浮游植物的定量分析
浮游植物定量
• 球形、园盘形、园锥形、带形等可按求体 积公式计算。 • 纤维形、多角形、新月形以及其他种种形 状可分割为几个部分计算。
• 由于在不同环境中生长的同一种藻类的细 胞体积差异很大，套用所谓的《标准生物 量表》提供的数值计算某一具体水体的生 物量有时会产生很大的误差。所以条件允 许应对优势种和亚优势种进行直接量算， 非优势种群查阅表格。
• 计数时优势种类尽可能鉴别到种，其余鉴 别到属。
• 计数中的浮游植物的数量, 最好用细胞数表 示。对不易用细胞数表示的种类可计算其 群体或丝状体数。
计数具体要求
• A、校正计数框容积， • B、定量用的盖玻片应以碱水或肥皂水洗净备用，用前可 浸于70％酒精中，用时取出以细绢拭干。 • C、滴取样品以后最好用液体石腊封好计数框四周，以防 计数过程中干燥。 • D、以目微尺测所用显微镜一定倍数下的视野直经。 • E、选好与计数框同样容积的吸管备用。 • F、定量时应将浓缩标本水样充分摇匀，快吸快滴。 • G、加上盖玻片后不应有气泡出现。 • H、计数后的定量样品应保存下来。
• （2）采水量及采样次数
卡盖式采水器
不锈钢采水器
有机玻璃采水器
• • • • •
采样次数可多可少， 有条件时可逐月采样一次， 一般情况可每季采样一次， 最低限度应在春季和夏末秋初各采样一次。 养殖池可随时进行采样。
• 每一采样点应采水1000毫升， • （1）系一般性调查，可将各层采水等量混 合，取1000毫升混合水样固定； • （2）分层采水，分别计数后取平均值。分 层采水可以了解每一采样点各层水中浮游 植物的数量和种类。 • 水样应立即加入15毫升碘液（即鲁哥氏液） 固定。
• 用内径为30毫米的橡皮乳胶管，接上 橡皮球，利用虹吸法将沉淀上层清液 缓慢吸出（切不可搅动底部，万一动 了应重新静置沉淀）。
浮游生物调查方法
七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移 0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2 动台的显微镜。 经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准 适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。每 次计数时用的盖玻片应用碱水或肥皂水洗净备用。 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 净，计数框用前以薄绸布拭净，用毕以水弄湿后 轻拭或用水冲净。
虹吸动作要十分仔细、小心。开始时虹吸管一端 放在沉淀器内约三分之二处，另一端套接在已经 用手挤压出空气的橡皮球上，然后轻轻松手并移 开橡皮球使清液流出，为了避免漂浮水面的一些 微小藻类进入虹吸管而被吸走，管吕应始终低于 水面。虹吸管内清液的活动不宜过快，可用手指 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 应使清淮一滴一滴地流下。吸出的清液要用一洁 净的器皿装盛，以便在浓缩过程在出故障时，可 重新倒入沉淀器中浓缩，不必新采水。
数横条，最少不少于5 数横条，最少不少于5条具体可自行掌握。 总之不论数视野还是数横条，每片计数到 的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）500个（高浓度时）以上。 500个（高浓度时）以上。 同一样品的二片计数结果与其均数之差距 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 的均数即可视为计数结果。
浮游动物定量：
浮游植物采集与定性定量分析
第3行
第5行 第8行
总的物种数=
实际看到的物
种数×10/3
3. 水滴法
镜检：根据1毫升的水相当于20滴水，用移液管 取1滴水样，转移至计数框，全部计数。
总数量的计算：假如1升浮游植物水样定容至30 毫升，那么总数量=30÷（1÷20）×计算所得个数
样品采集：首先进行水平面设点和垂直分层，然后 用1升
采水器采集1升水样，加鲁格氏液15毫升，转移 至沉降器沉 淀 24～48小时，通过虹吸法获得浓缩的定 量样品，定容至
50毫升
样品固定：添加3～5毫升甲醛溶液
2. 定性分析 采集：用 25 号浮游生物网在水面以下呈 “∞” 来
回拖行，将所采集水样保存于小方瓶（50毫升）
浮游植物采集与定性定量分析 2019.03.18
蓝藻门 裸藻门 淡 水 种 类 绿藻门 隐藻门 硅藻门 黄藻门
甲藻门 轮藻门
金藻门
采集
分析
确定采样点
记录水体理化 指标
确定采样层次
（福尔马林/碘液）
样品固定
定性样品采集
（25#,64 μm）
定量样品采集
（1L+10L）
（定性、定量）
室内分析
1. 定量分析
固定：添加3-5毫升甲醛溶液保存。
定量计数方法 视野法 行格法 水滴法
0.1ml计数框
