课用双向电泳技术

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《双向电泳技术》课件

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高通量
该技术可以同时分离大量蛋白质,提高了实 验的通量。
高稳定性
该技术具有较高的稳定性,实验结果重复性 好。
缺点
实验周期长
双向电泳技术的实验周期较长 ,需要耗费较多的时间和人力

对样品要求高
该技术需要大量的起始样品, 并且对样品的纯度要求较高。
对实验条件要求严格
双向电泳技术的实验条件较为 苛刻,需要精确控制实验参数 。
在药物研发中的应用
总结词
双向电泳技术为药物研发提供了高通量和高效率的蛋白质分离手段,有助于发现潜在的药物靶点和筛 选候选药物。
详细描述
在药物研发过程中,双向电泳技术可用于分析药物对蛋白质表达谱的影响,从而发现药物作用的靶点 。此外,通过比较不同物种或组织的蛋白质表达谱,可以发现潜在的药物靶点,为新药研发提供思路 和候选药物。
应用领域的拓展
疾病诊断与治疗
利用双向电泳技术分析疾病相关蛋白质,为疾病诊断 和治疗提供依据。
药物研发
通过双向电泳技术筛选药物作用靶点,加速新药研发 进程。
生物工程与农业
在生物工程和农业领域中应用双向电泳技术,优化生 物过程和育种。
未来发展方向与挑战
标准化与规范化
建立双向电泳技术的标准化操作流程和质量控制体系,提高实验 结果的可靠性和可比性。
CHAPTER 02
双向电泳技术的实验流程
样本制备
01
02
03
样本选择与处理
选择适当的组织或细胞样 本,进行适当的处理以提 取蛋白质。
蛋白提取
使用适当的缓冲液和试剂 ,从样本中提取蛋白质。
蛋白定量
使用蛋白质定量方法,确 定蛋白质的浓度。
蛋白质提取
溶解蛋白质

双向电泳技术的原理及应用

双向电泳技术的原理及应用

双向电泳技术的原理及应用1. 原理双向电泳技术是一种分离和鉴定蛋白质的常用方法。

它结合了凝胶电泳和电泳移动的优势,可以在同一实验中实现更高的分辨率和更好的分离效果。

双向电泳的原理基于两个关键因素:分子大小和电荷。

在实验中,蛋白质样品首先沿一个方向进行电泳。

由于蛋白质的不同大小和电荷,它们会在凝胶中形成不同的带状图案。

然后,凝胶会旋转90度,使蛋白质在垂直方向上进行电泳。

这样一来,蛋白质会在另一个方向上发生分离。

双向电泳的核心是双向凝胶,其结构类似于二维网络。

在第一个方向上,凝胶中的蛋白质会形成一维图案,而在第二个方向上,蛋白质会形成另一维图案。

通过对这两个图案的分析,可以得到更为准确的蛋白质信息。

2. 应用2.1 蛋白质分离和纯化双向电泳技术在蛋白质分离和纯化中有着广泛的应用。

由于双向电泳可以提供更高的分辨率,可以分离和鉴定更多的蛋白质。

这在研究蛋白质结构和功能以及疾病诊断中具有重要意义。

2.2 蛋白质组学研究双向电泳技术在蛋白质组学研究中发挥着重要作用。

通过双向电泳,可以分离出复杂样品中的蛋白质,并获得其质量和电荷信息。

这些信息可以用于鉴定蛋白质和研究其功能。

2.3 药物研发双向电泳技术在药物研发中也有广泛的应用。

通过双向电泳,可以分离和鉴定药物的靶点,进一步了解药物与蛋白质的相互作用机制。

这对于药物设计和优化具有重要意义。

2.4 分子生物学研究双向电泳技术在分子生物学研究中有着重要的应用。

通过双向电泳,可以鉴定蛋白质的表达变化,从而了解基因表达调控机制。

这对于研究细胞功能和疾病发生机制具有重要意义。

2.5 环境监测双向电泳技术在环境监测中也有着广泛的应用。

通过双向电泳,可以分离和鉴定环境中的污染物,从而评估环境质量和污染程度。

这对于环境保护和治理具有重要意义。

3. 优缺点3.1 优点•分辨率高:双向电泳可以提供更高的分辨率,可以分离和鉴定更多的蛋白质。

•信息丰富:双向电泳可以获得蛋白质的质量和电荷信息,有助于了解蛋白质的结构和功能。

双向电泳泳实验方案

双向电泳泳实验方案

双向电泳实验方案1.双向电泳总蛋白(培养细胞)提取方法:方案一细胞培养在10cm的培养皿中,待培养至80%左右密度时,细胞用预冷的PBS漂洗3次,加450μl裂解液,细胞刮刀收集,用移液器转移至1.5ml离心管中,反复吹打。

