呼吸运动调节与急性呼吸功能不全
生理实验
操作部分：输尿管插管穿线将输尿管近膀胱端结扎，然后穿线备用，在结扎处上端剪一斜切口，切口约为管径的一半，将充满肝素的输尿管插管向肾脏方向插入输尿管内，并结扎固定。
气管插管在气管上做一“┴”形切口(做一约为周长一半的横向切口，再向头端作纵向切口),插入“Y”型气管插管，用棉绳结扎切口处，绳尾固定于套管的分叉处。
动脉插管在左颈总动脉近心端夹一动脉夹，然后结扎远心端，（两者相距两厘米以上），结扎端下方用眼科剪做一“V”型切口（与管呈45度，约为管径的一半），向心脏方向插入动脉插管（管内装满抗凝剂），用已穿好的丝线结扎插入管尖嘴部分，并用同一丝线在插管的侧管上附近固定，以防插管从插入出滑开。
静脉插管动脉夹夹住近心端，结扎远心端，穿线备用用眼科剪在远心端结扎出处呈45度剪一小口，约为管径的一半插入导管套管，用已穿好的线打一个结BL-420E生物机能实验系统开机—双击桌面上的“BL-420E”程序快捷图标—进入主页面—选试验项目和题目—根据实验要求设置刺激强度或者标记截图口试部分:第一节细胞的基本功能试验神经干的传导速度能否代表所有纤维的传导速度？不能。
因为神经干是由许多神经纤维组成的，这些神经纤维的传导速度各不相同，主要取决于神经纤维的直径、有无髓鞘、温度等因素，本实验各纤维的传导速度均不同，所以不能用神经干的传导速度来代表神经纤维的速度。
神经干兴奋时所记录的电位是“全或无”吗？为什么？神经干兴奋时的动作电位是所有兴奋的神经纤维产生的复合动作电位，他的幅度会随刺激强度的变化而变化。
神经干动作电位与单根神经纤维的动作电位有何不同？单根神经纤维的动作电位具有“全或无”的特性，即刺激达到阈值后产生一个动作电位，动作电位的大小和形状不随刺激强度的改变而改变。
而神经干动作电位是由许多兴奋的神经纤维组成的复合动作电位，动作电位的幅度会随刺激强度的改变而改变。
绝对不应期是等于前后两个刺激的间隔时间还是等于电位的起点至第二个刺激波之间的间隔时间？后者。
实验26 呼吸运动的调节以及呼吸功能不全和实验性肺水肿
实验26 呼吸运动的调节以及呼吸功能不全
和实验性肺水肿
一、实验目的
1.观察体内外有关因素的改变对呼吸运动的影响。
复制不同病因引起的呼吸功能不全模型，分析其发生机制。
复制实验性肺水肿模型，观察急性肺水肿的表现并探讨其发生机制和治疗方案。
二、实验原理
机体内外的各种刺激，包括神经因素或理化因素通过直接作用于呼吸中枢和（或）外周感受器，反射性影响呼吸运动，肺牵张反射以及血液中的O2使分压、CO2分压、H+浓度改变，均可以通过不同途径是呼吸运动产生反射性调节。
从而保证血液中气体分压的相对稳定。
呼吸功能不全的失代偿期也称呼吸衰竭，是由于肺通气或换气功能严重受损，致使动脉血氧分压低于60mmHg，同时伴有或不伴有PaCO2大于50mmHg的临床综合征。
根据血气分析分别称为Ⅰ型呼衰和Ⅱ型呼衰。
三、实验材料
1.实验动物家兔（体重2kg以上）。
四、实验步骤
五、实验结果
六、讨论
七、思考题。
呼吸调节、呼吸功能不全
昆明医科大学机能学实验报告实验日期：2016年10月12日带教教师: 韩毅老师小组成员：专业班级：2014级全科五大班呼吸调节、呼吸功能不全及治疗一、实验目的1.观察豚鼠的正常呼吸频率、幅度、膈肌放电、动脉血氧分压及呼吸运动的调节。
2.复制豚鼠哮喘模型，观察呼吸衰竭时动物呼吸频率、幅度、动脉血氧分压及膈肌放电的变化；探讨呼吸衰竭的发生机制。
3.观察不同药物的治疗效果并分析作用机制。
二、实验原理复制豚鼠哮喘模式，观察其呼吸变化并观察使用不同药物后的治疗效果。
