细胞迁移和侵袭实验技术(医学相关)
细胞迁移侵袭试验技术（Transwell）
细胞迁移侵袭试验技术（Transwell）迁移实验（cell migration assay）实验介绍细胞迁移与侵袭实验将Transwell小室放入培养板中，小室内称上室，培养板内称下室，上下层培养液以聚碳酸酯膜相隔，将研究的细胞种在上室内，由于聚碳酸酯膜有通透性，下层培养液中的成分可以影响到上室内的细胞，应用不同孔径和经过不同处理的聚碳酸酯膜，就可以进行共培养、细胞趋化、细胞迁移、细胞侵袭等多种方面的研究。
实验步骤：1材料准备：可拍照显微镜，Transwell小室，孔径8μm，没包被胶的(Coster 和Corning公司的也较常用)，Transwell迁移实验的细胞培养板24孔板。
细胞培养板应当与购买的Transwell小室相配套，BD公司的Matrigel，无血清DMEM，(1%胎牛血清)DMEM和1640培养基，DMEM 完全培养基，1640完全培养基（也可加到20%血清），无菌PBS，棉签，胰酶，4%多聚甲醛固定液或者甲醇，结晶紫染液（0.1%（g/ml）PBS结晶紫）2步骤和流程2.1基质胶铺板：用BD公司的Matrigel 1：8（根据细胞产生mmp的量来决定）稀释，包被Transwell小室底部膜的上室面，置37℃30min使Matrigel聚合成凝胶。
使用前进行基底膜水化。
2.2制备细胞悬液①制备细胞悬液前可先让细胞撤血清饥饿12－24h，进一步去除血清的影响。
但这一步并不是必须的。
②消化细胞，终止消化后离心弃去培养液，（用PBS洗1－2遍），用含BSA的无血清培养基重悬。
调整细胞密度至5×105/ml。
2.3接种细胞①取细胞悬液100μl加入Transwell小室。
②24孔板下室一般加入600μl含20%FBS的培养基，特别注意的是，下层培养液和小室间常会有气泡产生，一旦产生气泡，下层培养液的趋化作用就减弱甚至消失了，在种板的时候要特别留心，一旦出现气泡，要将小室提起，去除气泡，再将小室放进培养板。
细胞转移检测实验报告
一、实验目的细胞转移是肿瘤发生、发展和治疗过程中非常重要的环节。
本研究旨在通过细胞转移检测实验，探讨细胞转移的发生机制，为肿瘤的诊断和治疗提供新的思路和方法。
二、实验原理细胞转移是指肿瘤细胞从原发肿瘤组织脱离，通过血液循环或淋巴系统转移到其他器官或组织的过程。
本研究采用细胞侵袭实验和细胞迁移实验检测细胞转移能力，通过观察细胞侵袭和迁移的距离、速度以及细胞形态变化，评估细胞的转移能力。
三、实验材料1. 细胞：人乳腺癌细胞系MCF-7和肺转移细胞系PC-3；2. 实验试剂：Matrigel基质胶、Transwell小室、DMEM培养基、胎牛血清、胰蛋白酶、四甲基偶氮唑盐（MTT）等；3. 仪器：倒置显微镜、细胞培养箱、酶标仪、离心机等。
四、实验方法1. 细胞培养：将MCF-7和PC-3细胞分别接种于6孔板，置于细胞培养箱中培养，待细胞生长至80%融合时，进行实验；2. 细胞侵袭实验：将Matrigel基质胶与DMEM培养基混合均匀，将Transwell小室的上室铺上Matrigel，将细胞悬液加入下室，置于细胞培养箱中培养24小时，取出Transwell小室，用棉签擦去未侵袭的细胞，观察侵袭细胞数量；3. 细胞迁移实验：将Transwell小室的上室去掉Matrigel，将细胞悬液加入下室，置于细胞培养箱中培养24小时，取出Transwell小室，用棉签擦去未迁移的细胞，观察迁移细胞数量；4. MTT实验：将细胞接种于96孔板，培养24小时后，加入MTT溶液，培养4小时，用酶标仪检测吸光度（OD）值，计算细胞活力；5. 数据分析：采用SPSS 21.0软件对实验数据进行统计分析，比较MCF-7和PC-3细胞的侵袭和迁移能力。
五、实验结果1. 细胞侵袭实验：PC-3细胞的侵袭能力明显强于MCF-7细胞，侵袭细胞数量显著增加（P<0.05）；2. 细胞迁移实验：PC-3细胞的迁移能力明显强于MCF-7细胞，迁移细胞数量显著增加（P<0.05）；3. MTT实验：PC-3细胞的细胞活力明显高于MCF-7细胞，OD值显著升高（P<0.05）。
细胞侵袭转移实验报告
细胞侵袭转移实验报告细胞侵袭转移是癌症进展和转移的重要特征之一。
了解细胞的侵袭转移机制对于癌症预防和治疗具有重要意义。
本实验旨在研究细胞的侵袭转移能力，并探究其相关机制。
实验过程如下：1. 细胞培养与处理：选取一种具有侵袭能力的癌细胞株，如乳腺癌细胞MCF-7。
将细胞培养在含有适当营养和生长因子的培养基中，经过传代培养至适当细胞数目。
2. Transwell侵袭实验：将含有细胞的培养基加入到上游腔室中，下游腔室中加入含有化膜毛细孔的过滤膜，如Matrigel。
使细胞逐渐通过过滤膜向下游腔室侵袭。
培养一定时间后，取出过滤膜并使用染色剂染色，以观察和计数通过膜孔的细胞数量。
3. Western blot分析：用Western blot方法检测有关侵袭转移的分子标志物，如转录因子Snail和转录因子Slug、E-cadherin和N-cadherin等。
提取细胞总蛋白，经SDS-PAGE电泳分离，转移至聚乙烯二醇膜上，用特异性抗体与目标蛋白结合。
通过免疫反应，使用化学发光显色剂检测目标蛋白的表达水平。
4. Real-time PCR分析：通过Real-time PCR技术检测相关基因的mRNA水平，包括Snail、Slug、E-cadherin和N-cadherin等。
提取总RNA，逆转录为cDNA 后，用特异性引物进行PCR扩增。
通过观察PCR曲线和计算Ct值，比较各样本基因表达水平的差异。
实验结果如下：1. Transwell侵袭实验表明MCF-7细胞具有较强的侵袭能力。
染色显示通过过滤膜的细胞数量较多。
