细胞爬片、固定及免疫荧光的操作步骤
细胞爬片固定及免疫荧光的操作步骤
细胞爬片固定及免疫荧光的操作步骤细胞爬片：1.埋板准备：准备含有合适培养基的细胞培养板或培养皿。
将培养基预热至适宜的温度。
2.细胞处理：将需要爬片的细胞株从库存中取出，用PBS（磷酸盐缓冲液）或无酶胰蛋白酶溶解细胞外基质粘附，用培养基洗涤细胞。
3.细胞计数：用血细胞计数板或细胞计数仪计数细胞浓度，然后根据需要调整到合适的细胞密度。
4.接种细胞：将适量的细胞接种到埋板中，根据实验要求可以采用单细胞克隆或稀释传代法。
5.培养细胞：将埋板放入细胞培养箱的适当环境中，通常为37°C、5%CO2的培养箱。
根据实验需要，培养时间可以从几小时到几天不等。
固定：1.筛选固定剂：选择适合的固定剂，常用的固定剂包括乙醛和甲醛等。
2.固定细胞：使用适当的浓度的固定剂，将培养的细胞浸泡在固定剂中，通常需要15-30分钟的固定时间。
3.洗涤细胞：使用PBS等缓冲溶液洗涤固定的细胞，去除多余的固定剂。
免疫荧光：1.孔板准备：将需要进行免疫荧光染色的细胞或组织培养在培养皿或孔板中。
2.阻断非特异性结合：用0.1-5%BSA或牛血清等蛋白质溶液阻断非特异性结合位点，减少假阳性信号。
3.一抗染色：加入适当浓度的一抗（具体浓度由厂家确定）到需要染色的细胞上，对于细胞表面的抗原，可以直接在细胞外孔板中加入一抗。
4.清洗：用PBS或相应的缓冲液洗涤一抗残余的溶液。
5.二抗染色：加入与一抗同种小鼠或兔子抗体的特异性抗体（如荧光素、奥林染色试剂等）到孔板中，适当的浓度需根据实验所需，与一抗使用的缓冲液一致。
6.清洗：用PBS或相应的缓冲液洗涤二抗残余的溶液。
7.成图：用荧光显微镜观察样品，利用相应的激发波长和荧光滤镜观察和拍摄免疫染色的图像。
细胞爬片、固定和免疫荧光技术的步骤可以根据具体实验的要求进行调整和优化。
这些操作步骤在细胞和分子生物学研究中非常重要，可以用于检测和观察各种细胞结构和分子的表达和分布。
整个过程需要细心和耐心，并且需要严格控制各个步骤的条件以确保实验结果的准确性和可重复性。
细胞免疫荧光的方法(自己实践记录)
细胞免疫荧光I、步骤：一、固定：PBS 5min×3次振荡洗涤制作好的细胞爬片。
固定液覆盖细胞，RT 静置15min。
PBS 5min×3次振荡洗涤。
二、通透化：通透液覆盖细胞，RT 静置30min。
PBS 5min×3次振荡洗涤。
三、封闭：封闭液覆盖标本表面37℃孵育1h。
四、一抗孵育：一抗以合适浓度稀释PBS，覆盖标本表面。
4℃孵育过夜，第二天37℃复温1h。
PBS 5min×3次振荡洗涤。
五、二抗孵育：FITC标记二抗以合适浓度稀释于PBS，覆盖标本表面。
37℃避光孵育<60min。
PBS 5min×3次避光振荡洗涤。
六、染核：新鲜稀释Hoechst覆盖细胞表面，RT避光静置<10min。
PBS 5min×3次避光振荡洗涤。
七、封片：在干净的载玻片上滴一滴封片剂，将爬片的细胞面扣在封片剂上。
八、镜检，4℃避光保存。
II、注：1、细胞密度要合适，状态较好。
2、从孵育二抗开始要避光（关闭室内日光灯即可）。
3、完成后最好及时镜检，照相；分别用不同波长激发荧光，在Photoshop软件下合成一张图。
III、试剂配制：1、固定液：4%多聚甲醛/PBS：4g多聚甲醛，50～80mlPBS，加热至60℃，持续搅拌至完全溶解，（通常需滴加少许1n NaOH才能使溶液清亮），定容100ml，RT保存。
2、通透液：0.5 %(v/v)TritonX-100/PBS3、封闭液：正常山羊血清稀释于PBS；或商品化封闭液成品。
4、Hoechst：Hoechst33258即可。
5、封片剂：50%(v/v)甘油/PBS。
免疫荧光技术试验流程
免疫荧光技术试验流程免疫荧光技术（Immunofluorescence technique ）又称荧光抗体技术，是标记免疫技术中发展最早的一种。
它是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术。
很早以来就有一些学者试图将抗体分子与一些示踪物质结合，利用抗原抗体反应进行组织或细胞内抗原物质的定位。
以荧光抗体方法较常用。
用免疫荧光技术显示和检查细胞或组织内抗原或半抗原物质等方法称为免疫荧光细胞（或组织）化学技术。
免疫细胞荧光试验流程：1、细胞爬片制备1）、将盖玻片放入培养瓶或多孔板中2）、细胞生长实现60％后取出盖玻片3）、用PBS清洗盖玻片3次4）、将盖玻片（细胞面朝上）浸入冷丙酮或4％多聚甲醛或中性福尔马林中10至20分钟（盖上盖子以防止蒸发）5）、用PBS清洗盖玻片3次6）、将盖玻片放在滤纸上（细胞朝上）7）、干燥8—10小时，放入—20°C保管8）、试验前解冻爬片，在室温下用中性PBS浸泡10—15分钟注意：使用多聚甲醛和福尔马林固定可能会导致绿色光谱中的自发荧光。
在这种情况下，可以试验红色或红外的荧光素。