(折合在六孔板中,每孔加裂解液50μl)之后将样品用超声波细胞破碎仪超声处理超声时间为5s,间歇时间为10s,功率为100-120W,超声处理至溶液清澈无粘稠物为止,处理过程在冰浴中进行,超声处理后,4℃、25000g离心1h。

取上清进行蛋白质浓度测量,按实验所需的量分装后-80℃冰箱中保存。

(裂解液成分:8mol/L脲,65mmol/L DDT,4%CHAPS,40mmol/L Tris)方案二1.1试剂(1)抽提缓冲液9mol/L脲 5.4g4%CHAPS 0.4g0.5%IPG缓冲液(PH 3-10)(AP Biotech) 50.0μl50mmol/L DDT 0.077gH2O 加至10ml(2)IPG缓冲液(PH 3-10)(AP Biotech)(3) 磷酸盐缓冲液(PBS),冰冻1.2仪器(1) 细胞刮刀(2)离心机(低温,低速)(3)滤纸(4)冰浴装置(5)超速离心机(低温)(6)漩涡混合器1.3细胞培养的GC-1 spg细胞1.4方法1.从培养皿中转移细胞:用细胞刮刀从培养皿中刮下细胞,用5ml移液器将培养基和细胞转移至15ml离心管中。

2.480g、4℃离心沉淀细胞5min。

3.弃去上清,勿搅动沉淀要点:操作一下步骤时,所有细胞需保持冰冻状态;不离心或震荡时保持细胞在冰上。

4.离心管中加入10ml冰冻PBS,来回吹打重悬细胞。

5.480g、4℃再次离心细胞5min。

6.弃去上清,勿搅动沉淀。

7.重复步骤4-6两次。

8.在最后一次洗涤后,把离心管完全空干,用滤纸将沉淀上残留的PBS吸干。

9.用移液器将抽提缓冲液加到离心管中。

依赖所研究的细胞系来确定抽提缓冲液的体积。

双向电泳的概念和原理

双向电泳的概念和原理

双向电泳的概念和原理双向电泳是一种采用两个方向的电场同时作用于凝胶电泳系统的技术,用于分离复杂样品中的蛋白质或核酸。

首先,将样品溶解于含有凝胶的电泳缓冲液中。

凝胶是一种聚合物网状结构,可以限制分子的运动,将其分离。

常见的凝胶材料包括聚丙烯酰胺凝胶和琼脂糖凝胶。

第一步是水平电泳。

在水平电泳阶段,一个方向的电场施加在凝胶中,使得带电分子向着相应的电极方向移动。

这个方向通常被称为水平方向,因为它从一个电极移动到另一个电极。

在水平电泳过程中,由于分子的大小和电荷不同,它们将以不同的速度在凝胶中运动。

大分子移动缓慢,小分子移动快速。

这样,分子根据大小按照一定的顺序移动,导致它们在凝胶中排列成一条通常是呈斜角的直线。

这个方向通常被称为水平电泳通道。

第二步是垂直电泳。

在水平电泳结束后,垂直电场被施加在凝胶中,使分子以另一个方向移动。

这个方向通常被称为垂直电泳通道。

在垂直电泳过程中,分子将根据它们的电荷大小被拖曳向上(正电流)或向下(负电流)。

正电流将使分子向上移动,而负电流将使分子向下移动。

这样,分子将根据其电荷被分离并在凝胶中形成一条平行于水平电泳通道的直线。

最终,两个方向的电泳都完成后,在凝胶上会形成一个类似网格的结构,其中分子被分离成不同的带状。

这些带状物可以被染料或放射性示踪剂探测出来,从而确定分离出的分子的位置。

总结起来,双向电泳是一种利用两个方向的电场移动分子的方法。

通过水平电泳和垂直电泳,分子根据其大小和电荷被分离成不同的带状,从而实现复杂样品中蛋白质或核酸的分离和分析。

双向电泳和质谱技术

双向电泳和质谱技术

