镜,温度计,脸盆,水浴锅。
切片机,切片刀,温台,恒温箱,解剖刀,镊子,剪刀,解剖针,单面刀片,小台木,洒精灯,包埋纸盒,染色缸,烧杯,水盆,熔蜡炉,蜡杯。
2.试剂:中性福尔马林固定液、各种浓度的酒精、二甲苯、石蜡、蜂蜡、苏木精染液,1%伊红酒精溶液,1%盐酸酒精溶液,甘油蛋白粘片剂,中性树胶。
卡诺(Carnoy)固定液,埃利希苏木精染液,1%伊红酒精溶液,1%盐酸乙醇液,各级酒精(30%、50%、70%、80%、90%、95%、100%),二甲苯,甘油蛋白粘片剂,中性树胶。
3.材料:鼠肝、肾、心肌、骨骼肌或其他组织、大豆或小麦、绿豆、洋葱、大蒜、蚕豆的根、茎、叶等。
二、实验原理:石蜡切片是最基本的切片技术,冰冻切片和超薄切片等都是在石蜡切片基础上发展起来的。
苏木素与伊红对比染色法(简称H.E.对染法)是组织切片最常用的染色方法。
这种方法适用范围广泛,对组织细胞的各种成分都可着色,便于全面观察组织构造,而且适用于各种固定液固定的材料,染色后不易褪色可长期保存。
经过HE染色,细胞核被苏木素染成蓝紫色,细胞质被伊红染色呈粉红色。
三、试剂配法:1.中性甲醛固定液:甲醛(37%-40%,市售,本所购买即为此浓度)100mL磷酸氢二钠 6.5磷酸二氢钾(钠)4g双蒸水900mL2.苏木精、伊红染色液为碧云天产品3.1%盐酸乙醇液盐酸1份70%酒精100份4.甘油蛋白贴片剂:蛋白50ml甘油50ml水杨酸钠(防腐剂)1g配制时将鸡蛋一个打破入碗或杯中,去蛋黄留下蛋白,用玻棒调打成雪花状泡沫,然后用粗纸或双层纱布过滤到量筒中,经数小时或一夜,即可滤出透明蛋白液。
此时在其中再加等量的甘油,稍稍振摇使两者混合。
冰冻切片详细说明
冰冻切片详细说明切片技术最早期是从冰冻切片开始,后来逐步有了发展和更新,冰冻切片弥补了石蜡切片和火棉胶切片之不足,石蜡切片和火棉胶切片需时太久,且在制片中要使用许多化学试剂,石蜡切片还需要加温过程,因而某些重要的不稳定的组织成分如脂类、酶以及抗体等,可能被溶解和破坏。
冰冻切片过程较简单,无须经过上述步骤,组织中的水分起着包埋剂的作用,组织经固定或不固定即可进行冰冻切片,切片厚度一般可在6-8微米,组织没有收缩,易保持生活时原有状态,是保存脂肪组织,许多神经组织特殊染色方法和组织化学方法,特别是酶的活性十分理想的切片方法,对于外科临床诊断和现代免疫荧光诊断,冰冻切片也很重要。
一、直接冰冻切片法冰冻切片多用于新鲜组织、甲醛固定组织和冰箱冷藏组织等。
组织块不经任何包埋剂而直接放在制冷台上冷却后再进行切片。
1.恒冷箱切片就是将组织在恒冷箱的切片机切片。
目前恒冷箱切片机的品种较多。
此种切片适用于科研和教学上的连续切片。
要求预先开动电源(预冷准备),配多种固定组织台,以便更换组织。
2.甲醇制冷器制冷箱为附有带导管的制冷台和制冷刀的甲醇循环装制,其冷却速度比较快,属于开放式,作一般常规冰冻切片用。
3.二氧化碳冰冻法将组织用蒸馏水洗后,放在冰冻切片机的冷冻台上,加蒸馏水少许。
打开冷冻台的二氧化碳开关,二氧化碳气体喷出,待组织出现冷霜时,将二氧化碳关闭,即可切片。
若组织冷冻过硬则切片易碎;组织冷冻硬度不足,则切片呈粥糜状,需用间歇方法继续冷却。
硬度一般在刚开始解冻时最合适,应迅速切片。
4.半导体致冷冰冻切片法将组织置半导体致冷台上,滴加少许蒸馏水,调好切片机的厚度。
⑶移至25%明胶溶液内浸6-24h。
⑷25%明胶包埋,连同包埋器放入冰箱内使明胶迅速凝固,取出后在空气中蒸发10min 。
⑹蒸馏水洗后,置冰冻切片机或滑动式切片机切片。
切片可保存于10%甲醛液中。
⑺依检查目的而进行染色,染色后一般不经乙醇脱水及二甲苯透明,而用下述明胶溶液或其他类似的明胶溶液封片:果糖26g,明胶1.1g,钾矾0.75g,麝香草酚水溶液1.15ml。
