(完整word版)红掌组培
红掌组织培养与快速繁殖
[1] 曹孜义,等. 实用植物组织培养技术教程[M]. 兰州: 甘肃科学技术出版社, 1996. 46-48. [2] 李志芳,等. 花烛的组织培养与快速繁殖[J]. 植物生理学通讯, 1997,33(3): 197.
26
13
0.4d
22
5
5
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注：1）标有不同英文字母者为差异达 0.05 显著水平。以下各表同。
生长素和细胞分裂素对红掌幼叶组织的诱导和分化的影响也比较明显。从表 2、表 3 可 以看出，生长素 IAA、NAA、2,4-D 及细胞分裂素 6-BA、KT 和 2-ip 对愈伤组织诱导和芽分 化的影响都有明显差异。
2002,31(3):66-68. Ｓｕｂｔｒｏｐｉｃａｌ Ｐｌａｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ
红 掌 组 织 培 养 与 快 速 繁 殖
蔡维藩
（汕头经济特区龙达建设总公司，广东 汕头 515041）
摘 要：红掌叶片在新代培养基上的分化能力与品种和叶片部位有关。组织培养试验表明，最 佳诱导培养基为改良 Nitsch (NH4NO3 200mg/L) + 6-BA 1.0mg/L + 2,4-D 0.1mg/L；芽增殖培养基 Nitsch (NH4NO3 720mg/L) + 6-BA 0.5mg/L；生根培养基为 Nitsch (NH4NO3 720mg/L)。 关键词：红掌；组织培养；快速繁殖
32.1a
6-BA 0.5
20
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KT 0.5
18
9.1b
2-ip 0.5
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2.6b
2.4 生根与移栽 在新代培养中和愈伤组织次代培养中，有时产生芽体形成小苗，同时基部形成根。在光
红掌组织培养和快速繁殖技术
红掌组织培养和快速繁殖技术周静周力行周晓静孙欣沈碧君蒋亚华（宿迁学院，江苏宿迁223800）摘要为探索红掌组织培养和快速繁殖技术，本文分析了影响红掌组织培养的各种因素，从选择基本培养基、配比和激素种类等方面开展研究，构建红掌组织培养和快速繁殖技术体系，为红掌组织培养研究和快速繁殖新技术的发展提供参考。
关键词红掌；组织培养；快速繁殖中图分类号S682.33；S436.8文献标识码A文章编号1007-7731（2024）01-0036-05红掌（Anthurium andraeanum Lind.）是花烛属天南星科的一种多年生常青性草本植物，也称安祖花、花烛。
因其色彩艳丽、花期持久和花型独特，深受人们喜爱。
在红掌组织培养中，外植体的选择和处理是其组织培养的重要环节。
目前组织培养研究选用的外植体以叶片、叶柄为主[1]。
本研究选取红掌嫩叶作为试验材料，通过试验对比，探讨在不同生长因素影响下红掌生长状况，为红掌组织培养研究提供参考。
1材料与方法1.1供试材料选择选取株型大、花色鲜艳的红掌盆栽品种特伦萨作为供试品种。
切取红掌基部新生幼嫩叶片，用自来水冲去杂质、洗净表面，再用流水冲洗30min，沥干后移至超净工作台上。
1.2外植体灭菌在无菌环境下，将嫩叶、叶柄和茎段分成9组并编号，均用75%乙醇浸泡30s，再用无菌水冲洗3次。
然后将1—3组用0.5%NaCIO溶液分别浸泡6、8和10min；4—6组用1.0%NaCIO溶液分别浸泡6、8和10min；7—9组用2.0%NaCIO溶液分别浸泡6、8和10min。
待各组时间到后，用无菌水冲洗5次，分别放入消毒瓶中备用[2]。
1.3培养基配制培养基分为诱导愈伤组织的培养基、增殖愈伤组织的培养基、诱导丛生芽的培养基和丛生芽生根的培养基。
在每个培养基配制好后，进行湿热灭菌，灭菌条件如下：蒸气压0.105MPa，温度121°C，灭菌时间15min。
充分杀菌，减少组织培养时的污染[3]。
红掌组培快繁技术研究概况
2346.7
2418.0
2506.9
2016.0
2088.8
1870.4
2598.4
2340.8
2497.6
2095.6
嫩的外植体较容易诱导出愈伤组织，且嫩叶的叶柄比 叶片更容易诱导出愈伤组织，但时间较长，约 60d。 1.3 激素条件对红掌腋芽初代培养的影响 激素条 件不仅影响着红掌腋芽分化能力，同时还决定着不定 芽分化的途径。在适宜的培养基条件下，红掌腋芽能通 过直接器官发生途径直接产生不定芽，试验证明，当培 养基中添加细胞分裂素 6-BA 1.0mg/L、生长素 IBA 0.1mg/L，此种培养基能很好地诱导腋芽分化。 2 红掌组培苗继代培养与壮苗技术
