实验4测定细菌生长曲线-文档资料

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微生物实验报告：测定细菌生长曲线

测定细菌生长曲线一、实验目的1．了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时；2．学习液体培养基的配制以及接种方法；3．反复练习无菌操作技术；4．了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同；5．掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法；二、实验原理将一定量的菌种接种在液体培养基内，在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数做纵坐标，以培养时间做横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线。

单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整期（迟滞期）、对数期（生长旺盛期）、平衡期（稳定期）、死亡期（衰亡期）。

生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的的全过程动态。

不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。

因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。

测定微生物生长曲线的方法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法。

本实验才用比浊法，由于细胞悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的菌液的浓度。

将所测得的光密度值（OD600）与对应的培养时间做图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。

注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌和死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。

从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G表示，其计算公式为：G＝（t2-t1）/[(lgW1-lgW2)/lg2]式中t2和t1为所取对数期两点的时间，W1和W2分别为对应时间测得的细胞含量或OD。

三、实验器材大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板；培养基(100mL/250mL三角瓶×10瓶/大组):牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基；取液器(5000ul, 1000ul 各一支)，无菌1000ul吸头若干，无菌5000ul吸头若干，比色皿10个及共用参比杯一个，培养箱3台，722s分光光度计；四、实验步骤1．活化菌种将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡培养18h，另外准备单菌落平板各1块；2．接种6人大组分为3个小组，按表1接种。

微生物生长曲线的测定

微生物生長曲線的測定一.實驗目的1.瞭解典型微生物生長曲線的四個時期所代表的意義。

2.學習分光光度計的測定原理和實驗步驟。

3.了解微生物生長情形，生理特性與培養特徵。

二.器材和儀器1.錐形瓶2.量筒3.玻棒4.定量玻璃吸管5.不鏽鋼吸管筒6.酒精燈7.取藥杓8.秤藥紙9.燒杯 10.電子天瓶 11.分光光度計 12.恆溫水浴振盪器 13.比色管 14.標籤 15.電子天平三.試劑及材料1.酒精2.酵母菌粉3.葡萄糖粉四.微生物之生長曲線以菌數和時間作圖在批次培養情形下，可以菌數和時間作圖，得生長曲線。

實驗以批次培養方式進行•遲滯期(lag phase): 微生物正適應新環境，吸收養份以合成新細胞，細胞雖變大，但仍未分裂，故細胞數目無明顯增加。

•對數期(logarithmic phase): 細胞呈幾何級數增加，菌之生理較一致，為微生物實驗最佳時期。

•穩定期(stationary phase): 微生物代謝，消耗養分、同時產生代謝毒物，造成新分裂與死亡之菌數約略相等，因此菌數沒太大改變。

•死滅期(death phase): 養分已漸消耗完畢，而代謝毒物累積更多，造成新生菌數遠小於死亡菌數，因此菌數遞減。

五.步驟1.先紀錄微生物種類含來源2.酵母菌液的配置;取0.5g酵母菌粉和1g葡萄糖一起加入50ml的培養液搖均勻3.取部份菌液加入比色管(8分滿),用分光光度計測其吸光質,波長用595nm。

→為了要做基準線的校正4.將菌液瓶放在37°c的培養箱振盪培養,每15分鐘取出瓶子,取部份菌液重複做5次下列的事情:(1)加入比色管(8分滿),用分光光度計測其吸光質,波長用595nm。

(2) 用塗碟法測菌數,要先做10倍稀釋至少4次,最後取0.1ml的菌液滴在培養基的正中央,用滅菌的三角彎棒均勻塗抹。

注意:菌液要先適當稀釋後才塗碟,事後再推算回去。

5.把每個培養皿放進振盪器,隔天觀察並計算培養基菌數(個/ml) 數據有六次。

细菌生长曲线之测定

實驗六細菌生長曲線之測定◎ Exp 11. Turbidity of bacteria一、目的：在進行細菌生長曲線之測定前，必須先了解 U-2001 Spectropho-tometer 操作方法，才能將細菌的數量以吸光值的方式表示出來。

二、原理：請詳讀整理 p. 90-92，學會調整 Optical density (O.D.) 【Exp 13.會用到】。

三、器材：1. culture：(每組)24 hr Escherichia coli (broth)2. medium： (每組)Nutrient broth3. equipment ：1 ml pipette，pipette aid，cuvette，拭鏡紙，廢菌液杯，裝蒸餾水的洗瓶，滅菌空試管，U-2001 Spectrophotometer，振盪器。

四、實驗步驟※由助教先示範操作方法，再由學生自行操作與測量待測液之吸光值。

1. 了解 U-2001 Spectrophotometer 操作方法：a. 溫機約 15 分鐘。

b. MENU → (主目錄) 選 1. Photometer →輸入波長 600 nm 及 ABS →Forward →c. Nutrient broth 歸零 autozero → (前、後二支 cuvette) ※1d. 取出後面之 cuvette ，倒入待測液※2，等到右上方數據穩定後，按下 Start →記錄。