医学组织学实验技术
组织取材:选择合适的组织,如皮肤、肌肉、骨骼等
固定方法:采用化学固定剂,如甲醛、乙醇等,使组织保持形态
固定目的:防止组织腐烂、变形,便于观察和研究
固定注意事项:固定剂的浓度、时间、温度等要严格控制,以免影响组织结构
组织切片制备
组织切片:将组织切成薄片,便于显微镜观察
切片方法:石蜡切片、冰冻切片、超薄切片等
实验技术分类
组织切片技术:包括石蜡切片、冰冻切片等
组织染色技术:包括HE染色、免疫组化染色等
组织观察技术:包括光学显微镜观察、电子显微镜观察等
组织培养技术:包括细胞培养、组织块培养等
组织化学技术:包括酶活性测定、蛋白质定量等
组织免疫技术:包括免疫荧光、免疫沉淀等
医学组织学实验技术原理
组织取材与固定
切片设备:切片机、冷冻切片机、超薄切片机等
切片过程:取材、固定、脱水、包埋、切片、染色、封片等步骤
组织染色与观察
组织染色原理:利用染料与组织成分的化学反应,使组织结构更清晰可见
组织染色方法:苏木精-伊红染色法、HE染色法等
组织观察方法:显微镜观察、电子显微镜观察等
组织染色注意事项:避免过度染色、注意染色均匀性等
医学组织学实验技术
汇报人:XX
目录
01
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02
医学组织学实验技术概述
03
医学组织学实验技术原理
04
医学组织学实验技术应用
05
医学组织学实验技术发展趋势
06
医学组织学实验技术面临的挑战与展望
添加章节标题
医学组织学实验技术概述
定义与作用
添加标题
添加标题
添加标题
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目的:了解人体组织结构和功能,为疾病诊断和治疗提供依据
各种组织切片方法的操作和优缺点分析
各种组织切片方法的操作和优缺点分析组织切片伴随着显微镜技术和免疫实验等的发展而得到广泛的应用。
本文对其中的冰冻切片、石蜡切片、碳蜡切片、超薄切片、塑料切片等几种常用的实验方法相关操作步骤进行介绍。
冰冻切片是免疫组织化学染色中最常用的一种切片方法。
其最突出的优点是能够较完好地保存多种抗原的免疫活性,尤其是细胞表面抗原更应采用冰冻切片。
新鲜的组织及已固定的组织均可作冰冻切片。
冰冻时,组织中水份易形成冰晶,往往影响抗原定位。
一般认为冰晶少而大时,影响较小,冰晶小而多时,对组织结构损害较大,在含水量较多的组织中上述现象更易发生。
冰晶的大小与其生长速率成正比,而与成核率(形成速率)成反比,即冰晶形成的数量愈多则愈小,对组织结构影响愈严重。
因此,应尽量降低冰晶的数量。
Fish认为冰冻开始时,冰晶成核率较慢,以后逐渐增加,其临界温度为-33。
C, 从-30。
C降至-43。
C之间,成核率急剧增加达1018,然后再减慢。
基于上述理论可采取以下措施减少冰晶的形成。
(1)速冻,使组织温度骤降,缩短从-33。
C43。
C的时间,减少冰晶的形成。
其方法有二:①干冰-丙酮(酒精)法:将150-200ml丙酮(酒精)装入小保温杯内,逐渐加入干冰,直至饱和呈粘稠状,再加干冰不再昌泡时,温度可达-70℃C,用一小烧杯(50-100ml)内装异戊烷约50ml,再将烧杯缓慢置入干冰丙酮(纯酒精)饱和液内,至异戊烷温度达-70℃时即可使用。
将组织(大小为1cm×0.8cm×0.5cm)投入异戊烷内速冻30-60s后取出,或置恒冷箱内以备切片,或置-80℃低温冰箱内贮存。
②液氮法:将组织块平放于软塑瓶盖或特制小盒内(直径约2cm),如组织块小可适量加OCT包埋剂浸没组织,然后将特制小盒缓缓平放入盛有液氮的小杯内,当盒底部接触液氮时即开始气化沸腾,此时小盒保持原位切勿浸入液氮中,大约10-20s组织即迅速冰结成块。
