生化综合实验报告--测定蛋白质含量的三种方法及其比较
生化实验—蛋白质含量测定
实验一：蛋白质含量测定方法的研究---非蛋白物质的可能干扰及其干扰程度的研究分析摘要：本次实验通过分别利用三种方法（Folin-酚法，考马斯亮蓝（G-250），紫外法）平行测定纯蛋白溶液和生物材料中蛋白的含量，分别计算和比较每种材料通过三种方法测定结果的差异性。
再利用同时进行的11组实验的数据进行整合分析。
最后通过比较两种待测液在三种方法测定下的差异性来分析非蛋白质干扰因素对三种方法的影响及影响程度。
关键字：比色法，蛋白质含量测定，非蛋白质干扰因素，差异比较与分析1.研究背景及目的实验室测定蛋白质含量的方法多种，且依照不同的应用方向，依照不同的原理有多种蛋白质含量的测定方式。
目前蛋白质含量测定的主要应用方法是比色法，但是由于实验操作以及设备存在误差，所以蛋白质溶液的真实浓度难以知晓，因此不能直接恒量各种方法在不同测定环境中的差异性。
同时在实际的测量中，由于生物样品的复杂性，目标溶液中往往存在着诸多非蛋白干扰因素。
因此需要实验者通过多种方法，有一定的数据支持，从可依靠的数据的线性变化中寻求合理的数理参照，从而对非蛋白干扰因素的影响程度做以分析和比较。
2.原理本次实验选取三种实验方法——Folin-酚法，考马斯亮蓝（G-250）法和紫外法：Folin-酚法的原理利用是蛋白质中含有酚基的氨基酸数与蛋白质浓度呈正比，从而对特殊残基的测定来确定蛋白质含量；考马斯亮蓝法的原理是在一定蛋白质浓度范围内，蛋白质与色素结合物在595nm波长下光的吸收与浓度呈正比，故可用于蛋白质的测定；紫外法的原理是：蛋白质在紫外光下，吸收高峰在280nm左右，在此波长范围内蛋白质溶液的光密度值与浓度呈正比。
本次实验测定的对象为纯蛋白溶液（BSA，牛血清白蛋白）和生物材料（绿豆芽下胚轴蛋白的提取液），分别作为无非蛋白质干扰和非蛋白质干扰的两个实验组。
通过分别对两种溶液利用三种方法进行测定。
用数理处理和分析来衡量三种方法在测定中的波动，比较两待测液即纯蛋白和生物组织提取液之间的波动情况的差异。
生化实验 蛋白质测定含量
蛋白质含量的测定:1. 样品与浓硫酸和催化剂一同加热消化，使蛋白质分解，其中碳和氢被氧化为二氧化碳和水逸出，而样品中的有机氮转化为氨与硫酸结合成硫酸铵。
然后加碱蒸馏，使氨蒸出，用硼酸吸收后再以标准盐酸或硫酸溶液滴定。
根据标准酸消耗量可计算出蛋白质的含量。
2NH3 + 4H3BO3=(NH4)2B4O7+5H2O(NH4)2B4O7+2HCl+5H2O=2NH4Cl+4H3BO3 F=5.71可知,蛋白质与氮的比例是5.71,每一摩尔氮对应一摩尔盐酸①凯氏定氮法原理：蛋白质平均含氮量为16%。
当样品与浓硫酸共热，蛋白氮转化为铵盐，在强碱性条件下将氨蒸出，用加有指示剂的硼酸吸收，最后用标准酸滴定硼酸，通过标准酸的用量即可求出蛋白质中的含氮量和蛋白质含量。
②双缩脲法原理：尿素在180℃下脱氨生成双缩脲，在碱性溶液中双缩脲可与Cu2+形成稳定的紫红色络合物。
蛋白质中的肽键实际上就是酰胺键，故多肽、蛋白质等都有双缩脲（biuret）反应，产生蓝色或紫色复合物。
比色定蛋白质含量。
缺点：灵敏度低，样品必须可溶，在大量糖类共存和含有脯氨酸的肽中显色不好。
其精确度较差(数mg)，且会受样品中硫酸铵及Tris 的干扰，但准确度较高，不受蛋白质的种类影响。
③Folin酚法(Lowry)Folin酚法是biuret 法的延伸，所用试剂由试剂甲和乙两部分组成。
试剂甲相当于双缩脲试剂（碱性铜试剂），试剂乙中含有磷钼酸和磷钨酸。
在碱性条件下，蛋白质中的巯基和酚基等可将Cu2+还原成Cu+，Cu+能定量地与Folin－酚试剂反应生成蓝色物质，600nm比色测定蛋白质含量。
灵敏度较高(约0.1 mg)，但较麻烦，也会受硫酸铵及硫醇化合物的干扰。
步骤中各项试剂的混合，要特别注意均匀澈底，否则会有大误差。
④紫外法280nm光吸收法：利用Tyr在280nm在吸收进行测定。
280nm-260nm的吸收差法：若样品液中有少量核酸共存按下式计算：蛋白质浓度(mg/ml)=1.24E280-0.74E260 （280 260为角标）⑤色素结合法（Bradford 法）直接测定法：利用蛋白质与色素分子（Coomassie Brilliant Blue G-250）结合物的光吸收用分光光度法进行测定。
蛋白质含量测定方法及其比较资料2
蛋白质含量测定法（一）蛋白质含量测定法，是生物化学研究中最常用、最基本的分析方法之一。
目前常用的有四种古老的经典方法，即定氮法，双缩脲法（Biuret法）、Folin－酚试剂法（Lowry法）和紫外吸收法。
另外还有一种近十年才普遍使用起来的新的测定法，即考马斯亮蓝法（Bradford法）。
其中Bradford法和Lowry法灵敏度最高，比紫外吸收法灵敏10～20倍，比Biuret法灵敏100倍以上。
定氮法虽然比较复杂，但较准确，往往以定氮法测定的蛋白质作为其他方法的标准蛋白质。
五种蛋白质测定方法比较值得注意的是，这后四种方法并不能在任何条件下适用于任何形式的蛋白质，因为一种蛋白质溶液用这四种方法测定，有可能得出四种不同的结果。
每种测定法都不是完美无缺的，都有其优缺点。