遗传稳定性，以红掌腋芽为外植体就属于此种类型。 1.1 红掌腋芽初代培养外植体处理方法的选择 在 红掌的再生体系建立的过程中，大多数外植体均选用 叶片、叶柄，因其易灭菌，再生体系易建立，虽然建立周 期普遍比较长，均需 2~3 月。而红掌腋芽因含有内生 菌难以彻底灭菌，采用常规升汞灭菌难以达到理想效 果，这主要是由于红掌为热带植物，茎段、腋芽部位含 有大量内生菌，升汞灭菌结合酸化的培养基可有效解 决以上问题。 1.2 红掌腋芽初代培养外植体类型的选择 外植体 是影响组织培养再生体系建立的重要因素之一，红掌 组织培养采用的外植体种类较多，主要有叶片、叶柄、 茎尖、侧芽、根、苞片、花序轴等，其中叶片和叶柄是普 遍的外植体类型。何贵整等人研究结果认为红掌较幼
2016 年第 8 期
现代园艺
试验研究
红掌组培快繁技术研究概况
朱奕豪 （聊城大学，山东聊城
252000）
：红掌作为一种室内观花观叶皆宜的花卉，颇受消费者青睐，其供不应求的问题愈发明显，利用组织培养技术快速繁殖红掌 苗已成为红掌生产应用中的重要课题。本文围绕红掌的腋芽培养、继代培养、生根条件 3 个方面作了详细叙述，明确了红掌组培快 繁技术研究的相关内容，发展前景。
红掌的组织培养技术
红掌的组织培养技术作者：宋朝辉胡亦民来源：《现代园艺》2010年第11期红掌(Anthurium andraeanum)又名花烛、安组花,是当今世界著名的切花和盆栽花卉之一。
但红掌的传统繁殖方式为分株繁殖,繁殖系数低、速度慢,不能满足日益增长的市场需求。
组织培养是解决红掌快繁的有效途径,现将该技术介绍如下:1 外植体的选择与处理目前,用于红掌组培的外植体材料很多,顶芽、茎段、叶片、叶柄等均可获得再生植株,其中叶片尤其是带主脉的嫩叶是较理想的外植体。
外植体要选自生长旺盛、无病虫害的健壮植株,使用前需进行消毒处理,常规消毒方法是:用清水冲洗掉外植体表面灰尘,用沾有洗洁精的软毛刷轻轻刷洗材料表面,再用自来水冲洗15分钟。
用75%乙醇表面消毒30秒,转入1g/L的升汞溶液中处理8~10分钟,用灭菌水冲洗5~6次,再用锋利手术刀迅速把叶片切成0.5cm×1.0cm小块,叶柄切成1~2cm小段,接入已准备好的培养基中。
对于红掌叶片来说,这种消毒方法较好,污染率低于30%。
2 基本培养基的选择组织培养是通过外源营养成分和激素等条件来调控外植体细胞的生长状态,从而诱导萌发,产生较多有效的丛生苗,其目的是否实现,取决于培养基成分和添加激素的种类和浓度。
红掌组织培养所采用的基本培养基包括MS、1/2MS、N6、B5、KC和Nitsch等,其中1/2MS培养基对红掌愈伤组织诱导效果最好。
不同添加物对红掌愈伤组织诱导效率也有影响,与葡萄糖相比,蔗糖和食用白砂糖更有利于愈伤组织的诱导。
红掌的组织培养一般采用蔗糖作为适宜碳源。
培养基中每L加入30g蔗糖,5g琼脂,121℃高温灭菌25分钟。
3 外源激素的选择生长调节物质是培养基中不可缺少的关键物质,其用量很少,但对外植体愈伤组织的诱导和器官分化起着重要的调节作用,其中以生长素类和细胞分裂素最为常用。
目前常使用的外源主要激素是生长素类(如IAA、2,4-D和NAA)和细胞分裂素类(如BA、ZT、KT)。
切花红掌的组培快繁技术
切花红掌的组培快繁技术红掌是一种受欢迎的观赏植物，通常生长在室内，在办公室或家中可以为人们提供美丽的视觉效果。
然而，红掌生长缓慢，繁殖也不易。
组培快繁技术是一种有效的繁殖方法，利用这种技术可以更快速地繁殖出更多的红掌。
组培快繁技术的介绍组培快繁技术是一种基于植物组织培养的技术，通过分离幼苗的组织和对其进行营养和激素处理，使其在培养皿中快速生长并形成新植株，从而实现繁殖的目的。
组培快繁技术的优点是繁殖速度快、无显性突变和杂交引入、容易控制和精细调控生长环境、繁殖能力强等。
而且，该技术可以实现小量、大批量的繁殖，节约时间和空间。
快繁操作步骤1. 材料准备对于组培快繁技术，我们需要准备以下材料：•瓶子：透明的玻璃或塑料瓶，根据需要选择不同大小的瓶子；•导管：负责植株营养物质和激素的输送；•培养基：根据不同的植物需求选择不同的培养基；•搅拌器/遥控器：用于对瓶子中的培养基进行搅拌和控制营养液的温度和湿度；•去离子水/蒸馏水：用于制作培养基。
2. 培养基制备制备培养基时，应注意使用无菌器皿、器具和材料，并按照给定的配方精确配制。
培养基的基本配方包括植物素、蔗糖、氨基酸和矿物质元素等。
3. 组培快繁切花红掌组培快繁的过程分为三个阶段：3.1 幼苗材料准备从健康的红掌植株上选择不同长度的嫩枝茎段，剪去叶片和花序，将枝秆洗净消毒后，切成5-8mm左右的小段。
3.2 组培培养将幼苗茎段直接埋入培养基中，或者使用无菌的操作器械将茎段分离后置于培养基上。
将组培材料放置在无菌培养箱中，开启光照器照明，利用搅拌器摇动瓶子或使用遥控器来控制瓶子内营养液的温度和湿度。
3.3 移栽在培养基不断喷涂匀称分布的营养物质和激素的过程中，幼苗逐渐生长形成根系开始独立生长。