移液枪取样0.1毫升 均匀分布于计数框 对部分视野进行镜检 计数该部分框的面积是400 mm2，而显微镜的视野面 积是固定值。 显微镜视野面积的计算：某型号显微镜的视场 数 为 20 ， 那 么 在 高 倍 镜 下 的 实 际 视 场 直 径 为 20/40=0.5mm ， 高 倍 镜 下 的 视 野 面 积 为 3.14*0.25*0.25≈0.2 mm2。
浮游植物取样测定规范
水体浮游植物分析规范参考淡水生物资源调查技术规范DB43/T 432-2009➢水层设置水深小于3m时，只在中层采样，混合均匀水体，可以只采表层（0.5m）水样；水深3m～6m时，在表层、底层采样，其中表层水在离水面0.5m处，底层水在离泥面0.5m处；水深6m～10m时，在表层、中层、底层采样；水深大于10m时，在表层、5m、10m水深层采样，10m以下除特殊需要外一般不采样，对于深水湖泊，取样的水层可以将取样间隔加大，如0m,10m,20m,50m, 100m。
➢采样定量样品在定性采样之前用采水器采集，每个采样点取水样1L，贫营养型水体应酌情增加采水量。
泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。
分层采样时，取各层水样等量混匀后取水样1L。
大型浮游植物定性样品用25号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集，注意网口与水面垂直，网口上端不要露出水面。
➢固定浮游植物样品立即用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1％～1.5％。
如样品需较长时间保存，则需加入37%～40％甲醛溶液，用量为水样体积的4％。
现行的一些规律性的方法为：取水样，500ml,加入5ml鲁格，虹吸到30-50ml,加入1ml甲醛。
➢水样的沉淀和浓缩固定后的浮游植物水样摇匀倒入固定在架子上的1L沉淀器中，2h后将沉淀器轻轻旋转，使沉淀器壁上尽量少附着浮游植物，再静置24h。
充分沉淀后，用虹吸管慢慢吸去上清液。
虹吸时管口要始终低于水面，流速、流量不能太大，沉淀和虹吸过程不可摇动，如搅动了底部应重新沉淀。
吸至澄清液的1/3时，应逐渐减缓流速，至留下含沉淀物的水样20mL～25（或30～40）mL，放入30（或50）mL的定量样品瓶中。
用吸出的少量上清液冲洗沉淀器2次～3次，一并放入样品瓶中，定容到30（或50）mL。
如样品的水量超过30（或50）mL，可静置24 h后，或到计数前再吸去超过定容刻度的余水量。
浓缩后的水量多少要视浮游植物浓度大小而定，正常情况下可用透明度作参考,依透明度确定水样浓缩体积见表3，浓缩标准以每个视野里有十几个藻类为宜。
浮游植物细胞质量分析报告
浮游植物细胞质量分析报告浮游植物广泛分布于海洋、淡水等水体中，是水生生态系统中重要的初级生产者。
它们的细胞构造和生长方式对水质和生态环境有重要影响。
本报告将对浮游植物的细胞质量进行分析和总结。
一、浮游植物的细胞质量指标1.细胞大小：浮游植物的细胞大小多种多样，从微米到毫米不等。
通常，细胞大小与浮游植物的种类和生长环境有关。
2.细胞形态：浮游植物的细胞形态多样，包括球形、椭圆形、链状和丝状等。
细胞形态可以通过光学显微镜观察和测量。
3.细胞结构：浮游植物的细胞结构主要包括细胞壁、质膜、质网、叶绿体等。
细胞结构的研究可以通过电子显微镜和组织切片等方法进行。
4.细胞生长：浮游植物的细胞生长包括细胞分裂和细胞扩张两个过程。
细胞生长的速率和方式可以通过实验室培养和野外观察来研究。
二、浮游植物细胞质量的影响因素1.光照条件：光照是浮游植物的主要能量来源，光照不足会限制浮游植物的生长和细胞分裂。
2.营养物质：浮游植物需要充足的营养物质供给，如无机盐、有机物和微量元素等。
不同种类的浮游植物对营养物质的需求量和种类有所差异。
3.温度：温度对浮游植物的生长和代谢活动有重要影响。
过高或过低的温度都会影响浮游植物的细胞质量。
4.酸碱度：水体酸碱度的变化会影响浮游植物的生长和存活。
过高或过低的酸碱度都会对浮游植物产生不利影响。
三、浮游植物细胞质量的研究方法1.显微观察：利用显微镜对浮游植物的细胞形态、大小和结构进行观察和测量。
2.组织切片：将浮游植物样品制成组织切片，利用电子显微镜进行细胞结构的观察和分析。
3.流式细胞仪：利用流式细胞仪对浮游植物的细胞大小、细胞周期和叶绿素含量等进行定量分析。
4.实验室培养：通过在实验室中模拟不同环境条件对浮游植物进行培养和观察，研究不同因素对浮游植物细胞质量的影响。
四、浮游植物细胞质量的意义和应用1.环境指示器：浮游植物细胞质量的研究可作为水体生态环境质量的评估指标之一，通过分析浮游植物的种类和数量可以判断水质的优劣。
陈纯-四种浮游植物生物量计算方法的比较分析_定稿
浮游植物是湖泊、水库和河流生态系统中重要的初级生产者，其现存量是指某一时间内单位体积
论文资助来源：广东省水利厅科技创新项目（ 2009-22 ）和国家自然科学基金重点项目（ U0733007 ） 第一作者 . 陈纯 , 女 , 1988 年 12 月生 , 从事淡水生态学研究 ; Email: ciara_2012@. 通迅作者：韩博平 , Email: tbphan@.
