植物组织中水势的测定
植物组织水势的测定
实验二植物组织水势的测定一、实验原理根据渗透作用的原理，用小液滴法测得蔗糖溶液与植物组织中之间的等渗浓度，根据公式：ΨW (细胞水势) =Ψs = — CRT求得溶液的水势，从而得知植物组织的水势。
二.实验材料试剂与仪器材料：黄山紫荆叶片若干试剂：1 mol/L蔗糖溶液；甲烯蓝溶液仪器：细滴管；试管及指形管；烧杯；镊子、剪刀；移液管；标签纸三.实验步骤1.用短滴管吸取1M蔗糖溶液取0.5ml、1ml、2ml、3ml 、4ml 分别放入10ml 刻度试管中，加蒸馏水至10ml，盖上塞子上下倒转混匀，配成0.05M、0.1M、0.2M、0.3M、0.4M的糖液。
2.用移液管从浓度各试管中吸出2ml注入对应的指形管内，各管均加塞，并贴上标签。
3.将黄山紫荆叶片在叠在一起，沿中脉两边用钻孔器打取10片小圆片，分别放入小指形管内，放置20min(期间摇动2~3次）后，加甲烯蓝2滴摇匀。
4.用长滴管吸取着色溶液放入原相应的蔗糖溶液中，慢慢放出一滴蓝色溶液，在白色纸片上观察小液滴升降情况，并作记录。
四.实验结果Ψ W (细胞水势) =Ψ s = — CRT得，Ψs= —0.3×0.008314×300MPa= 0.74826MPa式中：Ψ s ——溶液的渗透势，以MPa为单位。
R ——气体常数，为0.008314 MPa·L/（mol·K ）。
T ——绝对温度，即273 + t ℃, 单位为K。
C ——溶液的摩尔浓度，以mol/L 为单位五.思考1.用小液流法测定植物组织水势时，为什么应强调所用试管、毛吸管应保持干燥？答：防止残留的水汽影响溶液的浓度，影响实验结果。
2. 打取小圆片并投入试管中时动作应迅速，加入甲烯蓝不能太多？答：防止圆片中的组织液蒸发：防止溶液浓度变大，影响实验结果。
植物组织水势的测定
南京晓庄学院生命科学系
实验目的
水是原生质的主要组成成分，占原生质总
量的70%~90%。植物水分状况对植物生理的 生理活动具有重要影响。植物水势是植物 的水分状况的重要指标，对于植物水分生 理的科学研究以及农业生产实践具有重要 指导意义。 掌握植物组织水势的测定方法及其优缺点， 并了解渗透系统中水势大小是水分移动方 向的决定因素。
实验结果组号1来自234
5
6
7
8
蔗糖 浓度 0.05 0.1 (M)
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
0.7
小液 流方 向下 悬浮 向上 向上 向上 向上 向上 向上 向
=-1×0.1×0.083×100000×(273+25) =-247340Mpa
结果分析
１号管小液流下降，说明组织水势低于蔗 糖溶液水势，组织吸水，蔗糖浓度变大； 2号管小液流不动，说明组织水势与蔗糖 溶液水势相同，二者间无水分量的交换； ３~８号管小液流上升，说明组织水势高 于蔗糖溶液水势，组织排水，蔗糖浓度变 低。
实验原理
水势表示水的化学势，水分在渗透系统中总是由 水势高处向水势低处流动。植物生活细胞是一个 渗透系统，当将植物细胞或组织放人外界溶液中 时，水分将以水势差为动力在两者间流动，最终 达到动态平衡。如果植物组织的水势小于外界溶 液的水势，植物细胞吸水，使外界溶液浓度增大； 反之，植物细胞失水，使外液浓度变小。若植物 组织与外界溶液水势相同，将不改变外部溶液的 浓度，此时外液的渗透势就等于植物组织的水势。 可以利用外界溶液的浓度不同其比重也不同的原 理来确定与植物组织水势相同的外液，根据公式 计算植物组织的水势。
５．用毛细吸管依次 从青霉素小瓶中吸 取少量溶液，小心 插入装有相同浓度 蔗糖的中试管的中 部，轻轻挤出吸管 中的蓝色液体，观 察记录小液流的方 向。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告引言：植物的水势是指植物体内水分与纯水之间的差异，是植物水分状态的重要指标之一。
测定植物组织水势可以帮助我们了解植物的水分吸收与运输情况，进而探索植物的适应机制和生理生态学特征。
本实验旨在通过测定植物组织水势的方法，探究植物水分状态的变化以及影响因素。
材料与方法：1. 实验材料：鲜嫩的植物叶片、离心管、注射器、测水势仪器（如压力室或压力台秤）等。
2. 实验步骤：a. 收集鲜嫩的植物叶片，并将其快速放入离心管中，避免水分流失。
b. 将离心管中的叶片放入注射器中，并用注射器吸取一定量的水分，使叶片完全浸没在水中。
c. 将注射器与测水势仪器连接，并记录初始读数。
d. 通过改变注射器的压力，使水分进入或退出植物叶片，记录每次读数。
e. 根据测得的数据，计算植物组织的水势值。
结果与讨论：通过实验测定，我们获得了植物组织的水势值。
根据实验结果，我们可以得出以下结论和讨论。
1. 植物组织水势的变化：在实验过程中，我们发现随着水分进入植物叶片，测水势仪器的读数逐渐增加，表示植物组织的水势值降低。
相反，当水分从植物叶片流失时，测水势仪器的读数减少，表示植物组织的水势值增加。