2. Western blot结果显示Snail、Slug和N-cadherin的蛋白表达水平较高，而E-cadherin的蛋白表达水平较低。
这表明细胞侵袭转移相关的转录因子和黏附分子表达异常。
3. Real-time PCR结果进一步证实了上述结果，Snail、Slug和N-cadherin的mRNA水平较高，而E-cadherin的mRNA水平较低。
细胞的迁移和侵袭性研究
细胞的迁移和侵袭性研究细胞的迁移和侵袭性是癌症发展过程中的关键步骤，也是生物医学研究领域的热点之一。
随着科技的进步，人们对细胞迁移和侵袭性的研究也越来越深入。
细胞迁移和侵袭性指的是细胞从原位置向周边组织或者远离原位进行活动的能力。
这个过程通常涉及细胞的形态学和生化学的变化，细胞在基质中的反应和对周围环境的感知、反馈等。
在正常生理状态下，细胞迁移和侵袭主要是为了完成组织修复和再生等生理功能，但是在癌症等疾病状态下，细胞迁移和侵袭则是肿瘤发展的必要过程之一。
过去的研究发现，有很多因素可以促进细胞的迁移和侵袭性。
例如，一些细胞因子和信号通路可以使细胞从原位分化，增殖和扩散到其他组织。
肿瘤细胞的增强迁移和侵袭能力则涉及许多复杂的过程，如细胞的骨架变化、细胞—基质和细胞—细胞黏附分子的活化和调控等。
现代生物医学的研究方法提高了我们对细胞迁移和侵袭的认识。
例如，细胞穿透实验允许我们更深入地研究细胞对胶原蛋白等基质组分的穿透能力。
透过借鉴机器学习和人工智能等新兴技术，也可以根据基因组数据预测肿瘤的转移倾向，为肿瘤治疗提供更精确的指导。
在治疗癌症和其他疾病方面，研究细胞迁移和侵袭性也扮演了重要的角色。
例如，目前基于基因编辑的肿瘤治疗已经取得了一些初步的成功，其目的是通过针对癌细胞基因组编辑，从而抑制癌细胞的增殖和迁移。
其他疾病领域的研究，如结缔组织疾病和神经退行性疾病的治疗也重视细胞迁移和侵袭的治疗策略。
尽管我们对细胞迁移和侵袭性的理解越来越深入，但是这个研究领域仍然面临许多挑战和困难。
例如，如何在实验室环境下准确模拟肿瘤生长对于肿瘤治疗的研究非常重要，但这需要更加精确的实验设计和数据分析技术。
除了这些技术上的挑战外，肿瘤细胞的异质性和复杂性也使其难以彻底破解。
尽管如此，随着科技的进步和研究的深入，我们对细胞迁移和侵袭性的认识将会不断增加。
这将帮助加速癌症和其他疾病的治疗，并促进更加精确和个体化的治疗方法的发展。
细胞迁移和侵袭实验
细胞迁移和侵袭实验细胞迁移和侵袭实验实验准备：细胞，24孔板，transwell小室（8μm，24孔板专用），ECM Gel，10%FBS+培养基，无血清培养基，10 μ、200 μL、1000 μL移液器及配套枪头，1.5 mL EP 管，冰盒实验设计：实验分组一般分为阴性组（上下层均没有趋化因素），实验组（按照实验需要，上层或者下层加入趋化因素），对照组（趋化因素与实验组中的相反）。
如果有特别需要，可以再加上阳性组（上下层都有趋化因素）。
实验操作（请细读注意事项）：一、细胞侵袭实验1.ECM Gel原液提前1 h放在4 ℃冰箱中解冻，实验前转移到冰盒中。
2.将1.5 mL EP、枪头盒、transwell放在24孔板里面后，置于冰上预冷。
3.根据自己的使用量，按照ECM Gel : 无血清培养基=1 : 7.5在冰上稀释成使用液。
4.把枪头剪去一小段（约3 μm）后在冰上吸取40 μL/孔ECM Gel 使用液轻轻加入transwell上室中，加入时慢慢移动枪头，保证液体平铺在底部。
5.放在37 ℃孵箱15 min，让胶凝固。
6.消化、离心、计数细胞后，按照2.5x104 / mL用无血清培养基稀释细胞，制成细胞悬液（如果细胞很多，这一步可以提前，在4、5之前做）。
7.按照每孔200 μL，将细胞悬液加入transwell上室，同时在transwell下室加入10%FBS+培养基500 μL，放入37 ℃孵箱培养。
8.若干小时后取出，吸去transwell上室多余液体，用PBS清洗两次，用棉棒在上室中轻轻转动，吸干水分并擦去膜内侧的细胞。
9.在上室中加入结晶紫染液，染色5 min，回收染液，用流水缓缓冲去染液，再次用棉棒在上室中轻轻转动，吸干水分。
10.在正置显微镜上放置一块载玻片，将transwell小孔倒置放在上面，拍照。
11.在100倍视野下，对膜的上下左右及中间计数，做平均数。
12.清洗transwell，可以反复使用。
培育技术中的细胞迁移和侵袭研究方法简介
培育技术中的细胞迁移和侵袭研究方法简介培育技术中的细胞迁移和侵袭是现代生物医学领域中重要的研究方向之一。
细胞迁移和侵袭能力是癌症发展和转移的关键步骤，因此了解和掌握这些研究方法对于深入研究癌症等疾病的发生和发展机制至关重要。
本文将对几种常见的培育技术中的细胞迁移和侵袭研究方法进行简介。
首先，细胞迁移和侵袭实验中最常用的方法是Transwell实验。
Transwell实验通过在一个具有孔洞的膜上涂覆细胞并将其置于培养皿中进行培养，通过孔洞上、下的培养液来观察细胞迁移和侵袭的情况。
该方法简单易行，可以模拟细胞穿过基底膜进入邻近组织的过程。
此外，也可将上下孔洞的培养液分别加入不同的试剂，以研究其对细胞迁移和侵袭能力的影响。
其次，划痕实验也是常用的细胞迁移实验方法之一。
该方法通过在细胞培养皿中划出一条明显的划痕，然后观察一定时间后细胞填充划痕的程度，来评估细胞的迁移能力。
划痕实验可以直观地观察到细胞的迁移情况，并且操作简单快捷。
然而，由于该方法不模拟细胞穿越基底膜的过程，所以不能全面评估细胞的侵袭能力。
除了以上两种方法，还有其他一些更加先进和精确的技术用于研究细胞迁移和侵袭。
例如，全息成像技术可以实时观察细胞的三维迁移和侵袭过程，提供更为全面的视角。
单细胞迁移技术可以追踪和记录单个细胞的迁移轨迹，揭示细胞迁移的空间和时间特征。