※1 cuvette 有石英管 (測波長 340 nm 以下)、玻璃管、塑膠管等材質，本實驗使用塑膠材質之比色管。

※2 每次測定前需先用蒸餾水滴洗cuvette，再以待測液潤濕，倒掉，再裝入待測液，測完倒掉，用蒸餾水滴洗。

測定之前cuvette 須用拭鏡紙擦乾，手握管的非透明處；廢菌液請滴洗入廢菌液杯中，集中處理) 。

2. 每組取一管助教所準備之E. coli當待測液，實際演練U-2001Spectrophotometer 操作，測出其原液 O.D. 【Exp 13. 將會利用到此操作，故須熟悉其操作步驟】。

实验报告微生物的生长曲线实验

实验报告微生物的生长曲线实验实验报告
实验目的：
本实验旨在通过监测微生物的生长曲线，研究微生物的生长规律，并探讨其对环境因素的响应。

实验材料及方法：
1. 材料：
- 微生物培养基
- 无菌培养瓶或试管
- 微量移液器或移液管
- 无菌平板
- 培养箱或恒温摇床
- 显微镜
2. 方法：
（这里使用编号列表来列出具体的实验步骤）
实验步骤：
1. 实验前准备：
（这里写明实验前的准备工作，如准备培养基、灭菌操作等）
2. 微生物获取：
（这里描述如何获取微生物样品，如从环境中采样、有选择地分离微生物菌落等）
3. 微生物培养：
（这里阐述微生物的培养过程，包括制备培养基、接种微生物样品等步骤）
4. 生长曲线检测：
（这一部分是实验的重点，需要详细记录实验过程和结果。

可以使用表格、图表等方式展示数据）
5. 结果分析：
（根据实验结果，对微生物生长曲线进行分析和解读，可结合图表进行说明）
6. 讨论与结论：
（根据实验结果的分析，进行讨论并得出结论，可以对实验中可能存在的问题进行分析，提出进一步改进的建议）
实验结论：
通过本实验对微生物的生长曲线进行监测，我们得出了如下结论：
（这里简洁地总结实验结果得出的结论，为了增加字数可以进一步展开阐述，如讨论生长曲线的不同阶段、影响微生物生长的环境因素等等）
实验报告结束。

注意：本实验报告以“实验报告”的格式为基础，根据实验内容进行适当的调整。

其中，具体的实验步骤和结果可以根据实际情况进行修改和补充，以确保文章的准确性和完整性。

细菌生长曲线的测定实验报告

竭诚为您提供优质文档/双击可除细菌生长曲线的测定实验报告篇一：细菌生长曲线实验九测定细菌生长曲线[实验目的]1．了解细菌生长曲线特征：2．学习液体培养基的配制以及注意事项。

3．学习液体种子和固体种子的不同接种方法和注意事项。

4．利用细菌悬液浑浊度间接测定细菌生长。

[仪器和材料]1．实验材料(1)大肠杆曲，枯草杆曲培养液及大肠杆菌平板。

(2)牛肉膏蛋门胨葡萄糖培养基(150ml／250ml三角瓶x4瓶／大组)，配方：牛肉膏5g，蛋白胨10g，nacl5g，葡萄糖10g，加水至1000ml，ph7．5。

2．实验仪器取液器(5000μl，1000μl，200tμl各一支)；培养箱．摇床，722s分光光度汁；1000μl无菌吸头100个；5000μl 无菌吸头2(:细菌生长曲线的测定实验报告)个；1ml或4ml 玻璃或塑料比色皿4个，共用参比杯一个。

[实验原理]将一定量的细菌接种在液体培养基内．在一定的条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定规律性，如以细菌活菌数的对数作纵坐标，以培养时间作横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线(图91)。

单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整(迟滞期)、对数期(生长旺盛期)、平衡期(稳定期)、死亡期(衰亡期)。

生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的全过程动态。

不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。

因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的．测定微生物生长曲线的方法很多，有血细胞计数法，平板菌落计数法，称重法和比浊法等。

本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与浑浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。

将所测得的光密度值(测oD550或oD620或oD600或oD420，可任选一波长)与对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。

注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌与死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。

细菌生长曲线

磺胺类药物的作用机制
抗生素细胞壁的合成：如青霉素含有β-内酰胺环，可特异地结合在细菌细胞壁肽聚糖上，抑制细胞壁的合成，因而只作用于细菌特别是肽聚糖成分丰富的G+菌。 2.破坏细胞膜的功能：如多黏菌素可作用于膜磷脂使膜溶解，而 G-菌细胞膜磷脂特别丰富，所以可特异性地抑制 G-细菌的生长。 3.抑制蛋白质的合成：由于原核微生物蛋白质合成所需的核糖体为30 S以及50 S亚基，与真核细胞明显不同，氯霉素是50 S亚基的抑制剂。链霉素，四环素，卡那霉素等是30 S亚基的抑制剂，因而它们都可特异地抑制原核微生物的生长。 4.抑制核酸的合成: 利福霉素可特异地结合到与真核细胞明显不同的细菌RNA聚合酶上,新生霉素则作用于细菌DNA酶,因而抑制细菌生长。
在实际生产中用哪些方法来缩短或消除迟缓期？
二、对数期又称为指数期（exponential phase）细胞数目以几何级数增加,故称对数期。特点： 1.细胞分裂速度最快，代时最短，细胞代谢最强 ,组成新物质最快。 2.细菌数以几何级数增加。
在对数期细胞数按几何级数增加:1,2,4,8,… ,若以乘方的形式则表示为：20,21, …, 2n。 “n” 是细菌分裂的次数或增殖代数。
离心沉降分离法
处于同一生长阶段的同步细胞，其体积和质量大致相等，处于不同生理阶段的细胞，体积和质量大小不等，子细胞与成熟细胞大小差别较大，通过离心沉降，易于分开。然后用相同大小的细胞进行培养便可获得同步培养物。
诱导法
采用物理、化学因子使微生物细胞进行到某个生长阶段而停下来，然后再去除该因子，以达到诱导微生物细胞同步生长的目的。主要通过控制环境条件如温度、营养物质等来诱导同步生长。
同步生长能否无限的维持下去？