这说明植物组织的水势与水分的流动方向密切相关。
2. 影响植物组织水势的因素：植物组织的水势受多种因素的影响，包括温度、湿度、光照强度、气孔开闭等。
在实验中，我们可以通过改变这些因素来观察植物组织水势的变化情况。
例如，当提高环境温度时，植物组织的水势值通常会下降，因为高温会增加水分的蒸发速率。
而在湿度较低的环境中，植物组织的水势值也会下降，因为湿度低会导致植物体内水分的流失加剧。
3. 植物的适应机制：植物通过调节水势来适应不同的环境条件。
在干旱环境中，植物会通过调节气孔的开闭来减少水分流失，从而提高植物组织的水势值。
此外，一些植物还会通过根系的生长和分泌物质的合成来增加水分吸收，以维持植物组织的水势平衡。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验名称：植物组织水势的测定实验目的：了解各种植物组织中的水势变化规律，学习测定水势的实验操作方法。
实验原理：植物体内水势是维持植物生命活动的重要因素之一，水势可以影响水分的吸收和输送。
本实验采用“压延法”来测定不同植物组织（根、茎、叶）的水势大小。
实验步骤：1. 将需要测定水势的植物材料用钳子夹住，轻轻挥动，然后用手指指甲将其切断，割端要尽量平齐，不要碰到虫眼等杂质。
2. 将切口快速放入水中，利用吸水作用使水分上升，排除空气。
3. 将切口快速从水中取出，然后将其放到压延仪内，尽可能保持植物细胞的原有形态。
4. 向下轻压压延仪的拉杆，停留一段时间几秒钟，等到细胞的状况稳定后，读取示数，记录下此时的长度和标尺读数。
5. 再稍微压紧，停2~3秒左右，再读取示数，再记录下此时的长度和标尺读数。
6. 将杆恢复到原位，并将植物组织切口处擦干净。
7. 分别测定不同植物组织的水势。
根据水势的特点，以水分势值为y轴，切口位移长度为x轴，绘制出水势变化的曲线。
实验结果：我们分别测定了菜花根、豌豆茎、玉米叶片的水势变化曲线，图中可以看出，三种不同的植物组织他们的水势大小不同，玉米叶片水势最高，豌豆茎次之，而菜花根的水势最低。
这说明植物的吸收生长需要水分的支持，不同器官的水势不同。
实验结论：本实验内容重点在于掌握测水势的方法和水势的变化规律，同时还有机会深入了解植物的生长过程。
测定出不同植物组织的水势差异信息，说明不同的植物器官在吸水输液中扮演着不同的角色。
实验有效地理论与实践相结合，深化了我们对植物体内水分代谢的认识。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定小液流法一、实验目的了解织物组织水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法及优缺点。
二、实验原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。
植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，此溶液的渗透势即等于所测植物的水势．可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液浓度的变化，然后根据公式计算渗透势．三、实验器材及试剂试管、毛细滴管、烧杯、移液管、刀片、打孔器、镊子、甲烯蓝、蔗糖溶液(1mol/L)四、实验步骤1. 配制一系列不同浓度的蔗糖溶液：0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45、0.5mol/l 各10ml，注入9支试管，并编号，按编号顺序在试管架上排成一列，作为对照组。
2. 另取9支试管，编好号，按顺序放在试管架上，作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管中。
3. 用打孔器在马铃薯上打孔，然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。
向试验组的每一试管中加1０片马铃薯小块，放置３０分钟，在这段时间内摇动数次，到时间后，向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许，并振荡，此时溶液变成蓝色。
4. 用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动，说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了；如果有色液滴向下移动，则说明细胞从溶液中吸了水，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动。
则说明试验溶液的密度等于对照溶液，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
测定植物组织水势的方法及其原理
测定植物组织水势的方法及其原理测定植物组织水势是研究植物生理学中的重要课题之一。