双向电泳和质谱技术双向电泳和质谱技术是两种广泛应用于生物化学和生物物理学领域的分析方法。

它们通过不同的原理和技术手段,可以对生物分子进行定性和定量的分析。

本文将介绍双向电泳和质谱技术的基本原理、应用领域以及发展前景。

一、双向电泳双向电泳是一种常用的蛋白质分析方法,它通过电泳将蛋白质在两个正交方向上进行分离,从而实现高分辨率的分析。

其基本原理是利用蛋白质在电场中的电荷、大小和形状等特性,通过在两个方向上施加电场,不断地移动蛋白质分子,使其在凝胶中分散开来,最终实现完全的分离。

双向电泳技术在生物化学和生物物理学领域中有着广泛的应用。

它可以用于研究蛋白质的组成和结构,探索蛋白质相互作用的机制,寻找新的蛋白质标记和药物靶点等。

双向电泳技术的主要优点是分离效果好、分析速度快、灵敏度高。

然而,该技术也存在一些局限性,比如在分离过程中可能出现混叠现象,对样品要求较高等。

二、质谱技术质谱技术是一种以测定生物样品中质量与荷电比(m/z)为基础的分析方法,它可以对样品中的化合物进行分析和鉴定。

质谱技术的基本原理是将样品中的化合物通过电离技术转化为带电离子,然后根据离子在磁场中受到的作用力大小,测量离子的质量和荷电比,从而确定分子的质量。

根据质谱仪的不同类型和检测模式,质谱技术可以分为质谱仪、质谱成像、质谱图谱等多种形式。

质谱技术在生物化学和生物物理学领域中扮演着重要的角色。

它可以用于寻找新的生物标记物、研究代谢产品的组成、药物的代谢途径以及蛋白质的翻译后修饰等。

同时,质谱技术还可以与其他分析方法进行联用,如液相色谱联用质谱、气相色谱联用质谱等,以增强分析的灵敏度和分辨率。

三、双向电泳与质谱技术的结合双向电泳和质谱技术在生物科学研究中常常被结合使用,以实现更全面、深入的分析。

双向电泳可以将蛋白质分子进行高效的分离,而质谱技术可以对分离得到的蛋白质进行质量测定和结构鉴定。

通过双向电泳与质谱技术的结合,可以在一定程度上弥补两种方法的局限性,提高分析结果的准确性和可靠性。

双向电泳的应用和原理

双向电泳的应用和原理

双向电泳的应用和原理应用双向电泳是一种常用的生物分析技术,常用于蛋白质分析和DNA分析等领域。

以下是双向电泳的一些主要应用:1.蛋白质分析:双向电泳被广泛用于蛋白质分析。

通过将样品中的蛋白质分离成不同的带,可以进一步研究蛋白质的结构和功能。

2.DNA测序:双向电泳也可以用于DNA测序。

通过将DNA片段分离成不同的带,可以确定DNA的序列。

3.肿瘤标记物检测:双向电泳可以用于检测肿瘤标记物,从而帮助早期诊断和治疗。

4.药物筛选:双向电泳可以用于筛选新药物的研究。

通过比较不同试验条件下的蛋白质表达,可以确定新药物的作用机制。

5.疾病研究:双向电泳可以用于研究不同疾病的发生机制和治疗靶点。

通过比较患者样本和正常对照的蛋白质表达,可以发现与疾病相关的蛋白质变化。

原理双向电泳是将电泳技术应用于两个方向的分离,以实现更高分辨率的分析。

以下是双向电泳的基本原理:1.等位点电泳:双向电泳始于等位点电泳(IEF),即根据蛋白质的等电点将其分离成不同的带。

蛋白质在直流电场下会在电极之间移动,直到达到与环境中的离子浓度相等的位置。

这样,蛋白质就能被固定在凝胶中的特定位置。

2.SDS-PAGE:随后,使用聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)将蛋白质按照其分子量进一步分离。