2、破膜1）、0.1％Triton孵育10min2）、PBS洗涤3次，每次3分钟3、抗原修复1）、用滤纸擦干细胞爬片2）、在爬片上加入如胰蛋白酶或其它酶抗原修复液3）、在室温下孵育10分钟4）、用PBS洗涤3次，每次10分钟4、封闭1）、在爬片上加入5％BSA封闭液（种属与二抗来源相同）2）、37°C孵育30分钟3）、甩掉多余的液体并用滤纸擦干（不需要洗涤）5、一抗孵育1）、用抗体稀释液稀释一抗，实现抗体制造商介绍的浓度2）、将稀释的抗体（介绍浓度：0.4μg至2μg）加到爬片上，4°C孵育过夜3）、用PBS洗涤3次，每次15分钟6、二抗孵育1）、用抗体稀释液稀释生物素化的二抗2）、将稀释的抗体加到爬片上，37°C孵育30分钟3）、用PBS洗涤3次，每次8分钟7、染色1）、爬片上滴加稀释好的SABC—FITC或SABC—Cy3试剂2）、37°C孵育30分钟（避光）3）、用PBS洗涤2次4）、滴加DAPI染液，避光孵育10min5）、用PBS洗涤3次6）、用抗荧光衰减封片剂封片，荧光显微镜下察看结果。
细胞免疫荧光标准操作流程
细胞免疫荧光细胞免疫荧光标准操作流程标准操作流程
20×20盖玻片清洗干净后，无水乙醇浸泡过夜，载玻片置于无水乙醇中浸泡，待用；
1. 爬片；目标细胞（如：转染24h 的细胞）胰酶消化后，用新鲜培养基吹打悬浮；取出盖玻片，酒精灯火焰灼烧至乙醇燃烧干净，盖玻片平放在6孔板内，接种细胞至六孔板，5%CO2培养箱37C 培养24h，细胞贴附在盖玻片上。
2. 收片；细胞贴附24h 后，去除培养基，加入预冷PBS 洗片，重复一次。
3. 固定；加入1ml 预冷的4%多聚甲醛，覆盖盖玻片，冰上孵育10-15min，PBS 洗片3次。
4. 透化；加入0.5ml 遇冷的0.5%Triton-100，冰上孵育5min ，PBS 洗片3次，吸尽表面液体。
5. 封闭；常温下，加入2ml 含10%FBS 的PBS ，孵育1h ，PBS 洗片1次。
6. 一抗孵育；稍晾干盖玻片，加入100ul 稀释好的一抗，室温孵育2h ，PBS 洗涤3次。
7. 二抗孵育；同上
8. 染核；加入0.5ml DAPI 工作液（1ug/ml ，PBS 稀释），覆盖盖玻片，室温孵育5min 。
9. 封片；PBS 洗片三次后，晾干，同时晾干载玻片后，滴上30ul 封片剂，盖上盖玻片，待观察。
Long Qi 2011-11-2。
抗炎细胞实验操作步骤
一、实验目的通过本实验，了解抗炎细胞实验的基本原理和操作步骤，掌握细胞培养、细胞爬片、免疫荧光等技术，为后续抗炎药物筛选和机制研究提供基础。
二、实验原理抗炎细胞实验主要是通过体外培养细胞，模拟体内炎症反应，观察不同抗炎药物对炎症反应的影响，从而研究其抗炎机制。
实验过程中，常用的细胞类型有巨噬细胞、中性粒细胞、成纤维细胞等。
三、实验材料1. 细胞：巨噬细胞、中性粒细胞、成纤维细胞等；2. 培养基：DMEM、RPMI-1640等；3. 胰蛋白酶、EDTA等消化酶；4. 抗炎药物；5. 抗体：针对特定细胞表面标志物的抗体；6. 二抗：荧光标记的二抗；7. 荧光显微镜、图像采集系统等。
四、实验步骤1. 细胞培养（1）准备细胞：取对数生长期的细胞，用胰蛋白酶消化，制成单细胞悬液；（2）计数：用血细胞计数板计数，调整细胞浓度为1×10^6细胞/mL；（3）接种：将细胞悬液接种于培养瓶中，置于37℃、5%CO2培养箱中培养；（4）传代：待细胞长满瓶底后，用胰蛋白酶消化，传代培养。
2. 细胞爬片（1）准备盖玻片：用多聚赖氨酸或聚乙烯亚胺涂盖玻片，室温下放置1小时；（2）细胞接种：将细胞悬液滴于盖玻片上，轻轻放置于培养皿中；（3）培养：置于37℃、5%CO2培养箱中培养，待细胞贴壁后进行下一步实验。
3. 免疫荧光实验（1）固定：用4%多聚甲醛固定细胞10分钟；（2）洗涤：用PBS洗涤细胞3次；（3）抗原修复：根据抗体说明书，进行抗原修复处理；（4）封闭：用封闭液（如1%BSA、5%正常山羊血清等）封闭细胞1小时；（5）一抗孵育：将一抗（针对特定细胞表面标志物的抗体）加入细胞中，4℃孵育过夜；（6）洗涤：用PBS洗涤细胞3次；（7）二抗孵育：将荧光标记的二抗加入细胞中，室温下孵育1小时；（8）洗涤：用PBS洗涤细胞3次；（9）封片：加入封片剂，用盖玻片封片。
4. 观察与分析（1）荧光显微镜观察：在荧光显微镜下观察细胞，观察细胞形态、荧光强度等；（2）图像采集：用图像采集系统采集细胞图像；（3）数据分析：对采集到的图像进行定量分析，如荧光强度、细胞数目等。
细胞免疫荧光(immunofluorescence)操作步骤
细胞免疫荧光（immunofluorescence）操作步骤
1.细胞爬片；
2.4%多聚甲醛固定10min(固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮)；
3.PBS漂洗5min；
4.0.5% Triton 穿孔15min(丙酮固定法不用透化处理)；
5.PBS漂洗2次，每次5min；
6.1%BSA封闭30min；
7.加入1%BSA稀释的一抗，于37℃杂交2h；
8.PBS漂洗2次，每次5min；
9.加入1%BSA稀释的二抗，于37℃杂交1h；