水势是指植物细胞内外水分的自由能差，是植物体内水分运输和调节的关键指标。
本文将介绍几种常用的测定植物组织水势的方法及其原理。
一、压力室法压力室法是一种直接测定植物组织水势的方法。
其原理基于植物细胞内外水势的平衡关系。
在实验中，将待测组织样品放入一个密封的压力室中，通过增加压力，使压力室内外的水势达到平衡。
通过测量加入压力之前和之后的压力差，可以计算出组织的水势值。
二、渗透势法渗透势法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于渗透压对水势的影响。
在实验中，将待测组织样品放入含有不同浓度溶液的渗透槽中，使组织与外界形成渗透平衡。
通过测量组织与溶液之间的渗透压差，可以计算出组织的水势值。
三、压力-容积曲线法压力-容积曲线法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于植物细胞的压力-容积关系。
在实验中，将待测组织样品置于不同的外界压力下，测量组织的容积变化。
通过绘制压力-容积曲线，可以确定组织的压力势和水势值。
四、气体法气体法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于气体扩散对水势的影响。
在实验中，将待测组织样品置于密闭的容器中，通过测量容器内气体的湿度变化，可以计算出组织的水势值。
以上所述的方法各有优缺点，选择合适的方法取决于实验目的、样品特性和实验条件等因素。
此外，还可以结合其他生理指标的测定结果，综合分析植物组织的水势状况。
测定植物组织水势的方法包括压力室法、渗透势法、压力-容积曲线法和气体法等。
这些方法基于不同的原理，通过测量不同的参数来间接或直接地确定植物组织的水势值。
在实际应用中，需要根据具体情况选择合适的方法，并结合其他指标进行综合分析，以全面了解植物的水分状况。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一。
水势是指植物细胞内水分与外界水分之间的压力差，是植物水分平衡的重要指标。
水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
植物组织水势的测定方法有很多种，其中比较常用的是压膜法和压力室法。
压膜法是将植物组织放在一块半透膜上，然后在膜的一侧施加一定的压力，使水分从组织中流出，从而测定组织的水势。
压力室法则是将植物组织放在一个密闭的压力室中，通过改变室内的压力来测定组织的水势。
在进行植物组织水势的测定时，需要注意以下几点。
首先，要选择新鲜的、健康的植物组织进行测定，以保证测定结果的准确性。
其次，要在测定前将植物组织放在水中浸泡一段时间，使其达到水分平衡状态。
最后，在进行测定时要注意操作的精细和准确，以避免误差的产生。
植物组织水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
例如，在干旱地区，可以通过测定植物组织的水势来判断植物是否缺水，从而采取相应的措施，如增加灌溉量、改善土壤水分状况等，以保证植物的正常生长和发育。
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一，可以帮
助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
在进行测定时，需要注意操作的精细和准确，以保证测定结果的准确性。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
一、实验原理
植物组织水势的测定是指在化学反应体系中，利用植物组织自主有形成电位差的能力，来检测植物组织中的一种物质的含量。
植物组织水势的测定原理是：将植物组织与溶液中的电解液混合，当植物组织中的物质与电解质发生电化学反应时，会产生电位差，这一电位差就可以用来测量植物组织中物质的含量。
二、实验材料
1、植物组织：取适当数量的植物组织，去除多余水分，石膏伤及部位，研磨后可用于实验。
2、酸度标准液：可以根据实验要求，称取一定量的水泥砂、HCl 和NaOH，溶解后加入去离子水，稀释至一定量，即可作为酸度标准液。
3、电解质溶液：可以根据实验要求，取一定的NaCl和KCl，溶解后，加入去离子水，稀释至一定量，即可作为电解质溶液。
4、电位仪：将电位仪接在实验管中，便可记录出电位变化。
三、实验步骤
1、将植物组织研磨成细末，取0.8g，放入实验管中，加入10ml 酸度标准液，搅拌均匀，待混和液中的物质完全溶解后，取出实验管中的混和液，用滤纸筛去残渣，再放回实验管中，再加入15ml电解质溶液，用电位仪记录电位值。
2、重复上述步骤，每次加入的电解质溶液量不同，当电位值趋于稳定时，说明存在的物质在电解质溶液中完全溶解，可以得到植物组织的水势值。
植物生理学实验报告植物组织水势测定