在SDS-PAGE中,SDS(十二烷基硫酸钠)会使蛋白质带负电荷,从而使蛋白质按照其分子量在电场下移动。

3.双向电泳:在双向电泳中,IEF和SDS-PAGE两个步骤结合在一起。

首先,将样品在一维的IEF凝胶中进行等位点电泳分离。

然后,将等位点电泳的凝胶旋转90度,将其置于SDS-PAGE凝胶上。

这样,样品就可以在两个方向上进行电泳分离。

4.分析结果:双向电泳结束后,可以通过染色或质谱分析等方法来可视化和分析分离的蛋白质带。

比较不同样品的带的强度和位置可以得出有关蛋白质表达和组成的信息。

双向电泳的原理和应用使其成为生物学和生物医学研究中不可或缺的工具。

双向电泳

双向电泳
它带电荷的性质,具有不同pI的两性电解质在同一环境中带有不同 性质和数量的电荷,
另一方面,溶液中的两性电解质又破坏了水的解离平衡:
H2O
H++OH-
使溶液的pH有所改变。当某一两性电解质的pI较低,即释
放质子( H+ )能力较强,使溶液 pH 值下降,这类两性电
解质称为酸性两性电解质;而pI高的两性电解质可使溶液
1.2.1组合摸式:双向电泳主要是电荷分离——分子质量分 离的组合摸式。 ( 1 )第一向为电荷分离:通过聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦 毛细管电泳将样品按蛋白质等电点的差异进行分离。 ( 2 )第二向为质量分离:通过 SDS— 聚丙稀酰胺凝胶电 泳按相对分子质量大小不同进行分离。
1.2.2分类:双向电泳根据其第一向使用的介质的不同可以
们到达净电荷为零的位置时才停止。
具有最低和最高等电点的分子带电荷最多,泳动速度最快, 所以pI梯度的形成开始在正、负级两端,然后不同pI的载 体两性电解质分子逐渐到达它们自己的等电点位置而形成
一个连续的pI梯度。如图所示。
A
B
C
载体两性电解质在电场中形成pI梯度的模式图
A 原始状态 B pI梯度的形成过程 C连续pI梯度的形成
出的优点。
图 等电聚焦的“聚焦效应”
等电聚焦电泳根据蛋白质等电点不同而将其分离,也可以根据蛋白 条带在pH梯度中形成的位置测定其等电点。
3第二向电泳——SDS电泳的基本原理
3.1蛋白质-SDS复合物
(1)SDS的作用:SDS是一种阴离子去污剂,它在水溶液中
以单体和分子团(micellae)的混合形式存在,作为一种变性
中存在三个物理效应和四个不连续性的分离系统。
3.2.1三个物理效应

双向电泳的原理和应用

双向电泳的原理和应用

双向电泳的原理和应用1. 原理双向电泳(Bidirectional Electrophoresis)是一种常用的电泳技术,可以有效分离和分析复杂样品中的蛋白质和核酸。

其原理是基于物质在电场中的带电性质和不同分子的迁移速度差异。

双向电泳采用两个电场分别作用于样品,一个在水平方向,另一个在垂直方向。

这两个电场的方向相反,使得样品分子在两个方向上均受到电场力的作用。

在水平方向上,电场力使得样品分子在凝胶中做两个方向的扩散;在垂直方向上,电荷的作用力使得样品分子沿凝胶向电极方向迁移。

通过双向电泳,样品分子在水平和垂直方向上的运动会发生偏移,从而实现蛋白质和核酸的分离。

根据分子的大小、形状和电荷等特性,不同的分子在双向电泳中会有不同的迁移速度,从而形成不同的带状图案。

这些图案可以被进一步分析和检测。

2. 应用双向电泳在生物科学研究和生物医学应用中具有广泛的应用,主要体现在以下几个方面:2.1 蛋白质分析双向电泳是蛋白质分析的一种重要方法。

通过双向电泳,可以将混合蛋白质样品进行分离,从而得到各自独立的蛋白质条带。

根据蛋白质条带的位置和数量可以推测样品中不同蛋白质的类型和相对含量。

这对于研究蛋白质的功能和相互作用非常有帮助。

2.2 新药开发双向电泳可以用于筛选和分析药物作用的靶向蛋白质。

通过比较药物处理前后的双向电泳图案,可以确定哪些蛋白质与药物有关。

这对于新药的开发和评估起到了重要的作用。

2.3 基因分析双向电泳也可以用于基因分析。

通过将DNA样品置于双向电泳中,可以将DNA的不同片段分离和检测。

这对于研究基因的结构、功能和突变等起到了关键作用。

2.4 生物标记物检测在临床诊断中,双向电泳可以用于检测特定蛋白质标记物,如肿瘤标志物。

通过分析血液或组织中的蛋白质条带,可以辅助诊断和评估疾病的发展和治疗效果。

结论双向电泳以其独特的分离原理和广泛的应用领域,在生物科学研究和生物医学领域发挥着越来越重要的作用。

它在蛋白质分析、新药开发、基因分析和生物标记物检测等方面具有广阔的应用前景。

双向电泳操作步骤蛋白质技术

双向电泳操作步骤蛋白质技术

双向电泳操作步骤-蛋白质技术水化上样(被动上样)1 .从冰箱中取出IPG胶条,室温放置IOmin o2 .沿水化盘槽的边缘从左向右线性加入样品,槽两端各Icm左右不加样,中间的样品液一定要连贯。