1.2 浮游植物群落种类组成概况 8 次采样共鉴定出浮游植物 64 种，隶属于 6 门[15] 。其中种类最多的是绿藻（38 种） ，其次是硅藻 （13 种）和蓝藻（8 种） ，其余种类 5 种。主要优势种类是 Discostella sp. 和微小多甲藻（Peridinium pusillum） 。 1.3 浮游植物种群生物量的计算 任一浮游植物种类的种群定量分析样品分别选自上述 8 次不同采样时间的不同围隔，即各浮游植 物种群均有 8 个定量分析样品， 每个定量分析样品均取 3 次 0.1mL 的浓缩样品进行镜检。 采用标准法、 细分法、 粗分法和资料法 4 种不同方法对每一浮游植物种类的种群生物量进行计算， 以 Discostella sp.、 微小多甲藻（Peridinium pusillum） 、月形单针藻（Monoraphidium lunare）和尖针杆藻（Synedra acus） 为例。4 种方法的具体步骤如下： 标准法，分别对 Discostella sp.、微小多甲藻、月形单针藻和尖针杆藻中不同大小的藻细胞的各参 数进行测量，求得各参数的平均值后根据相关公式计算出体积，再算出生物量。各种群的测量参数图 示及体积公式 见表 1。 细分法，较详细记录各种群的藻细胞体积测量值（表 2） ，按各种群记录的藻细胞体积测量值进行 细胞计数，最后算出生物量。 粗分法，将各种群的藻细胞体积测量值划分为 3 个等级（表 2） ，按各种群各等级的藻细胞体积测 量值进行细胞计数，再算出生物量。 [2、4、6-7] 找到 Discostella sp. 、微小多甲藻、月形单 资料法，对各种群进行细胞计数，查阅文献资料 3 3 针藻、尖针杆藻的平均细胞体积分别为 684μm 、4208μm 、56μm3、2475μm3，再计算出生物量。 表 1 Discostella sp. 、微小多甲藻、月形单针藻和尖针杆藻的测量参数图示及体积公式 Tab.1 Measured parameters and volume formulas of Discostella sp., Peridinium pusillum, Monoraphidium lunare and Synedra acus Discostella sp. 微小多甲藻 月形单针藻 尖针杆藻
浮游植物的采集 计数与定量方法
。如下面的不浓浓缩缩体积稀与释 水透明度（体现水的肥瘦）之间关系大致如下， 仅供参考。
瘦中 肥
透明度 >1m 老水 特老水
>50cm
>30cm
<30cm <20cm 浓2缩020/的3/27标准是以每个视野里有十几个藻类为宜。
三、计数方法
将浓缩沉淀后水样充分摇匀后，立即用0.1ml吸量管吸出0.1ml样品，注入
体积公式计算细胞体积。细胞体积的毫升数相当于细胞重量的克数。
这样体积值（μm-3）可直接换算为重量值（109μm-3）可直接换算
为重量值（109μm-3≈1毫克鲜藻重）。
下列体积公式，可供计算生物量时参考：
圆锥体：V=1/3лR2h
圆柱体：V=лR2h
球 体：V=4/3лR3
椭圆体：V＝4/3ab2л（a为长轴半径，b为短轴半径）
0 . 1 ml 计 数 框 内 （ 计 数 框 的 表 面 积 最 好 是 2 0 × 2 0 ㎜ 2 ） ， 小 心 盖 上 盖 玻 片 （
22×22㎜2），在盖盖玻片时，要求计数框内没有气泡，样品不溢出计数框。
然后在14×40或16×40倍显微镜下计数。即在400－600倍显微镜下计数。每
瓶标本计数两片取其平均值，每片大约计算50～100个视野，但视野数可按浮
入虹吸管内，管口应始终低于水面，虹吸时流速流量不可过大，吸至澄 清液1／3时，应控制流速，使其成滴缓慢留下为宜。
采水时，每瓶样品必须贴上标签，标签上药剂在采集的时间、地点、 采水体积等，其他详细内容应另行做好记录，以备查对，避免错误。
1000m浓l 缩30的ml 体5积0 m视l 浮100游ml 植物的多少而定。也可根据水的肥瘦确定浓缩体积
浮游植物采集与定性定量分析
0.1毫升样品的数量就是将实际看到的每个视野 物种数量乘以2000倍。
第3行
第5行 第8行
总的物种数=
实际看到的物
种数×10/3
3. 水滴法
镜检：根据1毫升的水相当于20滴水，用移液管 取1滴水样，转移至计数框，全部计数。