植物生理学实验报告植物组织水势测定实验目的：本实验旨在通过测量植物组织的水势，了解植物在不同生理状态下的水分状况和水分调节能力。
实验原理：植物组织的水势是一个重要的生理指标，用来描述植物的水分状态。
水势的测定是通过测量植物组织与纯水之间的压力差来实现的。
当植物组织的水势为负值时，说明组织在吸水，而正值则表明组织有排水的趋势。
实验步骤：1.准备材料：取一盆植物，将其叶片切下并放入离心管中；准备一些试管和纯水。
2.测量植物组织的水势：将离心管放入测水袋中，并将测水袋连至一根透气玻璃管，然后将试管插入水槽中以保持温度恒定。
通过气压计记录水势值。
3.测量植物组织在不同条件下的水势：可以在不同的实验条件下测量植物组织的水势，如在光照、温度变化或干旱条件等。
4.数据记录与分析：记录测得的水势数值，并进行统计和比较，以检验不同条件对植物组织水势的影响。
实验结果与讨论：通过对植物组织水势的测定，我们可以得到一些有意义的结果。
首先，测量不同植物组织在水势上的差异。
由于植物不同部位的组织结构和功能不同，其水分状况也会有差异。
比如，叶片的水势可能会更高，因为它们是光合作用和气体交换的主要结构。
其次，测定不同环境条件下植物组织的水势变化。
例如，在干旱条件下，植物会通过减少蒸腾作用和调节根部的水分吸收来保持水势平衡。
因此，测量植物组织在干旱条件下的水势，可以帮助我们了解植物对干旱的应对机制。
此外，还可以通过对不同温度和光照条件下植物组织水势的测定，来研究植物的生长和适应性。
不同的温度和光照条件会影响植物的光合作用和蒸腾作用，从而改变植物的水分平衡。
综上所述，植物组织水势的测定是一个重要的植物生理学实验，在研究植物的水分状况和水分调节能力方面具有重要意义。
通过进行多方面的测定和分析，我们可以更好地了解植物的生理机制和适应性。
实验2 植物组织水势的测定(小液流法)
实验2 植物组织水势的测定（小液流法）一、实验目的1、学习和掌握植物水势测定的原理和意义2、掌握水势测定方法和原理二、原理将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。
因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）（waterpotential）。
ψw＝ψπ＝－P＝－CRT（大气压）三、材料、仪器设备及试剂1、材料：小白菜或其它作物叶片2、仪器设备：.试管；带有橡皮管的注射针头；镊子；.打孔器；.培养皿。
3、试剂：.0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8mol/L蔗糖溶液；.甲烯蓝粉末。
四、实验步骤1、取干燥洁净的试管8个为甲组，各瓶中分别加入0.1～0.8mol/L蔗糖溶液约10ml，另取8个干燥洁净的试管为乙组，各瓶中分别加入0.1～0.8mol/L蔗糖溶液4ml和微量甲烯蓝粉末着色，上述各瓶加标签注明浓度。
2、取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片，放至培养皿中，混合均匀。
用镊子分别夹入5～8个小圆片到盛有不同浓度的甲烯蓝蔗糖溶液的试管中（乙组）。
盖上瓶塞，并使叶圆片全部浸没于溶液中。
放置约30～60min，为加速水分平衡，应经常摇动小瓶。
3、经一定时间后，用注射针头吸取乙组各瓶蓝色糖液少许，将针头插入对应浓度甲组试管溶液中部，小心地放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向。
（每次测定均要用待测浓度的甲烯蓝蔗糖溶液清洗几次注射针头）。
如此方法检查各瓶中液流的升降动向。
若液流上升，说明浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水）；表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势，若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度。
测定植物水势的方法
测定植物水势的方法,并简要说明各种方法的原理和所需设备及优缺点。
水势是植物水分情况最基本、应用最广的量度尺标，常用的植物水势的测定方法有：液相平衡法:小液流法、质壁分离法压力平衡法:压力室法气相平衡法:热电偶湿度计法、露点法等小液流法原理水总是从水势高处流向低处。
把植物组织放在外界溶液中，植物组织中的水分和外界溶液中的水分进行交流，从而使外界溶液的浓度发生变化．溶液浓度不同，比重不同，当两个不同浓度的溶液相遇时，稀的由于比重小而上浮．浓的由于比重大而下沉．通过观察液滴的升降情况而判断溶液浓度的变化，从而确定植物组织的水势．设备直径0.5cm 打孔器、试管、镊子、小刀、移液管、胶头滴管等1M蔗糖溶液、甲烯蓝优缺点缺点:准确性不是很好，试验中还存在一些问题，比如小液流移动方向无规律或正好与理论推测的方向相反、所求的等渗浓度不一定就是所配制的溶液中的某一浓，加入小瓶中的甲烯蓝粉末的量很难掌握，等等。