在选择方法时应考虑：①实验对测定所要求的灵敏度和精确度；②蛋白质的性质；③溶液中存在的干扰物质；④测定所要花费的时间。
考马斯亮蓝法（Bradford法），由于其突出的优点，正得到越来越广泛的应用。
一、微量凯氏（Kjeldahl）定氮法样品与浓硫酸共热。
含氮有机物即分解产生氨（消化），氨又与硫酸作用，变成硫酸氨。
经强碱碱化使之分解放出氨，借蒸汽将氨蒸至酸液中，根据此酸液被中和的程度可计算得样品之氮含量。
若以甘氨酸为例，其反应式如下：NH2CH2COOH+3H2SO4——2CO2+3SO2+4H2O+NH3 (1)2NH3+H2SO4——(NH4)2SO4 (2)(NH4)2SO4+2NaOH——2H2O+Na2SO4+2NH3 (3)反应（1）、(2)在凯氏瓶内完成，反应（3）在凯氏蒸馏装置中进行。
为了加速消化，可以加入CuSO4作催化剂，K2SO4以提高溶液的沸点。
收集氨可用硼酸溶液，滴定则用强酸。
实验和计算方法这里从略。
计算所得结果为样品总氮量，如欲求得样品中蛋白含量，应将总氮量减去非蛋白氮即得。
如欲进一步求得样品中蛋白质的含量，即用样品中蛋白氮乘以6．25即得。
蛋白含量评测实验报告
一、实验目的1. 掌握蛋白质含量的评测方法。
2. 了解不同蛋白质含量评测方法的原理和操作步骤。
3. 比较不同蛋白质含量评测方法的准确性和可靠性。
二、实验原理蛋白质含量评测是生物化学实验中的一个重要内容，常用的蛋白质含量评测方法有凯氏定氮法、双缩脲试剂法、Lowry法、考马斯亮蓝法等。
本实验采用凯氏定氮法、双缩脲试剂法和Lowry法三种方法对蛋白质含量进行评测。
1. 凯氏定氮法：将含氮有机物与浓硫酸共热，经一系列的分解、碳化和氧化还原反应等复杂过程，最后有机氮转变为无机氮硫酸铵，根据硫酸铵的含量计算蛋白质含量。
2. 双缩脲试剂法：蛋白质分子含有大量彼此相连的肽键（-CO-NH-），在碱性条件下与Cu2+发生双缩脲反应，生成紫红色络合物，根据络合物的吸光度计算蛋白质含量。
3. Lowry法：蛋白质在碱性条件下与铜离子作用生成蛋白质铜复合物，该复合物加入酚试剂后产生蓝色复合物，根据蓝色复合物在650nm处的吸光度值与蛋白质含量成正比，计算蛋白质含量。
三、实验材料与试剂1. 实验材料：鸡蛋清、牛肉、大豆蛋白等。
2. 试剂：（1）凯氏定氮法试剂：浓硫酸、硫酸钾、硫酸铜、过氧化氢、硼酸、标准硫酸铵溶液等。
（2）双缩脲试剂法试剂：硫酸铜溶液、氢氧化钠溶液、酒石酸钾钠溶液、碘化钾溶液等。
（3）Lowry法试剂：Folin-酚试剂、铜试剂、硫酸铜溶液、酒石酸钾钠溶液、氢氧化钠溶液等。
四、实验步骤1. 凯氏定氮法：（1）取一定量的样品，加入适量的浓硫酸，置于凯氏烧瓶中；（2）加入适量的硫酸钾、硫酸铜和过氧化氢，加热消化；（3）消化完成后，加入适量的硼酸溶液，冷却；（4）滴定剩余的硼酸，计算硫酸铵的含量，进而计算蛋白质含量。
2. 双缩脲试剂法：（1）取一定量的样品，加入适量的双缩脲试剂，混合均匀；（2）室温下放置10分钟；（3）在540nm处测定吸光度，根据标准曲线计算蛋白质含量。
3. Lowry法：（1）取一定量的样品，加入适量的Lowry试剂，混合均匀；（2）室温下放置10分钟；（3）在650nm处测定吸光度，根据标准曲线计算蛋白质含量。
蛋白质含量的测定方法及原理
蛋白质含量的测定方法及原理蛋白质是生物体内重要的基础结构和功能分子，其含量的测定对于生物学和医学研究具有重要意义。
目前常用的蛋白质含量测定方法主要包括生物化学法、生物物理法和免疫学法等。
下面将对这几种方法的原理进行详细介绍。
1. 生物化学法：生物化学法通过酶促反应或化学反应，将蛋白质转化成可以测定的可溶物或在一定条件下呈现特定吸光度的产物，从而测定蛋白质的含量。
常用的生物化学法有Lowry法、Bradford法和BCA法。
(1) Lowry法：Lowry法是1969年由Lowry等人开发的一种蛋白质定量方法。
该方法利用蛋白质与Folin-Ciocalteu试剂在碱性条件下发生氧化反应，生成具有最大吸收峰的蓝色产物，通过测定产物的光密度与一系列标准溶液进行比较，来确定蛋白质的含量。
(2) Bradford法：Bradford法是Bradford于1976年提出的一种测定蛋白质含量的方法。
该方法基于蛋白质与染料(Coomassie Brilliant Blue G-250)之间的特异结合，蛋白质和染料形成一个蛋白质-染料复合物，该复合物的吸光度变化与蛋白质的浓度呈正相关。
通过测定复合物的光密度与一系列标准溶液进行比较，来确定蛋白质的含量。
(3) BCA法：BCA法是一种在碱性条件下，将蛋白质还原成具有强吸收的蓝色离子的方法。
BCA试剂(含有琥珀酸铜II配合物和增强剂)能与蛋白质中的酸性氨基酸残基(尤其是含有两个以上连续胺基的肽键)发生氧化还原反应，生成具有强吸收的蓝色离子。
利用光密度测定产生的蓝色离子与一系列标准溶液进行比较，即可确定蛋白质的含量。
2. 生物物理法：生物物理法是通过光学原理，利用蛋白质溶液对光的吸收、散射或旋光等性质进行测定，来间接推算蛋白质的含量。
常用的生物物理法有紫外吸收光谱法、比色法和荧光法等。
(1) 紫外吸收光谱法：紫外吸收光谱法是通过蛋白质在紫外光区域的吸收特性来测定蛋白质的含量。