10.PBS漂洗2次，每次5min；
11.5ug/ml DAPI染色2min；
12.抗淬灭封片剂封片。
抗淬灭封片剂:
2.5% DABCO (w/v)
50mM Tris(pH8.0)
90%甘油
【注意事项】
大家在用药的时候，药物说明书里面有三种标识，一般要注意一下：
1.第一种就是禁用，就是绝对禁止使用。
2.第二种就是慎用，就是药物可以使用，但是要密切关注患者口服药以后的情况，一旦有不良反应发生，需要马上停止使用。
3.第三种就是忌用，就是说明药物在此类人群中有明确的不良反应，应该是由医生根据病情给出用药建议。
如果一定需要这种药物，就可以联合其他的能减轻不良反应的药物一起服用。
大家以后在服用药物的时候，多留意说明书，留意注意事项，避免不良反应的发生。
本文到此结束，谢谢大家!。
免疫荧光步骤(精)
胞免疫荧光步骤：1.细胞爬片；首先是玻片的处理，普通的盖玻片用砂轮划成自己要的大小的小方块，先用洗衣粉洗干净，用水冲静烤干，然后泡酸过夜，捞酸后流水洗净，烤干，置于器皿中高压灭菌，然后再烤箱中大约8小时烤干备用。
爬片可以在培养皿六孔板或24孔板中都可，我选择在培养皿中爬。
一为节约经费（培养皿可以重复利用）二来觉得培养皿口大，操作比较方便。
培养皿消毒同上，消毒时记得消两把镊子具体操作是：用胰酶消化好细胞，充分吹打，使之成单细胞悬液（注意：这一点很重要，关系到将来爬出来片子的质量）取出消毒的培养皿，可以先加少量培养基（以使玻片与培养皿紧密接触），将玻片小心放入摆放其中，然后将单细胞悬液一滴一滴的滴到玻片上。
最后盖上培养皿置于37度5％CO2的暖箱中培养，根据细胞生长状况，24小时或更长时间适时取出爬片。
爬片置于37度PBS中洗三次，每次3到5秒钟，然后在4％多聚甲醛中固定15分钟，然后再用37度去离子水将甲醛冲干净，注意手法轻柔，要不然掉片很厉害。
同时操作过程中注意玻片的正反面，要不然真的是前功尽弃。
将做好的爬片置于滤纸上晾干，然后用中性树胶粘在载玻片上。
注意一定要等中性树胶彻底干了之后才能做后续实验，要不然玻片会掉下来的，就又是前功尽弃了做好的细胞爬片可以放在－20保存备用，具体能保存多长时间不太清楚，当然尽量早用。
2.4%多聚甲醛固定10min(固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮)；3.PBS漂洗5min；4.0.5% Triton 穿孔15min(丙酮固定法不用透化处理)；5.PBS漂洗2次，每次5min；6.1%BSA封闭30min；7.加入1%BSA稀释的一抗，于37℃杂交2h；8.PBS漂洗2次，每次5min；9.加入1%BSA稀释的二抗，于37℃杂交1h；10.PBS漂洗2次，每次5min；11.5ug/ml DAPI染色2min；12.抗淬灭封片剂封片。
抗淬灭封片剂:2.5% DABCO (w/v)50mM Tris(pH8.0)90%甘油内容仅供参考，希望对你有帮助！抗荧光淬灭剂的作用当荧光染料暴露在激发光下时，几乎都有漂白的现象（光漂白）。
细胞免疫荧光步骤
细胞免疫荧光1、吸干十二孔板中每孔中的培养基，用PBS洗三次，5min/次，注意摇床要缓慢。
2、吸干PBS，每孔加200~300μl固定液，室温固定20分钟。
3、若暂时不做荧光，吸干固定液，不洗，放-30℃保存。
4、需要做时，将十二孔板取出，稍微解冻之后，加适量的PBS，用钩针抠出要PBS洗三次，5min/次。
5、吸干PBS后，每孔加1ml的5‰Triton破膜液，室温下破膜15~20分钟。
6、吸干破膜液，室温下PBS洗3次，5min/次。
7、加BSA封闭液，30~50μl/爬片，室温下封闭30min。
8、吸干BSA封闭液，不洗，加一抗（一抗用PBS稀释比例为：1：50~1:100，浓度视具体情况而定，30~50μl/爬片）4℃过夜。
注意十二孔板保持平整，以免一抗流到爬片外。
9、第二天从4℃冰箱中取出十二孔板，PBST洗3次，3min/次，然后每孔加1:50稀释的FITC，室温下避光孵育1h。
10、PBST洗3次后，DAPI染核6分钟，30μl/爬片。
染核后PBST洗3次，5min/次。
11、载玻片上滴一滴GL YCEROL封片液，即可镜下观察。
说明：①5‰Triton破膜液：例如配20μl的Triton原液用4000μlPBS稀释。
②FTIC现配现用，用PBS稀释，比例为1：50~1:75，具体浓度依据荧光亮度来调整。
耗材：1、十二孔板2块，一块要求无菌（种细胞），另一块洁净（外用漂洗爬片）。
2、外用PBS3、固定液4、细胞爬片5、避光盒6、钩针7、5‰Triton破膜液8、BSA封闭液9、一抗10、PBST11、FITC12、DAPI13、GL YCEROL封片液。
免疫荧光染色-爬片 2
这是针对细胞爬片的免疫荧光染色标准步骤：
1）实验前一天，将细胞接入铺有22×22mm（或24×24mm）盖玻片的六孔板中。
2）第二天，待细胞汇合度达到70％左右开始进行染色步骤。
3）用新鲜配制的2％（或4％）多聚甲醛固定细胞10分钟。
4）PBS洗三遍，每次5分钟。