取出组织冰块立即置入-80℃冰箱贮存备用,或置入恒冷箱切片机冰冻切片。
石蜡切片、冰冻切片及振动切片的区别
石蜡切片、冰冻切片及振动切片的区别一、石蜡切片把修好的蜡块装在旋转切片机上,即可进行切片(section)。
切片必须保持切片刀锐利,切片厚度通常为5~7um,也可根据染色需要切成不同厚度,一般不旋转式切片机超过10um。
切好的蜡带,放人40℃左右的温水中将蜡片展平。
良好的切片应无刀痕、裂痕,切片厚度均一平整。
切片如有上述问题,在进行免疫组织化学染色时会出现假阳性现象。
为能得到平整无皱褶的组织切片。
可采用两次展片,即先将组织切片漂浮在30%的乙醇溶液中进行第一次展片,然后将切片捞起,再次放人45~50℃的水浴中进行第二次展片,乙醇的浓度和水温可视组织不同和石蜡熔点的高低自行调整。
此过程是利用乙醇溶液与水之间的张力差展开切片的皱褶。
为防止脱片,载玻片要涂黏片剂。
对HE染色的切片,可在载玻片上涂抹薄层蛋白甘油,但蛋白甘油因含蛋白易导致非特异性免疫反应,故用于免疫组织化学染色的切片常用多聚赖氨酸、3—氨丙基—乙氧基甲硅烷等处理。
二、冰冻切片冰冻切片(fiozen section)是酶组织化学和免疫组织化学染色中最常用的一种切片方法,其最突出的优点是能够较完好地保存细胞膜表面和细胞内多种酶活性以及抗原的免疫活性,尤其是细胞表面抗原更应采用冰冻切片。
新鲜组织和已固定的组织均可作冰冻切片。
为了得到高质量的冰冻切片,选择好的冰冻切片机和配套的一次性刀架是保证切片质量的关键。
组织在切片前需要冰冻,而冰冻过程容易使组织中的水分形成冰晶,从而影响抗原定位。
一般认为,冰晶体积大而量少时,影响较小;冰晶体积小而量多时,对组织结构损害较大。
含水量较多的组织中较易出现冰晶。
1.防止组织中冰晶形成的方法(1)速冻:使组织温度骤降,减少冰晶的形成。
方法包括:1)干冰—丙酮(乙醇)法:将150~200ml丙酮(无水乙醇)装入小保温杯内,逐渐加入干冰,直至饱和呈黏稠状,再加干冰不再冒泡时,温度可达-70℃,用一小烧杯内装异戊烷约50ml,将此烧杯缓慢置人干冰—丙酮(或无水乙醇)饱和液内,至异戊烷温度-70℃时即可使用。
组织化学技术教程
组织化学发展到今天,它的技术多 而复杂,但基本技术是容易掌握的。从 样品的取材、固定剂的选择、切片的制 备、孵育反应、各种溶液的配制以及光 镜组织化学技术和电镜组织化学技术等, 每项技术都有明确的要求和规范的操作 程序。进行没项工作,应事先做好准备, 按技术程序进行,可做一定的预备实验, 效果稳定后,再开始实验研究,这样才 能达到预期的科研效果。
⑹ 样品大小适当,光镜样品一般在1.0cm以内, 免疫组织化学样品大约在 : 2cm×1.5cm×0.3cm[厚度控制在0.3cm]。 cm3小块。
二、 固定
1.固定的目的要求 固定是将组织尽可能保持原有生活状态以 适用于某些研究程序的一种方法。固定有 如下几方面的目的。 ⑴ 不仅保持组织生前的形态结构,还要保持
⑶ 灌流故定法
灌流故定法是通过血管的途径,将固定 液灌注到所要固定的器官组织内,将生活的 细胞在原位及时的固定后,在摘取样品的方 法。这种方法的特点是:快速、固定充分, 但是对固定液的温度、压力及取材时间有严 格的要求。
⑷ 培养细胞和外周血细胞固定法
培养细胞核外周血细胞的固定方法比较 特殊,对培养细胞通常取盖片入37℃的 Hanks液中,漂洗两次(每次3—5min),洗除 血清后,再置于甲醛缓冲固定液内10— 30min。.如果进行电镜观察就以2%戊二醛 固定或采取双重固定法。
60℃=1h ;石蜡Ⅱ(60℃)2 h。
⑹ 包埋:铁板架包埋或其他容器,有时要求快 速冷却。
⑺ 切片和贴片:在切片机上切片,置水槽中展 片、捞片和贴片。