蛋白质含量测定方法
蛋白质含量测定方法
一、Lowry法。
Lowry法是一种经典的蛋白质含量测定方法，其原理是利用蛋白质与铜离子和
碱性试剂在碱性条件下发生蓝色化合物的形成，然后通过比色法来测定蛋白质的含量。
这种方法的优点是灵敏度高，适用于各种类型的蛋白质样品，但需要注意的是，样品中的其他成分可能对测定结果产生干扰。
二、Bradford法。
Bradford法是一种快速、简便的蛋白质含量测定方法，其原理是利用共轭蛋白
质与染料结合后产生吸收峰的变化来测定蛋白质的含量。
相比于Lowry法，Bradford法对于样品中存在的干扰物质的耐受性更强，因此在实际应用中更为广泛。
三、BCA法。
BCA法是一种基于铜离子的蛋白质含量测定方法，其原理是利用蛋白质与铜
离子和BCA试剂在碱性条件下发生紫色化合物的形成，然后通过比色法来测定蛋
白质的含量。
与Lowry法相比，BCA法对于一些常见的干扰物质的耐受性更好，
因此在实际应用中也得到了广泛的应用。
四、UV吸收法。
UV吸收法是一种利用蛋白质在280nm处的吸收峰来测定蛋白质含量的方法。
这种方法不需要添加试剂，操作简便，但对于一些特定类型的蛋白质可能存在灵敏度不足的问题。
以上介绍的几种蛋白质含量测定方法各有优缺点，选择合适的方法需要根据具
体的实验要求和样品特性来进行。
在进行蛋白质含量测定时，还需要注意样品的制备、操作的规范性以及仪器的准确性，以确保获得可靠的实验结果。
希望本文介绍的内容能对相关研究工作者有所帮助。
生化综合实验报告--测定蛋白质含量的三种方法及其比较
①容量瓶②试管及试管架
③恒温水浴槽④吸量管
⑤分光光度计⑥电热套
⑦锥形瓶⑧比色皿
(3)紫外吸收法
试剂:
样品蛋白溶液:准确称样品蛋白质,配制成一定浓度的溶液。
器材:
①紫外分光光度计②容量瓶
③试管、试管架④吸量管
⑤锥形瓶⑥比色皿
4．实验方法步骤及注意事项
双缩脲法
标准曲线的绘制:
取12支试管分成两组，按下表平行操作，绘制标准曲线。
实验远没有我想象的那样简单，要想做好一个实验，容不得半点马虎。综合实验正是这培养了我们的耐心、恒心和信心，让我们的思维和创造力得到了大幅度的提高，让我们的科学素养有了很大的飞越。真真正正变学生的被动学习为主动学习，激发了我们的学习热情，不管实验成功或是失败，我们都能从中获得很多从其它地方得不到的知识，让我们获益匪浅！
若样品中含有大量吸收紫外线的物质，会出现较大的干扰。
5.实验数据处理方法
双缩脲法
试
剂
0
1
2
3
4
5
样品1
样品2
O．D540
0
0.021
0.052
0.160
0.316
0.345
0.08
0.029
标准蛋白质浓度(mg/ml）
0
1
2
3
4
5
X
Y
考马斯亮蓝染色法
试
剂
0
1
2
3
4
5
样品1
样品2
蛋白质浓度（ug/ml）
样品测定:
①制备样品的蛋白质提取液。
②取出两份1.0 ml样品液。操作同标准曲线，测定样品的OD值，平行两份
计算:
生化实验 实验一：蛋白质含量测定方法的研究
实验一：蛋白质含量测定方法的研究一、研究背景：目前常用的蛋白质含量的定方法有四种：凯氏定氮，Folin-酚法，考马斯亮蓝法，紫外法。
几种方法各有各自的优势和精确度，根据不同的材料应选择不同的检测方法。
二、研究目标：通过对不同测定蛋白质含量方法的比较，找出实际实验操作中针对不同底物的最佳选择。
三、研究策略：对同样的蛋白质样品，用紫外法，Folin-酚法，考马斯亮蓝法四种方法进行测定，再向蛋白质样品中分别加入酪氨酸，EDTA ，嘌呤，再用三种方法进行测量，再将测量结果进行比较。
四、研究方案及可行性分析：经过上周的讨论以及老师的分析，我们必须绕过“标准浓度”这个判定方法，因此用增大杂质的影响的方法进行比较。
在生物样品中分别加入不同杂质，再进行测量，受某种杂质影响较大的实验方法测量出的结果必然会与另两个的结果有较大的偏差，因此可以比较出在不同非蛋白质杂质对不同测量方法的影响，因此可以作为日常实验中的选择依据。
五、具体实验设计1.试剂与仪器（1）试剂：标准牛血清蛋白溶液，1mg/ml；考马斯亮蓝G-250；乙醇；磷酸（85%）；试剂甲：10g碳酸钠，2g氢氧化钠，0.5g酒石酸钾钠溶解后用蒸馏水定容至500ml；0.5g五水硫酸铜溶解后，用蒸馏水定容至100ml；试剂乙：1NFolin--酚试剂(乙)；蛋白质样品：绿豆芽下胚轴；EDTA0.05g，饱和酪氨酸溶液1ml；嘌呤溶液1ml（2）仪器紫外分光光度计；移液管0.5*1,1ml*2,5ml*1；试管和试管架；722型分光光度计；恒温水浴；具塞刻度试管：15ml*8；小烧杯2个，漏斗及架；分析天平，容量瓶，研钵；离心机，药物天平；量筒10ml*1,刻度吸管：1ml*2,0.1ml*2，剪刀2.具体操作步骤与原始数据记录（1）紫外法测定蛋白质含量：按下表配制溶液→1cm石英比色杯测光密度值→绘制标准曲线→1g绿豆芽下胚轴研磨→50ml容量瓶定容，过滤，取滤液为样品A1→重复上步3次，在滤液中分别加入EDTA,酪氨酸溶液，嘌呤溶液，标记为乙试剂→半小时后650nm下比色→绘制标准曲线→按步骤(1)制取相同绿豆芽下胚轴滤→595nm下比色→绘制标准曲线→按步骤（1）制取样品，标号A3，B3，C3，六、质疑及相关思考对于测定蛋白质含量的实验，是否需要做几组平行实验？如果全部都做平行实验，则实验量过大，是测量程序变得复杂，参考书上的资料，也不是全部都有平行组。