这些方法需要更加复杂的设备和技术条件，但可以提供更为准确和详细的研究结果。
在细胞迁移和侵袭研究中，细胞系的选择也是至关重要的。
常用的细胞系包括癌细胞和原代细胞。
癌细胞系具有较强的迁移和侵袭能力，是研究肿瘤转移的理想模型。
原代细胞系则来自于患者的组织，具有更高的生物学真实性。
不同细胞系的选择需要根据具体研究目的和实验要求进行。
细胞迁移和侵袭研究方法的发展为探索癌症转移的分子机制提供了重要工具和平台。
通过合理选择合适的实验方法和细胞系，研究者们可以逐步揭示细胞迁移和侵袭的调控机制，为深入理解癌症等疾病的发生和发展提供重要线索。
细胞迁移or侵袭实验分析——LumaScope活细胞成像系统
细胞迁移/侵袭实验分析——LumaScope活细胞成像系统细胞迁移实验是普遍应用于评价损伤修复、贴壁肿瘤细胞转移或血管再生等的典型实验。
传统方法是应用无菌枪头（Tip）在细胞培养容器上划痕来实现。
但是此种方法无法实现在不同孔中划出同样大小的划痕。
Oris TM迁移/侵袭试剂盒能够提供更加精确的方法，在培养容器中生成一个圆形区域。
这种方法同样适用于观察不同方向的细胞迁移。
LumaScope活细胞成像系统具备传统显微镜的功能，可应用于细胞或组织培养实验室的日常细胞观察。
如细胞状态实时检测、远程传送和监控、细胞计数、形态观察、染色观察等。
LumaScope可放置于培养箱中实现细胞的长时间的连续成像和定点监测。
这种应用大大提高了实验过程检测的便捷性和结果的准确性。
本文将描述如何结合LumaScope与Oris TM迁移/侵袭试剂盒来实现细胞迁移/侵袭实验。
实验结果可通过Image J软件来进行分析，最终得到细胞迁移的数量和速度数据。
细胞迁移分析：Day 1：am 9:00插入Stoppers，接种细胞；pm 4:00（根据细胞贴附状况），拔除stoppers，PBS洗一遍后加入新鲜培养液。
Day 2：根据要观察的时间点设置LumaScope成像参数进行成像，并进行量化分析。
细胞侵袭分析：Day 1：am 9:00包被薄层BME（用无血清培养液制备），插入stoppers，接种细胞；pm 4:00 （根据细胞状况），拔除stoppers，包被厚层BME（含血清生长因子），再在第二层gel上面加上一层无血清培养液Day 2：根据要观察的时间点设置LumaScope成像参数进行成像，并进行量化。
一、材料●Oris TM迁移/侵袭试剂盒●细胞、培养容器和培养液●CO2培养箱●LumaScope活细胞成像系统●Image J软件（含Mtracking插件）二、操作方法1、根据上述Oris TM迁移/侵袭试剂盒使用说明培养细胞；2、75%乙醇消毒LumaScope系统及相关部件；3、将LumaScope系统放入CO2培养箱中，并连接到控制电脑（建议使用10倍或20倍物镜）4、将培养容器置于LumaScope载物台上，聚焦并找到目标视野；5、设置Time Lapse程序（包括光源、成像参数和保存路径等），建议成像间隔时间为20-30min；6、启动程序，系统将自动运行，直至结束；7、实验结果可通过Image J软件进行分析。
细胞迁移侵袭实验操作步骤
迁徙实验（ cell migration assay）实验介绍细胞迁徙与侵袭实验将 Transwell 小室放入培育板中，小室内称上室，培育板内称下室，上基层培育液以聚碳酸酯膜相隔，将研究的细胞种在上室内，因为聚碳酸酯膜有通透性，基层培育液中的成分能够影响到上室内的细胞，应用不一样孔径和经过不一样办理的聚碳酸酯膜，就能够进行共培育、细胞趋化、细胞迁徙、细胞侵袭等多种方面的研究。
实验步骤：1 资料准备：可摄影显微镜， Transwell小室，孔径8μm，没包被胶的 (Coster 和 Corning 企业的也较常用) ，Transwell 迁徙实验的细胞培育板24 孔板。
细胞培育板应该与购置的Transwell 小室相当套， BD企业的 Matrigel ，无血清DMEM，(1%胎牛血清 )DMEM和 1640 培育基， DMEM完整培育基， 1640 完整培育基（也可加到20%血清），无菌 PBS，棉签，胰酶，4%多聚甲醛固定液或许甲醇，结晶紫染液（%（ g/ml ） PBS结晶紫）2 步骤和流程基质胶铺板：用 BD企业的 Matrigel 1： 8（依据细胞产生mmp的量来决定）稀释，包被Transwell 小室底部膜的上室面，置 37℃ 30min 使 Matrigel聚合成凝胶。
使用行进行基底膜水化。
制备细胞悬液①制备细胞悬液前可先让细胞撤血清饥饿 12－ 24h，进一步去除血清的影响。
但这一步其实不是一定的。
②消化细胞，停止消化后离心弃去培育液，（用 PBS洗 1－ 2 遍），用含 BSA的无血清培育基重悬。
调整细胞密度至 5×105/ml 。
接种细胞①取细胞悬液100μl加入 Transwell小室。
②24 孔板下室一般加入 600μl含 20%FBS的培育基，特别注意的是，基层培育液和小室间常会有气泡产生，一旦产生气泡，基层培育液的趋化作用就减弱甚至消逝了，在种板的时候要特别留意，一旦出现气泡，要将小室提起，去除气泡，再将小室放进培育板。
细胞侵袭转移实验报告
一、实验背景肿瘤细胞侵袭和转移是恶性肿瘤发展过程中的关键环节，直接影响患者的预后和治疗效果。
本研究旨在通过细胞侵袭转移实验，探究肿瘤细胞侵袭和转移的分子机制，为肿瘤的预防和治疗提供新的思路。
二、实验目的1. 观察肿瘤细胞在体外侵袭和转移的能力。
2. 分析影响肿瘤细胞侵袭和转移的关键因素。
3. 为肿瘤的预防和治疗提供实验依据。
三、实验材料与仪器1. 材料：人乳腺癌细胞系MCF-7、Matrigel基质胶、Transwell小室、DMEM培养基、胎牛血清、胰蛋白酶、细胞计数试剂盒、侵袭和转移相关抗体等。