实验4测定细菌生长曲线

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测定（OD）
每小时吸取200ul培养液到2800ul蒸馏水中摇匀，以蒸馏水为对照，选420nm波长进行光密度（OD 值）的测定（注意应测定0h的光密度值）。
每台分光光度计固定在1个参比杯，每人只能在同一台分光光度计上测量（注意波长调好后，不要动波长旋钮）。
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六、结果与讨论
1）绘制大肠杆菌和枯草杆菌在两种接种方法下的生长曲线。（标出生长曲线中四个时期的位置和名称）
2）为什么用比浊法测定的细菌生长只是表示细菌的相对生长状况？
3）生长曲线中为什么会出现稳定期和衰退期？在生产实践中怎样缩短延迟期？怎样延长对数期及稳定期？怎样控制衰退期？
4）接种时种子在什么条件下为宜，液体种子比斜面种子为什么优越？
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实验4、测定细菌生长曲线
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一、识微生物在一定条件下生长繁殖的规律。
2.掌握用细菌悬液的浑浊度间接测定细菌生长的方法。
3.学习液体培养基的配制及接种方法。
二、实验内容
测定大肠杆菌、枯草杆菌的生长曲线
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三、实验原理
将一定量的细菌接种在液体培养基内，一定条件下培养，细菌的生长繁殖具有一定的规律性。以细菌活菌数的对数作纵坐标，培养时间作横坐标，可绘成一条曲线，称为生长曲线。
• 将所测的光密度值（OD）与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线（注意：由于光密度表示的是培养液的总数，包括活菌与死菌所测的生长曲线衰亡期不明显）。
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微生物的典型生长曲线图 Ⅰ.延滞期，Ⅱ.指数期，Ⅲ.稳定期，Ⅳ.衰亡期
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四、实验仪器、材料和用具
仪器：摇床、分光光度计、取液器。
细菌的生长曲线分为：迟缓期、对数期、稳定期和衰退期。其表示细菌从开始生长到死亡全过程的动态。测定微生物的生长曲线对于了解和把握生物的

[精品]细菌生长曲线的测定

[精品]细菌生长曲线的测定细菌生长曲线的测定是细菌学中的一项重要实验。

它可以帮助我们了解细菌的生长繁殖规律及其影响因素，为控制细菌繁殖提供理论依据。

本次实验将介绍如何通过外观观察、菌落计数及测定细菌生物量的方法，获得细菌在液体培养基中的生长曲线。

实验步骤：一、准备实验材料和试剂1、选取一种细菌菌株，本次实验选择了大肠杆菌（Escherichia coli）；2、配置好液体培养基，一般为普通营养琼脂培养基、肉汤培养基等；3、消毒好实验室的工作台面及实验仪器；4、准备好移液管、试管、比色管和加热消毒的线圈镊子等实验用具。

二、制备不同浓度的菌液1、挑选一根菌棒，从培养基上接入一些带有细菌的菌落，将菌落均匀涂抹于培养基表面；2、将含有细菌的培养基放置在恒温摇床中，在适宜的温度下进行培养；3、当细菌生长至一定程度（一般在对数生长期）时，用无菌的移液管，在培养基中取出一定量的菌液；4、分别将不同体积的菌液加入到含有培养基的试管中，制备成不同浓度的菌液。

三、测定不同浓度菌液对应的OD600值1、将制备好的不同浓度菌液放入洗涤过的比色管中；2、由于细菌太小，肉眼观察不能得出其数量的增多或减少，因此需要使用分光光度计在600nm处测量各个浓度的菌液的吸光度（OD）值；3、重复测量3次，取平均值计算OD600；4、根据OD600值和菌液中细胞数量的线性关系，可通过OD600值推算出细胞数。

2、每隔2-3个小时，取出一定量的菌液，测量其OD600值，记录下菌液对应时间的值；3、采用计数培养法，每隔一定时间取出一定体积的菌液，进行菌落数的计数；4、利用OD600值曲线和菌落数曲线绘制出细菌生长曲线。

实验注意事项：1、实验期间需在无菌条件下操作，防止细菌的外界感染对实验结果的影响；2、实验者需佩戴适当的防护手套及实验服，以免对人体造成伤害；3、制备好菌液后需要及时放置在摇床中，防止菌落外的细菌感染进去；4、测量OD600值时比色管必须清洗干净，用甲醇或无菌去离子水。