注意:不要产生气泡,否则会影响胶条中蛋白质的分布。

3 .用银子轻轻撕去IPG胶条上的保护层。

注意:碱性端较脆弱,应小心操作。

4 .将IPG胶条胶面朝下轻轻置于水化盘中样品溶液上。

注意:不要将样品溶液弄到胶条背面,因为这些溶液不会被胶条吸收;还使胶条下面的溶液产生气泡。

如产生了气泡,用镜子轻轻地提起胶条的一端,上下移动胶条,直到气泡被赶走。

5 .放置30~45min大部分样品被胶条吸收,沿着胶条缓慢加入矿物油,每根胶条约3m1(17cmIPG),防止胶条水化过程中液体蒸发。

6 .置等电聚焦仪于-20。

C水化11〜15h。

第一向等电聚焦1 .将纸电极置于聚焦盘的正负极上,加ddH205~8μ1润湿。

2 .取出水化好的胶条,提起一端将矿物油沥干,胶面朝下,将其置于刚好润湿的滤纸片上杂交以去除表面上的不溶物。

3 .将IPG胶条胶面朝下置于聚焦盘中,胶条的正极(标有+)对应于聚焦盘的正极,确保胶条与电极紧密接触。

4 .在每根胶条上覆盖2-3m1矿物油。

5 .对好正、负极,盖上盖子。

设置等电聚焦程序。

6 .聚焦结束的胶条,立即进行平衡、第二向SDS-PAGE电泳。

或将胶条置于样品水化盘中,-20。

水箱保存,电泳前取出胶条,室温放置10分钟,使其溶解。

第二向SDS-PAGE电泳1 .配制12%的丙烯酰胺凝胶。

2 .待凝胶凝固后,倒去分离胶表面的MiI1iQ水、乙醇或水饱和正丁醇,用MiIIiQ水冲洗。

3 .配制胶条平衡缓冲液I4 .在桌上先放置干的厚滤纸,聚焦好的胶条胶面朝上放在干的厚滤纸上。

将另一份厚滤纸用Mi1IiQ水浸湿,挤去多余水分,然后直接置于胶条上,轻轻吸干胶条上的矿物油及多余样品,这样可以减少凝胶染色时出现的纵条纹。

双向电泳操作双向电泳的技术流程和样品制备ppt课件

双向电泳操作双向电泳的技术流程和样品制备ppt课件
第二步:把未溶解的pellet用标准IEF样品液溶解提取 高疏水性蛋白;
第三步:用含复合表面活性剂的蛋白溶解液,最后抽 提前两次抽提后不能溶解的膜蛋白约占整个样品的 11%(W/W)。
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的,应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失,增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的,应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失,增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
增加样品溶解性的手段
变性剂:通过改变溶液中的氢键结构使蛋白质充分伸 展,将其疏水中心完全暴露,降低接近疏水残基的能 量域。其典型代表是尿素和硫尿。
双向电泳分析中的样品制备
制备原则:
应使所有待分析的蛋白样品全部处于溶解状态(包括 多数疏水性蛋白),且制备方法应具有可重现性。
防止样品在聚焦时发生蛋白的聚集和沉淀。 防止在样品制备过程中发生样品的抽提后化学修饰
(如酶性或化学性降解等)。 完全去除样品中的核酸和某些干扰蛋白。 尽量去除起干扰作用的高丰度或无关蛋白,从而保证
Amount 4.1ml of 8.5 stock or 2.1g urea in 3ml H2O 760mg
50ul of 200mM TBP stock
200mg See table 10ul of 0.1% stock To 5ml
Multiple surfactant solution preparation 经营者提供商品或者服务有欺诈行为的,应当按照消费者的要求增加赔偿其受到的损失,增加赔偿的金额为消费者购买商品的价款或接受服务的费用
IPG pH Range 3-10 4-7

双向电泳培训课程PPT课件

双向电泳培训课程PPT课件

优化电泳条件
优化电泳参数,如电流、电压和 时间,以获得更好的分离效果。
提高检测灵敏度
采用荧光标记技术
利用荧光标记技术对蛋白质进行染色,提高检测 灵敏度和分辨率。
优化染色方法
改进染色步骤和条件,降低背景噪声,提高检测 灵敏度。
开发新型检测器
研发更灵敏的检测器,提高检测下限,降低检测 误差。
自动化与智能化发展
设置参数
根据实验需求设置电泳参 数,如电流、电压、时间 等。
开始电泳
接通电源,启动电泳程序, 开始电泳分离。
染色与检测
固定
电泳结束后,将凝胶固定在染色 架上,用脱色摇床进行固定。
染色
根据实验需求选择合适的染色方法, 如银染、考马斯亮蓝染色等。
检测
通过凝胶成像系统或数码相机对染 色后的凝胶进行拍照和记录,以便 后续分析。
03
比较不同物种间蛋白质的差异,揭示生物进化的奥秘。
临床应用前景
个体化医疗
通过对个体蛋白质组的分析,为个体化医疗提供依据。
精准诊断
利用蛋白质组学技术对疾病进行精准诊断,提高诊断的准确性和 可靠性。
药物疗效评估
通过监测药物治疗前后蛋白质组的变化,评估药物疗效和安全性。
THANKS FOR WATCHING
高分辨率和高灵敏度检测技术
提高蛋白质的检测灵敏度和分辨率,有助于发现 更多蛋白质。
3
生物信息学
对蛋白质组学数据进行深入分析,挖掘更多生物 学意义。
蛋白质组学研究
疾病标志物研究
01
寻找与疾病相关的蛋白质标志物,为疾病的诊断和治疗提供依
据。
药物靶点研究
02
发现潜在的药物靶点,为新药研发提供支持。

