植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
南京晓庄学院生命科学系
实验目的
水是原生质的主要组成成分，占原生质总
量的70%~90%。植物水分状况对植物生理的 生理活动具有重要影响。植物水势是植物 的水分状况的重要指标，对于植物水分生 理的科学研究以及农业生产实践具有重要 指导意义。 掌握植物组织水势的测定方法及其优缺点， 并了解渗透系统中水势大小是水分移动方 向的决定因素。
实验结果组号1来自234
5
6
7
8
蔗糖 浓度 0.05 0.1 (M)
0.2
0.3
0.4
0.5
0.6
0.7
小液 流方 向下 悬浮 向上 向上 向上 向上 向上 向上 向
=-1×0.1×0.083×100000×(273+25) =-247340Mpa
结果分析
１号管小液流下降，说明组织水势低于蔗 糖溶液水势，组织吸水，蔗糖浓度变大； 2号管小液流不动，说明组织水势与蔗糖 溶液水势相同，二者间无水分量的交换； ３~８号管小液流上升，说明组织水势高 于蔗糖溶液水势，组织排水，蔗糖浓度变 低。
实验原理
水势表示水的化学势，水分在渗透系统中总是由 水势高处向水势低处流动。植物生活细胞是一个 渗透系统，当将植物细胞或组织放人外界溶液中 时，水分将以水势差为动力在两者间流动，最终 达到动态平衡。如果植物组织的水势小于外界溶 液的水势，植物细胞吸水，使外界溶液浓度增大； 反之，植物细胞失水，使外液浓度变小。若植物 组织与外界溶液水势相同，将不改变外部溶液的 浓度，此时外液的渗透势就等于植物组织的水势。 可以利用外界溶液的浓度不同其比重也不同的原 理来确定与植物组织水势相同的外液，根据公式 计算植物组织的水势。
５．用毛细吸管依次 从青霉素小瓶中吸 取少量溶液，小心 插入装有相同浓度 蔗糖的中试管的中 部，轻轻挤出吸管 中的蓝色液体，观 察记录小液流的方 向。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告引言：植物的水势是指植物体内水分与纯水之间的差异，是植物水分状态的重要指标之一。
测定植物组织水势可以帮助我们了解植物的水分吸收与运输情况，进而探索植物的适应机制和生理生态学特征。
本实验旨在通过测定植物组织水势的方法，探究植物水分状态的变化以及影响因素。
材料与方法：1. 实验材料：鲜嫩的植物叶片、离心管、注射器、测水势仪器（如压力室或压力台秤）等。
2. 实验步骤：a. 收集鲜嫩的植物叶片，并将其快速放入离心管中，避免水分流失。
b. 将离心管中的叶片放入注射器中，并用注射器吸取一定量的水分，使叶片完全浸没在水中。
c. 将注射器与测水势仪器连接，并记录初始读数。
d. 通过改变注射器的压力，使水分进入或退出植物叶片，记录每次读数。
e. 根据测得的数据，计算植物组织的水势值。
结果与讨论：通过实验测定，我们获得了植物组织的水势值。
根据实验结果，我们可以得出以下结论和讨论。
1. 植物组织水势的变化：在实验过程中，我们发现随着水分进入植物叶片，测水势仪器的读数逐渐增加，表示植物组织的水势值降低。
相反，当水分从植物叶片流失时，测水势仪器的读数减少，表示植物组织的水势值增加。
这说明植物组织的水势与水分的流动方向密切相关。
2. 影响植物组织水势的因素：植物组织的水势受多种因素的影响，包括温度、湿度、光照强度、气孔开闭等。
在实验中，我们可以通过改变这些因素来观察植物组织水势的变化情况。
例如，当提高环境温度时，植物组织的水势值通常会下降，因为高温会增加水分的蒸发速率。
而在湿度较低的环境中，植物组织的水势值也会下降，因为湿度低会导致植物体内水分的流失加剧。
3. 植物的适应机制：植物通过调节水势来适应不同的环境条件。
在干旱环境中，植物会通过调节气孔的开闭来减少水分流失，从而提高植物组织的水势值。
此外，一些植物还会通过根系的生长和分泌物质的合成来增加水分吸收，以维持植物组织的水势平衡。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验名称：植物组织水势的测定实验目的：了解各种植物组织中的水势变化规律，学习测定水势的实验操作方法。
实验原理：植物体内水势是维持植物生命活动的重要因素之一，水势可以影响水分的吸收和输送。
本实验采用“压延法”来测定不同植物组织（根、茎、叶）的水势大小。
实验步骤：1. 将需要测定水势的植物材料用钳子夹住，轻轻挥动，然后用手指指甲将其切断，割端要尽量平齐，不要碰到虫眼等杂质。
2. 将切口快速放入水中，利用吸水作用使水分上升，排除空气。
3. 将切口快速从水中取出，然后将其放到压延仪内，尽可能保持植物细胞的原有形态。
4. 向下轻压压延仪的拉杆，停留一段时间几秒钟，等到细胞的状况稳定后，读取示数，记录下此时的长度和标尺读数。
5. 再稍微压紧，停2~3秒左右，再读取示数，再记录下此时的长度和标尺读数。