5）用0.2-0.5％ triton X-100（PBS配制）对细胞透化处理10分钟。
6）PBS洗三遍，每次5分钟。
7）2％BSA或者10％二抗同源血清（注意一定要是正常血清）封闭30分钟，PBS 洗两遍。
8）加入1抗，室温孵育1 小时。
9）PBS洗三遍，每次5分钟。
10）加入二抗，室温孵育30-45 分钟。
11）PBS洗四遍，每次5分钟。
12）加入0.5 ug/ml DAPI（PBS配制）染色10分钟（这里也可用其它的染核染料如hoechst 33258）。
13）用PBS洗三遍，去除多余的DAPI。
14）加入20 ul封片剂封片。
15）封片好的细胞样品可于4度冰箱中存放2周以上。
注意步骤5-7在某些蛋白的染色步骤中可能不是必须的，一抗如果有多种（但注意要是不同种属的）可以同时孵育，二抗同时使用时最好是同一种属来源（如驴抗兔，驴抗羊，驴抗鼠），以避免二抗间的交叉反应。
如果是组织切片样品，可能还涉及到样品的染色前处理（比如石蜡切片的脱蜡），请参阅其它的说明，但荧光染色步骤是一样的。
如果要做细胞涂片的免疫荧光染色，需用离心涂片机将细胞固定在玻片上，再进行后续步骤。
免疫荧光(IF)实验操作步骤及详细说明
免疫荧光（IF）实验操作步骤及详细说明一、试剂和溶液10X PBS：80g NaCl，2g KCl, 14.4g Na2HPO4 和2.4g KH2PO4 加1L 纯水，调pH 至7.4 洗涤液：1× PBS：纯水稀释10X PBS；1× PBST：含0.05% Tween-20 的1×PBS 固定液：4%多聚甲醛：4g 多聚甲醛溶于100ml PBS 通透液：0.1% triton-100 封闭液：PBS 配制的3% BSA 抗体稀释液：一抗稀释液：3% BSA；二抗及鬼笔环肽稀释液：1X PBS；DAPI: 纯水稀释二、实验步骤1.细胞爬片：将盖玻片在酒精灯上灼烧片刻灭菌，铺在12 孔板中，然后接种细胞，置于37℃，5% CO2 培养箱过夜，待细胞形态完全伸展开并且处于健康状态，细胞密度为40%-50%（做爬片的细胞一般是复苏细胞传代2 代后的细胞）；2.洗涤：倒掉细胞培养液，1×PBS 轻微振荡洗涤2 次,每次5min；3.固定：4%多聚甲醛固定细胞，室温放置20min,倒掉多聚甲醛，加入适量PBS；4.冻存：-20℃保存（如果直接使用，可跳至7）；5.解冻：常温下放置30 min；6.洗涤：PBS 轻微振荡洗涤2 次,每次5min；7.通透：加入适当体积的通透液室温放置10min。
（若蛋白为膜表达则无需此步）8.洗涤：PBS 轻微振荡洗涤2 次,每次5min；9.封闭：加入适当体积的封闭液，室温放置30 min；10.一抗孵育：倒掉封闭液，加入适当体积及浓度的一抗，37℃孵育60min；11.洗涤：PBST 轻微振荡洗涤3 次,每次5min；12.二抗孵育：加入适当体积及稀释比的荧光二抗，37℃避光孵育50 min；（如果一抗是荧光素标记的则无需此步）；13.洗涤：PBST 轻微振荡洗涤3 次,每次5min；14.核染色：加入适当体积及稀释比的核染料DAPI 室温反应10min （如果无需加鬼笔环肽，可洗涤后跳至16）；15.洗涤：PBST 轻微振荡洗涤3 次,每次5min；16.细胞骨架染色：此步骤只针对有细胞核定位的项目；加入反应体积为0.2ml，适当稀释比的鬼笔环肽，避光37℃孵育60 min 或4℃孵育过夜；17.洗涤：PBST 轻微振荡洗涤2 次,每次5min，纯水轻微振荡洗涤5min；18.封片：取干净的载玻片，分别标记和编号，在载玻片上滴加适量防荧光猝灭封片剂，用镊子取出盖玻片，细胞面朝下，盖在载玻片上；19.荧光显微镜观察，记录结果。
细胞爬片的固定和免疫组化
【细胞爬片的固定】细胞爬片取出后，一般用PBS洗2遍，然后再做固定。
当然，根据研究目的，PBS洗也不是一定要做的，比如做凋亡的TUNEL染色时就避免洗，因为凋亡的细胞在洗的过程中有可能会脱落。
另外在保存细胞爬片的时候，我一般用培养皿或板，先在皿底放一层面巾纸，然后再放爬片，这样方便做实验时取片。
然后盖上盖子，并在盖子上做标记，为避免混淆，可用透明胶带将盖子和皿连在一起。
一般-20℃保存2-3个月的片子做免疫组化是没有问题的。
以下为常用的固定液1. 冷丙酮可用于一般的免疫组化染色。
将纯的丙酮预先放入冰箱-20℃后便为冷丙酮（放心，丙酮在此温度不会为固体的）细胞爬片取出后，PBS洗2遍，便可加入冷丙酮于-20℃（丙酮有很强的挥发性，注意将含有丙酮和爬片的器皿盖严，防止其挥发）固定10分钟。
取出后，室温吹干，然后放入-20℃保存。
2. 多聚甲醛(常用4%)：可用于免疫电镜；也可用于免疫荧光以及TUNEL染色。
主要检测组织内一些性能娇弱的抗原特别是细胞表面抗原，例如各类淋巴细胸分化决定簇(CD)、主要组织相容性抗原等室温固定15分钟后，将表面液体吹干，入-20℃保存3. 95％乙醇，可用于免疫组化。
优点：穿透性强、抗原性保存较好。