在幼苗长到一定程度后，从培养瓶中取出幼苗进行移栽，放置在适宜的土壤中。
注意事项组培快繁需要在无菌操作下进行，所以应注意以下几点：•操作工具、器皿和培养基都需要严格无菌处理，确保繁殖过程不受到细菌和病毒的污染；•操作过程应尽可能地简单流畅、迅速进行，避免长时间暴露在空气中，以免侵袭微生物；•繁殖过程需要放置在适宜的光强和温度下进行。
红掌组培技术
红掌组培快繁技术的方法技术报告红掌组培快繁技术的方法红掌为当前国际流行的名贵花卉,受到人们的广泛喜爱,然而其实生苗需4年以上才能开花,分株或组织培养苗只需2-3年就会开花,因此本文着重介绍了红掌组培快繁技术,以大大缩短其第一次开花前的培育时间,以带来更多地经济效益,以满足市场的需求。
一红掌简介1 红掌的科属红掌属于植物界被子植物门、单子叶植物纲、天南星科,花烛属,多年生常绿宿根草本植物。
2 红掌的形态特征①、红掌的根为半肉质气生根,非常发达,有白色、红色两种；②、茎为气生短根茎,随着植株的生长,向上伸长,并长出短缩气生根,具有吸收功能。
品种不同茎的长短和生长量也不同,一般较长的作为切花用；较短的作为盆花用；③、叶着生于茎顶端叶鞘内,正常条件下生长的新叶比原叶高而大。
④、花着生于茎顶端叶鞘内,实生苗4年以上开花,分株或组培苗2-3年开花。
花于叶轮流长出,为佛焰苞,颜色有红、粉、白、绿、咖啡、复色等,成花周期为1.5-2.5个月。
3 红掌的生物习性红掌性喜高温多湿,常附生于树干、岩石或地表。
在温度方面,以19-22℃为最适温度,18-28℃生长良好,其根际温度15-20℃为宜。
在湿度方面,空气相对湿度为70-80％,苗期为85-90%。
在光强度方面,喜散射光,强度为7500-15000Lx为宜。
其次根际环境还要求基质透气保水,含水量保持在50-75%,pH 5.5-6.5,EC 0.5-1.5ms/cm。
总之要想培养高品质的红掌,必须合理的协调环境因子和水肥的供应关系[1]。
4红掌的盆花品种按生产用途可分为盆花和切花品种。
国内红掌栽培的品种主要来自于荷兰种苗公司,常见的盆花品种有红国王、红皇后、北京成功、莱妮、皇冠、马都拉、特伦萨、红胜利、粉爱、神秘的爱、真爱、爱的幻想、西部的爱、西部维他等。
5 红掌的繁殖方法红掌的繁殖主要以分株和组织培养为主。
分株可全年进行,以4-5月份和9-10月份为宜,其存在的问题是分株苗大小不齐,且容易发生退化。
红掌的养殖方法范本1份
红掌的养殖方法范本1份红掌的养殖方法 1一、栽培方法1.盆的规格盆栽红掌从小苗到大苗的不同生长阶段对盆的规格要求不同，小苗阶段一般已在育苗公司完成，我们所购买的红掌苗均是中苗(15厘米左右)以上，所以，在上盆种植时，盆的选择可一次性使用160×150 mm 红色直边塑胶盆种植。
2.栽培基质栽培基质必须具有保水保肥能力强、通透性好、不积水、不含有毒物质并能固定植株等性能。
种植前，基质还必须经彻底的消毒处理，以杀灭病虫害，保持其正常生长。
3.上盆种植红掌是喜阴植物，种植时需要有75%遮光能力的遮光网，以防止过强的光照。
采用双株种植优于单株种植，上盆种植时很重要的一点是使植株心部的生长点露出基质的水平面，同时应尽量避免植株沾染基质。
上盆时先在盆下部填充4至5厘米颗粒状的碎石等物，作排水层，然后加培养土2至3厘米，同时将植株正放于盆中央，使根系充分展开，最后填充培养土至盆面2至3厘米即可，但应露出植株中心的生长点及基部的小叶。
种植后必须及时喷施菌剂，以防止疫霉病和腐霉病的'发生。
二、水分管理红掌属于对盐分较敏感的品种，因此，应尽量把基质PH值控制在5.2至6.2 之间，而最适红掌生长的PH值是5.7。
适合红掌生长的EC值为1.2 ms / cm 。
因为EC值高会导致花变小、花茎变短，从而降低观赏价值。
泉水适宜栽植红掌，但价格贵;天然雨水是红掌栽培中最好的水源。
盆栽红掌在不同生长发育阶段对水分要求不同。
幼苗期由于植株根系弱小，在基质中分布较浅，不耐干旱，栽后应每天喷2至3次水，要经常保持基质湿润，促使其早发多抽新根，并注意盆面基质的干湿度;中、大苗期植株生长快，需水量较多，水分供应必须充足;开花期应适当减少浇水，增施磷、钾肥，以促开花。
三，养护要点冬天全日晒,湿度60左右就可以了.室内气温25-29.可以开花.分株繁殖.正常上肥。
夏天不可阳光直射,放在散射光充足的地方.生长良好.多喷水.正常上肥.可以开花(以液态肥较好).分株.这种花没有光不开花.光在强会使叶片晒黄晒焦.温度夏天不可高于32度.冬季不可低于16度,湿度以60-80较好(g 最好的地方是开盖的热带鱼缸顶部正常挥发的湿度).四，水肥管理要恰当红掌属于对盐分较敏感的花卉，水的含盐量越少越好，最好用自来水。
红掌组织培养技术
红掌的组织培养摘要：红掌常采用异花授粉，授粉方式主要借助于昆虫，种子繁殖进入开花期时间较长,如果播种繁殖, 要经人工授粉才能获得种子, 耗费人力。