2. 仪器：倒置显微镜、酶标仪、离心机、冰箱、培养箱等。
四、实验方法1. 细胞培养：将人乳腺癌细胞系MCF-7接种于DMEM培养基中，置于37℃、5%CO2的培养箱中培养。
2. 细胞侵袭实验：将Matrigel基质胶铺在Transwell小室的多孔滤膜上，将MCF-7细胞接种于Transwell小室的上室，下室加入含胎牛血清的DMEM培养基作为趋化剂。
培养24小时后，取出小室，用4%多聚甲醛固定，结晶紫染色，观察肿瘤细胞的侵袭情况。
3. 细胞转移实验：将MCF-7细胞接种于Matrigel基质胶中，模拟体内肿瘤细胞侵袭转移过程。
观察肿瘤细胞在基质胶中的侵袭和转移情况。
4. 数据分析：采用ImageJ软件对侵袭和转移实验结果进行定量分析，计算侵袭和转移细胞的数量。
五、实验结果1. 细胞侵袭实验：结果显示，MCF-7细胞在Transwell小室中具有侵袭能力，细胞数量随培养时间的延长而增加。
2. 细胞转移实验：结果显示，MCF-7细胞在Matrigel基质胶中具有转移能力，细胞数量随培养时间的延长而增加。
六、实验讨论1. 本实验结果显示，MCF-7细胞在体外具有侵袭和转移能力，这与肿瘤细胞在体内的侵袭和转移行为相一致。
2. 细胞侵袭和转移的分子机制复杂，涉及多种信号通路和细胞因子。
本研究为探究肿瘤细胞侵袭和转移的分子机制提供了实验依据。
肿瘤细胞侵袭和迁移研究的实验技术改进
肿瘤细胞侵袭和迁移研究的实验技术改进【摘要】肿瘤的基础研究一直是医学类研究的热点，研究者发现恶性肿瘤细胞具有高度侵袭和迁移的特性，对于侵袭和迁移特性的研究具有现实指导意义，而实验技术是基础研究中重要的一个环节，本文针对研究肿瘤细胞侵袭和迁移的几种常用实验技术，提出相应的改进建议。
【关键词】肿瘤；侵袭；迁移；实验技术肿瘤的治疗一直是生物医学类研究很重要的一部分，恶性肿瘤成为威胁人类健康和生命的主要疾病之一，近些年来，我国及全世界的恶性肿瘤发病率和死亡率都呈上升趋势。
近年来肿瘤相关研究取得了很大的进展，但恶性肿瘤具有的高度侵袭和迁移特性成为肿瘤治疗失败的主要原因之一，因此肿瘤细胞的侵袭和迁移是抗肿瘤研究中的热点。
1.检测肿瘤细胞的侵袭性和迁移性的常用实验技术基础研究对临床工作有着推动作用，注重基础研究不仅利于提高医务工作者的素质，并且利于开展交流合作，推动行业发展，肿瘤疾病治疗的研究工作最终还是要从基础研究做起。
实验技术对于基础研究的发展有着至关重要的作用，实验技术的发展推动基础研究的进步。
研究肿瘤细胞侵袭和迁移特性时，常用的实验技术有Western blot、免疫组化、Transwell小室测定法、划痕实验等，对这几种实验技术进行优缺点分析能够为科研工作者提出建议，让科研工作者在研究过程中少走弯路，具有一定的现实意义。
1.1检测肿瘤细胞侵袭和迁移相关蛋白肿瘤细胞侵袭和迁移相关蛋白有CD147、MMP-2、MMP-9、VEGF 等。
CD147是免疫球蛋白家族中一个高度糖基化的跨膜蛋白，能够调控MMPs的表达，刺激MMP-2、MMP-9的产生，MMP-2、MMP-9能降解细胞外基质的蛋白成分，并且诱导VEGF的产生，促进血管的生成，在恶性肿瘤的侵袭和转移中起关键性作用。
研究证实，这些蛋白的表达水平都与肿瘤细胞的恶性程度、肿瘤的侵袭和迁移有着密切的联系，通过实验来检测蛋白的表达水平，一定程度上可了解肿瘤细胞的侵袭和迁移特性。
细胞迁移侵袭实验操作步骤(Transwell)
迁移实验(ｃell ｍｉgratiｏn ａssay)实验介绍ﻫ细胞迁移与侵袭实验将Traｎswell小室放入培养板中,小室内称上室,培养板内称下室,上下层培养液以聚碳酸酯膜相隔,将研究得细胞种在上室内,由于聚碳酸酯膜有通透性,下层培养液中得成分可以影响到上室内得细胞,应用不同孔径与经过不同处理得聚碳酸酯膜,就可以进行共培养、细胞趋化、细胞迁移、细胞侵袭等多种方面得研究。
1材料准备:ﻫ可拍照显微镜,Transwell小室,孔径8μm,没包被胶得(Ｃoｓter与实验步骤:ﻫCorning公司得也较常用),Ｔrａnswelｌ迁移实验得细胞培养板24孔板。
细胞培养板应当与购买得Trａnｓwｅｌl小室相配套,BD公司得Matrigel,无血清ＤMＥM,(1%胎牛血清)ＤMEM与1640培养基,ＤMEM完全培养基,１6４0完全培养基(也可加到20%血清),无菌P ＢＳ,棉签,胰酶,４％多聚甲醛固定液或者甲醇,结晶紫染液(0、1％(g/ml)PBS结晶紫)ﻫ2步骤与流程ﻫ2。
1基质胶铺板:用BＤ公司得Mａｔｒigel1:8(根据细胞产生mmp得量来决定)稀释,包被Ｔraｎswell小室底部膜得上室面,置3７℃30min使Ｍaｔrigeｌ聚合成凝胶、使用前进行基底膜水化。
ﻫ２、2制备细胞悬液ﻫ①制备细胞悬液前可先让细胞撤血清饥饿12—24h,进一步去除血清得影响。
但这一步并不就是必须得、②消化细胞,终止消化后离心弃去培养液,(用ＰBS洗1－2遍),用含ＢSA得无血清培养基重悬、调整细胞密度至5×10５/ml。
ﻫ２。
3接种细胞①取细胞悬液１00µl加入Trａnｓwelｌ小室、ﻫ②24孔板下室一般加入600µl含20％ＦBS 得培养基,特别注意得就是,下层培养液与小室间常会有气泡产生,一旦产生气泡,下层培养液得趋化作用就减弱甚至消失了,在种板得时候要特别留心,一旦出现气泡,要将小室提起,去除气泡,再将小室放进培养板。
细胞迁移和侵袭实验的区别
细胞迁移是细胞在化学信号（如：趋化因子）的驱使下沿着浓度梯度从一个区域转移到另一区域的运动。
细胞侵袭与细胞迁移比较类似，但是“侵袭”需要细胞穿过胞外基质层（ECM）或基底膜基质层（BME），在这个过程中细胞先酶解去除ECM/BME的阻碍，从而在趋化因子浓度梯度驱使下完成从一处到另一处的移动。