⑻ 染色 ——HE染色 步骤: 1) 二甲苯5~10分钟,脱去切片中的石蜡。 2)降浓度梯度酒精脱水
(100%→95%→90%→80%→70%)。 每级脱水2~3分钟以除二甲苯。
冰冻切片详细说明解读
冰冻切片详细说明切片技术最早期是从冰冻切片开始,后来逐步有了发展和更新,冰冻切片弥补了石蜡切片和火棉胶切片之不足,石蜡切片和火棉胶切片需时太久,且在制片中要使用许多化学试剂,石蜡切片还需要加温过程,因而某些重要的不稳定的组织成分如脂类、酶以及抗体等,可能被溶解和破坏。
冰冻切片过程较简单,无须经过上述步骤,组织中的水分起着包埋剂的作用,组织经固定或不固定即可进行冰冻切片,切片厚度一般可在6-8微米,组织没有收缩,易保持生活时原有状态,是保存脂肪组织,许多神经组织特殊染色方法和组织化学方法,特别是酶的活性十分理想的切片方法,对于外科临床诊断和现代免疫荧光诊断,冰冻切片也很重要。
其缺点是组织过大不易冰冻,连续切片困难。
5微米以下切片不易成功。
但是随着现在冰冻包埋液的不断改进,已经能切出少于3微米的切片一、直接冰冻切片法冰冻切片多用于新鲜组织、甲醛固定组织和冰箱冷藏组织等。
组织块不经任何包埋剂而直接放在制冷台上冷却后再进行切片。
1.恒冷箱切片就是将组织在恒冷箱的切片机切片。
目前恒冷箱切片机的品种较多。
此种切片适用于科研和教学上的连续切片。
要求预先开动电源(预冷准备),配多种固定组织台,以便更换组织。
2.甲醇制冷器制冷箱为附有带导管的制冷台和制冷刀的甲醇循环装制,其冷却速度比较快,属于开放式,作一般常规冰冻切片用。
3.二氧化碳冰冻法将组织用蒸馏水洗后,放在冰冻切片机的冷冻台上,加蒸馏水少许。
打开冷冻台的二氧化碳开关,二氧化碳气体喷出,待组织出现冷霜时,将二氧化碳关闭,即可切片。
若组织冷冻过硬则切片易碎;组织冷冻硬度不足,则切片呈粥糜状,需用间歇方法继续冷却。
硬度一般在刚开始解冻时最合适,应迅速切片。
4.半导体致冷冰冻切片法将组织置半导体致冷台上,滴加少许蒸馏水,调好切片机的厚度。
先接通热器的循环流水,然后接通电源,电源的正负极切勿接反,用整流电源控制温度。
二、明胶冰冻切片法明胶包埋法一般多用于冰冻切片易破碎的组织,特别是某些有树枝状突起的组织,当其切片后投入水中时,常常引起分散,甚至发生丢失,某些间隙较多的组织,有时会因发生散乱而失去相互间的联系,可形成移位现象。
冰冻切片和石蜡切片各自的优劣之处
冰冻切⽚和⽯蜡切⽚各⾃的优劣之处冰冻切⽚和⽯蜡切⽚各⾃的优劣之处是什么1、从⼀抗的选择⽅⾯来看。
有的⼀抗既能做⽯蜡切⽚⼜能做冰冻切⽚,⽽有的⼀抗只能做冰冻切⽚,关键取决于所要检测的抗原稳定性,有的抗原不稳定,经过组织固定,脱⽔、透明、浸蜡、包埋、脱蜡等⼀系列的做⽯蜡切⽚的步骤,所检测的抗原易被破坏,这时只能⽤冰冻切⽚来做,检测这类抗原的⼀抗只能做冰冻切⽚,⽽那些稳定的抗原,能经受住⽯蜡切⽚的的考验,⼀般来讲也可以⽤冰冻切⽚来做,总得来讲,对于既可以⽤冰冻切⽚也可以⽤⽯蜡切⽚检测的抗原,⽤⽯蜡切⽚检测的染⾊效果要⽐冰冻切⽚好⼀些。
2、从研究⽬的来看。
⽯蜡切⽚对组织细胞的定位很准确,⽽长期冻存组织的冰冻切⽚可能因冰晶的形成破坏组织细胞形态的结构,并造成抗原的弥散,从⽽定位不准确。
3、从抗原的保真性来看。
冰冻切⽚对抗原的保真很好,⽽⽯蜡切⽚在组织固定,脱⽔、透明、浸蜡、包埋、脱蜡等过程中可能会对抗原的性质造成影响。
4、从操作步骤的繁琐程度看。
染⾊过程冰冻切⽚简单,⽽⽯蜡切⽚要求脱蜡⼊⽔、抗原修复等过程,⽐较繁琐。
5、总之,⽯蜡切⽚对标本的长期保存较合适,且组织细胞形态结构保持好;⽽冰冻切⽚适合对新鲜组织的制⽚,然后⽴即固定、染⾊效果较好,且免疫荧光中可以相对避免⽯蜡⾃发荧光的⼲扰。