如果采用分株繁殖则系数较低很难满足规模化生产所需的种苗。
目前, 国内对红掌需求量大, 其种苗供不应求,而组织培养技术能够快速、大量生产整齐一致的优质种苗。
用组织培养快速繁殖红掌需要正确的选择具有高度分化能力的外植体，能够很快诱导外植体产生愈伤组织的培养基，适合的培养条件让生愈伤组织快速增殖和分化。
关键词：红掌组织培养红掌又名安祖花、火鹤花等，属天南星科花烛属，原产于南美洲的热带雨林地区，红掌属于天南星科花烛属，多年生常绿草本植物，可常年开花。
其佛焰花苞硕大肥厚具蜡质色泽, 有红、粉、白、绿、双色等。
其色泽鲜艳, 肉穗花序镶金嵌玉的风姿，造形奇特, 令人神往。
它那热烈、热心、热情、进取向上的意境使人油然欣喜。
是目前应用范围广、经济价值高、全球发展快、需求量较大的高档热带切花和盆栽花卉。
1 外植体的取材与方法1.1外植体:红掌组织培养可用叶片、叶柄、茎尖或嫩茎等作为外植体诱导愈伤组织,也可以用茎尖直接诱导芽体。
同一成熟度的外植体，不同取材部位的愈伤组织诱导率各不相同，叶柄的诱导率最高，茎段的次之，而叶片的诱导率最低。
叶柄对愈伤组织的诱导效果最好，诱导率最高，诱导所需的时间也最短。
所以生产时常用叶柄作为外植体。
1.2在晴天，取红掌幼苗刚展开的叶片，用自来水冲洗30分钟。
接着在无菌条件下，用体积分数为75%的乙醇消毒30s，然后浸泡在质量浓度为1g/L 的升汞溶液中灭菌8～10min，最后用无菌水冲洗3～5 次。
对红掌叶片来说，这种消毒方法较好，污染率最低。
2培养基的制备与灭菌：2.1培养基的制备：适合红掌愈伤组织诱导的基本培养基为MS 培养基，叶柄培养以N6、KC 和1/2MS 培养基为佳，叶片培养则以P、N6 和1/2MS 为好，适宜的激素组合及浓度配比为BA2.0mg/L+2，4-D 0.2mg/L；当激素配比为BA 2.0mg/L+NAA0.25mg/L 时能很好的诱导不定芽的发生。
红掌组培方案二
红掌组培方案2食品与生物技术系何海慧 1102040220指导教师：黄峰一、植物简介：红掌（Anthurium andraeanum）属天南星科，花烛属多年生常绿草本植物，别名花烛、红苞芋、幸运花等，原产中美洲，喜温暖、湿润、阴暗环境，特别适合室内观赏，兼作鲜切花，为当前国际流行的名贵花卉。
在全球热带花卉贸易中，红掌销量居第二位，欧洲、美国、日本是红掌主要消费市场，栽培自动化程度很高，栽培面积不断扩大，我国红掌商业化生产，尤其是工厂化组培快繁，还处于起步阶段。
大理州经济作物科学研究所采用组培快繁技术对红掌进行快繁研究已取得初步成效，为进一步推动我国发展新兴的红掌产业及消费市场奠定理论依据。
二、组织培养（一）培养基的制备①初代培养MS+6-BA 1.0 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L+琼脂0.6%+糖3%，PH值为5.8②继代培养MS+6-BA 2.0mg/L +2,4-D 0.2mg/ L+糖30g/L +琼脂6.8g/L，PH值为5.8.③壮苗生根培养1/2MS+IBA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+糖30g/L +琼脂6.8g/L，PH值为5.8.④配制量6L⑤严格按照培养基制作流程的操作进行⑥将煮制好的培养液,然后分装到培养瓶中。
培养瓶中的分装量为1～1.5公分⑦将分装好的培养基和无菌水放入高压蒸汽灭菌锅中进行灭菌（二）实验前的准备一、1.外植体的选择：红掌的茎尖、茎段、幼嫩叶片或叶柄2.外植体的处理：将材料带回洗涤室进行处理。
①将取回的茎段进行修剪，剪去多余的叶片②用软毛刷顺着材料的逆生长方向刷洗茎段表面的大颗粒物质③将刷洗完的茎段剪成3～4㎝的小段④用洗衣粉溶液将茎段洗涤⑤再用清水缓慢冲洗⑥用吸水纸将材料表面的水分吸干后装入无菌瓶中，将材料拿入接种室中的超净工作台上进行一下步骤操作⑦用75%的酒精浸泡漂洗⑧用0.1%的升汞溶液浸泡10min⑨用无菌水冲洗三次，沥干后放入无菌瓶中备用接种（三）材料的接种①初代培养：取出灭菌好的材料，切除伤口部分，将切割好的材料接种到初代培养基中，并放到培养室进行培养，直至材料发育成完整植株②将初代培养成功的材料进行扩繁：待初代培养成功发育成完整植株时进行扩繁。
红掌养殖技术培训讲课文档
长点的生长，太浅生长过程中，植株容易倒伏。基质不能压，否则容
易破坏基质的透气性，基质会变实，影响根系的生长从而影响植株的
生长。
•
在上盆定植的过程中一定要注意种植的深浅度，其恰当的深浅度
为不要掩埋了生长点为准。并且上盆定植的时候基质不要装得太满，
装得太满会影响到以后的浇水（采用从叶片上面浇水施肥的方式时，
•
磷酸二氢钾（KH2PO4）: K：28.2%; P:22.3%
•
硫酸钾（K2SO4）: K:44.8%; S:17.0%
•