从名字来看，这两种行为既有联系又有区别——迁移是在没有阻力的情况下的细胞移动，但侵袭则需要裂解“阻力”后才能实现移动能力。
简单总结就是，细胞侵袭是一种特殊的细胞迁移，侵袭细胞具有迁移能力，但并非所有的迁移细胞都具有侵袭性。
一、细胞迁移细胞迁移(cell migration)也称为细胞爬行、细胞移动或细胞运动，是指细胞在接收到迁移信号或感受到某些物质的梯度后而产生的移动。
细胞迁移为细胞头部伪足的延伸、新的黏附建立、细胞体尾部收缩在时空上的交替过程。
细胞迁移是正常细胞的基本功能之一，是机体正常生长发育的生理过程，也是活细胞普遍存在的一种运动形式。
胚胎发育、血管生成、伤口愈合、免疫反应、炎症反应、动脉粥样硬化、癌症转移等过程中都涉及细胞迁移。
细胞迁移的过程大致可以分为4步：①细胞前端伸出片状伪足；②细胞前端伪足和细胞外基质形成新的细胞黏附；③细胞体收缩；④细胞尾端和周围基质黏着解离，细胞向前运动。
细胞迁移需要胞外、胞内信号分子调控细胞骨架动力装置所给予的驱动力与肌动蛋白细胞骨架介导的黏附所提供的锚定力之间的协调运作。
目前，细胞迁移基本在细胞培养物中进行，主流的方法有：Boyden小室（跨膜法）、间隙封闭分析等；其中，Boyden小室可用于分析贴壁或不贴壁细胞，并可检测趋化梯度下的迁移，但这种方法不适用实时动态迁移；间隙封闭分析则可以对细胞迁移进行实时监测，甚至可有实现三维细胞的迁移分析，其缺点是不能分析不贴壁细胞和趋化梯度下的迁移。
因此，可以根据实际情况进行实验方案的设定。
同时，细胞划痕也可以测定细胞迁移运动与修复能力的方法，类似体外伤口愈合模型。
热点实验：细胞增殖毒性与Transwell(细胞迁移、侵袭)实验案例介绍
Transwell细胞迁移与侵袭实验服务：细胞迁移与侵袭实验将Transwell小室放入培养板中，小室内称上室，培养板内称下室，上下层培养液以聚碳酸酯膜相隔，将研究的细胞种在上室内，由于聚碳酸酯膜有通透性，下层培养液中的成分可以影响到上室内的细胞，应用不同孔径和经过不同处理的聚碳酸酯膜，就可以进行共培养、细胞趋化、细胞迁移、细胞侵袭等多种方面的研究。
细胞增殖与毒性检测MTT检测实验服务：原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT 还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒并沉积在细胞中，而死细胞无此功能。
二甲基亚砜（DMSO）能溶解细胞中的甲瓒，用酶联免疫检测仪在490nm波长处测定其光吸收值，可间接反映活细胞数量。
在一定细胞数范围内，MTT结晶形成的量与细胞数成正比。
MTT方法用于判断药物、外源性基因、小RNA、蛋白、抗体、细胞因子、血清等对于细胞的作用，以明确上述因子对于细胞生物学行为的影响（如细胞活力、增殖、凋亡等方面）。
细胞增殖与毒性检测SRB检测实验服务：磺酰罗丹明是一种能与生物大分子的碱性氨基酸结合的水溶性蛋白染料，其结合于细胞中的量的多少可以反映总蛋白量进而反映细胞数的多少。
在515nm波长处的OD值与活细胞数呈良好的线性关系。
SRB法应用非常广泛，如药物筛选、细胞增殖测定、细胞毒性测定、肿瘤药敏试验以及生物因子的活性检测等。
细胞增殖与毒性检测CCK-8检测实验服务：Cell Counting Kit简称CCK8试剂盒，是一种基于WST-8（化学名：2-(2-甲氧基-4-硝苯基)-3-(4-硝苯基)-5-(2,4-二磺基苯)-2H-四唑单钠盐）的广泛应用于细胞增殖和细胞毒性的快速高灵敏度检测试剂盒。
WST-8属于MTT的升级产品，工作原理为：在电子耦合试剂存在的情况下，可以被线粒体内的脱氢酶还原生成高度水溶性的橙黄色的甲臜产物（formazan）。
颜色的深浅与细胞的增殖成正比，与细胞毒性成反比。
细胞迁移侵袭实验操作步骤(Transwell)(汇编)
迁移实验（cell migration assay）实验介绍细胞迁移与侵袭实验将Transwell小室放入培养板中，小室内称上室，培养板内称下室，上下层培养液以聚碳酸酯膜相隔，将研究的细胞种在上室内，由于聚碳酸酯膜有通透性，下层培养液中的成分可以影响到上室内的细胞，应用不同孔径和经过不同处理的聚碳酸酯膜，就可以进行共培养、细胞趋化、细胞迁移、细胞侵袭等多种方面的研究。
实验步骤：1材料准备：可拍照显微镜，Transwell小室，孔径8μm，没包被胶的(Coster和Corning公司的也较常用)，Transwell迁移实验的细胞培养板24孔板。
细胞培养板应当与购买的Transwell小室相配套，BD公司的Matrigel，无血清DMEM，(1%胎牛血清)DMEM和1640培养基，DMEM 完全培养基，1640完全培养基（也可加到20%血清），无菌PBS，棉签，胰酶，4%多聚甲醛固定液或者甲醇，结晶紫染液（0.1%（g/ml）PBS结晶紫）2步骤和流程2.1基质胶铺板：用BD公司的Matrigel 1：8（根据细胞产生mmp的量来决定）稀释，包被Transwell小室底部膜的上室面，置37℃30min使Matrigel聚合成凝胶。
使用前进行基底膜水化。
2.2制备细胞悬液①制备细胞悬液前可先让细胞撤血清饥饿12－24h，进一步去除血清的影响。
但这一步并不是必须的。
②消化细胞，终止消化后离心弃去培养液，（用PBS洗1－2遍），用含BSA的无血清培养基重悬。
调整细胞密度至5×105/ml。
2.3接种细胞①取细胞悬液100µl加入Transwell小室。
②24孔板下室一般加入600µl含20%FBS的培养基，特别注意的是，下层培养液和小室间常会有气泡产生，一旦产生气泡，下层培养液的趋化作用就减弱甚至消失了，在种板的时候要特别留心，一旦出现气泡，要将小室提起，去除气泡，再将小室放进培养板。