6. 将杆恢复到原位，并将植物组织切口处擦干净。
7. 分别测定不同植物组织的水势。
根据水势的特点，以水分势值为y轴，切口位移长度为x轴，绘制出水势变化的曲线。
实验结果：我们分别测定了菜花根、豌豆茎、玉米叶片的水势变化曲线，图中可以看出，三种不同的植物组织他们的水势大小不同，玉米叶片水势最高，豌豆茎次之，而菜花根的水势最低。
这说明植物的吸收生长需要水分的支持，不同器官的水势不同。
实验结论：本实验内容重点在于掌握测水势的方法和水势的变化规律，同时还有机会深入了解植物的生长过程。
测定出不同植物组织的水势差异信息，说明不同的植物器官在吸水输液中扮演着不同的角色。
实验有效地理论与实践相结合，深化了我们对植物体内水分代谢的认识。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定小液流法一、实验目的了解织物组织水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法及优缺点。
二、实验原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。
植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，此溶液的渗透势即等于所测植物的水势．可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液浓度的变化，然后根据公式计算渗透势．三、实验器材及试剂试管、毛细滴管、烧杯、移液管、刀片、打孔器、镊子、甲烯蓝、蔗糖溶液(1mol/L)四、实验步骤1. 配制一系列不同浓度的蔗糖溶液：0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45、0.5mol/l 各10ml，注入9支试管，并编号，按编号顺序在试管架上排成一列，作为对照组。
2. 另取9支试管，编好号，按顺序放在试管架上，作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管中。
3. 用打孔器在马铃薯上打孔，然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。
向试验组的每一试管中加1０片马铃薯小块，放置３０分钟，在这段时间内摇动数次，到时间后，向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许，并振荡，此时溶液变成蓝色。
4. 用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动，说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了；如果有色液滴向下移动，则说明细胞从溶液中吸了水，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动。
则说明试验溶液的密度等于对照溶液，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
植物组织水势的测定(小液流法)
实验4 植物组织水势的测定（小液流法）一、原理当植物组织与外液接触时，如果植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水、重量增大而使外液浓度变大；反之，则组织失水、重量减小而外液浓度变小；若两者相等，则水分交换保持动态平衡，组织重量及外液浓度保持不变。
根据组织重量或外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度，然后根据公式计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
溶液渗透势的计算：Ψs = - iCRT （ 6 – 1 ）式中：Ψs ——溶液的渗透势，以 MPa 为单位。
R ——气体常数，为 0.008314 MPa · L/ （ mol · K ）。
T ——绝对温度，即 273 + t ℃。
C ——溶液的质量摩尔浓度，以 mol/kg 为单位。
i ——为解离系数， CaCl 2 为 2.6 。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料植物叶片或洋葱鳞茎。
（二）试剂1 ．甲烯蓝粉末。
2 ． CaCl 2 溶液：包括 0.10 、 0.15 、 0.20 、 0.25 、 0.30 、 0.35 、 0.40 、 0.45 mol/kg 8 种不同质量摩尔浓度的溶液。
（三）仪器设备大试管 8 支 , 小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，移液管（ 5mL ），毛细吸管 8 支，培养皿，打孔器，剪刀 l 把，镊子 1 把，解剖针 1 支。