硫酸镁（MgSO4）: Mg:9.9%;S:13%
•
硫酸锰（MnSO4）: Mn: 32.5%
•
硼酸纳（Na2B4O7）: B:11.3%
•
硫酸锌（ZnSO4）: Zn:22.7%
株淋洗，特别是对于7cm和9cm的小苗。因为从上淋浇之后，红掌的
叶面会有很多的肥料残余物，如果不及时把这些肥料残余淋洗掉则会
对叶片造成肥料灼伤。
• 其它注意事项
•
对于大盆径的红掌盆花，如果采用挨盆逐个浇肥则要注意浇肥的
时候水的压力不能太大，否则容易把盆里面的基质冲走。浇肥的时候
还应该注意一定要把每个盆都浇透。
64
49
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25
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4phase
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16
5phase
10.5
7.5
第7页，共29页。
上盆过程中的卫生消毒
• 到苗
•
通常安祖公司的红掌幼苗在运输过程中包装箱分为外箱和内箱。
当幼苗到货之后不要把外箱带进温室，因为在运输过程中外箱可能已
切花红掌组培快繁技术
切花红掌组培快繁技术红掌，是天南星科花烛属多年生常绿植物，叶革质光亮，单花顶生，花期长达1个半月左右。
利用常规播种、分株法繁殖切花红掌，繁殖率极低，播种繁殖所需时间长，且易产生变异。
利用组织培养快速繁殖切花红掌，可满足市场的大量需求。
材料与方法材料来源为河南濮阳世锦公司自行选育的优质红掌切花品种。
外植体灭菌处理取切花红掌的幼嫩叶片及叶柄作为供试材料，首先在流水下冲洗1小时，同时用毛刷轻轻刷洗，在消毒前先将叶片切成1.5cm×1.5cm左右的小片，将叶柄切成1.5cm左右长的小段，将其放入灭过菌的广口瓶中，用75%酒精浸泡30秒后，再用0.1%HgCl2浸泡消毒8分钟，用无菌水冲洗5次，在无菌纸上把叶片切成1cm×1cm 左右的小片，叶柄切成1cm左右的小段，接种在灭过菌的培养基上，所有无菌操作必须在超净工作台内进行。
培养基及培养条件基本培养基为MS加蔗糖30g/L、琼脂6g/L，pH值5.8。
在不同培养阶段添加不同种类和浓度的植物生长调节剂，培养温度为25℃±1℃，光照强度2000～3000lux，每日光照14小时。
结果与分析不同外植体脱分化程度比较将2种不同外植体分别接种于MS+6-BA1.5+NAA0.7的同一培养基上，培养3周后，叶片外植体首先明显膨大，长出愈伤组织块，5周后，叶片外植体都长出了愈伤组织块(见表1)。
观察发现2种不同外植体都能被诱导出愈伤组织，只是叶片较容易被脱分化。
6-BA对愈伤组织诱导的影响将消过毒的叶片接种于加有不同浓度6-BA的MS+6-BA+NAA0.7的培养基上进行培养，观察不同浓度6-BA对叶片外植体愈伤组织诱导的影响(见表2)。
由表2可看出，不同浓度的6-BA对切花红掌叶片的诱导有明显不同。
在无6-BA的培养基上，不能诱导出愈伤组织。
当6-BA浓度低于1.5mg/L时，随着6-BA浓度的增大，愈伤组织诱导率及增殖率都随之增大；而较高浓度的6-BA又抑制了愈伤组织的诱导及增殖。
红掌的组织培养技术
程 中 不 停 震 荡 ，之 后 用 无 菌 水 冲 洗 ５ 次 ，冲 洗 时 轻 轻摇动。 １．３ 愈 伤 组 织 培 养 基 配 置
红掌愈伤组织诱导的最佳培养基为 ＭＳ培养 基，初选的激素组合及浓度配比 为：①ＢＡ１．０ ｍｇ ·Ｌ－１＋２，４Ｄ０．１ｍｇ·Ｌ－１，②ＢＡ１．５ ｍｇ·Ｌ－１ ＋２，４Ｄ０．１５ｍｇ·Ｌ－１，③ＢＡ２．０ ｍｇ·Ｌ－１＋２， ４Ｄ０．２ｍｇ·Ｌ－１；培养基配 置 时 １Ｌ 激 素 组 合 中 加 入 糖 ３０ｇ、琼 脂 ５ｇ。
· ５８ ·
陕 西 林 业 科 技
４０ｄ后叶片 边 缘 愈 伤 组 织 增 大。 继 续 培 养 中，将 部分干死或污染 的 叶 片 淘 汰；等 到 叶 片 边 缘 愈 伤 增大 到 原 来 的 ２／３ 时，将 愈 伤 取 出 放 到 芽 诱 导 培 养基中。
３ 不定芽的诱导及增殖培养
３．１ 不 定 芽 的 诱 导 将培养２个 月 的 叶 片 愈 伤 组 织，分 别 转 至 ４
关 键 词 ：红 掌 ；组 织 培 养 ；叶
中 图 分 类 号 ：Ｓ６８２．２１９
文 献 标 识 码 ：Ａ
文 章 编 号 ：１００１２１１７（２０１９）０５００５７０２
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红掌新品种组培快繁技术研究
红掌新品种组培快繁技术研究摘要以红掌新品种阿拉巴马的幼叶为外植体，进行植株再生研究，以建立红掌叶片愈伤组织诱导和高效组织培养快繁体系。