三、实验仪器设备BL-420F生物机能实验系统，血气分析仪，豚鼠手术台，手术器械一套，呼吸换能器，动静脉留置针（22~24G），小动物气管插管，超声雾化器一套。
试剂及药品：肝素注射液，25%乌拉坦，组胺，尼可刹米注射液，地塞米松、氨茶碱注射液，沙丁胺醇气雾剂四、实验方法与步骤1.称重、麻醉、固定动物称重，腹腔麻醉（25%乌拉坦0.5~0.6mL/100g），固定于手术台。
2.颈总动脉穿刺及气管插管分离颈总动脉放置留置针以备取血，颈部气管插管接呼吸换能器。
3.记录膈肌放电将两颗银针插入豚鼠任意一侧（右侧优先）肋间肌中，针柄与传导电极两红色支连接，黑色支夹于皮肤。
4.记录正常各项生理指标打开BL-420F生物机能实验系统，记录正常呼吸频率、深度及膈肌放电等情况，取血测定血气指标（PaO2、PaCO2）。
5.观察呼吸调节分别吸入纯氮气和5%~10%CO2后观察呼吸运动的改变。
6.复制急性哮喘性呼吸衰竭病理模型吸入雾化组胺制作急性哮喘性呼吸衰竭病理模型，待豚鼠呼吸出现频率明显减慢、幅度降低、膈肌放电异常时，记录上述各项指标的变化，取血作血气分析。
记录结果。
7.治疗分组经豚鼠头静脉注射给药进行治疗：A组（空白对照组）：注射生理盐水10min后取血作血气分析。
B组（沙丁胺醇组）：雾化吸入治疗10后取血作血气分析。
C组（地塞米松组）：静脉推注后10后取血作血气分析。
呼吸运动的影响因素与急性呼吸功能不全
患者情况
患者因重症肺炎入院，出现高热、咳 嗽、呼吸困难等症状。
诊断
通过X线胸片和实验室检查，医生确 诊为重症肺炎并发呼吸功能不全。
治疗
患者接受了抗生素治疗、氧疗和机械 通气等治疗措施，病情逐渐好转。
总结
重症肺炎是导致呼吸功能不全的常见 原因之一，及时诊断和治疗对于改善 预后至关重要。
案例二：急性哮喘导致呼吸功能不全
感谢您的观看
海拔高度
高海拔地区的气压较低，空气中的 氧气含量也较低，会对人体的呼吸 运动产生影响。
02
急性呼吸功能不全的病 理机制
病因
外伤
如车祸、跌落等事故导致的肋 骨骨折、气胸、血胸等。
感染
肺炎、肺结核等感染性疾病引 起肺组织炎症反应，导致肺通 气和换气功能障碍。
过敏反应
如过敏性哮喘、过敏性肺炎等 ，由过敏原引起的气道痉挛和 炎症反应。
呼吸运动的影响因素 与急性呼吸功能不全
目录
• 呼吸运动的影响因素 • 急性呼吸功能不全的病理机制 • 急性呼吸功能不全的预防与控制 • 急性呼吸功能不全的案例分析
01
呼吸运动的影响因素
生理因素
年龄
不同年龄段的人，呼吸运动的频率和 深度会有所不同。例如，儿童和老人 的呼吸频率较慢，青壮年的呼吸频率 较快。
性别
身体状况
身体健康状况良好的人，呼吸运动相 对稳定，而身体虚弱或患有慢性疾病 的人，呼吸运动可能会出现异常。
男性和女性的呼吸运动也存在差异， 一般而言，男性的呼吸频率较慢，但 呼吸深度较大。
病理因素
01
02
03
呼吸道疾病
如感冒、哮喘、慢性阻塞 性肺疾病等，会导致呼吸 道狭窄或阻塞，影响呼吸 运动的正常进行。
实验25 呼吸运动的调节 (P95) 实验26 胸内压和气胸 (P97)
实验目的：观察各种因素对呼吸运动的影响 实验对象：家兔 手术操作：颈部手术 （1）动物常规麻醉(乌拉坦 1g/kg)及固定 （2）颈部手术： － 分离两侧迷走神经，穿线备用 － 气管插管（倒T形切口）
观察项目：呼吸频率和幅度的改变
（3）缺氧：
球胆内充氮气
（4）增大无效腔： 侧管连50 cm 胶皮管
（5）耳缘静脉快速注射3% 乳酸 2 mL
(6) 迷走神经在呼吸运动中的作用
单侧切断； 两侧切断
胸内压和气胸
目的原理：
学习胸膜腔内压的测定方法（直接法） 观察平静呼吸、屏气及气胸时 胸内压的变化