三、实验步骤1. 编号贴标签取干燥洁净的大试管 8 支，小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，毛细吸管 8 支，编号贴标签，按序号排好。
2. 打取、浸泡叶片取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约 60 片，放在培养皿中，混合均匀。
用镊子分别把 5 ～ 8 个小圆片放到盛有 4 mL 不同质量摩尔浓度 CaCl 2 溶液的青霉素小瓶中，浸没叶片，盖紧瓶塞，放置 30 min ，并不断轻摇小瓶，以加速水分平衡（如温度低时可延长放置时间）。
测定植物组织水势的方法及其原理
测定植物组织水势的方法及其原理测定植物组织水势是研究植物生理学中的重要课题之一。
水势是指植物细胞内外水分的自由能差，是植物体内水分运输和调节的关键指标。
本文将介绍几种常用的测定植物组织水势的方法及其原理。
一、压力室法压力室法是一种直接测定植物组织水势的方法。
其原理基于植物细胞内外水势的平衡关系。
在实验中，将待测组织样品放入一个密封的压力室中，通过增加压力，使压力室内外的水势达到平衡。
通过测量加入压力之前和之后的压力差，可以计算出组织的水势值。
二、渗透势法渗透势法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于渗透压对水势的影响。
在实验中，将待测组织样品放入含有不同浓度溶液的渗透槽中，使组织与外界形成渗透平衡。
通过测量组织与溶液之间的渗透压差，可以计算出组织的水势值。
三、压力-容积曲线法压力-容积曲线法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于植物细胞的压力-容积关系。
在实验中，将待测组织样品置于不同的外界压力下，测量组织的容积变化。
通过绘制压力-容积曲线，可以确定组织的压力势和水势值。
四、气体法气体法是一种间接测定植物组织水势的方法。
其原理基于气体扩散对水势的影响。
在实验中，将待测组织样品置于密闭的容器中，通过测量容器内气体的湿度变化，可以计算出组织的水势值。
以上所述的方法各有优缺点，选择合适的方法取决于实验目的、样品特性和实验条件等因素。
此外，还可以结合其他生理指标的测定结果，综合分析植物组织的水势状况。
测定植物组织水势的方法包括压力室法、渗透势法、压力-容积曲线法和气体法等。
这些方法基于不同的原理，通过测量不同的参数来间接或直接地确定植物组织的水势值。
在实际应用中，需要根据具体情况选择合适的方法，并结合其他指标进行综合分析，以全面了解植物的水分状况。
植物生理学 实验报告--实验1 植物组织水势的测定
实验一植物组织水势的测定（小液流法）1、实验目的了解植物组织中水分状况的一种表示方法及用于测定的方法及其优缺点。
2、实验原理植物组织的水分状况可用水势来表示。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体与环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
将植物组织放在已知水势的一系列溶液中，如果植物组织的水势（Ψcell）小于某一溶液的水势（Ψout），则组织吸水，反之组织失水。
若两者相等，水分交换保持动态平衡。
组织的吸水或失水会使溶液的浓度、密度、电导率以及组织本身的体积与质量发生变化。
根据这些参数的变化情况可确定与植物组织等水势的溶液。
液体交换法测定水势的方法有很多种，本实验练习用小液流法测定植物组织的水势，并初步观察其变化情况。
小液流法测定水势的原理判据△Ψ=Ψout-Ψcell组织的水分得失外液的密度变化△Ψ>0吸水升高△Ψ<0失水降低△Ψ=0平衡不变使用器材用滴管测定外液的密度变化适用的材料叶片或碎的组织3、仪器和试剂试管，试管架，移液管，滴管，打孔机或单面刀片，镊子，解剖针，棉花，吸水纸；0.05-0.4mol/L CaCl2溶液，甲烯蓝；土豆4、实验步骤①将16支试管清洗干净，分为两组（实验组和对照组）按编号顺序倒置于试管架上，控净水分。
②配制一系列不同浓度的氯化钙溶液（0.05、0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4mol/L），分别注入八支实验组试管中，各10ml左右（体积约为试管的2/3处）。
再将实验组各试管溶液的2/3倒入对应编号的对照组试管中。
两组试管均加盖棉塞。
③将土豆用单面刀片切成0.5cm见方的小块。
将植物组织混匀，分成八份，放入实验组各试管中。
放置20min以上，期间多次摇动实验组试管，以促进水分平衡。
④用解剖针沾取甲烯蓝粉末给实验组各试管染色，摇匀，用滴管由低浓度向高难度顺序吸取实验组的染色液滴移入对照组对应浓度试管内，观察液滴升降变化并记录。