冰冻切⽚(frozen section)是⼀种在低温条件下使组织快速冷却到⼀定硬度,然后进⾏切⽚的⽅法。
因其制作过程较⽯蜡切⽚快捷、简便,⽽多应⽤于⼿术中的快速病理诊断。
冰冻切⽚的种类较多,有低温恒冷箱冰冻切⽚法,⼆氧化碳冰冻切⽚法,甲醇循环制冷冰冻切⽚法等。
这些⽅法,随着时代的变迁,科技的发展,许多年前被认为是⾮常重要的技术,现在也逐步被淘汰了。
当然有些技术,如低温恒冷箱冰冻切⽚法,正在受到青睐。
编辑本段冰冻切⽚的应⽤(1)在⼿术进⾏中,突然发现病⼈的病变与原诊断,原定⼿术⽅案不相符合,或者怀疑时,需要病理确定。
(2)了解淋巴结内是否有转移的肿瘤细胞,或者转移的程度,以利于确定是否需要彻底扫除淋巴结或者其它的治疗措施。
石蜡切片(parafin section)与冰冻切片(frozen section)
石蜡切片(parafin section)与冰冻切片(frozen section)一、组织和细胞标本类型:(一)组织标本类:1、石蜡切片:组织形态保存好2、冰冻切片:抗原性保存好(二)细胞标本类:1、组织印片2、细胞培养片(细胞爬片)3、细胞涂片二、组织取材1、脑组织和神经组织应采用灌注固定后,再进行后固定。
2、组织取材注意事项:(1)标本新鲜:组织要求离体后30min~2h内浸入固定液,尤其是开展分子生物学工作。
动物组织取材要求心脏还在跳动时取材。
(2)注意防止人为因素的影响刀和剪要快,避免挤压。
(3)组织块的大小厚为0.1~0.3cm,大小可根据需要而定。
三、活细胞标本的制备法(1)细胞大量培养后,经消化将细胞制成悬液(106)涂在涂有切片粘合剂的载玻片上,凉干后固定。
(2)将细胞直接培养在盖玻片上。
(3)将细胞直接培养在6孔或9孔板上,经固定后可行IHC。
四、石蜡切片的制备1、由于石蜡不溶于水和醇类试剂,只溶解在二甲苯类试剂中。
因而,组织经固定和水洗后含大量水分,需用乙醇类试剂进行脱水,水脱完后,组织内含有大量的乙醇,还必须用能溶解乙醇的二甲苯来置换,最后经浸蜡,组织细胞内被大量石蜡支称,才使组织能用于石蜡切片。
2、小动物组织脱水、透明和浸蜡时间75%乙醇30min,85%乙醇30min,95%乙醇Ⅰ1h,Ⅱ1h,Ⅲ过夜或2h;无水乙醇Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ各30min;二甲苯Ⅰ15min,Ⅱ10min,Ⅲ10min;石蜡Ⅰ30min,石蜡Ⅱ30mi n,石蜡Ⅲ1~2h。
五、冰冻切片的保存和使用1、冰冻切片固定后-80℃保存备用2 、冰冻切片从-80℃取出,凉干或电吹风吹干后可直接进行免疫组化标记.【注意事项】大家在用药的时候,药物说明书里面有三种标识,一般要注意一下:1.第一种就是禁用,就是绝对禁止使用。
2.第二种就是慎用,就是药物可以使用,但是要密切关注患者口服药以后的情况,一旦有不良反应发生,需要马上停止使用。
石蜡切片和冷冻切片
8、切片脱蜡及水化:干燥后的切片置于二甲苯中进行脱蜡,然后依次使用从高浓度到低浓
度递减的顺序进行经纯酒精、95%、85%、70%进行水化。
9、染色:
经典的苏木精和伊红:
细胞核被苏木精染成紫蓝色,多数细胞质及非细胞成分被伊红染成粉
红色。实验操作简单。
免疫化:指带显色剂标记的特异性抗体在组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈
色反应。
二、冰冻切片:
冰冻切片是一种在低温条件下使组织快速冷冻到一定的硬度,然后进行切片的一种方法。制
作过程较石蜡切片快捷、简便,因 多应用于手术中的快速病理诊断。
一、取材:应尽可能快地采取新鲜的材料,防止组织发生死后变化。
三、固定:
1、 样品托上涂一层OCT包埋胶,将速冻组织置于其上,4C冰箱预冷5-10min让OCT胶 浸透组织。