综合实验论文:双向电泳技术1

综合实验论文:双向电泳技术1

目录引言 (1)1 材料及试剂 (2)1.1材料 (2)1.2试剂 (2)2 实验设备 (4)3 实验步骤 (5)3.1样品制备 (5)3.2第一向等电聚焦电泳(IEF) (5)3.3 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 (6)3.4 考马斯亮兰染色 (7)3.5 图谱分析 (7)4 结果 (8)5 小结 (8)参考文献 (9)双向电泳技术xx(指导老师:xx)(xxxx)摘要:双向电泳是利用蛋白质在两次独立的分离步骤中的特性将蛋白质分开:第一向步骤——等电聚焦(IEF)根据蛋白质的等电点(pI)将蛋白质分离。

在第二向步骤中 SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS—PAGE)利用蛋白质的分子量(Mr, 相对分子量)大小将它们分离。

所得结果的斑点序列都对应着样品中的单一蛋白。

本文以提取菠菜叶中的蛋白质为例,详细介绍了双向电泳技术的原理和操作过程。

关键词:双向电泳技术;等电聚焦;SDS- PAGE分离;双向电泳技术xx(指导老师:xx)(xxxx)引言双向电泳(Two-dimensional electrophoresis)在 1975年由 P.H.O'Farrel和J.Klose发明,是分析从细胞、组织或其它生物样品中提取出来的蛋白混合物最有力和广泛应用的方法。

这项技术利用蛋白质在两次独立的分离步骤中的特性将蛋白质分开:第一向步骤——等电聚焦(Isoelectricfocusing ,简称IEF)根据蛋白质的等电点(pI)将蛋白质分离。

在第二向步骤中 SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS—PAGE)利用蛋白质的分子量(Mr, 相对分子量)大小将它们分离。

双向电泳所得结果的斑点序列都对应着样品中的单一蛋白。

因此,上千种蛋白质均能被分离开来,并且各种蛋白质的等电点,分子量和含量的信息都能得到。

自产生以来,双向电泳作为生化分离技术的重要性事实上早已被承认,而由于各方面的改进在最近几年才广泛应用[1]。

具有以下几个方面的优越性:•对未处理样本耐受性好,不需要预纯化 (如:色谱层析);•分辨率非常高;• 2D 可以有效的组分收集器;•蛋白在凝胶介质中受到保护;•在蛋白质组学技术中应用范围最广(front-end );•与其他技术相比,在一次试验中可检测到的蛋白点更多;•与后续分析技术兼容性好 (如. MDLC) [2]。