⑤水势计算Ψcell=Ψout=-icRT式中：为植物细胞水势；为外界溶液渗透势；i为解离系数，氯化钙为2.6；c为溶液浓度，单位mol/L；R为摩尔气体常数，0.0083 (L·MPa)/(mol·K)；T为热力学温度，单位为K，即273+t，t为试验温度。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一。
水势是指植物细胞内水分与外界水分之间的压力差，是植物水分平衡的重要指标。
水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
植物组织水势的测定方法有很多种，其中比较常用的是压膜法和压力室法。
压膜法是将植物组织放在一块半透膜上，然后在膜的一侧施加一定的压力，使水分从组织中流出，从而测定组织的水势。
压力室法则是将植物组织放在一个密闭的压力室中，通过改变室内的压力来测定组织的水势。
在进行植物组织水势的测定时，需要注意以下几点。
首先，要选择新鲜的、健康的植物组织进行测定，以保证测定结果的准确性。
其次，要在测定前将植物组织放在水中浸泡一段时间，使其达到水分平衡状态。
最后，在进行测定时要注意操作的精细和准确，以避免误差的产生。
植物组织水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
例如，在干旱地区，可以通过测定植物组织的水势来判断植物是否缺水，从而采取相应的措施，如增加灌溉量、改善土壤水分状况等，以保证植物的正常生长和发育。
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一，可以帮
助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
在进行测定时，需要注意操作的精细和准确，以保证测定结果的准确性。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
一、实验原理
植物组织水势的测定是指在化学反应体系中，利用植物组织自主有形成电位差的能力，来检测植物组织中的一种物质的含量。
植物组织水势的测定原理是：将植物组织与溶液中的电解液混合，当植物组织中的物质与电解质发生电化学反应时，会产生电位差，这一电位差就可以用来测量植物组织中物质的含量。
二、实验材料
1、植物组织：取适当数量的植物组织，去除多余水分，石膏伤及部位，研磨后可用于实验。
2、酸度标准液：可以根据实验要求，称取一定量的水泥砂、HCl 和NaOH，溶解后加入去离子水，稀释至一定量，即可作为酸度标准液。
3、电解质溶液：可以根据实验要求，取一定的NaCl和KCl，溶解后，加入去离子水，稀释至一定量，即可作为电解质溶液。
4、电位仪：将电位仪接在实验管中，便可记录出电位变化。
三、实验步骤
1、将植物组织研磨成细末，取0.8g，放入实验管中，加入10ml 酸度标准液，搅拌均匀，待混和液中的物质完全溶解后，取出实验管中的混和液，用滤纸筛去残渣，再放回实验管中，再加入15ml电解质溶液，用电位仪记录电位值。
2、重复上述步骤，每次加入的电解质溶液量不同，当电位值趋于稳定时，说明存在的物质在电解质溶液中完全溶解，可以得到植物组织的水势值。
植物组织水势的测定 ( 小液流法 )
植物组织水势的测定( 小液流法)一、目的学会用小液流法来测定植物组织水势。
二、原理当植物组织浸入外界溶液中时，若植物的水势小于外液的水势，则细胞吸水, 使外液浓度变大；反之, 植物细胞失水，外液浓度变小，若细胞和外液的浓度相等，则外液浓度不发生变化。
溶液浓度不同其比重也不同，不同浓度的两溶液相遇，稀溶液比重小而会上升，浓溶液比重大而会下降。
根据此理, 把浸过植物组织的各浓度液滴滴回原相应浓度的各溶液中，液滴会发生上升、下降或基本不动的现象。
如果液滴不动，说明外液在浸过组织后浓度未变，那么就可根据该溶液的浓度计算出其水势。
此水势值也就是待测植物组织水势。
小液流法就根据这个原理，把植物组织浸人一系列不同浓度的煎糖液中, 由于比重发生了变化，通过观察滴出小液滴在原相应浓度中的反应而找出等渗浓度，从而就可算出溶液的水势。
三、材料指管木架、指形管( 带软木塞)、弯头毛细吸管( 带橡皮头)、小镊子、移液管、温度计、打孔器、不同浓度的蔗糖液(0.2～0.6mol/L)、甲烯蓝( 亚甲基蓝)、叶片。
四、方法与步骤1、配制一系列不同浓度的蔗糖溶液0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mol/l 各10ml 注入7支试管编号按顺序排列作为对照组。
2、另取7支试管 编号按顺序排列作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液5ml移入相同编号的试验组试管中。