2、取下组织置于锡箔或者玻片上,样品托速冻。
3、组织置于样品托上, 其上再添一层OCT胶,以完全覆盖为宜, 速冻架(PE)上30min。
四,切片:
1、恒温冰冻切片机为较理想的冰冻切片机,其基本结构是将切片机置于低温密闭室内,故
7、回收DAPI,滴加5-10M抗荧光衰减封片剂或中性树胶,用处理干净的盖玻片封片,即 可到荧光显微镜或者共聚焦显微镜下观察拍照。
8、 做好的切片放在切片盒内,置于4C冰箱,可保存一周左右。
4、 进行抗原热修复,微波热修复也可,室温自然冷却。可用3%H2O2孵育5-10min,消 除内源性过氧化物酶的活性。
五、免疫荧光染色:
1、 冰冻切片室温晾干15min,可用含10%正常山羊血清的PBS室温封闭切片1小时(此 步可不洗)。
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石蜡切片技术虽然21世纪医学高科技迅猛发展、日新月异,新的诊断方法层出不穷,但迄今为止,即使是世界上最发达国家,疾病的确诊主要还是通过病理诊断。
病理诊断是所有其他诊断(包括临床诊断、影像诊断、实验室检查诊断乃至分子诊断)的金标准。
因此学习相关病理诊断技术具有重要意义。
病理技术不仅可以作为临床诊断的金标准,还可以帮助临床查明死因,对研究生来说还可以提供教学、科研的资料。
病理学科是一门基础与临床之间起着桥梁作用的重要学科,病理研究方法在技术工作上又是多方面的,有尸体解剖,大体标本的制作、制片技术(石蜡切片、冰冻切片、火棉胶切片、半薄切片、超薄切片)组织化学方法,免疫酶标技术、荧光技术、摄影技术等。
硕士研究生学习的课题研究阶段,往往需要自己设计并亲自动手操作,为满足研究生的实际需要,本章简要介绍常用的病理学有关技术,并注意尽量做到:①突出实用性:以行之有效的病理学常用技术为主线,围绕硕士研究生的实际需要,对病理学技术的原理、相关理论及具体操作方法、步骤等进行阐述。
②反映进展性:充分反映病理学的时代性与进展性。
第一节组织制片的概述组织制片技术的应用,从1665年由HOOk发现细胞开始,已有300多年的历史。
最早应用冰冻切片;随后又进一步利用石蜡的硬度,以石蜡包埋组织,制成石腊切片;后来又利用明胶、火棉胶、碳蜡和塑料等物质的韧性,以其包埋组织而制作切片。
组织制片技术随着生物学和医学的发展而发展。
切片染色方法可以显示不同细胞和组织形态,以及细胞和组织中某些化学成分含量的变化。
因此,组织制片技术是教学、医学和科研中不可缺少的一个组成部分。
第二节制片的种类一、组织切片法:任何组织切片必须依靠切片机将组织切成薄片(厚度以μm计),再进行染色而得到结果。
在切成薄片以前必须设法使组织内部渗入足够的支持物质,使组织保持一定的硬度,然后使用切片机进行切片。
渗透到组织中的支持剂(物质)有多种,如石腊、明胶、火棉胶、碳蜡和塑料等。
病理学研究中最常用的组织切片技术是常规石蜡切片和冷冻切片。
其要点是将研究的组织进行切片,然后进行各种染色。
冰冻组织切片法是直接利用快速冷冻法进行切片。
二、组织非切片法不用切片机,不经过切片手续而制成组织切片的方法,包括整体封藏法、浮片法、压碎法和组织直接印片法。
这些方法操作简单而快,可根据制片的需要进行选择使用。
第三节石蜡切片技术石蜡切片法组织切片的主要程序:一、取材取材是根据实验目的及临床活检、尸解组织的病变程度而合理取得组织材料。
为了制作优质的切片,取材时组织愈新鲜愈好,并应及时固定。
(一)病理标本的来源及分类:病理标本的来源有临床活检、尸体解剖、实验动物、培养细胞。
主要病理标本大致可分类如下:1、手术标本2、内镜取材标本3、穿刺取材标本4、细胞学标本可分为:痰、尿、阴道分泌物、胸水腹水、穿刺细胞学标本、内镜刷取标本、其它等。