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42
2、SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳的分类
3、SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳的影响因素
① 溶液中SDS单体的浓度
② 二硫键是否完全还原 ③ 缓冲系统的选择
④ 凝胶浓度的选择
43
凝胶电泳的操作要点
1.凝胶制备 2.电极缓冲液 3.样品处理及加样 4.电泳 5.染色与固定 6.脱色 7.分析
44
第四节 双向电泳
其中R代表羧基或第三氨基。分子一端的双键可以在聚合过程中共价键合 镶嵌到聚丙烯酰胺介质中。所以它是固相的,即使是在电场中也不会漂移 。分子另一端的R基团为弱酸或弱碱性的缓冲基团,利用缓冲体系滴定终 点附近一段pH范围就可形成近似线性的分布在pH3~10范围的缓冲体系。 所以固相pH梯度与载体两性电解质pH梯度的区别在于前者的分子不是 两性分子,在凝胶聚合时候便形成pH梯度,不随环境电场条件的改变而改 变,后者是两性分子,在电场中迁移到自己的等电点后才形成pH梯度。
28
一、基本原理
1、蛋白质的等电点:取决于其氨基酸的组成。
组成每一种蛋白质或多肽的氨基酸的数目和比例是 不同的,故蛋白质的等电点范围很宽,这使得可以利用 它来分离和分析蛋白质。
29
2、聚焦效应
3、等电聚焦的分辨率
30
二、载体两性电解质pH梯度等电聚焦电泳
1、载体两性电解质应具备的条件
① 在等电点处有足够的缓冲能力,以便能控制pH梯度,而 不致被样品的缓冲能力而改变pH梯度。 ② 在等电点处有足够高的电导,以便使一定的电流通过, 具备不同pH的载体有相同的电导系数,是整个体系中的 电导均匀。 ③ 分子质量小,便于与被分离的高分子物质分离。 ④ 化学组成不同于被分离物质,不干扰测定。 ⑤ 应不与分离物质反应或使之变性。
7
从上式看出,带电颗粒的泳动速度同电场强度E和分子本身所 带的净电荷量Q成正比,与颗粒半径r和介质黏度η成反比。 蛋白质是一种两性电解质。其泳动速度取决于蛋白质 分子所带电荷的性质、数量以及颗粒的大小和形状。
8
9
10
二、影响电泳速度的因素
1、电场强度;2、缓冲溶液的pH;3、缓冲溶液的离子强度;4、 电渗;5、焦耳热
36
3、固相pH梯度等电聚焦原理
蛋白质分子按照自己的pI位臵在固相pH梯度中迁移, 知道达到自己的等电点,停止迁移。
4、固相pH梯度的优点和注意事项
固相pH梯度可窄至pH0.1的范围,因此分辨率极高,可 达0.001pH;pH梯度稳定,不漂移;灵活性大,可随意选 择pH梯度和斜率;重复性好;加样容量大;样品中盐的干 扰小;对碱性蛋白质也能很好的分离,无边缘效应,故可 用很窄的胶条(如5mm宽)聚焦,特别适合于双向电泳的 第一相,但固相 pH梯度灌胶技术复杂,只能使用聚丙烯 酰胺凝胶,电泳时候需要高电压,电泳时间长,窄范围pH 测定困难,只能计算。 注意事项:温度:20-30℃ ;电压:梯度上升。
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利用蛋白质分子或其他两性分子等电点的不同,
在一个稳定的、连续的、线性的(或非线性)pH梯度 中进行蛋白质的分离和分析。分析对象只限于蛋白质 和其他两性分子。 根据建立pH梯度原理不同,可分为载体两性电解
质pH梯度(carrier ampholyte pH gradient)和固
相pH梯度(immobilized pH gradient, IPG)。
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1809年俄国物理学家Peйce首次发现电泳现 象。 *1909年Michaelis首次将胶体离子在电场中 的移动称为电泳。 他用不同pH的溶液在U形管中测定了转化酶 和过氧化氢酶的电泳移动和等电点。
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*1937年瑞典乌普萨拉 (Uppsala)大学的Tiselius对电泳仪器作了 改进,创造了Tiselius电泳仪,建立了研究蛋白质的移动界面电泳方 法,并首次证明了血清是由白蛋白及 α、β、γ球蛋白组成的,由于 Tiselius 在电泳技术方面作出的开拓性贡献而获得了 1948 年的诺贝 5 尔化学奖
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5、等电聚焦中应注意的事项
三、固相pH梯度等电聚焦电泳技术
固相pH梯度等电聚焦是80年代建立起来的一种等电 聚焦技术。固相pH梯度等电聚焦比传统等电聚焦具有更 高的分辨率,更大的上样量,其分辨率可达到0.001pH, 是目前分辨率最高的电泳方法之一。
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1、固相pH梯度的介质
其所用的介质是一些具有弱酸或弱碱性质的丙烯酰胺 衍生物,它们与丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺有相似的聚合 行为。
70年代以来,电泳技术围绕制胶、电泳、染 胶三大环节,不断改进,以实现下列目标: 1、提高分辨率及灵敏度。 2、简化操作,缩短电泳时间。 3、扩大应用范围。 各类电泳技术已广泛应用于生命科学各个领 域。
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第一节 蛋白质电泳的基本原理
一、电泳的基本原理
1 、电泳是在电场作用下产生的物质运动,不同 的物质在一定的电场强度下,由于所带电荷不 同,因此受到的引力不同,向相反电极泳动速 度不同进而达到分离目的,称为电泳 (electrophoresis)。