几种测蛋白含量方法的比较
几种测蛋白含量方法的比较蛋白质含量测定方法的比较及肽含量的测定（一）蛋白质测定方法的比较（原理、优缺点）蛋白质含量测定法，目前包括定氮法、双缩脲法、福林酚法（Lowry 法）和紫外吸收法、考马斯亮蓝法。
其中考马斯亮蓝和福林酚法灵敏度最高，比紫外吸收法灵敏10~20倍，比双缩脲法灵敏100 倍以上。
定氮法较复杂，但准确，往往以定氮法测定的蛋白质作为其他方法的标准蛋白质。
在选择方法时应该考虑：（1）实验测定要求的灵敏度和精确度；（2）蛋白质的性质；（3）溶液中存在的干扰物质；（4）测定花费时间。
蛋白质含量测定法，目前包括定氮法、双缩脲法、福林酚法（Lowry 法）和紫外吸收法、考马斯亮蓝法。
其中考马斯亮蓝和福林酚法灵敏度最高，比紫外吸收法灵敏10~20倍，比双缩脲法灵敏100 倍以上。
定氮法较复杂，但准确，往往以定氮法测定的蛋白质作为其他方法的标准蛋白质。
在选择方法时应该考虑：（1）实验测定要求的灵敏度和精确度；（2）蛋白质的性质；（3）溶液中存在的干扰物质；（4）测定花费时间。
1 微量凯氏定氮法（GB 5009.5-2010）1.1 原理样品与浓硫酸共热。
含氮有机物即分解产生氨（消化），氨又与硫酸作用，变成硫酸氨。
经强碱碱化使之分解放出氨，借蒸汽将氨蒸至酸液中，根据此酸液被中和的程度可计算得样品之氮含量。
1.2 操作方法样品经前处理、炭化、消化、蒸馏、滴定等主要步骤1.3特点准确度较高，适用于0.2~ I.Omg氮，误差为±%;操作复杂费时，整个过程需要耗时8~10h,试剂消耗量大。
，测得结果为总氮含量，包括蛋白氮和非蛋白氮含量;适用范围广，几乎所有样品均可用此方法。
2 双缩脲比色法2.1 原理双缩脲法是利用蛋白质的双缩脲反应而测定蛋白质含量的方法。
因蛋白质含有两个以上的肽键，所以有双缩脲反应。
在碱性溶液中蛋白质与Cu2+形成紫红色络合物，在一定的实验条件下，未知样品溶液与标准蛋白质溶液同时反应，并于540~560nm 测定，即可以通过标准蛋白质的标准曲线求出未知样品的蛋白质浓度。
蛋白质含量测定方法及优缺点
蛋白质含量测定方法及优缺点嘿，咱先说说凯氏定氮法吧！这方法就是把蛋白质里的氮给测出来，然后再换算成蛋白质含量。
步骤呢，先把样品消解，让蛋白质里的氮变成铵盐，再用碱把铵盐变成氨气，用硼酸吸收氨气，最后用酸滴定硼酸里的氨。
哇塞，听起来是不是超厉害？注意事项嘛，消解的时候一定要小心，别让样品溅出来烫伤自己。
这方法安全不？只要操作得当，还是挺安全的。
稳定性也不错，只要仪器状态好，结果就比较准。
那它应用场景可多了去了，像食品检测、饲料分析啥的都能用。
优势就是比较经典，大家都认可。
比如说检测牛奶的蛋白质含量，用凯氏定氮法就很靠谱，结果准确得很呢！再讲讲双缩脲法。
这方法是利用蛋白质和双缩脲试剂反应产生颜色变化来测含量。
步骤就是把样品和双缩脲试剂混合，然后看颜色深浅。
简单吧？注意不能有干扰物质哦，不然颜色就不准了。
安全性那是杠杠的，没啥危险。
稳定性也还行，只要试剂没问题。
应用场景呢，像生物制品检测就常用。
优势就是快速方便呀！想象一下，这就像你一下子找到了宝藏，又快又准。
比如检测蛋白质溶液，双缩脲法几分钟就能出结果，多爽！最后说说考马斯亮蓝法。
这个是靠蛋白质和考马斯亮蓝结合变色来测。
把样品加进考马斯亮蓝溶液里，颜色一变就知道含量了。
注意溶液的浓度要合适哦。
安全得很，没啥风险。
稳定性也不错。
应用在生物化学实验里很多。
优势就是特别灵敏。
这就好比你有一双超级厉害的眼睛，啥都能看得清清楚楚。
比如检测蛋白质提取物，考马斯亮蓝法能检测出微量的蛋白质，厉害吧！总之，不同的蛋白质含量测定方法都有自己的特点和优势，咱得根据实际情况选择合适的方法，这样才能准确又高效地测出蛋白质含量。
测量蛋白质含量的几种方法以及优缺点
一、染料法
优点：因为它操作简单，反应时间短，染料-蛋白质颜色稳定，抗干扰性强。
缺点：对于那些与标准蛋白氨基酸组成有较大差异的蛋白质，有一定误差，因为不同的蛋白质与染料的结合是不同的，故该法适合测定与标准蛋白质氨基酸组成相近的蛋白质。
二、双缩脲(Biuret)法测定蛋白质含量
优点：较快速，不同的蛋白质产生颜色的深浅相近，以及干扰物质少。
缺点：灵敏度差。
因此双缩脲法常用于快速，但并不需要十分精确的蛋白质测定。
三、酚试剂法测定血清蛋白质含量
（改良Lowry法）
优点：方法简便，灵敏度高，能够测定2～100μg的微量蛋白质。
其方法凯氏定氮法操作简便，其灵敏度比双缩脲法高100倍左右。
因此经常被用于科研与临床检验。
四、紫外吸收法
优点：灵敏度高，仪器设备简单，操作简便。
缺点：准确度不高，有的检测不可用，有限制。
五、凯氏定氮法（Kjeldahl determination）优点：可用于所有食品的蛋白质分析中，操作相对简单费用低。
结果
准确、改进后可以用于微量蛋白质的测定。
缺点：最终测定的是总有机氮而不是蛋白质氮。
精确度低于双缩脲法、试剂有腐蚀性。
六、F olin－酚试剂法（Folin-phenol
Reagent Method ）