(二)取材的一般原则1、认真观察,取准标本病变部位,切勿漏取。
2、要能全面反映出器官有无病变,显示病变全貌(最大面积),包括肿瘤转移部位、切缘等。
3、根据临床或肉眼所见及病史提示对病变组织多取材,主要病变与相关组织多取材,特殊病变要尽量多取材。
4、若取材大小受限,应尽量取包含病变周边相对正常组织。
5、应避免选取凝血块、坏死组织及粘液成分。
6、要全面描述病变状况,由表及里,测重量、部位、体积等。
(三)取材方法常见标本取材方法如下:1、阑尾炎标本2、肿瘤标本3、胃标本4、肠标本5、肺、肾脏标本6、乳腺癌根治标本7、子宫标本8、卵巢与输卵管囊肿标本9、淋巴结标本10、一般小标本(四)取材注意事项1、新鲜2、配合3、目的4、部位5、避免挤压6、大小7、数量8、方向9、标记10、手术11、小标本12、交叉污染(五)临床病理取材注意事项姓名、样本、件数二、组织固定(一)固定的作用:1、保持细胞与生活时的形态相似。
2、保持细胞内特殊的成分转变成不溶性物质。
3、使组织中的各种物质沉淀和凝固起来,以便染色后易于区别和观察。
4、固定剂兼有硬化作用,使组织硬化增加组织硬度,便于制片。
(二)原理:使组织及细胞内蛋白凝固;使有关成分沉淀、变性,成为不溶性物质。
(三)方法:浸泡、灌注(局部灌注、全身灌注)、蒸汽熏蒸(四)固定时间: 一般固定液在24小时内不能穿透厚度大于2~3mm的实体组织或0.5cm的多孔疏松组织。
常规组织病理学:可长时间固定细胞病理学:可长时间固定细胞化学:不宜过长,约1小时为宜(五)固定注意事项1. 固定液有毒性,注意自身防护2. 及时,尽可能新鲜。
3. 超微结构观察:低温固定4. 注意不同研究目的对固定液的特殊需要5. 固定液用量:足,必要时及时更换。
一般应为组织块总体积的4~5倍,也可达15~20倍。
(六)常用的固定液:1、单纯固定液:甲醛、乙醇、丙酮、戊二醛、醋酸、4%多聚甲醛2、混合固定液:乙醇-甲醛液(AF液)、B5固定液(醋酸钠-升汞-甲醛)、Bouin氏液、Carnay氏液、Zenker固定液、氯化汞、苦味酸、重铬酸钾、AAF 液、甲醛-生理盐水等。
三、固定后处理:(一)固定后处理的目的:及时洗去固定液,有利于脱水、切片和染色,并防止染色中甲醛色素的产生。
(二)固定后处理的注意事项:洗涤注意固定剂是否含乙醇或以水配制。
四、脱水:(一)脱水的目的:利用脱水剂置换及驱除组织中的水分,以利于透明和浸蜡。
(二)脱水的步骤:一般大小约为1.5cm×l.8cm×0.2cm的组织,其脱水步骤和时间如下:70%乙醇1~2h80%乙醇2~4h90%乙醇2~4h95%乙醇2~4h无水乙醇2~4h(三)脱水的注意事项:1、浓度梯度2、彻底干净3、时间适度4、有盖瓶子5、达到无水6、其它五、透明(一)透明的目的组织块在浸蜡前,必须通过透明以便使石蜡浸入组织内,起充分支持硬化组织块的作用,以便完整切片。
通常根据透明时间与肉眼观察相结合判断透明程度。
(二)常用透明剂的种类和使用方法最常用的是二甲苯,另外还有甲苯、苯、氯仿、香柏油、松节油、汽油等。
六、浸蜡(一)浸蜡的目的组织经过脱水、透明后要用石蜡、火棉胶、碳蜡等支持剂透入内部,使其变硬并将组织包埋进去以利于切片和观察,这个过程称为“透入(浸蜡)”或“包埋”。
(二)浸蜡的方法将组织经过透明以后立即投入到液体石蜡中去。
在浸蜡时组织必须经过数次纯石蜡(石蜡Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ),这样可以使石蜡中剩余的透明剂完全除尽,以免影响切片质量。
(三)浸蜡剂的种类1、石蜡石蜡有高熔点和低熔点之分,一般普遍应用熔点为56℃以上的石蜡。
低熔点在54℃以下,用于酶的显示和保存抗原活性。