细胞迁移侵袭实验操作步骤(Transwell)
细胞迁移侵袭实验操作步骤(Transwell)迁移实验（cellmigrationassay）实验介绍细胞迁移与侵袭实验将transwell小室放入培养板中，小室内称上室，培养板内称下室，上下层培养液以聚碳酸酯膜相隔，将研究的细胞种在上室内，由于聚碳酸酯膜有通透性，下层培养液中的成分可以影响到上室内的细胞，应用不同孔径和经过不同处理的聚碳酸酯膜，就可以进行共培养、细胞趋化、细胞迁移、细胞侵袭等多种方面的研究。
实验步骤：1材料准备：摄影显微镜，Transwell细胞，孔径8μm。
Transwell迁移实验的细胞培养板24孔板未涂有胶水（Coster和Corning也常用）。
细胞培养板应与购买的Transwell培养箱相匹配。
基质凝胶，无血清DMEM，（1%胎牛血清）DMEM和1640培养基，DMEM完全培养基，1640完全培养基（也可添加20%血清），无菌PBS，棉签，胰蛋白酶，4%聚甲醛固定溶液或甲醇，结晶紫染料（0.1%（g/ml）PBS结晶紫）2步骤和过程2.1基质铺胶板：用bd公司的matrigel1：8（根据细胞产生mmp的量来决定）稀释，包被transwell 小室底部膜的上室面，置37℃30min使matrigel聚合成凝胶。
使用前进行基底膜水化。
2.2制备细胞悬液① 在制备细胞悬浮液之前，可将细胞从血清饥饿状态下移除12-24小时，以进一步消除血清的影响。
但这一步并不是必须的。
②消化细胞，终止消化后离心弃去培养液，（用pbs洗1－2遍），用含bsa的无血清培养基重悬。
调整细胞密度至5×105/ml。
2.3接种细胞① 取细胞悬液100μL加入Transwell培养箱。
②24孔板下室一般加入600μl含20?s的培养基，特别注意的是，下层培养液和小室间常会有气泡产生，一旦产生气泡，下层培养液的趋化作用就减弱甚至消失了，在种板的时候要特别留心，一旦出现气泡，要将小室提起，去除气泡，再将小室放进培养板。
细胞生物学中的细胞迁移和侵袭检测技术
细胞生物学中的细胞迁移和侵袭检测技术细胞迁移和侵袭是细胞生物学中两个重要的生理过程，也与一些疾病的发展和转移相关。
为了更好地理解和研究这些生理过程，科学家们开发了各种细胞迁移和侵袭检测技术。
本文将介绍一些常见的细胞迁移和侵袭检测技术，以及它们在细胞生物学研究领域中的应用。
一、划痕实验法划痕实验法是一种简单有效的细胞迁移检测技术。
在该方法中，细胞被种植在培养皿中，并留下一道划痕。
随着时间的推移，观察细胞是否填补划痕。
如果细胞填补了划痕，则说明细胞进行了迁移。
这种方法的优点是操作简单，无需复杂的设备或试剂。
然而，它也存在一些局限性，例如无法提供关于细胞侵袭性的信息，只能提供关于细胞迁移的信息。
二、Transwell迁移实验法Transwell迁移实验法是一种常见的细胞迁移和侵袭检测技术。
在该方法中，细胞被种植在Transwell孔的上室，并在下室中加入诱导迁移的物质。
细胞通过Transwell孔进行迁移，最终到达下室。
通过计算孔底部细胞数量或染色，可以评估细胞的迁移程度。
Transwell迁移实验法具有较高的准确性和可重复性。
它还可以通过更换Transwell上室或添加支持层来评估细胞的侵袭能力。
然而，该方法需要特定的设备和试剂，操作过程较为繁琐。
三、倒置显微镜法倒置显微镜法是一种常用的细胞迁移和侵袭检测技术。
在该方法中，细胞被种植在培养皿的底部，并通过倒置显微镜观察细胞的迁移和侵袭过程。
倒置显微镜可以提供高清晰度的图像，并可以连续观察细胞的动态变化。
倒置显微镜法适用于观察单个细胞或细胞群的迁移和侵袭过程。
它可以提供详细的细胞形态和细胞行为信息。
然而，该方法需要倒置显微镜等专业设备，并且观察时间可能较长。
四、细胞侵入试验法细胞侵入试验法是一种常见的细胞侵袭检测技术。
在该方法中，细胞被种植在含有基底膜模拟物的Transwell孔上室。
通过加入诱导细胞侵袭的化学物质，细胞可以穿过基底膜模拟物并进入下室。
细胞迁移侵袭实验操作步骤(Transwell)
迁移实验（cell migration assay）实验介绍细胞迁移与侵袭实验将Transwell小室放入培养板中，小室内称上室，培养板内称下室，上下层培养液以聚碳酸酯膜相隔，将研究的细胞种在上室内，由于聚碳酸酯膜有通透性，下层培养液中的成分可以影响到上室内的细胞，应用不同孔径和经过不同处理的聚碳酸酯膜，就可以进行共培养、细胞趋化、细胞迁移、细胞侵袭等多种方面的研究。
实验步骤：1材料准备：可拍照显微镜，Transwell小室，孔径8μm，没包被胶的(Coster和Corning公司的也较常用)，Transwell迁移实验的细胞培养板24孔板。
细胞培养板应当与购买的Transwell小室相配套，BD公司的Matrigel，无血清DMEM，(1%胎牛血清)DMEM和1640培养基，DMEM 完全培养基，1640完全培养基（也可加到20%血清），无菌PBS，棉签，胰酶，4%多聚甲醛固定液或者甲醇，结晶紫染液（0.1%（g/ml）PBS结晶紫）2步骤和流程2.1基质胶铺板：用BD公司的Matrigel 1：8（根据细胞产生mmp的量来决定）稀释，包被Transwell小室底部膜的上室面，置37℃30min使Matrigel聚合成凝胶。
使用前进行基底膜水化。
2.2制备细胞悬液①制备细胞悬液前可先让细胞撤血清饥饿12－24h，进一步去除血清的影响。
但这一步并不是必须的。
②消化细胞，终止消化后离心弃去培养液，（用PBS洗1－2遍），用含BSA的无血清培养基重悬。
调整细胞密度至5×105/ml。
2.3接种细胞①取细胞悬液100µl加入Transwell小室。
