《实验动物学》复习重点

《实验动物学》复习重点

1、小鼠的给药途径有那些？请演示一下。

a.灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠

口腔的后下方插入食管。一般的给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠为1～2.0ml／100g。

b.皮下注射（sc）: 常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。一般给药量小鼠

为0.1～0.20ml／10g，大鼠为1ml／100g。

c.腹腔注射（ip）: 左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进

针约3～5mm，一般给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠1～2.0ml／100g。

d.肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉。如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部

皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药。一般小鼠每侧不超过0.1ml。

e.尾静脉注射（iv）：将动物固定，鼠尾巴露在外面，用70%～75%的酒精棉球擦尾部，或将鼠

尾浸入45～50℃温水中。待尾部左右静脉扩张后，左手拉着尾，右手进针。小鼠一般的给药量为0.1～0.2ml／10g。

2、请演示一下大鼠、小鼠的捉持、固定及灌胃给药。

（1）小鼠的捉持：捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾，置于实验台或鼠笼上，并稍向后拉；用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤，将鼠置于左手心中，拉直后肢，以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。

（2）大鼠的捉持：大鼠的捉拿时，可戴上手套。实验者可用右手捉住鼠尾，放在实验台或鼠笼上，并稍向后拉；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。

（3）灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。

3、大鼠的给药方法有那些？请演示一下常用的给药方法。

a.灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠

口腔的后下方插入食管。一般的给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠为1～2.0ml／100g。

b.皮下注射（sc）: 常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。一般给药量小鼠

为0.1～0.20ml／10g，大鼠为1ml／100g。

c.腹腔注射（ip）: 左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进

针约3～5mm，一般给药量小鼠为0.1～0.3ml／10g，大鼠1～2.0ml／100g。

d.肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉。如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部

皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药。一般小鼠每侧不超过0.1ml。

e.尾静脉注射（iv）：将动物固定，鼠尾巴露在外面，用70%～75%的酒精棉球擦尾部，或将鼠

尾浸入45～50℃温水中。待尾部左右静脉扩张后，左手拉着尾，右手进针。小鼠一般的给药量为0.1～0.2ml／10g。

4、血清和血浆有何不同？它们如何制备？

答：血浆是由抗凝的血液中分离出来的液体，其中含有纤维蛋白原，不含游离的Ca2+；血清是由凝固的血中分离出来的液体，不含纤维蛋白原，但含有游离的Ca2+。

新鲜全血中加入抗凝剂为抗凝血,由抗凝血离心后的上清液是血浆；新鲜全血离心后的上清液为血清。

5、常用的麻醉药物有那些？请举出三种麻醉药及其用法。

答：a.挥发性麻醉剂如乙醚、氯仿。

b.非挥发性麻醉剂:(1)戊巴比妥钠：戊巴比妥钠麻醉时间不很长，一般可持续3～5小时，十分符合一般实验要求。所以是最常用的麻醉剂。(2)硫喷妥钠：麻醉诱导和苏醒时间短，一次用药仅可维持数分钟。(3)水合氯醛：其麻醉量与中毒量很接近，故安全围小。水合氯醛的常用浓度1％。氨基甲酸乙酯(乌拉坦)：此药是比温和的麻醉药，安全度大。乌拉坦常用浓度20～25％。

6、按微生物学的标准，国际上和我国的实验动物可以分为几类？它们具体名称是什么？

答：a.国际标准：四类：无菌动物、悉生动物、SPF动物和普通动物。

b.国内按微生物学标准分类：普通级动物、清洁级动物、无特定病原体动物、无菌动物和悉生动物

7、实验动物为何需要标记？如何标记？试举例说明。

答：大鼠和小鼠的编号一般都用不同颜料涂染皮毛的方法来标记，常用的涂染化学品如下①涂染黄色用3～5%苦味酸溶液;②涂红色用0.5%品红溶液等。前者最常用。在动物固定的不同部位涂上苦味酸斑点表示不同号码。一般习惯在左前腿上为1，腰部为2，在左后腿上为3，在头部为4，在正中为5，在尾基部位6，在右前腿为7，在右侧腰部为8，在右后腿上为9，不涂染鼠为10。如果试验时动物编号超过10，可在动物同一部位上再涂染另一种涂染剂。