优点：灵敏度高，方便简单。
缺点：费时较长，精确控制操作时间
七、考马斯亮蓝法（Coomassie
brilliant blue staining ）
优点：灵敏度高，测定快速，应用广泛，只需一种试剂，用时间短。
缺点：有较大的偏差，而且去污剂等很多试剂对其有干扰。
蛋白质含量测定方法
蛋白质含量的测定方法有：凯氏定氮法、双缩脲法、酚试剂法、紫外吸收法、考马斯亮蓝法。
1、凯氏定氮法
凯氏定氮法是测定化合物或混合物中总氮量的一种方法。
即在有催化剂的条件下，用浓硫酸消化样品将有机氮都转变成无机铵盐，然后在碱性条件下将铵盐转化为氨，随水蒸气蒸馏出来并为过量的硼酸液吸收，再以标准盐酸滴定，就可计算出样品中的氮量。
由于蛋白质含氮量比较恒定，可由其氮量计算蛋白质含量，故此法是经典的蛋白质定量方法。
2、双缩脲法
双缩脲法是一个用于鉴定蛋白质的分析方法。
双缩脲试剂是一个碱性的含铜试液，呈蓝色，由1%氢氧化钾、几滴1%硫酸铜和酒石酸钾钠配制。
当底物中含有肽键时（多肽），试液中的铜与多肽配位，配合物呈紫色。
可通过比色法分析浓度，在紫外可见光谱中的波长为540nm。
鉴定反应的灵敏度为5-160mg/ml。
鉴定反应蛋白质单位1-10mg。
3、酚试剂法
取6支试管分别标号，前5支试管分别加入不同浓度的标准蛋白溶液，最后一支试管加待测蛋白质溶液，不加标准蛋白溶液，在室温下放置30分钟，以未加蛋白质溶液的第一支试管作为空白对照，于650nm波长处测定各管中溶液的吸光度值。
4、紫外吸收法
大多数蛋白质在280nm波长处有特征的最大吸收，这是由于蛋白质中有酪氨酸，色氨酸和苯丙氨酸存在，可用于测定0.1～0.5mg/mL含量的蛋白质溶液。
5、考马斯亮蓝法
考马斯亮蓝显色法的基本原理是根据蛋白质可与考马斯亮蓝G-250定量结合。
一般情况，当溶液中的蛋白质浓度增加时，显色液在595nm处的吸光度基
本能保持线性增加，因此可以用考马斯亮蓝G-250显色法来测定溶液中蛋白质的含量。
(精选)蛋白质含量的测定测定蛋白质含量的方法`
注意事项
测定蛋白质的浓度最好在25~100μg之 间，故血清稀释倍数一般为200~500。
各管加酚试剂应快，必须立即混匀， 否则就会出现浑浊。
12
实验 结果
1、 原始数据:各管的OD值
2、绘制出标准曲线：要求规范作图 铅笔作图、 横、纵坐标名称及单位 日期、作者 、曲线名称 曲线上体现出待测样品的OD值及 ug数。
碱性 蛋白质肽键
烯醇化
铜离子在pH10条件下螯合在肽键结构中
从而使电子转移到混和酸的显色剂上， 增强了酚试剂对蛋白质的敏感性。
5
蛋白质与酚试剂呈色深浅与蛋白质的 含量成正比，利用蛋白质的浓度与呈 色的关系，制备标准曲线，来测定样 品中的蛋白质含量。
6
实验操作
用已知浓度的标准牛血清白蛋白溶液 （浓度为50mg%）配成一系列不同 浓度的蛋白质溶液。
二、比色法：利用蛋白质与不同试剂的呈色反应， 测定蛋白质的含量，如双缩尿法和酚试剂法 （lowry’s method）。
三、紫外分光光度法：利用蛋白质对280nm紫 外光有最大的吸光度而采用
4
蛋白质 呈色试剂: 酚试剂 磷钼酸--钨酸的混和酸
半胱氨酸、 酪氨酸、 色氨酸 组氨酸
还原型混和酸
(兰色)
3、计算：100ml血清中的蛋白质含量。 要求： 写出公式、代入数据、写出结果。
13
实 验 讨论
分析实验误差产生的原因 总结该方法测定蛋白质含量的优缺点。
14
个人观点供参考，欢迎讨论！
取七支试管，编号，按下表操作
7
编号 蛋白质含量 （μg） 标准液(ml) 生理盐水ml) 试剂A(ml)
试剂B
试剂C(混匀)
12 3 4 5 67 50 100 150 200 250 空白
蛋白质含量的测定方法及原理
蛋白质含量的测定方法及原理一、紫外吸收法。
紫外吸收法是一种常用的蛋白质含量测定方法，其原理是根据蛋白质在280nm波长处的特征吸收峰来进行测定。
在实验中，首先将待测样品溶解于适量的缓冲液中，然后使用紫外可见分光光度计测定样品在280nm处的吸光值，通过标准曲线的对照，可以计算出样品中蛋白质的含量。
二、比色法。
比色法是另一种常用的蛋白质含量测定方法，其原理是利用蛋白质与某些特定试剂发生化学反应后产生显色物质，通过测定显色物质的吸光值来计算样品中蛋白质的含量。
常用的试剂包括布拉德福试剂、伯杰试剂等，不同试剂适用于不同类型的蛋白质测定。
三、BCA法。
BCA法是一种基于铜离子与蛋白质中的蛋白质酰基发生还原反应的测定方法。
其原理是将待测样品与BCA试剂混合后在60℃条件下反应，然后使用分光光度计测定产生的显色物质的吸光值，通过标准曲线计算出样品中蛋白质的含量。
四、Lowry法。
Lowry法是一种以菁蓝G与蛋白质发生化学反应产生显色物质的测定方法。
其原理是将待测样品与碱液、菁蓝G和还原剂混合后在室温下反应，然后使用分光光度计测定产生的显色物质的吸光值，通过标准曲线计算出样品中蛋白质的含量。
五、总蛋白法。
总蛋白法是一种直接测定样品中总蛋白含量的方法，其原理是将待测样品与总蛋白试剂混合后在室温下反应，然后使用分光光度计测定产生的显色物质的吸光值，通过标准曲线计算出样品中蛋白质的含量。
总结，蛋白质含量的测定方法及原理有多种，每种方法都有其适用的样品类型和测定条件，研究人员可以根据自己的实验需要选择合适的方法进行蛋白质含量的测定工作。