总数量的计算：假如1升浮游植物水样定容至30 毫升，那么总数量=30÷（1÷20）×计算所得个数
样品采集：首先进行水平面设点和垂直分层，然后 用1升
采水器采集1升水样，加鲁格氏液15毫升，转移 至沉降器沉 淀 24～48小时，通过虹吸法获得浓缩的定 量样品，定容至
50毫升
样品固定：添加3～5毫升甲醛溶液
2. 定性分析 采集：用 25 号浮游生物网在水面以下呈 “∞” 来
回拖行，将所采集水样保存于小方瓶（50毫升）
浮游植物采集与定性定量分析 2019.03.18
蓝藻门 裸藻门 淡 水 种 类 绿藻门 隐藻门 硅藻门 黄藻门
甲藻门 轮藻门
金录水体理化 指标
确定采样层次
（福尔马林/碘液）
样品固定
定性样品采集
（25#,64 μm）
定量样品采集
（1L+10L）
（定性、定量）
室内分析
1. 定量分析
固定：添加3-5毫升甲醛溶液保存。
定量计数方法 视野法 行格法 水滴法
0.1ml计数框
移液枪取样0.1毫升 均匀分布于计数框 对部分视野进行镜检 计数该部分视野的数量
换算整个计数框的数量
计数框的面积是400 mm2，而显微镜的视野面 积是固定值。 显微镜视野面积的计算：某型号显微镜的视场 数 为 20 ， 那 么 在 高 倍 镜 下 的 实 际 视 场 直 径 为 20/40=0.5mm ， 高 倍 镜 下 的 视 野 面 积 为 3.14*0.25*0.25≈0.2 mm2。
淡水浮游生物的调查方法
淡水浮游生物的调查方法淡水浮游生物调查有定性调查和定量调查两种类型。
定性调查是指采集浮游生物进行属种鉴定的过程，其目的在于了解水体中浮游生物的种类组成、出现季节及其分布状况。
定量调查是指采集浮游生物，确定个体数目或重量的过程，其目的在于探明各种浮游生物在水体中的数量及其变化情况。
定性调查是定量调查的基础，定量调查则是定性调查的发展和补充，二者相辅相成，在实践中常相互结合进行。
一、调查用品用具(1)网具①浮游生物定性网：用于表层50厘米内各种浮游生物的定性采集。
由铜环、缝在环上的圆锥形筛绢网袋及连在网袋末端的集中杯（网头）三部分组成（其外形见本书图2-3）。
由于浮游生物大小各不相同，为了采全各种浮游生物，应使用25#、20#、13#三种规格。
其中25#网适于采集个体较小的浮游植物，其网孔大小为毫米；20#网适于采集一般浮游植物及中小型浮游动物，其网孔大小为毫米；13#网适于采集大型枝角类和桡足类等浮游动物，其网孔大小为毫米。
中学生开展本项活动时，可以只用20#网进行采集。
定性网可以自己裁剪制作，裁剪时可按图8-1所示方法进行。
如网口直径为20厘米，其半径为10厘米，可依c=2rπ公式计算，从a到b的弧长为厘米，a至c为网的长度即60厘米，这样就可按照图8－1中的1与2所示方法进行裁剪。
缝合时，应该用细针，以免网上留下针孔，造成浮游生物自针孔流失。
网衣应该用10厘米宽的白布条固定在铜环上，使筛绢不与铜环直接接触。
在网的末端装配集中杯。
为了使网衣坚固耐用，最好在缝合处加缝2厘米宽的白布条。
定性网各部分的尺寸规格，依型式不同而有差别，其尺寸规格见表8-1。
v1.0 可编辑可修改表8-1 浮游生物定性网规格单位：厘米②浮游生物定量网：用于表层50厘米内各种浮游生物的定量采集。
其组成、质地、规格尺寸和制作方法与定性网基本相同。
二者有两点区别。
一点是定量网前端有两个金属环（前小后大），两环间有一圈帆布，称为上锥部（附加套），用途在于减少由于曳网时浮游生物着逆流向外而流失；另一点是网身较定性网略长（图8-2）。
近海岸浮游植物
秦皇岛近海岸浮游植物调查报告杨丽荣摘要:海洋生物调查是海上调查的重要组成部分，主要任务是查清海区生物的种类组成，数量分布等。
本文简要介绍了海上浮游生物调查的主要调查工具和设备，以及样品取样保存方法。
并对本次海上秦皇岛近海所取样品进行定性分析定量分析。
关键词：海洋调查浮游生物定量分析一、秦皇岛近海概况秦皇岛位于河北省东北部，南临渤海，是中国甲级旅游城市之一。
秦皇岛海岸线长达124千米，特产对虾、海蜇、海参等海珍品，海洋渔业资源及其丰富。
二、水生生物调查方法1、调查内容浮游植物调查，包括浮游植物定型，浮游植物定量调查等。