缺点：但醇类对低分子蛋白质、多肽及胞浆内蛋白质保存效果较差，使蛋白变性的作用轻，固定后可再溶解；染色过程中，温育时间长，抗原可流失而减弱反应强度室温固定15分钟后，将表面液体吹干，入-20℃保存4. 甲醛(福尔马林)应用最广优点：形态结构保存好，且穿透性强，缺点：甲醛放置过久可氧化为甲酸，使溶液pH降低，影响染色；分子间交联形成的网格结构可能部分或完全掩盖某些抗原决定簇，使之不能充分暴露。
可造成假阴性的染色结果。
实验步骤简介：1. 细胞爬片：冷丙酮或4%的多聚甲醛固定的细胞爬片，置0.1mol PBS 室温10分钟复水。
2. 修复：滴加复合消化液（0.125胰蛋白酶% +0.1胃蛋白酶%+0.01 EDTA% ）（0.1molPBS 配制）4度30-40分钟0.1mol PBS 洗三次，每次一分钟3. 血清封闭：（试剂1）室温10分钟，倾去。
细胞免疫荧光 详细步骤
细胞免疫荧光步骤：1、细胞在盖片上生长融合到95％－100％时，从孵箱中取出。
2、用预温的1×PBS洗3次，每次10分钟3、4％的甲醛室温固定20－30分钟4、1×PBS洗3次，每次10分钟5、0.2％Triton X－100透化2－5分钟6、1×PBS洗3次，每次10分钟7、5%BSA室温封闭30分钟8、加一抗（用1％BSA稀释）放在湿盒里，4度过夜9、1×PBS洗3次，每次10分钟10、加二抗（用1％BSA稀释）30分钟，闭光！！！11、1×PBS洗3次，每次10分钟12、95％甘油封片注：4%甲醛，0.2%Triton，5%BSA均用1×PBS稀释zo-1的免疫荧光，步骤如下：1、细胞在盖片上生长融合到95%-100%时，从孵箱中取出。
2、用预温的1×PBS洗3次，每次10分钟3、4%的甲醛室温固定20-30分钟4、1×PBS洗3次，每次10分钟5、0.2%Triton X-100透化2-5分钟6、1×PBS洗3次，每次10分钟7、5%BSA室温封闭30分钟8、加一抗(用1%BSA稀释)放在湿盒里，4度过夜9、1×PBS洗3次，每次10分钟10、加二抗(用1%BSA稀释)30分钟，闭光!!!11、1×PBS洗3次，每次10分钟12、95%甘油封片注：4%甲醛，0.2%Triton，5%BSA均用1×PBS稀释从大鼠分离的T细胞能否直接做细胞免疫荧光细胞爬片的免疫荧光步骤基本一致：1.取出细胞爬片放到35mm或60mm用过的细胞培养皿里，PBS洗三遍。
注意：有的时候作的细胞爬片可能比较小，因此夹取的时候要小心，注意反正面，放在皿里洗比较方便，避免了来回夹取，另外洗的时候加PBS不要太冲，不要细胞冲下来。
洗的时候我都是多加PBS，稍晃一下就倒掉，没有等5分钟或10分钟。
2. 4%冷的多聚甲醛固定20分钟，PBS洗三遍。
细胞爬片免疫荧光染色步骤
细胞爬片免疫荧光染色步骤以下是十条关于“细胞爬片免疫荧光染色步骤”的内容：
1. 嘿，先得准备好细胞爬片呀，这就像给细胞搭个小舞台一样重要！你想想，没有好的舞台，细胞怎么能好好表演呢？
2. 然后嘞，固定细胞可不能马虎！这就好比给细胞来个定格，让它们乖乖待着别动，不然怎么染色呀，对吧？
3. 接下来，透化这一步可不能忘！这就像给细胞打开一扇门，让染色剂能顺利进去和它们亲密接触。
4. 哇哦，一到抗体孵育这步就超关键啦！就好像给细胞穿上特制的衣服，让它们变得与众不同。
5. 洗去多余抗体也很重要呀，不然乱七八糟的可不行，这就跟打扫房间一样，得把多余的垃圾清理掉嘛。
6. 再接着，染荧光这步可太神奇啦！就像是给细胞点上了闪耀的星光，让它们瞬间璀璨起来。
7. 封片这一步也不能小瞧哦！这就像是给细胞的小世界加上一层保护罩，让它们安安稳稳的。
8. 哎呀，观察的时候可激动啦！你能看到细胞变得美美的，就像看到了一场华丽的表演，不是吗？
9. 整个过程中，每一步都要细心再细心呀！这就像搭积木，一个不
小心就可能前功尽弃哦。
10. 所以说呀，细胞爬片免疫荧光染色步骤可真不简单，但只要认真做，就能看到超棒的结果！
我的观点结论：细胞爬片免疫荧光染色步骤需要严谨对待，每个环节都很重要，只有认真操作才能获得理想的染色效果。
细胞爬片 多重免疫荧光染色
细胞爬片多重免疫荧光染色
细胞爬片多重免疫荧光染色是一种常用的细胞学实验技术，用于研究细胞内蛋白质的定位、表达水平和相互作用等。
在这种技术中，细胞首先被固定在载玻片上，然后通过特定的抗体和荧光染料来标记感兴趣的蛋白质。
这种方法可以同时检测多种蛋白质的表达情况，并观察它们在细胞内的分布和相互作用关系。
在进行细胞爬片多重免疫荧光染色实验时，首先需要选择合适的细胞系或组织样本，并将其均匀地涂在载玻片上。
接下来，使用适当的方法对细胞进行固定，通常使用乙醇或甲醛等化学试剂进行固定。
然后，通过孔径较小的抗体，对感兴趣的蛋白质进行特异性的标记，常用的标记颜色包括荧光染料的绿色、红色和蓝色等。
在染色完成后，可以通过荧光显微镜观察细胞内不同蛋白质的分布情况，通过不同波长的荧光信号来识别和定量感兴趣的蛋白质。
细胞爬片多重免疫荧光染色技术具有高灵敏度和高分辨率的优点，能够在单个细胞水平上对多种蛋白质进行定量和定位分析。
这种技术在细胞生物学、免疫学和病理学等领域具有广泛的应用，可以帮助研究人员深入了解细胞内蛋白质的功能和相互作用机制，对于疾病诊断和药物研发具有重要意义。