希望本文所介绍的内容能为相关领域的研究工作提供一定的参考价值。
蛋白质含量的测定方法
蛋白质含量的测定方法
蛋白质的含量是指在样品中蛋白质的质量或浓度。
测定蛋白质含量是许多生物学和生化实验中常用的实验方法之一，以下是一些常见的测定方法：
1. 布拉德福德法（Bradford法）：该方法利用布拉德福德蛋白
质染料与蛋白质形成复合物，并产生特定的颜色，通过比色法测定颜色强度从而确定含量。
2. 低里氏法（Lowry法）：该方法基于在碱性条件下，蛋白质
与碱性铜离子复合生成紫色产物的原理，通过比色法定量测定。
3. BCA法（Bicinchoninic Acid法）：该方法利用BCA试剂与
蛋白质中的蛋白质产生螯合，形成紫色到蓝色的产物，并通过光度计测定吸光度从而测定含量。
4. 还原硝酸银法：该方法是通过硝酸银与蛋白质中的氨基酸中的硫原子反应产生黑色沉淀，通过沉淀的重量或者比色法测定吸光度来确定蛋白质含量。
5. 紫外吸收法：蛋白质具有特定的紫外吸收峰，在特定波长下进行测定，可以通过比较样品吸光度与标准曲线来计算蛋白质含量。
以上只是一些常见的测定方法，根据具体需要和实验条件的不同，可以选择适合的方法进行蛋白质含量的测定。
测定蛋白质含量的方法和原理
测定蛋白质含量的方法和原理蛋白质是生物体内最为重要的有机分子之一，对于了解生物体的结构和功能至关重要。
因此，准确、精确地测定蛋白质含量是生物化学研究中的关键一步。
本文将介绍常用的测定蛋白质含量的方法和其原理。
一、低里德伯法（Lowry法）低里德伯法是测定蛋白质含量的常用方法之一。
其原理基于酚在碱性条件下与蛋白质发生反应，在存在重铬酸钾的条件下生成一种带有吸收峰的蓝色化合物。
这种蓝色化合物在750 nm波长处有最大的吸光度，其吸光度与蛋白质含量呈线性关系。
二、比色法比色法是测定蛋白质含量的常用方法之一。
常用的比色剂有布拉德福法和加伦氏法。
布拉德福法主要原理是根据蛋白质中含有的酪氨酸、酪氨酸衍生物等组分在碱性条件下与染料结合，形成有色产物，利用比色计测定产物的吸光度从而测定蛋白质的含量。
三、BCA法BCA法是一种基于铜离子的氧化还原反应的方法。
其原理是在碱性条件下，蛋白质中的蛋白质-联没有的二瓣基色团（BCA）与四氢呋喃（THF）结合，生成紫色的螯合物。
这种紫色螯合物的吸光度与蛋白质的含量成正比，可以通过比色计测定吸光度值来确定蛋白质含量。
四、荧光法荧光法是一种基于蛋白质与荧光染料之间的相互作用的测定方法。
常用的荧光染料有吖啶橙、铜铁磺胺二异硫氰酸盐（Ferrozine）等。
这些荧光染料在特定的pH值和溶液中与蛋白质发生作用，产生荧光信号。
利用荧光光谱仪测定荧光强度，通过标准曲线得出蛋白质的含量。
五、生物传感器法生物传感器法是利用生物传感器对蛋白质的特异性识别和反应进行测定的方法。
常用的生物传感器包括酶传感器、抗体传感器等。
这些传感器可以通过与蛋白质结合形成复合物或发生反应，产生信号。
利用信号的强度可以测定蛋白质的含量。
六、尿素与氨基酸分析法尿素与氨基酸分析法是通过测定蛋白质降解产生的尿素和游离氨基酸来推测蛋白质的含量。
该方法基于蛋白质降解后，其氨基酸经氧化反应生成尿素，通过检测尿素或游离氨基酸的浓度来间接测定蛋白质含量。
蛋白质含量测定方法研究
蛋白质含量测定方法研究蛋白质含量测定方法研究引言：蛋白质是生物体中起着重要功能的一类生物大分子，广泛存在于细胞、组织和各种生物液体中。
蛋白质的含量测定对于生物学、医学、农学等领域的研究具有重要意义。
目前，常用的蛋白质含量测定方法包括比色法、光谱法、浊度法等。
本文将对这几种方法进行详细介绍和分析。
一、比色法比色法是一种常用的蛋白质含量测定方法。
其基本原理是利用蛋白质与某些化学试剂形成复合物，产生颜色，并通过比色计测定复合物的吸光度，进而确定蛋白质的含量。
常用的比色试剂有布拉德福德试剂、比西酮试剂等。
比色法简单易行，灵敏度高，测定结果准确可靠，被广泛应用于各种实验室及工业生产中。
二、光谱法光谱法是利用蛋白质溶液在一定波长范围内的吸光特性，通过测定吸光度的变化来确定蛋白质的含量。
常用的光谱测定方法有紫外吸收光谱法和荧光光谱法。
紫外吸收光谱法是基于蛋白质中的芳香性氨基酸分子具有较高的吸收特性。
荧光光谱法则是利用蛋白质在特定激发波长下，发生荧光自发射，通过测定荧光强度来确定蛋白质的含量。
光谱法无需标定试剂，操作简便，灵敏度高，但对于特定结构的蛋白质，其吸光特性可能受到其他分子的影响。
三、浑浊度法浑浊度法是基于蛋白质在酸或碱条件下溶解度发生变化的原理，通过测定溶液的浑浊度来确定蛋白质含量。
在测定过程中，常使用专用的浑浊度计或离心计来测定样品的浑浊度。
浑浊度法操作简单，无需复杂的仪器设备，而且结果与实际含量相符度较高。
但由于浑浊度法测定的是蛋白质的总含量，因此无法区分出各个蛋白质组分的含量。
四、测定方法的选择根据实验目的、样品特点和可用设备等因素，选择合适的蛋白质含量测定方法是十分重要的。
如果样品含有多种蛋白质组分且需要快速测定总含量，可以选择比色法或浑浊度法。
如果需要对特定蛋白质组分进行定量分析，光谱法可能更为合适。
同时，比色法和光谱法需要标定试剂，因此在实验中应注意选择合适的标定试剂和标准曲线。