细菌生长曲线的测定的实验步骤

细菌生长曲线的测定的实验步骤一、实验目的1. 了解细菌生长曲线特征，测定细菌繁殖的代时；2. 学习液体培养基的配制以及接种方法；3. 反复练习无菌操作技术；4. 了解不同细菌，不同接种方法在同一培养基上生长速度的不同；5. 掌握利用细菌悬液混浊度间接测定细菌生长的方法二、实验原理将一定量的细菌接种在液体培养基内，在一定条件下培养，可观察到细菌的生长繁殖有一定的规律性，如以细菌的活菌数的对数作纵坐标，以培养时间作横坐标，可绘成一条曲线，成为生长曲线（如图一）。

图一微生物生长曲线示意图单细胞微生物的发酵具有四个阶段，即Ⅰ调整期（延滞期）、Ⅱ对数期（生长旺盛期）、Ⅲ平衡期（稳定期）、Ⅳ死亡期（衰亡期）。

生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的全过程的动态。

不同的微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。

因此，测定微生物的生长曲线对于了解和掌握微生物的生长规律是很有帮助的。

测定微生物生长曲线的方法很多，有血球计数板法、平板菌落计数法、称重法和比浊法等。

本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与混浊度成正比，因此，可利用分光光度计测定细菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。

将所测得的光密度值（OD600）与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。

注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌与死菌，因此所测定的生长曲线的衰亡期不明显。

从生长曲线我们可以算出细胞每分裂一次所需要的时间，即代时，以G 表示。

其计算公式为：2lg /)lg (lg 1212W W t t G --=式中t1和t2为所取对数期两点的时间；W1和W2分别为相应时间测得的细胞含量（g/L ）或OD 。

三、实验仪器、材料和用具1.实验材料:大肠杆菌，枯草杆菌菌液及平板；2.培养基:牛肉膏蛋白胨葡萄糖培养基3.实验仪器:取液器(5000ul, 1000ul 各一支);培养箱, 摇床，722s分光光度计；4.实验用具:无菌1000ul吸头80个;无菌5000ul吸头2个;比色皿9个+共用参比杯一个.四、实验步骤1.准备菌种：将细菌接种到牛肉膏蛋白胨葡萄糖三角瓶培养基中，37℃振荡培养18h，另外准备单菌落平板各1块2.分为三个小组：第（1）小组取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基, 37 ℃ 200rpm取3.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃ 200rpm取5.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃ 200rpm第（2）小组取一个大肠杆菌菌落接种到100ml培养基， 37 ℃ 200rpm取1.0ml大肠杆菌菌液接种到100ml培养基，37 ℃ 110rpm取1.0ml大肠杆菌接种到100ml培养基， 30 ℃ 200rpm第（3）小组取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 37 ℃ 200rpm取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 30 ℃ 200rpm取1.0ml枯草杆菌接种到100ml培养基， 37 ℃ 110rpm每培养一小时取样一次(2.5h,3.5h加测1次). 对照组测量起始pH,所有瓶子测量发酵9h结束测pH.3.测量：选用600nm波长，以蒸馏水作为参比，开始培养前测定每组培养液的OD值作为起始点。

细菌生长曲线测定实验方法的研究

细菌生长曲线测定实验方法的研究一、本文概述细菌生长曲线测定实验方法的研究对于深入了解细菌的生长规律、生长环境、生长条件以及生长过程中的代谢变化等方面具有重要意义。