总的来说，细胞爬片多重免疫荧光染色技术是一种强大的细胞学研究工具，可以帮助科研人员全面了解细胞内蛋白质的表达和分布情况，为细胞功能和疾病机制研究提供重要的信息。
细胞免疫荧光实验步骤.docx
第一天：1. 在培养板中将已爬好细胞的玻片用PBS浸洗3次,每次3min；2. 用4%的多聚甲醛固定爬片15min, PBS浸洗玻片3次,每次3min；3. 0.5%Triton X-100( PBS配制 )室温通透20min（细胞膜上表达的抗原省略此步骤）；4. PBS浸洗玻片3次,每次3 min,吸水纸吸干PBS,在玻片上滴加正常山羊血清,室温封闭30min；5. 吸水纸吸掉封闭液,不洗,每张玻片滴加足够量的稀释好的一抗并放入湿盒,4℃孵育过夜；第二天：6. 加荧光二抗：PBST 浸洗爬片3次,每次3min,吸水纸吸干爬片上多余液体后滴加稀释好的荧光二抗,湿盒中20-37℃孵育1h,PBST浸洗切片3次,每次3min；注意：从加荧光二抗起,后面所有操作步骤都尽量在较暗处进行。
7. 复染核：滴加DAPI避光孵育5min,对标本进行染核,PBST 5min×4次洗去多余的DAPI；8. 用吸水纸吸干爬片上的液体,用含抗荧光淬灭剂的封片液封片,然后在荧光显微镜下观察采集图像。
细胞免疫荧光步骤1.在24孔板里加500微升培养基,放爬片,接种细胞（做实验以30-50%汇合度较好。
10000-30000左右2.给药处理24h。
3.PBS洗三遍。
4. 4％冷的多聚甲醛固定15分钟,PBS洗三遍,每次5min,摇床。
（避光）5.0.5％Triton X－100（PBS配）破膜15min,PBS洗三遍,每次5min,摇床。
6.5%BSA（牛血清白蛋白,PBS配）封闭60分钟,不用洗。
7.加一抗孵育（5%BSA配）,4℃摇床过夜。
8. 收集一抗,PBS洗三遍,每次5min,摇床。
孵育二抗Alexa Fluor 488（1:1000 ）,室温60min（避光）9. 回收二抗,PBS洗三遍,摇床,每次5min。
10. 0.5ug/mLDAPI（5%BSA配,2滴/ml）染核15min。
（避光）11. PBS洗三遍,每次5min,摇床。
细胞爬片、固定及免疫荧光的操作步骤
细胞爬片、固定及免疫荧光的操作步骤1.爬片的准备1)爬片可用一般的盖玻片，也可用专用爬片；用盖玻片时，可根据自己的需要用小砂轮或玻璃刀剪裁成合适的大小，以备置于6孔板、12孔板或24孔板；2)将剪裁好的爬片，置于浓硫酸中浸泡过夜，第二天先用自来水冲洗20遍，然后置于无水酒清中浸泡6小时，再用三蒸水冲洗3遍，放在饭盒或者玻璃培养皿中烘干后高压消毒。
高压消毒后取出放入烘箱中烘干，烘干后可放入超净台中备用。
3)可将爬片用多聚赖氨酸处理，以使细胞与爬片结合更牢固。
1mg/ml的多聚赖氨酸用0.22um的滤器过滤除菌后分装于经过无菌处理的1ml细胞冻存管内保存在4℃里，三个月内仍然可以使用。
用时将高压灭菌过的爬片放到0.1mg/ml的多聚赖氨酸溶液内浸泡5min，无菌晾干即可（放入培养板孔内注意爬片的正反面）。
或将爬片铺于培养皿中，将多聚赖氨酸溶液滴于爬片上，室温10分钟后，吸除玻片上的溶液，在超静台内晾干后使用。
储存、稀释和吸取多聚赖氨酸要使用塑料制品。
2.细胞爬片1)胰酶消化细胞后重悬细胞于完全培养基中，充分吹打，使之成单细胞悬液，计数。
2)根据自己的需要选择合适的细胞密度种入培养板内。
滴加细胞悬液时，根据爬片的大小，先在每个孔里准备放爬片的位置滴少量培养基，然后将爬片置于液滴上，压紧，使爬片与培养皿靠培养基的张力粘合到一起，防止加细胞悬液时爬片漂起，造成双层细胞贴片。
若细胞贴壁能力不强，爬片可经多聚赖氨酸浸片后放入。
3.细胞的固定及免疫荧光1)在培养板中培养好细胞后，吸除培养基，一般先使用PBS轻洗细胞2×3 min，然后再做固定（凋亡的TUNEL染色等可以不清洗）。
2)固定：加入4%多聚甲醛(PBS配制)固定20分钟。
如果暂时不能立即做组化检测，使用含0.4%多聚甲醛的PBSPH7.4浸泡细胞（注意在免疫组化检测完成前不要让细胞变干，否则细胞收缩形态不好）。
3)除去多聚甲醛，使用PBS轻洗细胞3×3 min。
细胞免疫荧光详细步骤
细胞免疫荧光步骤：1.细胞爬片；首先是玻片的处理，普通的盖玻片用砂轮划成自己要的大小的小方块，先用洗衣粉洗干净，用水冲静烤干，然后泡酸过夜，捞酸后流水洗净，烤干，置于器皿中高压灭菌，然后再烤箱中大约8小时烤干备用。
爬片可以在培养皿六孔板或24孔板中都可，我选择在培养皿中爬。
一为节约经费（培养皿可以重复利用）二来觉得培养皿口大，操作比较方便。
培养皿消毒同上，消毒时记得消两把镊子具体操作是：用胰酶消化好细胞，充分吹打，使之成单细胞悬液（注意：这一点很重要，关系到将来爬出来片子的质量）取出消毒的培养皿，可以先加少量培养基（以使玻片与培养皿紧密接触），将玻片小心放入摆放其中，然后将单细胞悬液一滴一滴的滴到玻片上。
最后盖上培养皿置于37度5％CO2的暖箱中培养，根据细胞生长状况，24小时或更长时间适时取出爬片。