结论：蛋白质含量测定是生物学、医学等领域研究的重要内容。
测定蛋白质含量的方法有哪些
测定蛋白质含量的方法有哪些测定蛋白质含量是生物化学实验中常见的一项工作，目的在于确定给定样品中蛋白质的含量。
这样的测定对于许多领域的研究和应用都是至关重要的，包括分子生物学、生物医学研究、食品科学和营养学等。
蛋白质含量的测定方法根据原理和技术的不同可以分为多种类型，下面将详细介绍其中常用的方法。
1. 低里斯法（Lowry法）：这是一种常用的测定蛋白质含量的光度法。
在这个方法中，样品中的蛋白质与Folin-Ciocalteu试剂中的碱性铜离子形成络合物，这些络合物在碱性条件下在750 nm附近吸收光线。
通过与蛋白质浓度相关的标准曲线进行比较，可以确定样品中蛋白质的含量。
2. BCA法（双异硫氰酸铜法）：BCA法也是一种常用的光度法，它与低里斯法原理类似。
在这个方法中，蛋白质的还原性氨基酸（主要是赖氨酸、组氨酸和半胱氨酸）与BCA试剂中的铜离子反应生成紫色的络合物，这些络合物在560 nm 处吸收光线。
通过与蛋白质浓度相关的标准曲线进行比较，可以确定样品中蛋白质的含量。
3. 线性校正法（Coomassie蓝法）：这也是一种常用的光度法。
在这个方法中，蛋白质与Coomassie Brilliant Blue G-250试剂反应生成蓝色络合物，这些络合物在595 nm处吸收光线。
通过与蛋白质浓度相关的标准曲线进行比较，可以确定样品中蛋白质的含量。
4. 尿素法：这是一种测定总蛋白质含量的化学方法。
在尿素法中，样品中的蛋白质与硝酸铜溶液反应生成紫色络合物，测定其吸光度从而计算蛋白质的含量。
5. Biuret法：这是一种经典的测定蛋白质含量的光度法。
这个方法利用了蛋白质中的肽键和某些氨基酸（特别是赖氨酸和组氨酸）与碱性铜离子形成紫色络合物的性质。
测定络合物的吸光度从而计算蛋白质的含量。
6. Kjeldahl法：这是一种测定总氮含量的化学方法，因为蛋白质中含有氮元素，所以可以通过测定氮含量来推算蛋白质的含量。
这个方法需要将样品中的蛋白质进行分解、提取和转化，最终测定氮含量，并换算为蛋白质含量。
测蛋白质含量实验报告
一、实验目的1. 熟悉蛋白质含量测定的原理和方法；2. 掌握双缩脲法和凯氏定氮法测定蛋白质含量的操作步骤；3. 了解不同方法测定蛋白质含量的优缺点；4. 培养实验操作能力和数据处理能力。
二、实验原理1. 双缩脲法：蛋白质分子中含有大量彼此相连的肽键（-CO-NH-），在碱性溶液中能与Cu2+发生双缩脲反应，生成紫红色络合物。
此反应和两个尿素分子缩合后生成的双缩脲（H2N-OC-NH-CO-NH2）在碱性溶液中与铜离子作用形成紫红色的反应相似，故称之为双缩脲反应。
这种紫红色络合物在540nm处的吸光度与蛋白质含量在一定范围内呈正比关系。
2. 凯氏定氮法：蛋白质中的氮含量相对稳定，约为16%左右。
通过凯氏定氮法测定样品中的氮含量，再乘以 6.25，即可得到蛋白质含量。
该方法包括样品的消化、蒸馏、滴定等步骤。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：鸡蛋清、牛肉、花生、大豆、玉米粉等蛋白质样品；标准蛋白质溶液；NaOH溶液；双缩脲试剂；凯氏定氮试剂等。
2. 实验仪器：分光光度计、电子天平、移液器、试管、锥形瓶、凯氏烧瓶、电炉、蒸馏装置、滴定管等。
四、实验步骤1. 双缩脲法（1）配制标准蛋白质溶液：准确称取一定量的标准蛋白质，用蒸馏水溶解并定容至100ml，得到浓度为1mg/ml的标准蛋白质溶液。
（2）制备样品溶液：准确称取一定量的蛋白质样品，用蒸馏水溶解并定容至10ml，得到浓度为0.1mg/ml的样品溶液。
（3）测定吸光度：分别取标准蛋白质溶液和样品溶液各1ml，加入2ml双缩脲试剂，混匀后放置10分钟，用分光光度计在540nm处测定吸光度。
2. 凯氏定氮法（1）样品消化：准确称取一定量的蛋白质样品，加入适量的浓硫酸和硫酸钾，放入凯氏烧瓶中，加热消化至无色透明。
（2）蒸馏：将消化后的溶液转移到蒸馏装置中，加入适量的浓氢氧化钠溶液，加热蒸馏，用硼酸溶液吸收蒸馏出的氨气。
（3）滴定：待吸收完全后，用0.1mol/L盐酸标准溶液滴定至终点，记录消耗的盐酸体积。
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③蛋白质样品或蛋白质样品溶液。
(2)考马斯亮蓝染色法
试剂:
①考马斯亮蓝试剂:考马斯亮蓝G-250 100mg溶于50 ml 95%乙醇中，加入100ml 85%磷酸，用蒸馏水稀释至1000 ml。
②标准蛋白质溶液:牛血清蛋白或卵其清白蛋白等，预先测定其蛋白纯度，再根据纯度用蒸馏水或0.9％NaCl准确配制。
在一定条件下，未知样品的溶液与标准蛋白质溶液同时反应，并于540nm下比色，可以通过标准蛋白质的标准曲线求出未知样品的蛋白质浓度。测定范围为1~10mg蛋白质。
（2）考马斯亮蓝染色法测定蛋白质浓度（Bradford法）