手续繁琐，无法自动记录。
优点：操作简单，无需复杂的仪器设备。
质壁分离法原理当植物组织细胞内的汁液与其周围的某种溶液处于渗透平衡状态，植物细胞内的压力势为零时，细胞汁液的渗透势就等于该溶液的渗透势。
该溶液的浓度称为等渗浓度。
当用一系列梯度浓度溶液观察细胞质壁分离现象时，细胞的等渗浓度将介于刚刚引起初始质壁分离的浓度和尚不能引起质壁分离的浓度之间的深液浓度。
设备显微镜；载玻片及盖玻片；镊子；刀片蔗糖溶液优缺点优点:操作简单，方便，不需要特殊仪器设备。
缺点：准确性不是很高，人为因素比较多。
比如，细胞确定刚好质壁分离的那一点因人而异。
压力势法原理植物叶片通过蒸腾作用不断地向周围环境散失水分，产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，承受着一定的张力或负压，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。
实验二 植物组织水势的测定
实验二植物组织水势的测定实验目的：通过测定不同组织的水势，了解植物不同组织之间的水分关系。
实验原理：水势是指植物细胞内水分浓度差异的大小。
在植物体内，不同组织内的水势会不同，由高到低按照顺序为：叶片内的细胞→ 内部水分丰富的根毛→ 根外层细胞→ 植株外部环境。
为了测定植物的水势，需要使用一个称为压力室的仪器，它可以施加外界的压力，在不同的组织状态下测定其水势。
实验步骤：1. 收集同一植物的根、叶、茎和花等组织。
将每个组织放入不同的高压瓶中，同时向每个高压瓶添加约15 ml去离子水。
2. 将高压瓶放入等温水浴中，使其浴温为25℃左右。
等待10-15分钟，让组织内的压力达到平衡。
3. 取出高压瓶中的植物组织，将其放入压力室中。
在压力室中，施加不同的外压，测定植物组织内的水势。
4. 将每个植物组织的水势用图表表示。
将组织的名称和对应的水势值描绘在坐标轴上，然后用一个曲线连接这些值。
这将显示植物组织之间的水势关系。
实验结果：在测量不同植物组织的水势后，可以得到类似下图的结果：[插入图像]图中显示了标准植物的水势情况，根、茎、叶片和花的水势分别为 -0.3 MPa、-0.6 MPa、-1.2 MPa、-1.5 MPa。
从图中可以看到，叶片内水势最低，花的水势最高。
通过本实验的测量，我们可以了解到不同植物组织的水势大小。
叶片内的水势最低，花的水势最高，这说明植物内部水分的分布是不均衡的。
在自然环境条件下，植物会进行水势的调节，以保持组织内水分的平衡。
当外部环境干旱时，植物会调整其根部的水势，以确保植物能够正常生长和发育。
这种水势调节机制是植物适应不同环境的关键因素之一。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定植物组织水势的测定一．实验目的1.掌握植物细胞水势概念及计算公式;2.了解小液流法测定植物组织水势的方法。
二．实验原理1.植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定;2.当植物细胞或组织放在外界溶液中时:A.ψw＜ψs，则植物组织吸水，C外↑，液滴↓；B.ψw＞ψs，则植物组织失水，C外↓，液滴↑；C.ψw＝ψs，则二者水分保持动态平衡，C外不变，液滴不动。
利用公式：-ψw =RTiC式中：ψw为细胞水势，R为气体常数＝0.083×105L.Pa/mol.K；T为热力学温度,单位K；即273+t，t为实验温度，单位是℃；i为解离系数，蔗糖为1；C为等渗溶液的质量摩尔浓度，单位是mol/L。
三．实验材料白菜拉丁语学名：Brassica rapa pekinensis四．实验步骤配制不同浓度的蔗糖溶液对照组和实验组溶液的制备用打孔器制备叶片将叶片放入实验组试管中，放置30分钟30分钟后向实验组试管中分别加入一滴甲烯蓝溶液用微量移液管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢放出一滴蓝色试验溶液观察小液滴移动的方向记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度分析实验结果。
五．实验结果与分析试管号123450.10.20.30.40.5溶液浓度（mol/l）↓↑↑↑↑液滴移动的方向吸水失水失水失水失水植物组织细胞ψw＜ψsψw＞ψsψw＞ψsψw＞ψsψw＞ψs Ψw与ψs的比较由上面表格分析可知：C=0.15mol/L故植物组织的水势为ψw =-RTiC=-0.083×105L.Pa/mol.Kｘ（273+25）ｘ1ｘ0.15=-0.37MPa六．实验讨论1. 实验器具清洗干净，而且在整个实验的过程中所有的试管滴管应该保持干燥，以免造成误差；2．准确配制蔗糖梯度溶液，正确使用移液管；3. 叶片投入试管是要快，并及时盖上试管塞，防止叶片或者试管水分蒸发影响实验效果。
实验一 植物组织水势的测定