2、站位布设经度119°37.147′纬度39°48.256′气温27℃水温25.5℃透明度129cm水深平均13m采集三层水样，即表0.5m、中6.5m、底12.5m水样第一节浮游植物调查一、调查使用的材料和方法1、现场调查（1）试剂①福尔马林一般使用4%的甲醛固定。
②碘液（鲁哥氏液）一般使用1.5%碘液固定。
碘液固定的标本形态构造保存较好。
但易挥发，最好再加入4%的甲醛固定。
（2）材料①网具：浅海Ⅰ型浮游生物网。
②采水器：球阀采水器。
③透明盘（萨斯盘）。
（3）浮游植物定性样品采集将浅海Ⅰ型浮游生物网绑在船上，在水中水平拖取，为尽可能多采集到各种浮游植物，在拖动采集网时，注意采集网的上下移动。
将捞得的浮游植物的采集网拉起，滤去多余的水，待只剩下网头中的水时，旋开活塞放入标本瓶中，加入的福尔马林溶液固定，写好标有采样地点、日期、点号、时间的标签带回实验室。
该水样用于浮游植物种类组成的鉴定，通常成为浮游植物定性水样。
（4）浮游植物定量样品采集该水样的采集是用球阀采水器采水,转移到1L聚乙烯标本瓶中，按水样体积加1%-1.5%的鲁哥氏液固定，写好标有采样地点、日期、点号、时间的标签带回实验室。
该水样用于浮游植物现存量与生物量分析，通常称为浮游植物定量水样。
2、室内分析方法及结果（1）工具：光学显微镜，0.1ml定量吸管，0.1ml计数框，台微尺，目微尺，普通吸管，载玻片，盖玻片等。
浮游植物的采集、计数与定量方法讲解
凡水深不超过2米者，可于采样点水下0.5m处采水，
水深2～10米以内，应距底0.5米处另采一个样， 水深超过10米时。应于中层增采一个水样。
⑴池塘：样点可设在距岸边1m处。水深小于2m时采一中 层水样。若水深大于2m时，最好采上、中、下层水样。 亚表层：水下20cm左右。 中 层：水体中间部分。 下 层：离底20cm左右。
每种藻类至少随机测量20个以上，求出 这种藻类个体种的平均值，一般都制成 附表供查找。此平均值乘上一升水种该 种藻类的数量，即得到一升水中这种藻 类的生物量（mg/L）。
由于同一种类的细胞大小可能有较大的 差别，同一属内的差别就更大了，因此 必须实测每次水样中主要种类（即优势 种）的细胞大小并计算平均重量，其他 种类可以参考附表计算。
每瓶标本计数数量：计数两片取其平均值 ，每片大约计算50～100个视野，但视野 数可按浮游植物的多少而酌情增减。 如平均每个视野不超过1～2个时，要数200 个视野以上，如果平均每个视野有 5 ～ 6 个时要数100个视野，如果平均每个视野 有十几个时数50个视野就可以了。
同一样品的两片计算结果和平均数之差 如不大于其均数的±15％，其均数视为 有效结果，否则还必须测第三篇。
浮游植物的 采集、计数与定量方法
浮游植物（Phytoplankon）又称浮游藻类， 是水中悬浮生活的若干种藻类的总称。浮 游植物及其生产力的作用：
水生态系统的重要成员与重要功能之一： 是鱼类天然饵料的重要组成部分； 由于浮游植物对环境的变化十分敏感，故 在环境监测中，也有重要作用。
种类和数量
采水时，每瓶样品必须贴上标签，标签上 药剂在采集的时间、地点、采水体积等 ，其他详细内容应另行做好记录，以备 查对，避免错误。
浮游植物的采集、计数与定量方法PPT教学课件
几个时数50个视野就可以了。同一样品的两片计算结果和平均数之差如不大
于其均数的±15％，其均数视为有效结果，否则还必须测第三篇，直至三片
平均数与相近两数之差不超过均数的15％为止，这两个相近值的平均数，即
可视为计算结果。
在计数过程中，常碰到某些个体一部分在视野中，另一部分在视野外，这
时可规定出在视野上半圈者计数，出现在下半圈者不计数。数量最好用细胞
第三环节 揣摩意象，领略意境
—理解作品
• 克服了文字障碍，理顺了句子关系，明白了 诗句的大意，再读起作品，注意力就不会受到 疑难字句的羁绊，想象力也不会因句意不通而 阻隔，思维便可以摆脱字面而进入画面了，就 有能力形成整体印象，或分解出一个个意象， 进而再联系起来，统合起来，对作品作出一个 客观的完整的认识。这就是解释作品。其基本 原则是忠于原作，追求本意。如叶老所说： “就是明白作者的意思情感，不误会，不缺漏， 作者表达些什么，就完全领会他那些什么。”