本文旨在探讨细菌生长曲线测定的实验方法，包括实验原理、实验步骤、实验条件的选择与优化等方面，以期为提高细菌生长曲线测定的准确性和可靠性提供理论支持和实践指导。

本文将介绍细菌生长曲线测定的基本原理，包括细菌生长曲线的定义、特点以及影响因素等。

在此基础上，本文将详细阐述细菌生长曲线测定的实验步骤，包括实验材料的准备、实验条件的设置、实验过程的操作以及实验结果的记录与分析等。

本文将重点讨论实验条件的选择与优化。

实验条件是影响细菌生长曲线测定结果的关键因素，包括培养基的成分、温度、pH值、接种量等。

本文将通过对比实验和数据分析，探讨不同实验条件对细菌生长曲线的影响，从而确定最佳的实验条件组合。

本文将总结细菌生长曲线测定实验方法的优缺点，并提出改进意见和建议。

通过本文的研究，将为细菌生长曲线测定的实验方法提供更为准确、可靠的理论支持和实践指导，有助于推动细菌学研究的深入发展。

二、细菌生长曲线的理论基础细菌生长曲线测定实验方法的理论基础主要源自微生物生长动力学。

微生物生长动力学描述了微生物在特定环境下的生长规律，其中包括细菌生长曲线的形成机制。

细菌生长曲线是反映细菌群体生长状态的重要指标，通过对细菌生长曲线的分析，可以了解细菌生长的不同阶段，以及影响细菌生长的各种因素。

细菌生长曲线通常可分为四个主要阶段：延迟期、对数生长期、稳定期和衰亡期。

在延迟期，细菌适应新的生长环境，进行必要的代谢准备，此阶段细菌数量增长缓慢。

进入对数生长期后，细菌以指数方式迅速增长，这是细菌生长最为旺盛的阶段。

稳定期时，由于营养物质的消耗和代谢产物的积累，细菌增长速率逐渐减缓，细菌数量趋于稳定。

进入衰亡期，细菌由于营养物质的耗尽和代谢产物的毒性作用，生长速率急剧下降，细菌大量死亡。

细菌生长曲线的测定

细菌生长曲线的测定细菌生长曲线的测定是研究细菌生长过程中数量的变化规律的重要实验方法。

通过测定不同时间点上细菌的数量，我们可以了解细菌的繁殖速度、生命周期以及适宜生长环境等信息。

本文将介绍细菌生长曲线的测定步骤，并探讨其在科学研究和实际应用中的指导意义。

首先，测定细菌生长曲线的实验需要准备培养基、平板、试管等实验器材，以及待测的细菌样品。

将培养基倒入平板中，使其均匀地附着在平板表面上。

取一定量的细菌样品，接种在试管中的培养基中，然后将试管放入恒温培养箱中。

在不同时间点上，分别取出试管，通过将样品进行稀释后在平板上接种细菌来测定其数量。

通过计数细菌在平板上形成的菌落数，我们可以得到细菌数量随时间的变化规律。

细菌生长曲线通常可以分为四个阶段：潜伏期、指数期、平稳期和衰亡期。

在潜伏期，细菌数量较低，适生环境适宜时，细菌开始繁殖。

进入指数期后，细菌数量呈指数增长，繁殖速度较快。

在平稳期，细菌数量达到平衡，新生细菌数量与死亡细菌数量相等。

最后，在衰亡期中，细菌数量逐渐减少。

细菌生长曲线的测定对于科学研究和实际应用中有着重要意义。

在科学研究中，通过测定细菌生长曲线可以获得细菌的生命周期信息，了解其生长特性和繁殖机制。

这对于研究细菌的生物学特性、药物敏感性以及探索新的治疗方法具有指导意义。

此外，测定细菌生长曲线还可用于评估食品、水源等环境中的细菌污染情况，为公共卫生和食品安全提供重要依据。

在实际应用中，细菌生长曲线的测定可用于制定细菌培养条件和控制措施。

通过了解细菌的繁殖速度和繁殖条件，我们可以优化培养条件以提高细菌产量，或者通过调节环境因素来控制细菌的滋生。

此外，在药物研发和微生物工程中，测定细菌生长曲线可以评估抗生素对细菌的杀菌效果、药物毒性及其机制，为药物设计和微生物工程提供重要参考。

综上所述，细菌生长曲线的测定是一项生动、全面且具有指导意义的实验方法。

通过测定细菌数量随时间的变化规律，我们可以了解细菌的生长特性、繁殖机制和生命周期等信息。

大肠杆菌生长曲线的测定

实用文档
实验结果
1、将测定的OD600值填入下表：培养时间(h) 对照 0 1.5 3 4 6 8 10 12 14 16 20 OD600
2、绘制大肠杆菌的生长曲线：
OD600值
实用文档
培养时间/h
LB液体培养基配方：100ml 酵母提取物(Yeast extract): 0.5g
蛋白胨(Tryptone)：1g 氯化钠(Nacl)： 1g
不同培养时间的菌液
实用文档
OD600 0 1.5 3 4 6 8 10 12 14 16 20
2.5 2
1.5 1
0.5 0 培养时间
实用文档
OD600 OD600校正
注意事项：
1. 选用规格一致的试管； 2. 每支试管的装液量应相同(5 ml/支)； 3. 混匀的菌悬液加入到比色皿后应迅速读取OD值； 4. 保护比色皿透光面不受磨损，不要用手指直接接触； 5. 分光光度计在未测样品时应及时打开盖。
4将已接种的试管置摇床37振荡培养200rpm在相应时间取出试管放于冰箱中最后一同测定od6005进行光密度测定时以未接种的lb液体培养基为空白对照从早取出的培养液开始依次测定细胞密度大的培养液用lb液体培养基稀释后测定使od600值在01065之内
大肠杆菌生长曲线的测定
授课教师: 孙运军研究生: 何浩张晨
床、无菌试管、无菌吸管。
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操作步骤
1、配制LB液体培养基100 ml，分装1支试管(5 ml/支)，剩余培养基装入250 ml的三角瓶，121℃灭菌20min。
2、取11支无菌大试管，用记号笔分别标明培养时间，即0、1.5、 3、4、6、8、10、12、14、16和20 h。
3、用5 ml无菌吸管取2.5 ml大肠杆菌培养液(培养12h)转入装有 LB液体培养基的三角瓶内，混匀后分别取5ml混合液放入上述标记的11支无菌大试管中。

生长曲线的测定

实验日期：2017.11.1 实验班级：生物技术指导教师：张建丽姓名：高熹学号：1120152430测定细菌生长曲线一．实验目的1.通过对大肠杆菌生长曲线的测定，了解细菌生长的特点，综合训练微生物实验的基本实验技能。