爬片置于37度PBS中洗三次，每次3到5秒钟，然后在4％多聚甲醛中固定15分钟，然后再用37度去离子水将甲醛冲干净，注意手法轻柔，要不然掉片很厉害。
同时操作过程中注意玻片的正反面，要不然真的是前功尽弃。
将做好的爬片置于滤纸上晾干，然后用中性树胶粘在载玻片上。
注意一定要等中性树胶彻底干了之后才能做后续实验，要不然玻片会掉下来的，就又是前功尽弃了做好的细胞爬片可以放在－20保存备用，具体能保存多长时间不太清楚，当然尽量早用。
2.4%多聚甲醛固定10min(固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮)；3.PBS漂洗5min；4.0.5% Triton 穿孔15min(丙酮固定法不用透化处理)；5.PBS漂洗2次，每次5min；6.1%BSA封闭30min；7.加入1%BSA稀释的一抗，于37℃杂交2h；8.PBS漂洗2次，每次5min；9.加入1%BSA稀释的二抗，于37℃杂交1h；10.PBS漂洗2次，每次5min；11.5ug/ml DAPI染色2min；12.抗淬灭封片剂封片。
抗淬灭封片剂:2.5% DABCO (w/v)50mM Tris(pH8.0)90%甘油细胞免疫荧光细胞爬片4%多聚甲醛固定10min(固定细胞器用预冷的70%甲醇+30%丙酮)PBS漂洗5min0.5% Triton 穿孔15min(丙酮固定法不用透化处理)PBS漂洗2次，每次5min1%BSA封闭30min加入1%BSA稀释的一抗，于37℃杂交2hPBS漂洗2次，每次5min加入1%BSA稀释的二抗，于37℃杂交1hPBS漂洗2次，每次5min5ug/ml DAPI染色2min抗淬灭封片剂封片2.5% DABCO (w/v)抗淬灭封片剂50mM Tris(pH8.0)90%甘油0.25g DABCO9ml甘油0.5ml 1M Tris(Ph8.0) 70℃溶解，-20℃保存0.5ml ddH2O。
细胞爬片多重免疫荧光染色
细胞爬片多重免疫荧光染色细胞爬片多重免疫荧光染色是一种常用的细胞学技术，可以用于研究细胞的结构和功能。
在这种染色方法中，我们会使用一系列的荧光染料标记不同的分子或细胞器，以便在显微镜下观察并识别它们。
首先，我们需要获取并准备要研究的细胞样品。
这可以是细胞培养物、组织切片或细胞悬液。
确保样品的质量良好，并且细胞数量足够以便进行实验。
接下来，我们需要将样品固定，以保持细胞的形态和结构不变。
最常用的固定方法是使用4%的甲醛溶液，将样品浸泡在甲醛中10-20分钟，并洗涤掉甲醛。
固定后，我们需要对细胞进行透明化处理，以促进荧光染料的进入和扩散。
透明化处理可以使用不同的物质，如甘油和十聚氧乙烯辛醇（Triton X-100）等。
将透明化剂加入样品中，保持一定的时间（通常10-30分钟），然后洗涤掉多余的透明化剂。
接下来，我们需要选择合适的荧光染料来标记我们感兴趣的分子或细胞器。
常用的荧光染料包括DAPI、荧光偶联的抗体和荧光蛋白（如GFP）。
根据实验的需要，可以单独使用一种染料或将多种染料组合使用。
染色前，我们需要对样品进行预处理，以促进荧光染料的结合和增强染色的特异性。
这一步通常包括用洗涤缓冲液将细胞清洗，以去除可能的干扰物质。
然后，我们将准备好的荧光染料溶液加入样品中。
确保染料溶液充分覆盖样品并保持一定的时间（通常30分钟至数小时），以便荧光染料与目标分子或细胞器结合。
染色完成后，我们需要洗净样品，以去除未结合的染料。
洗涤可以使用洗涤缓冲液，使用足够的洗涤次数可以提高染色的特异性。
最后，我们将样品转移到玻片上，以进行显微镜观察。
在转移样品之前，可以在玻片上加一层适当的固定剂（如DABCO）以防止退色。
在显微镜下观察样品时，我们可以使用相应的滤光片和显微镜设置来观察不同的荧光染色。
多重免疫荧光染色可以通过这种方式同时观察多个目标或分子，并进行定量和定位分析。
细胞爬片多重免疫荧光染色是一种功能强大且常用的细胞学技术，可以用于研究细胞的结构和功能以及疾病的机制。
细胞免疫荧光实验步骤
细胞爬片免疫荧光实验步骤第一天：1.在培养板中将已爬好细胞的玻片用PBS 浸洗 3 次，每次 3min ；2.用 4% 勺多聚甲醛固定爬片 15min , PBS 浸洗玻片 3 次，每次 3min ；3.0.5%Triton X-100 （ PBS 配制）室温通透 20min （细胞膜上表达的抗原省略此步骤）；4.PBS 浸洗玻片 3 次，每次 3 min ，吸水纸吸干 PBS 在玻片上滴加正常山羊血清，室温封闭 30min ；5.吸水纸吸掉封闭液，不洗，每张玻片滴加足够量的稀释好的一抗并放入湿盒，4 C孵育过夜；第二天：6. 加荧光二抗： PBST 浸洗爬片 3 次，每次 3min , 吸水纸吸干爬片上多余液体后滴加稀释好的荧光二抗，湿盒中 20-37 C孵育 1h，PBST 浸洗切片 3 次，每次 3mi n；注意：从加荧光二抗起，后面所有操作步骤都尽量在较暗处进行。