②24孔板下室一般加入600µl含20%FBS的培养基，特别注意的是，下层培养液和小室间常会有气泡产生，一旦产生气泡，下层培养液的趋化作用就减弱甚至消失了，在种板的时候要特别留心，一旦出现气泡，要将小室提起，去除气泡，再将小室放进培养板。
细胞迁移和侵袭能力测定
细胞迁移和侵袭能力测定细胞迁移性测定①常规消化细胞，用无胎牛血清的DMEM 培养基洗细胞3次，配制细胞悬液，调整浓度为5×105细胞/ml，于Transwell 小室（见图B）的上室中加入不同的细胞悬液（MDA-MB-231/syk 、MDA-MB-231/pcDNA3.1 和MDA-MB-231）200 μl，每组设3 个复孔。
②下室加入600 μl 含50 ml/L 胎牛血清的DMEM 培养基。
③37℃，5% CO2培养箱中孵育20~24 h。
④滤膜上的微孔允许肿瘤细胞穿越，迁移的细胞可黏附于膜下层，取出Transwell 小室，用PBS 洗2 遍，棉拭子擦去膜上面未迁移的细胞，计数并比较穿过膜的细胞数，可在一定程度上反应肿瘤细胞的迁移能力。
⑤细胞显色：95%乙醇固定Transwell 小室上的聚碳酸酯滤膜30min，PBS 冲洗2 次，每次3 min 苏木精染色5.5 min，自来水冲洗1~2 min 1%盐酸酒精分化数秒钟，自来水冲洗1~2 min 伊红染色80 s，自来水冲洗1~2 min 梯度乙醇脱水：70%乙醇10 s，80%乙醇10 s，90%乙醇 1 min，95%乙醇1 min，无水乙醇15 min 将滤膜撕下来，有细胞的一面向上放在载玻片上，加盖玻片，中性树脂封片在400 倍高倍镜下记数，每张片子随机记录 5 个视野的迁移细胞数，将 5 个数值加起来表示迁移细胞数细胞侵袭试验①基质胶的准备：将冻存于-20℃冰箱的Matrigel 胶4℃放置过夜，变成液态。
并预冷枪头。
②用400 μl 无胎牛血清DMEM 培养基稀释50 μl Matrigel胶原液（1:8稀释），混匀（冰上操作）。
向Transwell 小室的上室中分别加入50 μl 稀释液，放入37℃培养箱中孵育4~5 h，此间经常观察，当出现“白色层”时，说明Matrigel 胶已变为固态。
③加100μl无血清培养基浸润凝固的胶，吸弃，后续步骤与迁移实验相同。
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操作步骤
优质课件
1．先用marker笔在6孔板背后，用直尺比着，均匀的划 横线，大约每隔0.5~1cm一道，横穿过孔。每孔至少穿 过3条线。
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操作步骤
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2. 在孔中加入约5×105个细胞，具体数量因细胞种类 不同而不同，接种原则为过夜后融合率达到100%；
3.用10ml tip 枪头用力均匀地在培养皿中划痕，PBS 洗 涤2 次，去除划下的细胞，加入无血清培养基。
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Boyden Chamber 装置
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实验步骤
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1. 在冰盒内将趋化因子由高浓度向低浓度稀释，将不同浓度
的趋化因子置于趋化小室的下室，30ml/孔，每个浓度加3
个孔，其中只加BM的孔为阴性对照；
2. 取对数生长期细胞，0.1%BM 重悬细胞，调整细胞浓度为 5×105/ml；
0.4um孔径聚碳 酯膜的扫描电镜
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原理
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人工重构基底膜材料Matrigel，是一种细胞外基质，4℃ 时是液体，在37 ℃ 会逐渐凝固成胶状。主要成分为层黏连 蛋白和Ⅳ型胶原，能在培养基中重建形成膜结构，这种膜结
构与天然基质膜结构极为相似。
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原理
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滤膜孔径一般为8mm，而且膜孔都被Matrigel覆盖，细胞 不能自由穿过，必须分泌水解酶，并通过变形运动才能穿过 这种铺有Martrigel 的滤膜，这与体内情况较为相似。
Transwell 电镜图片
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优质课件
实验步骤及注意事项
1. 无菌条件下 Matrigel 于冰浴融化，用PBS（或DMEM only 培养基） 稀释成1mg/ml 浓度，-20°C 冻存备用；
2. 取出已稀释好的 Matrigel，冰浴融化，以50ml 的体积铺于Tramwell 小室（24孔板）聚碳酸酯膜上（注意：体积不可太大，以刚把聚碳酸 酯膜浸湿为最好），37°C 放置lh，使Matrigel 聚合成凝胶（注意： 加基质胶时最好将24 孔板放置在冰盒上，确保胶完全覆盖孔底，不 要有气泡）；
优质课件
Cell Numbers/HPF
100 80 60 40 20 0 scr
EGF(ng/ml)
0
***
1
10
100
#1
#2
#3
MDA-MB-231
24
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优质课件