3、用打孔器在马铃薯上打孔 然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。
向试验组的每一试管中加20片马铃薯小块，摇动数次放置30分钟，后向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许并振荡此时溶液变成蓝色。
4、用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取蓝色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部。
缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液 观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了。
如果有色液滴向下移动则说明细胞从溶液中吸了，水溶液变浓比重变大。
植物生理学实验报告植物组织水势测定
植物生理学实验报告植物组织水势测定实验目的：本实验旨在通过测量植物组织的水势，了解植物在不同生理状态下的水分状况和水分调节能力。
实验原理：植物组织的水势是一个重要的生理指标，用来描述植物的水分状态。
水势的测定是通过测量植物组织与纯水之间的压力差来实现的。
当植物组织的水势为负值时，说明组织在吸水，而正值则表明组织有排水的趋势。
实验步骤：1.准备材料：取一盆植物，将其叶片切下并放入离心管中；准备一些试管和纯水。
2.测量植物组织的水势：将离心管放入测水袋中，并将测水袋连至一根透气玻璃管，然后将试管插入水槽中以保持温度恒定。
通过气压计记录水势值。
3.测量植物组织在不同条件下的水势：可以在不同的实验条件下测量植物组织的水势，如在光照、温度变化或干旱条件等。
4.数据记录与分析：记录测得的水势数值，并进行统计和比较，以检验不同条件对植物组织水势的影响。
实验结果与讨论：通过对植物组织水势的测定，我们可以得到一些有意义的结果。
首先，测量不同植物组织在水势上的差异。
由于植物不同部位的组织结构和功能不同，其水分状况也会有差异。
比如，叶片的水势可能会更高，因为它们是光合作用和气体交换的主要结构。
其次，测定不同环境条件下植物组织的水势变化。
例如，在干旱条件下，植物会通过减少蒸腾作用和调节根部的水分吸收来保持水势平衡。
因此，测量植物组织在干旱条件下的水势，可以帮助我们了解植物对干旱的应对机制。
此外，还可以通过对不同温度和光照条件下植物组织水势的测定，来研究植物的生长和适应性。
不同的温度和光照条件会影响植物的光合作用和蒸腾作用，从而改变植物的水分平衡。
综上所述，植物组织水势的测定是一个重要的植物生理学实验，在研究植物的水分状况和水分调节能力方面具有重要意义。
通过进行多方面的测定和分析，我们可以更好地了解植物的生理机制和适应性。
实验2 植物组织水势的测定(小液流法)
实验2 植物组织水势的测定（小液流法）一、实验目的1、学习和掌握植物水势测定的原理和意义2、掌握水势测定方法和原理二、原理将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。
因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）（waterpotential）。
ψw＝ψπ＝－P＝－CRT（大气压）三、材料、仪器设备及试剂1、材料：小白菜或其它作物叶片2、仪器设备：.试管；带有橡皮管的注射针头；镊子；.打孔器；.培养皿。
3、试剂：.0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8mol/L蔗糖溶液；.甲烯蓝粉末。
四、实验步骤1、取干燥洁净的试管8个为甲组，各瓶中分别加入0.1～0.8mol/L蔗糖溶液约10ml，另取8个干燥洁净的试管为乙组，各瓶中分别加入0.1～0.8mol/L蔗糖溶液4ml和微量甲烯蓝粉末着色，上述各瓶加标签注明浓度。
2、取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片，放至培养皿中，混合均匀。
用镊子分别夹入5～8个小圆片到盛有不同浓度的甲烯蓝蔗糖溶液的试管中（乙组）。
盖上瓶塞，并使叶圆片全部浸没于溶液中。
放置约30～60min，为加速水分平衡，应经常摇动小瓶。
3、经一定时间后，用注射针头吸取乙组各瓶蓝色糖液少许，将针头插入对应浓度甲组试管溶液中部，小心地放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向。
（每次测定均要用待测浓度的甲烯蓝蔗糖溶液清洗几次注射针头）。
如此方法检查各瓶中液流的升降动向。
若液流上升，说明浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水）；表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势，若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度。