2.巩固培养基的配制、灭菌、仪器的包扎、倒平板。

3.掌握用比浊法测定细菌的生长曲线。

二．实验原理将少量细菌接种到一定体积的、适合的新鲜培养基中，在适宜的条件下进行培养，一定时间测定培养液中的菌量，以菌量的数量作纵坐标，生长时间作横坐标，绘制的曲线叫生长曲线。

它反映了单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。

依据其生长速率的不同，一般可把生长曲线分为延缓期、生长期、稳定期和衰亡期。

将每一种一定量的细菌转入新鲜液体培养基中，在适宜的条件下培养细胞要经历延迟期、对数生长期、稳定期和衰亡期四个阶段。

延迟期：又叫调整期。

细菌接种至培养基后，对新环境有一个短暂适应过程（不适应者可因转种而死亡）。

此期曲线平坦稳定，因为细菌繁殖极少延迟期长短因素种、接种菌量、菌龄以及营养物质等不同而异，一般为1～4小时。

此期中细菌体积增大，代谢活跃，为细菌的分裂增殖合成、储备充足的酶、能量及中间代谢产物。

对数生长期：又称指数期。

此期生长曲线上活菌数直线上升。

细菌以稳定的几何级数极快增长，可持续几小时至几天不等（视培养条件及细菌代时而异）。

此期细菌形态、染色、生物活性都很典型，对外界环境因素的作用敏感，因此研究细菌性状以此期细菌最好。

抗生素作用，对该时期的细菌效果最佳。

稳定期：该期的生长菌群总数处于平坦阶段，但细菌群体活力变化较大细菌浓度达到最大即环境最大容纳量。

由于培养基中营养物质消耗、毒性产物（有机酸、过氧化物等）积累PH下降等不利因素的影响，细菌繁殖速度渐趋下降，相对细菌死亡数开始逐渐增加，此期细菌增殖数与死亡数渐趋平衡。

细菌形态、染色、生物活性可出现改变，并产生相应的代谢产物如外毒素、内毒素、抗生素、以及芽孢等。

简述细菌的生长曲线及其实际意义

简述细菌的生长曲线及其实际意义试验一，细菌的生长曲线实验目的：通过生长曲线测量、培养细菌，获得在不同时间的实际菌数，从而了解细菌的繁殖特性。

方法与步骤：一、选取适当大小的烧杯三只(直径30cm，高20cm)。

分别注入75%的酒精10ml，然后分别加入3、 5ml、 1ml的不同浓度的葡萄糖溶液，再分别加入等量的接种培养液，每只容器的液面高度约为容器的1/2。

另取3mL无菌蒸馏水分别加入到第三只烧杯中。

二、用弯曲的玻璃棒轻轻搅拌，使葡萄糖充分溶解。

取出一只稍冷却的烧杯，迅速将此烧杯倒扣于平皿上。

另取一只稍冷却的烧杯，迅速将此烧杯倒扣于平皿上，这样依次重复三次。

三、平板打开后，待其自然冷却至37 ℃左右时，制成细菌平板。

并计算各菌种在不同培养条件下，该菌种生长的曲线。

四、将各菌种稀释液均匀地分成相等的两组，分别设置5个对照组，每个对照组不变。

各组之间按照表1的比例配成含不同浓度葡萄糖的对照培养基，即对照组1、对照组2、对照组3、对照组4、对照组5。

把一支大烧杯中加满酒精，分别加入2。

0mL、 2ml、 1。

5ml、0。

8ml不同浓度的葡萄糖溶液。

并分别加入等量的接种培养液，每只容器的液面高度约为容器的1/2。

另取3mL无菌蒸馏水分别加入到第三只烧杯中。

二、用弯曲的玻璃棒轻轻搅拌，使葡萄糖充分溶解。

取出一只稍冷却的烧杯，迅速将此烧杯倒扣于平皿上。

另取一只稍冷却的烧杯，迅速将此烧杯倒扣于平皿上，这样依次重复三次。

三、平板打开后，待其自然冷却至37 ℃左右时，制成细菌平板。

并计算各菌种在不同培养条件下，该菌种生长的曲线。

四、将各菌种稀释液均匀地分成相等的两组，分别设置5个对照组，每个对照组不变。

各组之间按照表1的比例配成含不同浓度葡萄糖的对照培养基，即对照组1、对照组2、对照组3、对照组4、对照组5。

每过10天，记录一次菌落数，同时调查第二只烧杯中液体的颜色和气味，判断有无污染。

五、观察统计结果。

六、记录结果，绘制如下图示。

细菌生长曲线 -

实验报告课程名称：生物工艺学实验实验名称：大肠杆菌生长曲线测定专业：___生物工程__________ 学号：________姓名：____________ 实验地点：_________________实验日期：_________________[实验目的和要求]1．了解光电比浊计数法的原理。