8、小鼠采血可采用那些途径和方法？

答：眶静脉丛（窦）采血、眶动脉和眶静脉取血、尾静脉采血、大血管采血

9、小鼠和大鼠的雌雄如何鉴别？请演示一下。

答：哺乳类动物性别依据动物肛门与外生殖器(阴茎或阴道)之间的距离加以区分。雄性要比雌性的距离更长。

10、小鼠的处死方法有那些？请具体演示一下。

a.颈椎脱臼法：本法常用于小鼠的处死。左手拇指、食指用力向下按住鼠头，同时右手抓住鼠

尾用力向后上方拉，将脊髓与脑髓拉断，鼠即死亡。

b.断头法：用剪刀将鼠头剪断，由于脑髓与脊髓断离且大量出血，动物很快死亡。

c.击打法：提起鼠尾，用力棒击头部，或用小木棰打击头部，鼠痉挛立即死亡。

11、家兔的给药方法有那些？请演示一下家兔的静脉给药。

答：给药方法：灌胃、皮下、肌内及腹腔注射、静脉注射。

静脉注射：将家兔置固定箱内，拔去耳克外缘的毛，选择一条比较明显的耳缘静脉，用酒精棉

球涂擦皮肤，使血管暴露。用左手拇指和中指捏住兔的耳尖，以食指垫在兔耳拟进针部位的下面，右手持注射器，从近耳尖处将针头刺入血管。推注时如有阻力，局部出现肿胀，表明针头不在血管内，应立即拔针重新穿刺。一般药液为0.2～2.0ml/kg，等渗药液可达10ml/kg。

12、如果你需要做一个药物的药理试验，你如何确定用药的剂量？

(1)先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量1/l0～1/5。

(2)化学药品可参考化学结构相似的已知药物，特别是结构和作用都相似的药物剂量。

(3)已有临床经验的药物（中药或西药）可按临床剂量推算。

(4)确定动物给药剂量时，要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。

(5)确定动物给药剂量时，要考虑因给药途径不同，所用剂量也不同，以口服量为l00时，灌肠

量应为100～200，皮下注射量30～50，肌肉注射量为25～30，静脉注射量为25。

(6)确定剂量后，可根据与实验结果调整剂量。

13、已知戊巴比妥钠家大鼠腹腔注射时的适当剂量为50mg/kg，现有2.5％的药液，体重500g的大鼠应注射多少毫升?

答：50mg/kg×0.5kg÷2.5g/100ml=25mg÷25mg/ml=1ml

14、大鼠的处死方法有那些？请演示一下。

a.颈椎脱臼法：本法常用于小鼠的处死。左手拇指、食指用力向下按住鼠头，同时右手抓住鼠尾用力向后上方拉，将脊髓与脑髓拉断，鼠即死亡。

b. 断头法：用剪刀将鼠头剪断，由于脑髓与脊髓断离且大量出血，动物很快死亡。

c. 击打法：提起鼠尾，用力棒击头部，或用小木棰打击头部，鼠痉挛立即死亡。

d.也可用过量麻醉药注入法等方法处死动物。

15、请对小鼠或大鼠进行尸检，辨认以下胃、十二指肠、盲肠、胆囊、胆总管和胰脏。

16、请对小鼠或大鼠进行尸检，辨认以下肾、肾上腺、膀胱、胸腺。

17、请辨认以下小鼠或大鼠的性别，并解剖，找出卵巢和子宫。

18、简述离体实验和整体实验各自的特点。本课程的实验中，哪些为整体试验？那些为离体实验？答：离体实验是在体外影响因素较少实验结果准确但是有时不太全面，与实际有差异，整体实验在动物体内收到的干扰因素较多不宜控制但是更能真实反映药物对整体的作用。离体蛙心实验为离体实验。整体实验为药物的抗惊厥作用实验，药物的镇痛作用实验，奎尼丁对实验性心律失常的影响，家兔血压的测定为整体实验。