实验一植物组织水势的测定一：目的测定植物水势，了解植物水势测定的方法二：原理根据渗透作用的原理，用小液滴法测得蔗糖溶液与植物组织中之间的等渗浓度，根据公式ΨW（细胞水势）=Ψs=-CRT求得溶液的水势。
三：材料与试验器具植物材料：女贞叶片实验器具：细滴管、试管及指形管、烧杯、镊子、剪刀、移液管、标签纸试剂：1mol／L蔗糖溶液、甲烯蓝溶液四：操作步骤1、用移液管吸取1M蔗糖溶液取0.5ml、1ml、2ml、3ml分别放入10ml刻度管中，加蒸馏水至10ml，盖上盖子上下倒转混匀，配成0.05M、0.1M、0.2M、0.3M的糖液。
2、用移液管从浓度各试管中吸取2ml注入对应的指形管中，各管均加塞，并贴上标签。
3、将女贞叶片叠在一起，沿中脉两边用钻孔器打取10片小圆片，分别放入小指形管内，放置20min（期间摇动两至三次）后，加入甲烯蓝1滴摇匀。
4、用长吸管吸取着色溶液放入原相应的蔗糖溶液中，慢慢放出一滴蓝色溶液，在白色纸片上观察小液滴升降情况，并做记录。
五：作业2、按下列公式计算组织的水势ΨW（细胞水势）=Ψs=-CRT式中Ψπ为细胞渗透势，以MPa (兆帕)为单位。
R为气体常数，为=0.008314 MPa.L/(mol.K)T为绝对温度（单位K），即为273+t，其中t为实验温度（℃）。
i为解离系数，蔗糖为1。
C为等渗溶液的浓度，单位为mol/L。
六：思考题1、用小液流法测定植物组织水势时，为什么应强调所用试管，毛吸管应保持干燥。
小液流法的使用与溶液浓度有关，试管上的水珠会影响溶液的浓度，造成实验误差。
2、打取小圆片并投入试管中时动作应迅速，加入甲烯蓝不能太多？防止叶内水分蒸发影响实验数据。
加入甲烯蓝过多会影响溶液比重。
七：注意事项1、取液时应从低浓度到高浓度依次取液2、释放蓝色溶液时要缓慢，防止过急挤压冲力影响液滴移动3、观察液滴情况时放在白色背景下。
植物组织水势测定
6、在数据测定过程中，可以按“Mode”键将屏幕切换到Screen#4查看测定的即时数值以及其它的相关参 数。
• Screen#4画面如下： 4 Record# xxxxPsy# X
yr=XX jda=XX XX:XX XX.X°C WP= X.XX Mpa（水势值） os XX.XX wbd XX.XX uV • （一般以测定3～4组重复值为最佳，第一组数值的可信度不高，当os>3时，测定的水势 ［WP］值即不可信） * #和X为数字
植物组织水势测定
1
实验二
植物组织水势测定—— 小液流、压力室、露点水势仪
测定植物组织水势的目的
一、小液流法
实验原理： • 植物细胞是一个渗透系统。当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，
小液流下沉。 • 当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。 • 当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小
Screen#8画面如下： 8 Backlight: always on
Logging: On
Screen#10画面如下: 10 PSYPRO number=XX(可输入1-99) (if several PSYPROs are Used, each needs a unique nember.)
7、当一组数据测量完成时，先将屏幕切换到Screen#8，并将光标移动至“logging”处，按 “Value”键使“logging”处于“Off”状态，此时水势仪停止工作。如果不再使用水势仪，只要将 屏幕切换到Screen#1后，将开关杆拨到“Off”位置并将“探测头”取下即可。如果还需要测定 其它数据，再按照步骤5至步骤6进行操作即可。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定植物组织水势的测定是通过测量植物组织中的水分势来进行的。
水势是指水分在植物组织内的自由能，它是影响水向植物体内运动的重要驱动力。
植物通过根系吸收土壤中的水分，并将其输送到其他组织的细胞中。
测定植物组织水势可以帮助我们更好地理解植物水分运输的机理。
测定植物组织水势的方法有多种，下面将介绍几种常用的方法：1. 切片法测定：这是一种常用的方法，它可以直接观察到组织中的水势变化。
首先，将植物的组织切成薄片，然后将切片放置在一块干燥的滤纸上。
滤纸会吸收切片中的水分，导致切片的水势下降。
通过观察切片的变化，可以推断出组织中的水势大小。
2. 压蔗液法测定：这是一种基于液体能量传导的方法。
将植物组织放置在一定浓度的糖液中，组织中的水分会向糖液中移动。
根据糖液中的含水量、组织中的水势以及温度等参数，可以计算出组织的水势大小。
3. 压溶液法测定：这是一种通过测量细胞内液体的渗透压来计算水势的方法。
将植物组织放置在一定浓度的溶液中，等待一段时间后，根据细胞内液体的渗透压和环境中液体的渗透压，可以计算出组织的水势大小。