2．了解细菌生长曲线的特点，绘制生长曲线。

3. 掌握光电比浊计数法测定大肠杆菌生长曲线的方法。

[实验器材]1．菌种大肠埃希菌（E.coli）1~18h液体培养物或菌悬液。

或者上次实验诱变得到的菌种。

2．培养基营养肉汤培养基，生理盐水3．其它：721型光电比色计、1ml无菌移液管、摇床等。

[实验原理和方法]原理：细菌的生长一般指群体的生长，常常具有一定的规律性。

描述细菌在液体培养基中的生长规律的曲线叫做生长曲线，即将一定量的细菌接种到一定容积的液体培养基中，在适宜的条件下进行培养，以培养时间为横坐标，以菌数的对数为纵坐标进行作图得到的曲线。

典型的生长曲线可分为延迟期、对数生长期、稳定期和衰亡期四个时期。

细菌培养物在生长过程中，由于原生质含量的增加，会引起培养物混浊度的增高。

细菌悬液的混浊度和透光度成反比、与光密度成正比，透光度或光密度可借助光电比浊计精确测出，因此可用光电比浊计测定细胞悬液的光密度（OD值），表示该菌在特定实验条件下的细菌相对数目，进而反映出其相对生长量。

步骤：1．接种、培养采用无菌操作技术用移液管向每个100ml营养肉汤培养基的三角瓶中试管准确加入大肠埃希菌悬液3ml，轻轻振荡混匀，另设一空白对照组（不加大肠埃希菌悬液）。

将接种后的9组三角瓶置于摇床上，37℃,220r/min，振荡培养。

间隔一定时间，即0、1、2、3、4、5、6、7、8、9~18小时后，从摇床上将取下其中一瓶三角瓶培养物（标记时间），置4℃冰箱保存。

2．吸光度测定每组取9支干净小试管，从不同时间培养菌液中摇匀各取3ml，将大肠埃希菌培养液进行适当稀释，使光密度在0.1~0.65之间，以没有接种的空白对照组液体培养基调零点，在600nm波长，1cm比色杯中依次进行测定OD值。

细菌生长曲线的测定实验报告

细菌生长曲线的测定实验报告竭诚为您提供优质文档/双击可除细菌生长曲线的测定实验报告篇一：细菌生长曲线实验九测定细菌生长曲线[实验目的]1．了解细菌生长曲线特征：2．学习液体培养基的配制以及注意事项。

3．学习液体种子和固体种子的不同接种方法和注意事项。

4．利用细菌悬液浑浊度间接测定细菌生长。

[仪器和材料]1．实验材料(1)大肠杆曲，枯草杆曲培养液及大肠杆菌平板。

(2)牛肉膏蛋门胨葡萄糖培养基(150ml／250ml三角瓶x4瓶／大组)，配方：牛肉膏5g，蛋白胨10g，nacl5g，葡萄糖10g，加水至1000ml，ph7．5。

2．实验仪器取液器(5000μl，1000μl，200tμl各一支)；培养箱．摇床，722s 分光光度汁；1000μl无菌吸头100个；5000μl 无菌吸头2(:细菌生长曲线的测定实验报告)个；1ml或4ml玻璃或塑料比色皿4个，共用参比杯一个。

单细胞微生物发酵具有4个阶段，即调整(迟滞期)、对数期(生长旺盛期)、平衡期(稳定期)、死亡期(衰亡期)。

生长曲线可表示细菌从开始生长到死亡的全过程动态。

不同微生物有不同的生长曲线，同一种微生物在不同的培养条件下，其生长曲线也不一样。

本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与浑浊度成正比，因此，可以利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度。

将所测得的光密度值(测oD550或oD620或oD600或oD420，可任选一波长)与对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线。

注意，由于光密度表示的是培养液中的总菌数，包括活菌与死菌，因此所测生长曲线的衰亡期不明显。

细菌生长曲线的测定

细菌生长曲线的测定1 目的1.1 了解细菌生长曲线特点及测定原理1.2 学习用比浊法测定细菌的生长曲线2 原理将少量细菌接种到一定体积的、适合的新鲜培养基中，在适宜的条件下进行培养，定时测定培养液中的菌量，以菌量的对数作纵坐标，生长时间作横坐标，绘制的曲线叫生长曲线。

它反映了单细胞微生物在一定环境条件下于液体培养时所表现出的群体生长规律。

依据其生长速率的不同，一般可把生长曲线分为延缓期、对数期、稳定期和衰亡期。

这四个时期的长短因菌种的遗传性、接种量和培养条件的不同而有所改变。

因此通过测定微生物的生长曲线，可了解各菌的生长规律，对于科研和生产都具有重要的指导意义。

测定微生物的数量有多种不同的方法，可根据要求和实验室条件选用。

本实验采用比浊法测定，由于细菌悬液的浓度与光密度（OD值）成正比，因此可利用分光光度计测定菌悬液的光密度来推知菌液的浓度，并将所测的OD值与其对应的培养时间作图，即可绘出该菌在一定条件下的生长曲线，此法快捷、简便。

3 材料3.1菌种大肠杆菌3.2培养基肉膏蛋白胨培养基3.3 仪器和器具721分光光度计，比色杯，恒温摇床，无菌吸管，试管，三角瓶。

4 流程种子液→标记→接种→培养→测定5 方法5.1种子液制备取大肠杆菌斜面菌种1支，以无菌操作挑取1环菌苔，接入肉膏蛋白胨培养液中，静止培养18h作种子培养液。