结果表明：1/2 MS+6-BA 1.0 mg /L+NAA 0.1 mg /L红掌诱导愈伤组织的效果最佳，愈伤组织诱导率达50.0%；N6+6-BA 2 mg /L+2，4-D 0.5 mg/L，产生丛生芽的效果最好，愈伤分化率高达90%；适合诱导生根的培养基为1/2 MS+NAA 0.5 mg/L。
关键词红掌；组织培养；愈伤组织；体系建立红掌（Anthurium andraeanum Lind.）是天南星科花烛属多年生常绿草本植物[1-2]。
近年来，插花艺术蓬勃发展，红掌因其花色鲜艳、花期持久而成为国际流行的高档切花材料及盆栽品种[3-4]。
其市场销路广泛，需求量日益增加，但是红掌属于肉质根系，分蘖少，常规的分株繁殖难以满足规模化种苗生产的需求[5]。
因此，红掌高效组培快繁技术的研究与开发对满足国内外花卉市场的需求及出口具有重要意义[6]。
该试验以红掌新品种阿拉巴马幼叶为接种材料，研究了红掌植株再生的途径。
1 材料与方法1.1 试验材料供试红掌品种为国外引进优选的阿拉巴马，选择温室盆栽红掌新抽出的长势旺、无病斑且完全伸展的幼叶为试验材料。
1.2 试验方法1.2.1 材料处理。
将外植体用自来水冲洗干净，然后在超净工作台下先用无菌水冲洗3～4次，再用75%酒精处理30 s后置于0.1%升汞溶液灭菌8～10 min （轻轻摇晃，使消毒液与外植体充分接触），最后再用无菌水冲洗4～5次，用无菌滤纸吸干，再将幼叶分别剪成带主脉的叶片小块（1 cm×1 cm），以备接种。
1.2.2 不同时期培养基条件。
基本培养基为改良MS、1/2 MS和N6培养基，根据不同培养时期要求调整激素浓度。
下述培养基pH值5.8，琼脂为4.8 g/L，于120 ℃、1.1 MPa下杀菌20 min。
39李国丽红掌组培快繁的研究.doc8
兰州交通大学化学与生物工程学院综合能力训练Ⅰ——文献综述题目:红掌的组培快繁技术研究进展作者：李国丽学号：201107239指导教师：谢放完成日期：2013-7-21红掌组培快繁技术的研究进展兰州交通大学化学与生物工程学院生物工程2011级摘要：本文介绍了红掌组培快繁方面的研究进展，对红掌外植体的来源、消毒、培养基成分及影响、外源激素的影响、炼苗移栽、生根壮苗等进行了综述，同时还指出了红掌组培快繁的研究意义、市场前景及种苗繁殖方面存在的问题。
关键词：红掌;组培快繁;培养基;激素1. 引言红掌是天南星科花烛属，原产地热带雨林，是典型的热带花卉。
因为它的花色艳、花形比较独特、瓶插寿命比较长、及周年开花的特性已成为一种代表时尚和潮流的鲜花，在国外被视为与洋兰一样的高级花材，并且是一种很有发展前景的室内装饰绿化植物，深受消费者的青睐，在全球热带花卉贸易中，红掌的销售量仅次于兰花，名列全球第二。
然而红掌的主要繁殖方式为分株繁殖。
当红掌植株基部长出吸芽，产生根系后就可以分株，每年可分3～4株，繁殖系数比较低，很难满足规模化生产所需的种苗，所以现在主要通过组织培养的方法进行红掌种苗的快速繁殖，这样可以在较短的时间内生产整齐一致的优质种苗，供应生产的需要。
所以采用组织培养快繁技术是大量、快速、整齐一致繁殖红掌种苗的一条有效途径。
而且组培快繁红掌也有明显的有点，比如可以节省育苗用地，节省繁殖材料，提高繁殖系数，还可以保持优良品种特性，提高质量和欣赏价值，也可以培育优良品种并进行基因改良等发面都有明显的优势，所以自1974年Pierik对红掌的组织培养获得成功以后，国内外学者对红掌组织培养进行了大量的研究，但绝大多数的研究报道只是仅限于某一个单一的品种或某一个单一器官的培养。
而在1986年Keller用MS.skoog培养基作叶插培养研究，1～2个月后形成了愈伤组织。
在1990年，Lightboarn用0.5mg/L的2,4-D对愈伤组织进行诱导，发现其诱导效果最好，然后又加大NH4NO3浓度发现可以使叶片愈伤组织的增殖速度加快。
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二、任务分析在红掌原产地热带雨林，红掌可用种子繁殖，但进入开花时间长。
分株繁殖是红掌以前繁殖的主要方式.红掌植株基部长出吸芽，产生根系后可分株,每年可分3～4株,繁殖系数较低，很难满足规模化生产所需的种苗.现在红掌种苗生产主要通过组织培养进行种苗的快速繁殖，也就是红掌的克隆技术。
这样可以在比较短的时间内生产整齐一致的优质种苗，供应生产的需要。
通过组织培养技术生产红掌种苗主要有再生体系的建立、增殖培养、壮苗生根、移栽和温室育苗等技术环节。
三、相关知识红掌（Anthurium andraeanum）植物界、被子植物门、单子叶植物纲、天南星科（Araceae)，花烛属（Anthurium Schott），多年生常绿草本植物,别名花烛、安祖花、火鹤花、红鹅掌、鹅掌红、红苞芋、幸运花等，原产中美洲，特别适合室内观赏,兼作鲜切花，为当前国际流行的名贵花卉。