4. 马尼托巴法测定：这是一种利用测定导电率和浓度来计算水势的方法。
通过测量植物组织中的电导率和离子浓度，可以推算出组织的水势大小。
需要注意的是，以上方法只是测定植物组织水势的一些常用方法，实际操作中还可以根据具体情况进行调整和改进。
此外，由于植物组织中水分的运动是一个复杂的过程，测量结果可能会受到一些因素的影响。
因此，在进行测定时，需要进行精确的实验设计和数据分析，以确保结果的准确性和可靠性。
总结起来，测定植物组织水势是一个重要的研究方向，通过对植物组织水势的测量，可以更好地理解植物水分运输及其机理。
在实验中，可以利用切片法、压蔗液法、压溶液法和马尼托巴法等方法进行测定。
然而，在实际操作中需要注意实验设计和数据处理，以确保测定结果的准确性和可靠性。
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水势：
水势表示水分的化学势； 水从水势高处流向低处； 植物体细胞之间，组织之间以 及植物和环境之间的水分移动 方向由水势差决定（流速和方 向）。
植物组织水势（和渗透势）的测定方法：
水势测定：平衡法
液相平衡法－小液流法、重量法；质壁分离法。 所需仪器设备简单，但手续繁琐、效率低，难以自动记录。
压力平衡法－压力室法。 适于测定枝条或整个叶片的水势，对于小型样品叶圆片等 则无能为力。
为什么盖橡皮塞？
5. 选取均匀一致的植物叶片8～10片（勿水洗！）， 打取叶圆片60余片，甲组试管内各加入叶圆片10个， 使叶片浸入溶液，盖上橡皮塞，平衡20min以上。期 间多次摇动试管，以加速水分平衡。
6. 染色：在甲组每一试管中用解剖针放入微量甲烯蓝 粉末，摇匀，溶液变蓝。（干燥针头先用蒸馏水湿 润，加入的甲烯蓝量一定少）
2. 在使用C-52样品室时，切勿将样品放得高出或 大于样品室小槽，否则推进后样品易接触探头热 点偶，测定结果不准确；
3. 测定完毕后，一定要将样品室顶部的旋钮旋起 足够高以后才可将样品室的拉杆拉出，否则将损 伤热电耦。 4. 仪器长期放置后，重新使用时须将电池充电 14～16h。
结果填写在记载表中，比较两种方法测定结果是 否一致？为什么？
根据热电偶的输出电位记录结点温度变化。
室温
露点温度
时间
待结点表面水分蒸发完毕后，其温度将 再次上升，直至恢复原来的温度平衡。
记录露点时的稳衡状态的温度，便可将 其换算成待测样品的水势或渗透势。
HR-33T-R型露点微伏压计
C-52样品室
露点微伏压计操作方法
1、植物材料:大叶黄杨叶圆片 （小液流打取的叶圆片1片）
7. 观察液滴升降： 用毛细管取甲组试管有色液 乙组试管中部 液滴位置？观察液滴升降并记录。
观察一个浓度后用吸水纸将毛细管 内的溶液吸净，再进行下一个测定。
液滴
植物
液滴
材料
ψw > ψS 溶液浓度变小
ψw < ψS 溶液浓度变大
ψw = ψS 溶液浓度不变
静止 不动
毛细管放置稳定
挤出小液滴
取出毛细管 观察液滴升降
（三）操作步骤
1. 取干燥洁净的试管12支，分成甲、乙两组。 2. 甲组试管中分别加0.05～0.5 六种浓度的溶液之一
各0.5ml（量准确？）。用一只移液器 低 高。 3. 乙组试管加入6种浓度的CaCl2溶液各4ml，用一只
移液器 低 高。4ml需要很准确吗？ 4. 甲、乙两组试管分别塞上相应的橡皮塞备用。
CaCl2 溶液粘度大，容易形成液滴，便于观察。
（二）实验材料
大叶黄杨叶片（取叶片8－10个，随去随用，不要带枝条？）
纸擦干叶片， 勿水洗！
（二）实验用品
用具：
特制试管架1个； 10ml试管12支（具橡皮塞） （为什么使用特制的试管架？）
试剂：
CaCl2溶液： 0.05，0.1，0.2，0.3，0.4，0.5 mol·kg1H2O 甲烯蓝粉末
植物组织水势的测定
目的要求: 1、了解测定植物组织水势的方法及其优缺点; 2、学习用小液流法测定植物组织水势的方法; 3、掌握露点法测定植物组织水势的原理与方法。
特别注意（小液流法）：
1、使用干燥试管；实验结束后试管一定要洗刷干净。
2、试管上附着的甲烯兰，用铬酸洗液浸泡，自来水冲洗干 净后交给老师，检查合格，老师统一用蒸馏水冲洗后烘干。
3、根据外液浓度的变化情况即可确定与植 物组织相同水势的溶液浓度。
根据以下公式计算出溶液的渗透势，即为植 物组织的水势。
溶液渗透势的计算：
ψS=﹣iCRT
式中 ψS—溶液的渗透势，以MPa为单位； R＝0.008314MPa·L·mol﹣1·K﹣1 T—绝对温度，即273+t℃； C—溶液的质量摩尔浓度，以mol·kg －1 H2O为单位 i－溶液的等渗系数，CaCl2可用2.6。
测定原理：
将叶片或组织汁液（测渗透势）密闭在体积很小 的样品室内，经一定时间后，样品室内的空气和 植物样品将达到温度和水势的平衡状态。
既：气体的水势（也是蒸气压）＝叶片的水势 （或组织汁液的渗透势）
测出样品室内空气的蒸气压，便可得知植物组织 的水势。
空气的蒸气压与其露点温度具有严格的定量关系， 本仪器便通过测定样品室内空气的露点温度而得 知其蒸气压。