植生实验水势测定
Ψw = -RTiC
R：摩尔气体常数，0.083×105 L·pa/mol·k T：热力学温L
试剂 1 mol/L蔗糖溶液；超纯水； 10%次甲基蓝（或甲烯蓝）
材料 马铃薯；白萝卜；胡萝卜；南瓜；植物叶片 毛细吸管8支；吸水纸；标签
R：摩尔气体常数，0.083×105 L·pa/mol·k T：热力学温度，单位k i：解离系数，蔗糖等于1 C：等水势浓度，单位mol／L
将植物组织置于外界溶液中，将出现3种情况：
大小 （1）组织水势 > 溶液水势 （2）组织水势 < 溶液水势 （3）组织水势 = 溶液水势
溶液比重 减小 增大 不变
分别用毛细吸管吸取各试验组试管中的溶液 约2/3长度。
用食指按紧毛细吸管管口，将毛细吸管从试 验组试管中取出。
用吸水纸吸掉毛细吸管下端悬挂的液滴。 将毛细吸管移入到对应对照组试管中，使下 管口位于溶液的中部。 稍微放开食指使流出少许溶液后迅速按紧管 口，将毛细吸管从试管中取出。 认真观察着色液滴的移动方向， 找出等水势 浓度C。
实验一 植物组织水势的测定(小液流法)
一、实验原理 将植物组织处于外界溶液中，若Ψw（组织）< Ψw（溶液），则组织
吸水，溶液的比重增大；反之组织的水分渗出，溶液的比重变小；若Ψw （组织）= Ψw（溶液），则二者水分处于动态平衡，溶液的比重不变。 通过检查实验前后溶液比重是否变化，可以找到溶液Ψw与组织Ψw相当的 溶液，利用该溶液的浓度C，参照公式Ψw = -RTiC，可以求出组织的水势。 二、器材与试剂
着色液滴的移动方向
↑ ↓
0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 0.8(mol/L)
下周实验
植物细胞渗透势的测定(质壁分离法) P5-6
实验二 植物组织水势的测定
实验二植物组织水势的测定实验目的：通过测定不同组织的水势，了解植物不同组织之间的水分关系。
实验原理：水势是指植物细胞内水分浓度差异的大小。
在植物体内，不同组织内的水势会不同，由高到低按照顺序为：叶片内的细胞→ 内部水分丰富的根毛→ 根外层细胞→ 植株外部环境。
为了测定植物的水势，需要使用一个称为压力室的仪器，它可以施加外界的压力，在不同的组织状态下测定其水势。
实验步骤：1. 收集同一植物的根、叶、茎和花等组织。
将每个组织放入不同的高压瓶中，同时向每个高压瓶添加约15 ml去离子水。
2. 将高压瓶放入等温水浴中，使其浴温为25℃左右。
等待10-15分钟，让组织内的压力达到平衡。
3. 取出高压瓶中的植物组织，将其放入压力室中。
在压力室中，施加不同的外压，测定植物组织内的水势。
4. 将每个植物组织的水势用图表表示。
将组织的名称和对应的水势值描绘在坐标轴上，然后用一个曲线连接这些值。
这将显示植物组织之间的水势关系。
实验结果：在测量不同植物组织的水势后，可以得到类似下图的结果：[插入图像]图中显示了标准植物的水势情况，根、茎、叶片和花的水势分别为 -0.3 MPa、-0.6 MPa、-1.2 MPa、-1.5 MPa。
从图中可以看到，叶片内水势最低，花的水势最高。
通过本实验的测量，我们可以了解到不同植物组织的水势大小。
叶片内的水势最低，花的水势最高，这说明植物内部水分的分布是不均衡的。
在自然环境条件下，植物会进行水势的调节，以保持组织内水分的平衡。
当外部环境干旱时，植物会调整其根部的水势，以确保植物能够正常生长和发育。
这种水势调节机制是植物适应不同环境的关键因素之一。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定植物组织水势的测定一．实验目的1.掌握植物细胞水势概念及计算公式;2.了解小液流法测定植物组织水势的方法。
二．实验原理1.植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定;2.当植物细胞或组织放在外界溶液中时:A.ψw＜ψs，则植物组织吸水，C外↑，液滴↓；B.ψw＞ψs，则植物组织失水，C外↓，液滴↑；C.ψw＝ψs，则二者水分保持动态平衡，C外不变，液滴不动。
利用公式：-ψw =RTiC式中：ψw为细胞水势，R为气体常数＝0.083×105L.Pa/mol.K；T为热力学温度,单位K；即273+t，t为实验温度，单位是℃；i为解离系数，蔗糖为1；C为等渗溶液的质量摩尔浓度，单位是mol/L。
三．实验材料白菜拉丁语学名：Brassica rapa pekinensis四．实验步骤配制不同浓度的蔗糖溶液对照组和实验组溶液的制备用打孔器制备叶片将叶片放入实验组试管中，放置30分钟30分钟后向实验组试管中分别加入一滴甲烯蓝溶液用微量移液管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢放出一滴蓝色试验溶液观察小液滴移动的方向记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度分析实验结果。