在全球热带花卉贸易中，红掌销量居第二位，欧洲、美国、日本是红掌主要消费市场，栽培自动化程度很高，栽培面积不断扩大，我国红掌商业化生产，尤其是工厂化组培快繁，还处于起步阶段.（一)形态特征与生物学习性红掌为宿根草本，株高30~70cm，叶自短茎中抽生，革质，长心脏形，全绿,叶柄坚硬细长，长30～40厘米，宽约10厘米.花顶生，长约50厘米，佛焰苞心脏形，长10～20厘米，宽8～10厘米,表面波皱,佛焰苞具有明亮蜡质光泽，肉穗花序圆柱形,直立、长约6厘米，黄色,初看好像人造假花,花姿奇特美妍，切花寿命长达30天以上,为插花高级花材。
同类品种繁多,花色有红、桃红、朱红、白、红底绿纹、绿、橙等色，花期持久,全年均能开花。
喜空气湿度高而又排水通畅的环境，喜阴、喜温热.在白天温度不高于28℃，夜间不低于20℃的环境中可终年开花结果，高于35℃将产生日灼，低于14℃则生长受影响，低于0℃的持续低温将冻死植株。
适宜生长昼温为26~32℃,夜温为21～32℃。
光强以16000～20000Lx为宜，空气相对湿度（RH)以70%～80%为佳。
要求空气湿度达80%，土壤pH值为5.5，Ec值在1。
2为宜。
要求土壤疏松、肥沃，最好进行无土栽培。
(二）红掌的组织培养1。
取材和处理红掌组织培养主要有两条途径:一是利用芽增殖培养的方法，将自然条件下产生的小芽切下，经杀菌处理后接种在芽增殖培养基上，经过一段时间培养后许多不定芽便直接从接种的原始芽的基部产生;二是利用自然条件下生长的红掌植株的幼嫩叶片或叶柄作外植体,通过细胞脱分化和再分化，形成再生芽的途径.取红掌幼苗刚展开的叶片、叶柄和顶芽，放人一容器内,先用自来水冲洗，再用加0.02％餐洗净的自来水浸泡10min，浸泡过程中经常摇动容器，目的是为了比较彻底地清除材料表面的尘土和菌物.浸泡后，用自来水冲洗10min以上，冲洗后将其转入一干净的三角瓶。
以下操作在超净工作台完成。
往三角瓶中加入75％酒精，浸泡杀菌30～60s。
倒掉酒精，用无菌蒸馏水漂洗1次，将材料转入经高压消毒的三角瓶中，加入0。
1%升汞（HgCl2）液，浸泡杀菌8min，浸泡过程中经常摇动三角瓶。
倒掉升汞液，用无菌蒸馏水冲洗4～6次.将材料从三角瓶中取出，在灭过菌的滤纸上用解剖刀将顶芽的生长点连同2～3个叶原基切出，将幼嫩叶片和叶柄剪成小块或小段,叶片切成0。
5～1.0cm见方的小块，叶柄切成0。
3～0.5cm的小段，分别接种于芽增殖和愈伤组织诱导培养基。
2.接种与培养(1）配制芽增殖和愈伤组织诱导培养基芽增殖培养基为MS培养基的四种基本成分+6BA1～1。
5mg／L+NAA0。
5～l mg／L。
愈伤组织诱导培养基为1／2MS,再附加6BA0．6～1。
2mg／L、2，4—D0．1～0。
2mg／L，蔗糖20g／L或市售白砂糖30g，用1mol／L的KOH调节pH至5。
8,加琼脂粉4.5～5.0g／L或琼脂条8～12g／L，高压灭菌后分装人90mm培养皿中，每皿约25ml，在超净工作台上吹干后加盖防污染.(2）接种与培养将已剥离的生长点接种于芽增殖培养基上,将幼叶切块和叶柄切段接种于愈伤组织诱导培养基上。
接种时，每皿接种6~8个小块，用封口膜封好，放人培养室内培养，温度(26±2)℃，前期对芽暗培养10d，尔后在光下培养,光照度1500～3000Lx、8～10h／d。
对叶片、叶柄可不经暗培养。
在芽增殖培养基上，接种的生长点转到光下培养5d就转绿，在基部出现绿色芽点，继续培养2周，许多芽点便分化成小芽，分化率可达80%以上。
用于愈伤组织诱导的叶片切块和叶柄切段培养2周左右，在切口处可见愈伤组织产生，再经3～4周，愈伤组织明显长大，但没有芽点形成和芽的分化，必须转入诱导芽分化培养基中方可产生新芽.由于愈伤组织的诱导时间较长，中间需更换1次培养基。
（3)诱导芽分化诱导芽分化培养基为MS+6BAl.0～2.0mg／L+蔗糖（白糖)30g／L，用l mol／L的KOH调节pH值至5。
8,加琼脂粉4.5~5.0g／L,或琼脂条8～10g／L,煮沸后分装于100ml三角瓶中,用羊皮纸封口，高压灭菌20min后备用.将培养皿中愈伤组织长的较好的材料从皿中取出，转人诱导芽再生培养基，培养4周左右，愈伤组织产生不定芽。
要想让小芽长大，需把小芽从愈伤组织上掰下，重新接人新的分化培养基。
诱导芽分化培养基既可作芽分化用,又可作继代培养，在MS基本培养基上，再附加l／4MS中的NH4NO3，可增加红掌的繁殖速度。
4.生根与移栽诱导生根培养基采用1／2MS基本培养基附加NAA0．5～1．5mg／L、蔗糖15g／L，用l mol／LKOH 调节pH值至5.8～6。
0,加琼脂5．5g／L，加热煮沸后分装于100ml三角瓶中，用羊皮纸封口,高压灭菌20min。
将上述培养基中的大苗取出，在无菌滤纸上从基部切去3mm左右,接种到生根培养基中。
生根培养期间，增强光照有利于生根。