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③淀粉凝胶电泳:多用于同工酶分析,凝胶铺厚些,可一层一 层剥层分析(一板多测)。天然淀粉经加工处理即可使用, 但孔径度可调性差,并且由于其批号之间的质量相差很大, 很难得到重复的电泳结果,加之电泳时间长,操作麻烦, 分辨率低,实验室中已很少使用。 ④琼脂糖凝胶电泳:一般用于核酸的分离分析。琼脂糖凝胶孔 径度较大,对大部分蛋白质只有很小的分子筛效应。 ⑤聚丙烯酰胺凝胶电泳:可用于核酸和蛋白质的分离、纯化及 检测。其分辨率较高。 聚丙烯酰胺和琼脂糖是目前实验室最常用的支持介质。
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3、载体两性电解质分离原理
等电聚焦样品可放于任何位臵。
4、载体两性电解质的缺点
① ② ③ ④ ① ② ③ ④ ⑤ 载体两性电解质合成过程复杂,影响蛋白质点的位臵,从而影响 了重复性; 负极漂移现象,使pH梯度不稳定; 负极漂移现象使碱性蛋白质无法聚焦; 凝胶灌制重复性差,凝胶机械稳定性差,影响重复性。 pH梯度的选择; 添加中性载体两性电解质; 电流降到最小切恒定时尽快结束IEF; pH梯度测定:电泳结束后,用微电机检测凝胶表面pH; 蛋白质在pI处形成沉淀。添加表面活性剂。
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浓缩效应
连续电泳 不连续电泳
凝胶层 缓冲液离子成分 pH 电位梯度
浓缩效应 电荷效应 分子筛效应
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2、影响凝胶聚合的因素
① 形成凝胶试剂的纯度 ② 凝胶浓度 ③ 温度和氧气的影响:23-25℃
3、聚丙烯酰胺凝胶电泳的优点
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二、SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳
1、基本原理 ① 聚丙烯酰胺凝胶系统中加入十二烷基硫酸钠(sodium dodecylsulphate)SDS,蛋白电泳迁移率取决于其分子量, 而与形状及所带电荷无关。 ② 加入SDS和巯基乙醇后,巯基乙醇使蛋白的二硫键还原, SDS使氢键、疏水键打开,并结合到P分子上,形成蛋白SDS,带上相同密度负电荷,形状为长椭圆形,短轴一定, 长轴长度正比于蛋白分子量。 ③ 分离测定: ④ 测分子量(与标准蛋白比较) ⑤ 鉴定样品纯度(条带数目) ⑥ 测定样品蛋白含量:扫描定量(比色)
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2、固相pH梯度的建立
固相pH梯度等电聚焦技术的突破要归功于Immobilines试剂 (Amersham Pharmacia Biotech, APB)的基础上开发的固相pH梯度(IPG) 技术。Immobilines(固相试剂)是一系列性质稳定的具有弱酸弱碱性质 的丙烯酰胺衍生物,与丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺有类的聚合行为。每个 分子都有一个单一的酸性或碱性缓冲基团与丙烯酰胺单连,其结构式为:
PAGE应用广泛,可用于蛋白质、酶、核酸等生物 分子的分离、定性、定量及少量的制备,还可测 定分子量、等电点等。
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1、丙烯酰胺凝胶有以下优点:
①几乎无电渗作用。
②化学性能稳定,与被分离物不起化学反应。对pH和温度 变化较稳定。 •在一定浓度范围内凝胶无色透明,有弹性,机械性能好, 易观察。
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第二节 蛋白质等电聚焦电泳
1966年,瑞典科学家Rible和Vesterberg建立。 等电聚焦:isoelectric focusing,IEF。 1.电泳系统中加进两性电解质载体,当通直流电时,两性电 解质载体即形成一个由阳极到阴极连续增高的pH梯度。蛋 白进入时,不同的蛋白移动到与其等电点相当的pH位臵上, 从而使不同等电点的蛋白得以分离。 2.优点:分辨率高,区带清晰、窄,加样部位自由,重现性 好,可测定蛋白或多肽的等电点。 3.缺点:需无盐溶液,不适用于在等电点不溶解或发生变性 的蛋白。
一、基本原理
IEF-SDS-PAGE
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双向电泳的分类
非变性2D-PAGE:两向均在非变性条件下进行,这样分离的蛋白质点的 等电点和表观分子量同生理条件下获得的这些蛋白的值是一样的; 非变性 /SDS-2D-PAGE :第一向采用非变性 IEF,之后在 2%SDS溶液中平 衡;第二向也在SDS存在的条件下进行。适于分析非共价键连接的蛋白 -蛋白间的相互作用。 非变性 /还原/SDS-2D-PAGE :非变性条件下 IEF聚焦,之后用 8M尿素+ 5%β-ME+2%SDS进行平衡,再进行第二向SDS-PAG电泳。此时分离的蛋 白质点可进行点的切取、蛋白酶消化、 MALDI-TOF-MS分析鉴定,提供 关于断裂二硫键连接的多肽的信息。 变性 2D-PAGE :样品先用 2%SDS + 5%β-ME + 95℃变性 5min, IEF 在 8M 尿 素+1%NP-40条件下进行,之后胶条用2%SDS+5%β-ME平衡,然后进行 SDS-PAGE。该技术适于DNA序列和多肽结构的分析,或分析被碳氢键连 接和其它翻译后修饰所引起的多肽结构微异质性,但此方式显示的大 于100Kd的蛋白质点少于第三种方式
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另外根据支持介质形状不同,区带电泳可分 为:薄层电泳、板电泳、柱电泳。������ 根据用途不同,可分为:分析电泳、制备电泳、定 量电泳、免疫电泳。 按pH的连续性不同,可分为:连续pH电泳,不连 续pH电泳。
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