原理：考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度，属于染料结合法的一种。考马斯亮蓝G-250（coomassie brilliant blue，CBB）在游离状态下呈红色，当它与蛋白质结合后变为蓝色，在一定蛋白质浓度范围内，蛋白质.色素结合物在595 nm波长下的光吸收符合比尔定律，故可用于蛋白质的定量分析。蛋白质与考马斯亮蓝G-250结合2min左右达到平衡。该反应非常灵敏，可测微克级蛋白质含量。
②校正因子法
先计算出O.D280/O.D260的比值后，从下表中查出校正因子为“F”值，将“F”值代入，再由下述经验公式直接计算出该溶液的蛋白质浓度。
蛋白质浓度（mg/ml）= F×1/d×O.D280×N
式中，d为石英比色皿的厚度（cm）；N为溶液的稀释倍数。
紫外吸收法测定蛋白质含量的校正因子
注意事项：Байду номын сангаас
注意事项：
大量去污剂的存在对颜色影响太大不易消除。
紫外吸收法
①280nm与260nm的吸收差法
将待测蛋白质溶液适当稀释，在波长260nm和280nm处分别测出O.D值，然后利用280nm及260nm下的吸收差求出蛋白质的浓度。
计算:蛋白质浓度（mg/ml）=1.45O.D280—0.74O.D260
器材:
①容量瓶②试管及试管架
③恒温水浴槽④吸量管
⑤分光光度计⑥电热套
⑦锥形瓶⑧比色皿
(3)紫外吸收法
试剂:
样品蛋白溶液:准确称样品蛋白质,配制成一定浓度的溶液。
器材:
①紫外分光光度计②容量瓶
③试管、试管架④吸量管
⑤锥形瓶⑥比色皿
4．实验方法步骤及注意事项
双缩脲法
标准曲线的绘制:
取12支试管分成两组，按下表平行操作，绘制标准曲线。
考马斯亮蓝染色法
标准曲线的制作
1取12支试管，按下表加入试剂
2混匀，室温静置３min，以第１管为空白，于波长595nm处比色，测定OD值，
以的OD值为纵坐标，各标准液浓度为横坐标作标准曲线。
未知样品蛋白质含量的测定
准确吸取0.5 ml所制备的蛋白质样品稀释液，加入3.0 ml考马斯亮蓝G-250试剂后，所有的操作完全与标准曲线相同，测定样品的OD值。平行两份。从标准曲线上查出其蛋白质浓度，再根据稀释倍数计算样品的蛋白质含量。
本科学生综合性实验报告
学号姓名
学院专业、班级
实验课程名称测定蛋白质含量的三种方法及其比较
教师及职称
开课学期至学年学期
填报时间年月日
云南师范大学教务处编印
实验序号
十~十二
实验名称
测定蛋白质含量的三种方法及其比较
实验时间
2012/11/16~2012/11/30
实验室
睿智楼3幢331（生物技术实验室4）
1．实验目的：
⑴掌握双缩脲法定量测定蛋白质含量的原理和方法。
⑵掌握考马斯亮蓝法定量测定蛋白质含量的原理和方法。
⑶掌握紫外吸收法定量测定蛋白质含量的原理和方法。
⑷比较三种定量测定方法的异同。
2．实验原理、实验流程或装置示意图
（1）双缩脲法(Biuret法)测定蛋白质浓度
原理：在碱性溶液中，双缩脲(H2N-CO-NH-CO-NH2)与Cu2+作用形成紫红色的络合物，这一反应称双缩脲反应。具有两个或两个以上肽键的化合物都有双缩脲反应，因此蛋白质在碱性溶液中，也能与Cu2+形成紫红色络合物，颜色深浅与蛋白质浓度成正比，而与蛋白质分子量及氨基酸成分无关，故可用比色法测定蛋白质的浓度。
①标准酪蛋白溶液:用0.05 mol/L NaOH溶液配制。酪蛋白要预先测定其蛋白质纯度，再根据其纯度配制成标准溶液。也可用牛血清蛋白或卵其清白蛋白配制标准蛋白溶液。
②双缩脲试剂:溶解1.5gCuSO4·5H2O和6.0gNaKC4H4O6·4H2O于500ml蒸馏水中，在搅拌下加入300 ml 10% NaOH溶液，用蒸馏水定容到1升刻度，混匀备用。
若样品中含有大量吸收紫外线的物质，会出现较大的干扰。
5.实验数据处理方法
双缩脲法
试
剂
0
1
2
3
4
5
样品1
样品2
O．D540
0
0.021
0.052
0.160
0.316
0.345
0.08
0.029
标准蛋白质浓度(mg/ml）
0
1
2
3
4
5
X
Y
考马斯亮蓝染色法
试
剂
0
1
2
3
4
5
样品1
样品2
蛋白质浓度（ug/ml）
0
10
20
30
40
50
X
Y
O.D595
0
0.021
0.052
0.160
0.315
0.345
0.08
0.069
紫外吸收法
试
剂
260nm
280nm
O.D
1.147
1.120
6.参考文献
郑集，陈均辉编《《普通生物化学》》（第4版）高等教育出版社2007.6
陈均辉等编《《生物化学实验》》（第四版）科学出版社2008
样品测定:
①制备样品的蛋白质提取液。
②取出两份1.0 ml样品液。操作同标准曲线，测定样品的OD值，平行两份
计算:
取两组测定的平均值计算。
从标准曲线上查出其蛋白质浓度，再根据样品称重量和稀释倍数计算样品的蛋白质含量。
注意事项：
Tris、铵盐对测定有干扰，有大量脂肪性物质同时存在时，会产生混浊的反应混合物。
（3）紫外吸收法测定蛋白质浓度
原理：白质具有吸收紫外线的性质，吸收高峰在280nm波长处。在此波长范围内，蛋白质溶液的光吸收值（O.D280）与其含量呈正比关系，可用作定量测定。
3．实验设备及材料
（1）双缩脲法
实验器材：
①容量瓶②试管、试管架
③恒温水浴槽④吸量管
⑤分光光度计⑥电热套
⑦锥形瓶⑧比色皿
实验试剂：