生根培养7～10d就能长出白色突起,三周以后根系长到lcm以上，红掌试管苗可以直接进行瓶外发根培养，既可省去生根阶段的成本费用,又可力繁殖速度。
工厂化育苗可考虑采用此法。
5.移栽和温室育苗将瓶苗取出，用自来水漂洗清苗上的培养基后可进行移栽.移栽基质可用3份泥碳、1份珍珠岩和1份椰糠混配的基质,也有的用河沙、碎插花泥等。
种栽后用800~1000倍百菌清淋透。
注意喷水保湿,移栽前期适度遮阴.小苗成活后每隔7～10d用叶面肥喷施，促进生长.定期喷多菌灵、百菌清等护苗防病。
幼苗期叶茎都较嫩，常有地老虎、蜗牛等危害,要酌情给予防治.一种盆栽红掌苗组培快繁方法，其特征在于：它主要包括以下步骤： (一）愈伤组织的诱导（1)取红掌完全展开2～5天的幼嫩叶片作为外殖体; (2)将所述叶片先用75％酒精处理15秒、再在0。
1％升汞溶液中处理7~ 8分钟取出，用无菌水冲洗5次后浸入无菌水中备用； (3)将升汞处理后的所述叶片用加有BA2.5mg/l和2,4-D2.0mg/l的预处理液处理叶片20分钟；（4)将预处理后的所述叶片切成0.6cm×0。
6cm的叶片切块，将所述叶片切块放入无菌水中备用；（5）将所述叶片切块并成批接种于诱导培养基上进行培养,接种时保持所述叶片切块的叶面向上，所述诱导培养基为加有6—BA1。
0mg/l、 2。
4-D0.1mg/l的改良MS,所述改良MS为1/2MS大量元素和常量其他MS成分； (6）培养温度为23~27℃,先在连续黑暗条件下诱导60天，随后逐渐增加光照再生长30～60天,即可在所述叶片切块的边缘诱导出愈伤组织； (二)不定芽的诱导和分化 (1)将诱导出的所述愈伤组织置于分化培养基上诱导分化出不定芽,所述分化培养基为加有BA0。
5mg/l、NAA0.1mg/l的改良MS或加有TDZ0.02mg/l的改良MS； (2）培养温度为23～27℃、光照为每天12小时；（三)无菌苗的增殖培养将分化出的所述不定芽置于增殖培养基上增殖培养出生根的无菌苗，所述增殖培养基为加有6-BA0.1~0。
5mg/l的1/2MS或加有TDZ 0.01~0.02mg/l 及0.3％的活性炭的1/2MS； (四）无菌苗的驯化移栽（1）当所述无菌苗长至株高2～4厘米、最大叶宽0。
7～0。
9厘米且带有 2~3条粗壮根是即可进行移栽驯化；（2）移栽前一周打开瓶盖以使所述无菌苗逐步适应外界条件；（3）洗净所述无菌苗根部琼脂并移栽入泥炭土与珍珠岩比例为4∶1的基质内；（4）保持温度为20～28℃、弱光条件，移栽后的第一周用薄膜红掌，是天南星科花烛属多年生常绿植物，叶革质光亮,单花顶生，花期长达1个半月左右利用常规播种、分株法繁殖切花红掌，繁殖率极低，播种繁殖所需时间长,且易产生变异利用组织培养快速繁殖切花红掌，可满足市场地大量需求材料与方法材料来源为河南濮阳世锦公司自行选育地优质红掌切花品种外植体灭菌处理取切花红掌地幼嫩叶片及叶柄作为供试材料，首先在流水下冲洗1小时，同时用毛刷轻轻刷洗，在消毒前先将叶片切成1.5cm×1。
5cm左右地小片,将叶柄切成1。
5cm左右长地小段,将其放入灭过菌地广口瓶中，用75％酒精浸泡30秒后，再用0。
1%HgCl2浸泡消毒8分钟，用无菌水冲洗5次,在无菌纸上把叶片切成1cm×1cm左右地小片，叶柄切成1cm左右地小段，接种在灭过菌地培养基上，所有无菌操作必须在超净工作台内进行培养基及培养条件基本培养基为MS加蔗糖30g/L、琼脂6g/L，pH值5。
8在不同培养阶段添加不同种类和浓度地植物生长调节剂,培养温度为25℃±1℃,光照强度2000～3000lux，每日光照14小时结果与分析不同外植体脱分化程度比较将2种不同外植体分别接种于MS+6—BA1.5+NAA0.7地同一培养基上，培养3周后，叶片外植体首先明显膨大，长出愈伤组织块，5周后，叶片外植体都长出了愈伤组织块（见表1）观察发现2种不同外植体都能被诱导出愈伤组织，只是叶片较容易被脱分化6-BA对愈伤组织诱导地影响将消过毒地叶片接种于加有不同浓度6-BA地MS+6—BA+NAA0.7地培养基上进行培养，观察不同浓度6—BA对叶片外植体愈伤组织诱导地影响(见表2）由表2可看出，不同浓度地6-BA对切花红掌叶片地诱导有明显不同在无6—BA地培养基上，不能诱导出愈伤组织当6-BA浓度低于1。
5mg/L时,随着6-BA浓度地增大,愈伤组织诱导率及增殖率都随之增大;而较高浓度地6—BA又抑制了愈伤组织地诱导及增殖当6-BA为1.5mg/L时，愈伤组织诱导率及增殖率都达到最大,效果最好因此MS+6-BA1.5+NAA0。
7对切花红掌是较理想地诱导培养基6-BA对愈伤组织分化增殖地影响将诱导成功地愈伤组织块分别转接到含不同浓度6-BA地分化培养基上进行分化培养，观察不同浓度外源激素6—BA对愈伤组织分化产芽地影响（见表3）由表3可见,不同浓度地6—BA对切花红掌愈伤组织地分化具有明显不同地效应随着低浓度6—BA浓度地增大,芽地分化率及产芽量都随之增大当6—BA达1。