通过对这一个个意象的把握及联缀，我们就可以 把这首词的整体意境描述为：上阙写作者酒后望月 驰思，对天上人间的无限感慨；下阙写辗转不寐思 念亲人，又感悟到万事万物自古难全的道理，由此 得以自慰和宽解，并表达对亲人的美好祝愿。
圆锥体：V=1/3лR2h 圆柱体：V=лR2h 球 体：V=4/3лR3 椭圆体：V＝4/3ab2л（a为长轴半径，b为短轴半径） 圆台体：V＝1/3лH（ R12 + R22 R1 R2 ） 长方体与正方体ab×h或a3
硅藻细胞的计算通式：V＝壳面面积×带面平均高度 不规则性藻类可分可为几个部分计算。
第一章浮游植物的采集、计数 与定量方法
浮游植物（Phytoplankon）又称浮游藻类，是水中悬浮生活的若 干种藻类的总称。
浮游植物的定量分析
4、注意事项： ①计算过程中常可碰到某些个体的一部分在 视野中，而另一部分在视野外，可规定出 在视野上半圈者计数，下半圈者不计数。 此外，数量最好用细胞数表示，对不易用 细胞数表示的群体或丝状体，可求出其平 均细胞数。 ②计算时优势种类尽可能鉴别到种，其余鉴 别到属。注意不要把微型浮游植物当作杂个视野有56个时浮游植物就要数100个视野如平均每个视野不超过12个时要数200个视野以上同一样品的2片计算结果和平均数之差如不大于其均数的15其均数可视为有效结果否则还必须测第直至3片平均数与相近两数之差不超过均数的15为止这两相近值的均数即可视为计算结果
2、生物量的换算
★生物量较数量更能反应水体中浮游植物的现 存量，不同水体的数据也更具可比性，所以 计算出的数值应按湿重换算成生物量。 ★湿重通常按体积计算，由于不同水体的个体 差异较大，所以最好每个样品都能实测其优 势种的体积，但此项工作量相当大。
3、计数具体要求；
①校正计数框容积。 ②定量用的盖玻片应以碱水或肥皂水洗净备用，用前 可浸于70﹪酒精中，用时取出拭干。 ③滴取样品以后最好用液体石蜡封好计数框四周，以 防计数过程中干燥。 ④用台微尺测显微镜一定倍数下的视野直径。 ⑤选好与计数框同样容积的定量吸管。 ⑥定量时应将浓缩标本水样充分摇匀，快吸快滴 。 ⑦加上盖玻片后不应有气泡出现 。 ⑧计数后的定量样品应保存下来。
一升水样中的浮游植物的数量(N)可用下列公式计算： N = (Cs × V ) / ( Fs × Fn ×U ) × Pn 式中：Cs——计数框的面积（mm2）； Fs——显微镜的视野面积（mm2） Fn——计数的视野数 V——1升水样浓缩后的体积（ml） U——计数框的体积（ml） Pn——计数出的浮游植物个数 如果计数框、显微镜固定不变，Fs、V、U也固定 不变，公式(Cs × V ) / ( Fs × Fn ×U )用 常数K代替，上述公式可简化为：N = K × Pn。
浮游动植物调查方法
浮游动植物调查方法1.方法与原理1.1采样点水体中浮游生物的分布不是很均匀的，通常因水体形态、深度、水源几出口、风、光照以及其他环境条件而差异，因此必须选择有代表性的地点进行采样。
在一般情况下，湖泊的湖湾和中心部分，沿岸有水草区和无水草区浮游生物的种类和数量都有不同。
当有风引起水流时，浮游生物多聚集在水流冲击的下风向一侧，总量较高。
此外，水源入口处，不同时间各水层的光照和温度条件下浮游生物的种类和数量都会有所不同。
采样点的数目根据水体的具体条件而定。
水体面积大的，条件复杂的，采样点要多些；要有较高人力、时间和经费等条件允许的，采样点也可以多些。
1.2采集采集工具主要有采集网和采水器。
当一般定性采集时，可站在船舱内或甲板上，将采集网系在竹竿或木棍前端，放入水中作∞形循回拖动（网口上端不要露出水面），拖动速度不要超过0.3米/秒。
如若拖动太快，水在网内会发生回流，将使网内的浮游生物冲到网外。
当一般定量采集时，各种类型的采水器均可使用，但一定要能分层采水。
在水深不超过10米的水体采样时，可用自制的采水器。
采水器可以采集到那些易从网孔中漏失的微小浮游生物。
但因采集水量有限，很难采到密度较稀和游动能力强的较大类型种类。
1.3固定和保存采到的样品必须在5分钟以内加以固定。
常用的固定液有福尔马林、刘哥氏液、甘油—福尔马林保存液、Rodhe碘固定液。
福尔马林为含有40%甲醛的药品。
一般按每100毫升水样加入约4毫升福尔马林（含1.6%甲醛），也就是说用4%福尔马林固定。