5.2标记编号取盛有50mL无菌肉膏蛋白胨培养液的250mL三角瓶11个，分别编号为0、1.5、3、4、6、8、10、12、14、16、20h。

5.3接种培养用2mL无菌吸管分别准确吸取2mL种子液加入已编号的11个三角瓶中，于37℃下振荡培养。

然后分别按对应时间将三角瓶取出，立即放冰箱中贮存，待培养结束时一同测定OD 值。

5.4生长量测定将未接种的肉膏蛋白胨培养基倾倒入比色杯中，选用600nm波长分光光度计上调节零点，作为空白对照，并对不同时间培养液从0h起依次进行测定，对浓度大的菌悬液用未接种的牛肉膏蛋白胨液体培养基适当稀释后测定，使其OD值在0.10.～0.65以内，经稀释后测得的OD值要乘以稀释倍数，才是培养液实际的OD值。

酵母菌等单细胞微生物生长曲线的测定

酵母菌等单细胞微生物生长曲线的测定1 目的要求（1）了解酵母菌、细菌等单细胞微生物生长曲线的特点及测定原理；（2）学习用血球计数板计数法和比浊法分别测定酵母和细菌的生长曲线。

2 基本原理细菌群体的生长繁殖可分为四期：1)．迟缓期（Lag phase）:细菌接种至培养基后，对新环境有一个短暂适应过程（不适应者可因转种而死亡）。

此期曲线平坦稳定，因为细菌繁殖极少。

迟缓期长短因素种、接种菌量、菌龄以及营养物质等不同而异，一般为1～4小时。

此期中细菌体积增大，代谢活跃，为细菌的分裂增殖合成、储备充足的酶、能量及中间代谢产物。

2).对数期(Logarithmic phase):又称指数期(Exponential phage)。

此期生长曲线上活菌数直线上升。

细菌以稳定的几何级数极快增长，可持续几小时至几天不等（视培养条件及细菌代时而异）。

此期细菌形态、染色、生物活性都很典型，对外界环境因素的作用敏感，因此研究细菌性状以此期细菌最好。

抗生素作用，对该时期的细菌效果最佳。

3)．稳定期（Stationary phase）:该期的生长菌群总数处于平坦阶段，但细菌群体活力变化较大。

由于培养基中营养物质消耗、毒性产物（有机酸、H2O2等）积累PH下降等不利因素的影响，细菌繁殖速度渐趋下降，相对细菌死亡数开始逐渐增加，此期细菌增殖数与死亡数渐趋平衡。

细菌形态、染色、生物活性可出现改变，并产生相应的代谢产物如外毒素、内毒素、抗生素、以及芽胞等。

4)．衰亡期（Decline phase）:随着稳定期发展，细菌繁殖越来越慢，死亡菌数明显增多。

活菌数与培养时间呈反比关系，此期细菌变长肿胀或畸形衰变，甚至菌体自溶，难以辩认其形。

生理代谢活动趋于停滞。

故陈旧培养物上难以鉴别细菌。

体内及自然界细菌的生长繁殖受机体免疫因素和环境因素的多方面影响，不会出现象培养基中那样典型的生长曲线。

掌握细菌生长规律，可有目的地研究控制病原菌的生长，发现和培养对人类有用的细菌。

细菌生长曲线测定

Growth curve experiment combines the OD and colony count method1 streak bacterial using a loop on LB Agar plate2 pick three single colonies from the plate (3 parallels experiment at least)3 inoculate each colony into universal with 25ml LB broth4 18 hours stasis (without shaking) incubate at 35℃ (depends on the bacteria’s best growth temperature)5 at the next morning pipette 1.35ml of culture into 1.5ml eppendorf, label 0, 30, 60, 90, 120, 150, 180, 210, 240, 5h, 6h, 8h, 12h, 24h, 48h. Must with the group name: A, B, C.6 spread one 0 sample on plate, to see the estimate no. of colony. Please see below of the dilution method.7 take each time sample out of incubate into fridge immediately!8 See the no. of colony on the 0 one next day. According to this, decide the dilution your will make for the left samples. Test the OD value and spread plates. Overnight incubate.9 Make the growth curve.Prepare:Eppendorf, LB broth, LB Agar, spreader, tips (1000ul&200ul), 0.85% saline, universalsNote:1 the OD value can be line between 0.1-0.65. If the OD value exceeds this range, please dilute the culture first, and then test the OD value.2 when spread the plate, the no. should be 30-300.Make the appropriate ten-fold dilutions:1 setup 6 tubes containing 900ul of 0.85% saline.2 transfer 100ul of your culture into the first tube (10-1 dilution).3 Mix well using the vortex and transfer 100ul to the next dilution tube using a new tip.4 proceed in this way with your dilutions down to 10-6. Usually 10-5_10-5 is suitable.5 Using a fresh pipette tip and starting with the highest dilution take 100ul of suspension and transfer it to the surface of an agar plate.6 Take a spreader and spread out your bacterial dilution over the whole surface of the place.7 Once dry, place the plates in appropriate box for incubation at 35 ℃.。