2、火棉胶目前使用火棉胶透入组织较少,用于染色前的覆盖液较多。
3、碳蜡4、明胶七、包埋(一)包埋的目的:用石蜡将经过固定、脱水、透明、浸蜡后的组织包绕成长方体块状以便于切片。
石蜡是动物植物、人体组织制片技术中极重要且应用最广的包埋剂。
包埋蜡须在温箱内经多次熔化沉淀后的干净蜡,包埋较为理想,其包埋蜡熔点为56℃~58℃。
将经过固定、脱水、透明、浸蜡后的组织用石蜡埋入,待组织冷却、变硬,这样组织可以获得一定的硬度,以便切成薄片。
(二)石蜡包埋的注意点:1、动作要迅速。
2、注意切面。
3、加温镊子。
4、组织不能重叠。
5、包埋用蜡一般为工业蜡。
八、切片(一)切片前的准备工作1、修块:石蜡切片前应先将包埋的每块组织周围过多的石蜡切去,组织四周留2mm的石蜡边。
2、粘块(二)切片操作包括切片、展片和烤片。
1、切片:将包埋好的组织块用切片机切成一定的厚度(一般为4μm)的薄片称为切片。
切片机多为轮转式切片机或平推式滑动切片机。
2、展片:将已切妥的切片在温水中铺展平整后,用载玻片捞起附贴其上称为展片。
3、烤片稍晾干后再用烤片机烤片,使其牢固附着,称为烤片。
冰冻切片技术冰冻切片在组织学技术中应用范围较广,对病理学中的临床手术的快速诊断其意义更大。
冰冻切片多用于新鲜组织,甲醛固定组织和冰箱冷藏组织等。
组织块不经任何包埋剂而直接放在制冷台上冷却后再进行切片。
一、冷冻切片的目的1、在手术进行中的病理确定。
2、了解淋巴结内是否有转移的肿瘤细胞,或转移的程度。
3、了解恶性肿瘤手术范围。
4、诊断剖腹探查时所发现的异样组织。
5、显示组织中的脂肪和脂类物质。
如脂肪瘤及肉瘤,某些科研组织等。
6、某些酶的显示。
7、神经病理学技术中的某些染色法。
8、免疫荧光的研究。
二、实验方法1、准备:将仪器打开,样品台温度调至-40℃。
2、取材:组织必须新鲜,尽可能不经水洗。
取材时应避免组织挤压,防止人为假象。
样品大小5×5×3mm。
3、速冻:将样品放在样品台上,样品四周加水加固,冷冻5~10min。
4、切片:升高温度至- 15℃(视样品而定),约5min后开始切片,厚度6~15μm。
5、制片:将切片直接放在载玻片上。
6、固定液(丙酮)中固定1~2min。
7、染色观察8、记录:将观察的结果记录实验报告上。
切片温度的设定原则:1、柔软、含水较多的组织设定温度高。
2、致密、富含脂肪的设定温度低。
冰冻切片的特点:优点:1、简便。
2、快速。
3、组织变化不大。
4、能很好保存脂肪,类脂等成分。
5、较完好地保存各种抗原活性及酶类。
不足:1.不容易做连续切片。
2.切取的组织不能过大。
3.不容易制作较薄的切片。
4.组织结构不如石蜡切片清晰。
超薄切片的制作技术简介一、透射电镜样品制作操作流程取材——漂洗(生理盐水)——前固定(2.5%戊二醛,4ºC冰箱2小时以上)——漂洗(0.1M 磷酸缓冲液,3次,45分钟)——后固定(1%锇酸1小时左右)——漂洗(0.1M 磷酸缓冲液,3次,45分钟)——块染(1%醋酸铀2小时)——梯度脱水(50%、70%、80%、90%、100%丙酮各15分钟, 100% 2次,各10分钟)——浸透(丙酮:包埋液=1:1,37 ºC烘箱2小时;丙酮:包埋液=1:4, 37ºC 烘箱过夜;纯包埋液45ºC烘箱2小时)——包埋聚合(45ºC烘箱3小时,65ºC 烘箱48小时)。
二、扫描电镜样品制备操作流程取材(做好样品观察面的标志)——漂洗(生理盐水或缓冲液)——固定(2.5%戊二醛2小时以上)——漂洗(0.1M磷酸缓冲液,3次,45分钟)——后固定(1%锇酸,2小时)——脱水( 50%、70%、80%、90%、95%各15分钟,换醋酸异戊酯15分钟或叔丁醇15分钟)——干燥(零界点干燥或冷冻干燥)——镀膜(真空镀膜仪或离子溅射仪)。