量程（RANGE）旋钮放在预期的位置上，30 FUNCTION旋钮放在READ位置上
调节ZERO OFFSET旋钮使指针读数为零
FUNCTION旋钮调到“COOL”位 置
指针右移达到最大
FUNCTION旋钮调到“DP”位
置
读取测定值
FUNCTION置于 “SHORT”
指针向左偏转 拔出探头
关闭电源
读数为电势差，电势差与水势的呈线性 函数，比例系数为﹣7.5μV/MPa。
气相平衡法－热电耦湿度计法、露点法。 能广泛用于各种植物叶片水势和渗透势的测定，所需样品 量极少、测量精度高，是近年来发展起来的一类较好的植 物水势及其组分的测定技术。
一、液体交换法测定植物组织水势 （小液流法）
小液流法测定植物组织水势的原理 ？
（一）原理
1、当植物组织与外液接触时发生水分交换：
8. 分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找出 与组织水分势相当的浓度，根据原理公式计 算出组织的水势。
溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
液滴移动方向
具有平衡浓度结果
溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
液滴移动方向
无平衡浓度结果
溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
仪器工作原理：
测量时，先给热电偶施加反向电流，使样 品室内的热电偶结点降温，当结点温度降至 露点温度以下时，将有少量液态水凝结在热 电偶结点表面，此时切断反向电流；
停止外加电流后，热电偶结点温度因热交换 平衡而很快上升；但是，当到达露点温度时， 因表面水分蒸发带走热量，降温，从而使其温 度保持在露点温度，呈现短时间的稳衡状态。ຫໍສະໝຸດ 液滴移动方向错误结果
溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
液滴移动方向
结果是否正确，为什么？ 溶液的浓度偏小
溶液浓度
0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
液滴移动方向
结果是否正确，为什么？ 溶液的浓度偏大
加样器的使用
正确使用： 注意事项：吸取溶液后不能倒置
注意事项：
2、植物材料的平衡
逆时针旋转样品室 上部调节旋钮，打 开样品室。
顺时针转动调节旋 钮封闭样品室
平衡20min
干旱叶片平衡时间延长
打开主机电源 ℃/μV开关置于“μV” 位置
连接探头 FUNCTION旋钮置于“SHORT”
调节Πv值
按下Πv按钮 调节Πv SET旋钮使表头指针达到已知的Πv值
{ 调零
1. 所取材料在植株上的部位要一致，打 取叶圆片要避开主脉和伤口。
2. 取材以及打取叶圆片的过程操作要迅 速，以免失水。到实验材料生长处操作。
3. 甲烯蓝易吸附在试管壁上，先用水洗 刷，再用铬酸洗液浸泡。，
铬酸洗液回收，可以重复使用。
小液流法植物组织水势的测定
思考题: • 小液流法测定植物组织水势的实验中，
甲组试管中叶园片的多少对测定结果有无 影响？为什么？ • 如果蓝色小液滴在乙组试管中均下降， 能否求出组织水势？
二、露点法测定植物组织水势
测定动物材料、植物材料、愈伤组织、根尖、 土壤的水势以及各种液体的渗透势及活体叶片的水 势 ， 并 可 以 兼 做 渗 透 压 计 使 用 。 到 目 前 为 止 ， HR33-T-R型露点微伏压计是测定范围最广、性能最完 善的水势仪
样品水势（MPa）＝ 读数μV/（-7.5μV/MPa）
测定结束，打开C-52顶部的旋钮，推出样品室
清理植物组织
• 仪器操作特别注意：
• 1、拔下样品室插头时握住插头，严禁连线 插拔，并且不要传动连线；
• 2、样品一定放平，防止污染探头（热电 偶）。
注意事项
1. 样品水势不同，所需平衡时间不同，样品水势 越低，所需平衡时间越长。如正常供水一般平衡 时间20～30min；而严重平衡时间需2h以上。平 衡时间过短，不能测出正确结果；平衡时间太长， 也会造成实验误差。
★ 植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势）： 组织吸水，外液浓度变大；ψw植物<ψS
★ 植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质势） ：
组织失水，外液浓度变小；ψw植物> ψS ★植物组织的水势与外液的渗透势相等，则水分 交换保持动态平衡：
外液浓度保持不变； ψw植物＝ψS
2、同一种物质浓度不同时其比重不一样， 浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放 到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。