间接红细胞凝集试验诊断血吸虫病

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间接红细胞凝集试验诊断血吸虫病
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间接红细胞凝集试验 (Indirect haemagglutination test, IHA)
以红细胞为载体 吸附预先制备的特异性抗原或抗体作为试剂 检测标本中的相应抗体或抗原 血清学方法 特点:抗原与其抗体之间的特异性反应
红细胞凝集现象
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用含有5%蔗糖及1%正常兔血清(56℃灭活) 的pH7.2PBS保护液,配成10%浓度的致敏红细胞 悬液。
致敏效果与抗原的活性及纯度有关。
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(五)致敏红细胞的冰冻干燥
将上述致敏红细胞悬液摇匀,分装于2ml安瓿 内。每支0.4ml,立即放入-40℃冰箱冰冻,待全部 分装完毕后,移入冰冻干燥机内,冰冻干燥约24h, 干燥后封口,保存于4℃中备用。
(一)血吸虫虫卵抗原制备 分离虫卵→ 脱水、脱酯干燥→ 研磨成细粉 → 冻融→ 超声粉碎→ 普通离心→ 高速离心。 经离心后的上清液,即为虫卵抗原原液,保存于 -20℃中备用。
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理想抗原 敏感性高,特异性强,能区别不同感染度, 能区别现在感染还是过去感染,价廉。 但目前还没有,今后可能依靠杂交瘤技术、 DNA技术而获得理想的抗原。
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国外最早于1955年应用于检测马抗血清 国内陶义训等(1958)首先应用于诊断
日本血吸虫病 杨赞元等(1976)应用冰冻干燥方法
制备试剂
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一、基本概念
(一)凝集反应 是指细菌、细胞等颗粒性抗原加入相应抗体, 并在适量电解质存在的条件下,两者特异性 结合且进一步凝聚成肉眼可见的小块。
冰冻干燥具有高科技含量不是单纯干燥,在冰 冻状态下使水分子升华,不使红细胞破裂,不影响 抗原活性。
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三、操作步骤
(一)取生理盐水2ml,加入装有冰冻干 燥红细胞的安瓿中,配成2.0%的红细胞 悬液,摇匀。 (二)在“V”型微量血凝反应板的第1孔 中加生理盐水100μl, 第2、3孔中各加25μl。
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(三)间接血凝的类型
IHA:用抗原致敏红细胞检测标本中抗体 反向间接血凝试验:用特异性抗体致敏红
细胞检测标本中的相应抗原 间接血凝抑制试验 反向间接血凝抑制试验
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(正向)间接凝集反应
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反向间接凝集反应
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间接凝集抑制反应
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二、冻干致敏红细胞的制备
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(五)生理盐水:用于稀释IHA试剂、阳 参、阴参、血清样本的生理盐水必须保持 无菌。
(六)判断反应结果:在判断反应结果时
应在反应板下面衬一张白纸,使反应结果
更加清晰。先观察空白对照、阴参、阳参,
再观察样本。
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六、评价
IHA的优点: 敏感性高,阳性符合率在90%以上,对粪检阳 性者可高达95%,假阳性率一般不超过4%。 操作方便,用血量少,便于现场使用。 试剂生产方便,成本低,符合国情。 IHA的缺点: 特异性欠强、与其它吸虫有较高的交叉反应。 交叉反应主要在肺吸虫感染,可达50%以上。
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四、反应标准
(一)阴性反应:红细胞全部下沉在 凹底部,形成紧密的圆点,周围整齐 清晰。 (二)阳性反应:待检者血清以1:10 稀释度出现凝集反应为阳性起点
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(三)反应强度 “-”:红细胞全部下沉在凹底部,形成紧密的 圆点,周围整齐清晰 “+”:多数红细胞下沉在凹底部形成圆点, 周围可见少量凝集红细胞 “++”:凹底部可见明显的红点,凝集红细 胞在底部形成小薄层
凝集反应分为直接凝集和间接凝集反应。
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(二)间接红细胞凝集试验
原理 日本血吸虫可溶性虫卵抗原 载体颗粒 绵羊、家兔、鸡的红细胞及O型人红细胞 致敏的新鲜红细胞保存时间短,且易变脆、溶血和污染,
只能使用2~3天 致敏前将红细胞醛化,可长期保存而不溶血 常用的醛类有甲醛、戊二醛、丙酮醛
胞破裂、溶血
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(三)红细胞鞣化
取1/10000鞣酸溶液与等量2.5%红细胞悬液混 匀,置于37℃ 中15min,并不断摇动。洗涤, 去除多余的鞣酸。
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鞣化红细胞的优点 鞣化后红细胞易吸附蛋白抗原。
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(四)红细胞致敏
取虫卵抗原原液1:100稀释,与2.5%的鞣化红 细胞等量混合,置于37℃水浴中30min,并不断摇 动,然后离心,洗涤,去除多余抗原。
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七、实用价值
(一)可作为血吸虫病的辅助诊断。无血 治史者和治疗史3年以上者,IHA阳性可给 予扩大治疗。
(二)在血吸虫病流行区,可作为查病的 过筛方法。
(三)可作为血清流行病学调查及疫情监 测的方法
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“+++”:凹底部可见很弱的红点,红细胞呈 疏松的颗粒凝集 “++++”:红细胞呈明显的颗粒凝集,均匀 散布于凹底部周围形成薄层,有时呈皱褶状
效价(滴度):发生凝集现象最高的血清稀释度。
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五、影响因素及注意事
(一)试剂:保存、对照、效价、摇匀。 (二)反应板:“V”型,底角应为90°。 反复冲洗。 (三)毛细吸管:校正、垂直。 (四)血清样本:新鲜为宜,保存在冰盒 内。溶血样本将影响测定结果的准确性。
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(三)第1孔中加待检血清25μl,混匀后吸出 25μl加于第2孔中,在第2孔中混匀后,吸出 25μl加于第3孔中,混匀后弃去25μl。此时第 1、2、3孔中的血清稀释度依次为1:5 、1:10 、 1:20。
(四)在第2、第3孔中各加致敏红细胞悬液 25μl,将反应板放在振荡器上振荡1min,室 温下静置45min,观察反应结果。
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(二)红细胞醛化
取人“O”型血红细胞3份(不同个体) 混合 ,用生理盐水洗涤 。置冰浴内,将戊 二醛溶液慢慢滴入红细胞悬液中,边加边 摇,醛化1h。用1/10000的柳硫汞蒸馏水配 成10%的红细胞悬液,置于4℃备用。
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醛化红细胞优点 克服了个体差异,保证实验重复性 延长红细胞的保存时间,在4℃可保存1年 避免操作过程中因振荡、低渗、冻融使红细
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