五．实验结果与分析试管号123450.10.20.30.40.5溶液浓度（mol/l）↓↑↑↑↑液滴移动的方向吸水失水失水失水失水植物组织细胞ψw＜ψsψw＞ψsψw＞ψsψw＞ψsψw＞ψs Ψw与ψs的比较由上面表格分析可知：C=0.15mol/L故植物组织的水势为ψw =-RTiC=-0.083×105L.Pa/mol.Kｘ（273+25）ｘ1ｘ0.15=-0.37MPa六．实验讨论1. 实验器具清洗干净，而且在整个实验的过程中所有的试管滴管应该保持干燥，以免造成误差；2．准确配制蔗糖梯度溶液，正确使用移液管；3. 叶片投入试管是要快，并及时盖上试管塞，防止叶片或者试管水分蒸发影响实验效果。
测定植物组织水势的方法
测定植物组织水势的方法
嘿，你知道不？测定植物组织水势可有不少方法呢！比如说小液流法，先准备好一系列浓度梯度的蔗糖溶液，把植物组织放入小试管中，让其和蔗糖溶液达到平衡。
然后取一滴小液流放到凹玻片上，观察小液流的移动方向。
要是小液流不动了，那这个蔗糖溶液的水势就和植物组织的水势相等啦！这过程中可得小心操作，别弄洒了溶液。
那安全性咋样呢？只要操作得当，就没啥大问题，稳定性也不错呢！这方法在农业生产中可有用啦！可以帮助农民伯伯了解植物的水分状况，调整灌溉策略。
就好比医生给病人看病，先得了解病人的身体状况，才能对症下药嘛！再说说压力室法，把植物叶片或枝条放入压力室，给它加压，直到有汁液从切口处流出。
通过测量压力值就能算出植物组织的水势。
这方法操作起来也不难，但是得注意压力的控制。
安全性也挺高，只要按照步骤来，不会有啥危险。
稳定性也杠杠的！在科研领域，这方法可是大显身手呢！能让科学家们更深入地研究植物的水分生理。
想象一下，这就像给植物做了个“体检”，能让我们更了解植物的健康状况。
测定植物组织水势的方法还有很多，各有各的优势和应用场景。
实际中，比如在干旱地区，通过测定植物组织水势，可以知道哪些植物更耐旱，从而选择合适的植物进行种植。
这多棒啊！总之，测定植物组织水势的方法很重要，能帮助我们更好地了解植物，为农业生产和科学研究提供有力支持。
植物组织水势测定
6、在数据测定过程中，可以按“Mode”键将屏幕切换到Screen#4查看测定的即时数值以及其它的相关参 数。
• Screen#4画面如下： 4 Record# xxxxPsy# X
yr=XX jda=XX XX:XX XX.X°C WP= X.XX Mpa（水势值） os XX.XX wbd XX.XX uV • （一般以测定3～4组重复值为最佳，第一组数值的可信度不高，当os>3时，测定的水势 ［WP］值即不可信） * #和X为数字
植物组织水势测定
1
实验二
植物组织水势测定—— 小液流、压力室、露点水势仪
测定植物组织水势的目的
一、小液流法
实验原理： • 植物细胞是一个渗透系统。当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，
小液流下沉。 • 当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。 • 当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小
Screen#8画面如下： 8 Backlight: always on
Logging: On
Screen#10画面如下: 10 PSYPRO number=XX(可输入1-99) (if several PSYPROs are Used, each needs a unique nember.)
7、当一组数据测量完成时，先将屏幕切换到Screen#8，并将光标移动至“logging”处，按 “Value”键使“logging”处于“Off”状态，此时水势仪停止工作。如果不再使用水势仪，只要将 屏幕切换到Screen#1后，将开关杆拨到“Off”位置并将“探测头”取下即可。如果还需要测定 其它数据，再按照步骤5至步骤6进行操作即可。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定植物组织水势的测定是通过测量植物组织中的水分势来进行的。
水势是指水分在植物组织内的自由能，它是影响水向植物体内运动的重要驱动力。
植物通过根系吸收土壤中的水分，并将其输送到其他组织的细胞中。
测定植物组织水势可以帮助我们更好地理解植物水分运输的机理。
测定植物组织水势的方法有多种，下面将介绍几种常用的方法：1. 切片法测定：这是一种常用的方法，它可以直接观察到组织中的水势变化。
首先，将植物的组织切成薄片，然后将切片放置在一块干燥的滤纸上。