7.复染核：滴加 DAPI 避光孵育 5min , 对标本进行染核， PBST 5min X 4 次洗去多余的 DAPI;8. 用吸水纸吸干爬片上的液体，用含抗荧光淬灭剂的封片液封片，然后在荧光显微镜下观察采集图像。
细胞免疫荧光步骤1.在 24 孔板里加 500 微升培养基，放爬片，接种细胞（做实验以30-50% 汇合度较好。
10000-30000 左右 2.给药处理 24h 。
3.PBS 洗三遍。
4.4 %冷的多聚甲醛固定 15 分钟， PBS 洗三遍，每次 5min ，摇床。
（避光）5.0.5 % Triton X — 100 （PBS 配）破膜15min ，PBS 洗三遍，每次5min ，摇床。
6.5%BSA（牛血清白蛋白， PBS 配）封闭 60 分钟，不用洗。
7.加一抗孵育（ 5%BSA 配），4 C摇床过夜。
8.收集一抗， PBS 洗三遍，每次 5min ，摇床。
孵育二抗 Alexa Fluor 488（1:1000 ）, 室温 60min （避光）9.回收二抗， PBS 洗三遍，摇床，每次 5min 。
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细胞爬片、固定及免疫荧光的操作步骤
1.爬片的准备
1)爬片可用一般的盖玻片，也可用专用爬片；用盖玻片时，可根据自己的需要
用小砂轮或玻璃刀剪裁成合适的大小，以备置于6孔板、12孔板或24孔板；
2)将剪裁好的爬片，置于浓硫酸中浸泡过夜，第二天先用自来水冲洗20遍，
然后置于无水酒清中浸泡6小时，再用三蒸水冲洗3遍，放在饭盒或者玻璃培养皿中烘干后高压消毒。
高压消毒后取出放入烘箱中烘干，烘干后可放入超净台中备用。
3)可将爬片用多聚赖氨酸处理，以使细胞与爬片结合更牢固。
1mg/ml的多聚
赖氨酸用0.22um的滤器过滤除菌后分装于经过无菌处理的1ml细胞冻存管内保存在4℃里，三个月内仍然可以使用。
用时将高压灭菌过的爬片放到
0.1mg/ml的多聚赖氨酸溶液内浸泡5min，无菌晾干即可（放入培养板孔内
注意爬片的正反面）。
或将爬片铺于培养皿中，将多聚赖氨酸溶液滴于爬片上，室温10分钟后，吸除玻片上的溶液，在超静台内晾干后使用。
储存、稀释和吸取多聚赖氨酸要使用塑料制品。
2.细胞爬片
1)胰酶消化细胞后重悬细胞于完全培养基中，充分吹打，使之成单细胞悬液，
计数。
2)根据自己的需要选择合适的细胞密度种入培养板内。
滴加细胞悬液时，根据
爬片的大小，先在每个孔里准备放爬片的位置滴少量培养基，然后将爬片置于液滴上，压紧，使爬片与培养皿靠培养基的张力粘合到一起，防止加细胞悬液时爬片漂起，造成双层细胞贴片。
若细胞贴壁能力不强，爬片可经多聚赖氨酸浸片后放入。
3.细胞的固定及免疫荧光
1)在培养板中培养好细胞后，吸除培养基，一般先使用PBS轻洗细胞2×3 min，
然后再做固定（凋亡的TUNEL染色等可以不清洗）。
2)固定：加入4%多聚甲醛(PBS配制)固定20分钟。
如果暂时不能立即做组化
检测，使用含0.4%多聚甲醛的PBS PH7.4浸泡细胞（注意在免疫组化检测完成前不要让细胞变干，否则细胞收缩形态不好）。
3)除去多聚甲醛，使用PBS轻洗细胞3×3 min。
4)通透：0.5%Triton X-100(PBS配制)室温通透20min（细胞膜上表达的抗原省
略此步骤）。
5)除去Triton X-100，使用PBS轻洗细胞3×3 min。
6)内源性过氧化物酶处理：3% H2O2孵育15 min（选作，二抗连HRP必需做，
其他的如做免疫荧光染色不用做）。
7)除去H2O2，使用PBS轻洗细胞3×3 min。
8)封闭：用10%的与二抗同源的血清(PBS配制)封闭半小时。
封闭结束后千万
不要洗，直接上一抗。
9)一抗：滴加足够量适宜浓度的一抗，4℃孵育过夜（或37℃，60 min）；若有
两种一抗（要是不同种属的）则同时孵育，两种二抗亦同时孵育（二抗同时使用时最好是同一种属）。
10)除去一抗，使用PBS轻洗细胞3×3 min。
11)二抗：滴加足够量适宜浓度的二抗，37℃，30 min（从加荧光二抗起，后面
所有操作步骤都尽量在较暗处进行）。
12)除去二抗，使用PBS轻洗细胞3×3 min。
13)二氨基联苯胺（DAB）底物显色：室温下避光孵育5至10分钟，或直至样
本出现棕褐色（选作，二抗连得是酶的必做，显色时间严格控制，要避免显色过度引起假阳性；二抗连的是荧光素的不用做）。
14)除去显色工作液，使用PBS冲洗细胞3~4次。
15)复染核：0.5ug/ml DAPI（或200nM Hoechst 33342）避光孵育5min。
16)使用PBS轻洗细胞4×5min，洗去多余的DAPI。
17)取爬片时由于爬片与培养皿底结合较紧，张力较大，可将注射器针头针尖向
背面做个小钩，这样将爬片轻轻勾起，用小镊子取出即可。
18)用吸水纸吸干爬片上的液体，用含抗荧光淬灭剂的封片液封片，然后在荧光
显微镜下观察并采集图像。
19)保存细胞爬片的时候，先在培养皿底放一层面巾纸，然后再放爬片，这样方
便实验时取片。
并在盖子上做标记，一般-20℃可保存2-3个月。