1.4浓缩化学沉淀法：所才水样用福尔马林加以固定静置1—2昼夜使之沉淀，用宏吸管吸去上面清夜，将下层包括沉淀物的浓液移入小容器中，再静置沉淀。
必要时可反复进行，直到浓缩到10—50毫升为止。
1.5观察与鉴定对所采到的浮游生物种类进行全面的种的鉴定，是一项难度和工作量都很大的工作，常常需要各方面的专家协同进行。
种类鉴定可采用检索表和图鉴相结合的方法。
浮游植物的采集计数和定量方法
浮游植物的采集计数和定量方法浮游植物是水生态系统中重要的底层生物类群，对于水质评价、生态监测以及环境保护都具有重要的意义。
因此，准确、高效地采集、计数和定量浮游植物是水环境研究的关键步骤。
下面将介绍浮游植物的采集计数和定量方法。
一、浮游植物的采集方法：1.根据采样目的和特定环境条件选择合适的采样方法，常用的采样方法有以下几种：(1)铁丝网挡截式采样：在浮游植物出现较为集中的水域使用，将铁丝网固定在一个框架上，让水流通过铁丝网，实现浮游植物的挡截和收集。
(2)网捞式采样：适用于浮游植物密度较高的水域，用网捞将浮游植物从水中捞出。
(3)浮游植物捕集器的采集：常用的浮游植物捕集器有浮游植物网式捕集器、浮游植物漏斗捕集器、浮游植物湖泊型捕集器等。
2.采样前要选择合适的采样点，宜选择浮游植物密度较高的水域进行采样。
采样容器要先用水冲洗，尽量不带有任何异物，以避免对采样物质的污染。
3.采集浮游植物时应避免过度搅荡水体，以防浮游植物的破碎和污染。
4.采集样本时要注意保持样本的完整性，以确保后续的计数和分析的精确性。
二、浮游植物的计数方法：1.显微镜计数法：将采样的浮游植物样本放入显微镜下，通过目视计数的方式，记录不同种类的浮游植物数量。
2.染色计数法：采用一些常见的染色剂（如碘酒、卡内基氏溴酸可乐定等）将浮游植物样本染色后，在显微镜下对染色后的样本进行计数。
3.流式细胞仪计数法：利用流式细胞仪可以对样本中的细胞进行高效、自动化的计数和分析。
三、浮游植物的定量方法：1.干重法：将采集回来的样本在高温下干燥至恒定重量后，通过测量干物质的质量差值计算浮游植物的生物量。
2.叶绿素-a含量测定法：通过提取样本中的叶绿素-a，利用比色法测定其叶绿素-a的含量。
然后根据叶绿素-a的含量可以推算出浮游植物的生物量。
3.DNA分子量法：通过提取样本中的DNA，利用分子生物学技术测定其DNA的分子量。
再根据已建立的浮游植物DNA分子量和生物量的线性关系，可以推算出浮游植物的生物量。
枯水期白云湖浮游植物调查与初步分析
１ ． ５ ％ 。水 样 运 回实 验 室后 ， 立即移入玻璃量 简 内， 加 盖 静 置
２ ４ ｈ后 ， 用管 口包裹 筛绢 的虹吸管 或吸管 小心 吸去上 清液 。 如此反复多次 ， 直至将水样浓缩 至 ３ ０～１ ０ ０ ｍ ｌ 。分析 时取 均 匀样 品 １ ｍ ｌ 注入 Ｓ ｅ ｄ ｇ ｅ ｗ ｉ ｃ ｋ—Ｒ ａ ｆ ｔ ｅ浮 游植 物 计数 框 中， 在 Ｎ ｉ ｋ ｏ ｎ倒置显微 镜（ Ｅ Ｃ Ｌ Ｉ Ｐ Ｓ Ｅ Ｔ Ｓ １ ０ ０ ） 下进行 浮游植物 的种类
检 出的浮游植物有 ６门 ５ ８种 ， ３次监测种类最多 的都是硅 藻
门和 绿 藻 门 ， 见表 １ 。
表 １ 浮 游 植 物种 类 组成
２ ０ １ ２年 １ 月 份 白云湖 检 出的藻 类生 物量 西湖 为 １ ４ ． ０ ２ ３ ． ２ 藻类密度 ２ ０ １ １年 １月份白云湖检 出的 藻类密度 西湖 为 １ ０ ２ ３ ． ７ ５ 万 ｃ ｅ ｌ ｌ ｓ ／ Ｌ 、 东湖为 ５ ７ ４ ． ８万 ｃ ｅ ｌ ｌ ｓ ／ Ｌ ， 其 中硅藻 分别 占 ８ ０ ． ５ ％ （ 西湖 ）和 ６ ２ ． ４ ％ （ 东湖 ） ， 绿藻分别 占 １ ４ ． ８ ％（ 西 湖 ）和 ３ ６ ． ８ ％（ 东湖 ） 。硅藻为 白云湖第一优势浮游植物 群落 ， 其 次 为绿藻 ， 两者合计 藻类 密度分 别 占 ９ ５ ． ３ ％（ 西湖 ） 和９ ９ ． ２ ％
表４ 。
仍为最大。
２ ０ １ ３年 １ 月份 白云 湖检 出 的藻类 生物 量西 湖 为 ２ ． ６ ２ ６ ９ ｍｇ ／ Ｌ ， 西、 东湖较 ２ ０ １ ２年同 比下降显著 ，
4.实验四__浮游植物采集和定量