滤纸会吸收切片中的水分，导致切片的水势下降。
通过观察切片的变化，可以推断出组织中的水势大小。
2. 压蔗液法测定：这是一种基于液体能量传导的方法。
将植物组织放置在一定浓度的糖液中，组织中的水分会向糖液中移动。
根据糖液中的含水量、组织中的水势以及温度等参数，可以计算出组织的水势大小。
3. 压溶液法测定：这是一种通过测量细胞内液体的渗透压来计算水势的方法。
将植物组织放置在一定浓度的溶液中，等待一段时间后，根据细胞内液体的渗透压和环境中液体的渗透压，可以计算出组织的水势大小。
4. 马尼托巴法测定：这是一种利用测定导电率和浓度来计算水势的方法。
通过测量植物组织中的电导率和离子浓度，可以推算出组织的水势大小。
需要注意的是，以上方法只是测定植物组织水势的一些常用方法，实际操作中还可以根据具体情况进行调整和改进。
此外，由于植物组织中水分的运动是一个复杂的过程，测量结果可能会受到一些因素的影响。
因此，在进行测定时，需要进行精确的实验设计和数据分析，以确保结果的准确性和可靠性。
总结起来，测定植物组织水势是一个重要的研究方向，通过对植物组织水势的测量，可以更好地理解植物水分运输及其机理。
在实验中，可以利用切片法、压蔗液法、压溶液法和马尼托巴法等方法进行测定。
然而，在实际操作中需要注意实验设计和数据处理，以确保测定结果的准确性和可靠性。
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实验四植物组织水势的测定
植物体内的生理生化活动与其水分状况密切相关，而植物组织的水势是表示植物水分状况的一个重要生理指标。
目前，植物组织水势的测定主要有几种方法：小液流法、折射仪法、压力室法、露点法、热电偶法。
前两种方法虽然简便，但精确性差。
压力室法较适于测定枝条或叶柄导管的水势。
露点法、热电偶法较适宜测定柔软叶片的水势，且精确度高，可在一定范围内重复测定叶片的水势，是较好的水势测定方法。
植物的水势可作为制定灌溉的生理指标。
Ⅰ、小液流法
一、目的
通过实验，掌握用小液流法测定植物组织水势的原理和方法。
二、原理
水势代表水的能量水平，水总是从水势高处流向低处。
水进入植物体内并分布到各组织器官中的快慢或难易由水势差来决定，水势越高，植物组织的吸水能力越差，而供给水能力越强。
当植物组织与一系列浓度递增的溶液接触后，如果植物组织水势大于（或小于）外液的水势，则组织失水（或吸水），使外液浓度变低（或变高），密度变小（或变大）。
如果植物组织的水势等于外液的水势时，植物组织既不失水也不吸水，外液浓度不变。
当取浸泡过植物组织的溶液的小滴（亦称小液流，为便于观察应先染色），分别放入原来浓度相同而未浸泡植物组织的溶液中部时，小液流就会因密度不同而发生上升或下沉或不动的情况。
小液流在其中不动的溶液的水势（该溶液为等渗浓度），即等于植物组织的水势。
三、材料、设备及试剂
1.材料：植物叶片；马铃薯块茎等。
2.仪器设备：试管；小瓶；小塞子；打孔器(直径0.5㎝)；尖头镊子；移液管（1ml、5ml、10ml）；注射针钩头滴管；刀片。
3.试剂：1mol·L－1蔗糖液；甲烯蓝粉。
四、实验步骤
1.系列糖浓度配制
1.1取干燥洁净试管6支，贴上标签，编号，用1mol·L－1蔗糖母液配成0.05、0.1、0.15、0.2、0.25、0.30 mol·L－1浓度的糖液，各管总量为10ml，并塞上塞子（防止浓度改变），作为甲组。
1.2另取干燥洁净的小瓶6个，标明0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30mol·L－1浓度,分别从甲组取相应浓度糖液1ml盛于小瓶中，随即塞上塞子，作为乙组。
2.取样及测定
2.1选取生长一致的叶片，用直径为0.5cm的打孔器钻取圆片，在玻璃皿内混匀，然后用镊子把圆片放进乙组小瓶中，每瓶放15～20片，（若采用植物块茎如马铃薯，先用打孔器钻取圆条，然后切成约1mm厚圆片，每瓶放5片），立即塞紧塞子，放置40min左右，其间轻轻摇动几次，以加速平衡。
2.2到预定时间后，各小瓶加入几粒甲烯蓝粉染色，摇匀，取6支干燥洁净的注射针钩头滴管，分别从乙组中取出溶液，插入甲组原相应浓度蔗糖溶液的中部，轻轻挤出钩头滴管内
五、植物组织水势值计算
将测得的等渗浓度值代入以下公式计算出植物组织的水势：
公式中：ψW=ψл=－iCRT（MPa）
ψW—植物组织水势,单位：Mpa（兆帕）
ψл—溶液的渗透势（即溶液的水势）
C —等渗浓度（mol·L－1）
R —气体常数（0.0083 L·MPa·m ol－1·K－1）
T —热力学温度（273 + t℃）
i —解离系数（蔗糖 =1；CaCl2 =2.60）
六、注意事项
1.配制糖液浓度要准确，并充分摇匀。
2.取样时选材要一致。
3.打孔时要避开大叶脉。
4.加甲烯蓝要适量，过多会影响溶液浓度，过少则很难识别小液流移动方向。