肿瘤细胞侵袭试验
Matrigel Invassion Assay
Transwell 系统
Transwell 小室
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注意事项
优质课件
1.在用PBS缓冲液冲洗时，注意贴壁慢慢加入，以免冲散单层贴壁 细胞，影响实验拍照结果。
2.一般做划痕实验，都是无血清或者低血清（<2%）否则细胞增殖 就不能忽略。
3. 按照6孔板背后画线的垂直方向划痕，可以形成若干交叉点，作 为固定的检测点，以解决了前后观察时位置不固定的问题。
6. 固定, 染色
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实验步骤
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7. 取载玻片，剪角放在右上角，滴一滴石蜡，盖玻片封片；
8. 显微镜观察计数，每孔至少 3 个随机视野，3 个孔的数值 取平均值;作柱状图，纵轴趋化指数或细胞数，横轴组别；
9. 趋化指数(Chemotaxis Index)=随着趋化诱导因子的浓度 梯度而迁移的细胞数目/用培养基做对照的迁移细胞数目
4. 实验时应注意细胞生长状况，选择适当的细胞接种浓度。对不同 的细胞要观察细胞的贴壁率等，确定实验时细胞的接种数量和培 养时间，保证培养终止时密度适当。
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趋化运动实验（Chemotaxis Assay） 实验原理
趋化运动是指细胞能够感受到外界化学物质的 浓度梯度，并沿着浓度梯度的方向所做的定向运动。 趋化运动是一个非常保守的过程，对于生物体的生 存、生命的繁衍等具有重要的意义。
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注意事项
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1. 膜，胶垫，上下小室之间防止有气泡产生；
2. 放膜时要对准位置，过多调整位置，易发生交叉污染。
3. 枪垂直，枪尖伸入孔中下大概4/5 处，迅速加样，不要迟 疑，打出液体的过程枪逐渐抬起，液体全部打出时枪尖离 开液面。
4. 洗膜时注意，不要把细胞面与非细胞面弄反。
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微孔小室中的趋化实验
微孔小室中的趋化实验是根据靶细胞（单核巨噬细胞， 中性粒细胞或淋巴细胞等）能够趋化性主动迁移，穿过一定 孔径的滤膜而设计的。
滤膜（聚碳酸脂膜）将小室分隔成上下两部分。靶细胞 在上面，趋化因子在下面，趋化因子通过滤膜形成梯度，细 胞则沿着梯度穿过膜孔，黏附在膜的下面，计数滤膜下表面 的细胞数即可测出趋化因子的趋化能力。
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实验步骤及注意事项
3. 每孔加入 200ml 1640（或DMEM）培养基使胶重构；
4. 在 Transwell 下室中加入趋化因子或10%FBS 培养基600ml/ 孔；
3. 加样：下室加不同浓度的趋化因子，将膜轻轻对折后展平， 光面朝下毛面朝上，依次盖上胶垫和上室将螺丝对称拧上
拧紧;在上室中加入细胞，50ml/孔，每个浓度加3 个孔；
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实验步骤
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4. 将趋化小室在 37℃，5% CO2 的孵化箱中孵育3h；
5. 在膜的两端加上夹子，毛面在PBS 液面上蘸取，光面禁止 碰到液体。毛面在架子上摩擦，再蘸取PBS，反复3 次后 再蘸取一次，晾பைடு நூலகம்；
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操作步骤
优质课件
4．放入37℃ 5% CO2培养箱培养。每3h 测量一次细胞 运动的距离，拍照(具体时间依实验需要而定)。
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操作步骤
优质课件
5. 数据处理：每个时间点的距离长度-0 时距离=每个时间长 度细胞整体迁移的距离，求出均数和标准差，时间为横轴， 迁移距离为纵轴（单位mm）作图，并比较初始0 时与实验 结束时实验组与对照组的照片。
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肿瘤细胞运动实验技术
肿瘤细胞生物学实验室 张宁PI 组
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肿瘤细胞运动
体内实验： 皮下移植瘤模型 原位移植瘤模型
体外实验
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划T痕e实xt验 in here
侵袭实验
趋化运动
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肿瘤细胞运动 常用研究方法
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划痕实验（伤口愈合实验，Scratch Assay） 实验原理
细胞划痕法是测定了肿瘤细胞的运动特性的方 法之一。在体外培养的单层细胞上，划痕致伤，然 后在加入药物等实验条件下观察其对肿瘤细胞迁移 的影响。