将样品倒入量筒中沉淀浓缩 直接在广口瓶中浓缩，但要确定体积
4. 浮游植物定性：浮游植物
样品采集参照文献( 国家环保总 局，2002 )的方法。定性样品用 孔径约0.064 mm的25号浮游生物 网在水面下约0.5 m处以适当的速 度作“∞”字形来回拖动1～3 min，获得的浓缩样分为两份，一 份立即用适量的鲁哥氏液固定， 另一份活体样品于24小时内镜检。
镜头法需量测量镜头的直径d，实验室目前常用的镜头的视野直径： d1=2000um（10x），1000um（20x），500um（40x） d2=1800um（10x），900um（20x），450um（40x） 镜头面积=πr2。
使用的工具有： 100µl移液枪（带有0.1毫 升刻度的小吸管），容量为0.1毫升的计数 框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移动台的显 微镜。
5. 计数：计数一定体积内的浮游 植物种类和数量
显微镜计数方法选择： 采用行格法或镜头法，确定计数行格 和镜头内的浮游植物种类和数量。行格法 一般每片计数3、5、8行/列中的植物；镜 头法必须确定观察镜头（即视野光圈）的 直径/面积，通过随机移动镜头，计数所有 镜头内的藻类。
行格法按照计数玻片上的格子确定技术范围， 玻片样品池长x宽=20mmx20mm，即每列长x宽=20mmx2mm 计数水样体积=0.001mlx计数格数
效结果，否则还必须测第三片，直至三片平均数与相近两 数之差不超过均数的15％为止。
在计数过程中，常碰到某些个体一部分在视野中，另一部 分在视野外，这时可规定出在视野上半圈者计数，出现在 下半圈者不计数。数量最好用细胞表示，对不宜用细胞数 表示的群体或丝状体，应分细胞大小分类计数。
计数时记录保持整洁清晰，便于整理计算。应明确记录采 样时间、地点、原水样体积、浓缩体积、计数片数和视野 数。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
4、注意事项： ①计算过程中常可碰到某些个体的一部分在 视野中，而另一部分在视野外，可规定出 在视野上半圈者计数，下半圈者不计数。 此外，数量最好用细胞数表示，对不易用 细胞数表示的群体或丝状体，可求出其平 均细胞数。 ②计算时优势种类尽可能鉴别到种，其余鉴 别到属。注意不要把微可用下列公式计算： N = (Cs × V ) / ( Fs × Fn ×U ) × Pn 式中：Cs——计数框的面积（mm2）； Fs——显微镜的视野面积（mm2） Fn——计数的视野数 V——1升水样浓缩后的体积（ml） U——计数框的体积（ml） Pn——计数出的浮游植物个数 如果计数框、显微镜固定不变，Fs、V、U也固定 不变，公式(Cs × V ) / ( Fs × Fn ×U )用 常数K代替，上述公式可简化为：N = K × Pn。
2、生物量的换算
★生物量较数量更能反应水体中浮游植物的现 存量，不同水体的数据也更具可比性，所以 计算出的数值应按湿重换算成生物量。 ★湿重通常按体积计算，由于不同水体的个体 差异较大，所以最好每个样品都能实测其优 势种的体积，但此项工作量相当大。
3、计数具体要求；
①校正计数框容积。 ②定量用的盖玻片应以碱水或肥皂水洗净备用，用前 可浸于70﹪酒精中，用时取出拭干。 ③滴取样品以后最好用液体石蜡封好计数框四周，以 防计数过程中干燥。 ④用台微尺测显微镜一定倍数下的视野直径。 ⑤选好与计数框同样容积的定量吸管。 ⑥定量时应将浓缩标本水样充分摇匀，快吸快滴 。 ⑦加上盖玻片后不应有气泡出现 。 ⑧计数后的定量样品应保存下来。
浮游植物的定量分析
1、计数：
★ 将浓缩沉淀后的水样充分摇匀，吸出 0.1 mL置计数框内 （表面积最好 20 ×20 mm），在400—600倍显微镜下观 察计数。 ★每瓶标本计数2片取其平均值，每片大约计算50个视野， 如果平均每个视野有5—6个时浮游植物就要数100个视野， 如平均每个视野不超过1—2个时，要数200个视野以上， ★ 同一样品的2片计算结果和平均数之差如不大于其均数的 ±15％，其均数可视为有效结果，否则还必须测第 3片， 直至 3片平均数与相近两数之差不超过均数的15％为止， 这两相近值的均数，即可视为计算结果。