手术操作：
兔右腋前线第4、5肋间隙作一长约2 cm 皮肤 切口， 穿刺针头沿肋骨上缘斜插入胸膜腔。 水检压计的水柱随呼吸运动上下移动
（1）观察正常的呼吸曲线
气管插管－橡胶管－马利氏气鼓－压力换能器 －BL 420生物机能实验系统
－实验项目：呼吸运动的调节
（2）增加吸入气中CO2浓度
向球胆吹入肺泡气
大13.6 5.3
肺泡气 103.4 40.3
容积 (%) 分压(mmHg) 容积(%) 分压(mmHg)
NB： 穿刺勿过深过猛，避免刺破肺组织及 血管，形成气胸及出血过多
观察项目: 胸内压变化 (cm H2O)
平静呼吸： 吸气末， 呼气末
加强呼吸运动： 增大无效腔法 憋气的效应：吸气/呼气末堵住气管插管侧管 气胸： 止血钳在右侧膈肌穿孔
Principle
胸膜腔内压 = 肺内压－肺弹性回缩压 吸气或呼气末：肺内压＝大气体压＝0 胸膜腔内压 ＝－肺弹性回缩压
人体机能学复习材料
人体机能实验1.常用的手术刀执刀方法及适用情况答：手术刀的执刀方法有4种，包括：（1）执弓式、（2）执笔式、（3）握持式、（4）反挑式（1）执弓式：这是一种常用的执刀方法，动作范围广泛而灵活，用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。
（2）执笔式：此法用力轻柔而操作精巧，用于切割短小而精确的切口，如解剖神经、血管及作腹膜小切口。
（3）握持式：常用于切割范围较广、用力较大的切口，如切开较长的皮肤、截肢。
（4）反挑式：此法多用于刀口向弯曲面的手术刀片，常用于向上挑开组织，以免损伤深部组织。
2.氨基甲酸乙酯作为家兔全身麻醉剂的理论计量及计算方法，为何生理实验常选用此麻醉剂。
答：（1）适宜浓度20﹪-25%，静脉注射按5mg/kg的剂量计算。
（2）氨基甲酸乙酯易溶于水，肌肉松弛较小，作用温和，对器官功能影响较小，仅仅对消化道平滑肌的影响较大，所以，经常生理实验常选用氨基甲酸乙酯作为麻醉剂。
3.动物实验如何判断已达到适宜的麻醉程度。
答：判断麻醉程度的指标有：①呼吸：加快或不规则，则麻醉过浅，可再追加麻醉，若呼吸由不规则转变为规则且平稳，说明已达到麻醉深度。
若动物呼吸变慢，且以腹式呼吸为主，说明麻醉过深，动物有生命危险。
②反射活动：角膜反射灵敏，则麻醉过浅；反射迟钝，麻醉程度适宜；反射消失，伴瞳孔散大，则麻醉过深。
③肌张力：亢进，麻醉过浅；全身肌肉松弛，麻醉合适。
④皮肤夹捏反应：麻醉过程中可随时用止血钳或有齿镊夹捏动物皮肤，若反应灵敏，则麻醉过浅；若反应消失，则麻醉程度合适。
4.急性动物实验手术过程中如何视出血情况选择止血方法？答：（1）微小血管出血，可用湿热生理盐水按压止血。
（2）较大血管出血，需先找到出血点，用止血钳夹住，而后用线结扎。
（3）大血管破损出血，应准确、快速止血。
实验期间，应将创口暂时闭合或用生理盐水纱布盖好，以免组织干燥。
5．各实验的基本操作步骤及注意事项。
答：实验一神经干复合动作电位的引导及传导速度的测定操作步骤：制备双毁髓蛙——剥制后肢标本——分离两后肢——制备蛙坐骨神经腓神经标本——连接实验装置，标本放置于神经标本盒中——选用实验模块中动作电位项目开始实验——按实验指导完成各项目。
病理生理学呼吸功能不全
重症肺炎是一种严重的感染性疾病，由于肺部炎症反应过重，导致呼吸功能不全 。
详细描述
重症肺炎患者的肺部炎症反应强烈，肺组织受损严重，肺泡内充满炎性渗出物和 细菌，导致肺通气和换气功能严重受损。患者可能出现高热、咳嗽、咳痰、气促 等症状，严重时可能出现低氧血症和二氧化碳潴留。
急性呼吸窘迫综合征导致的呼吸传呼吸功能不全的预防和护理 知识，提高患者的自我管理和保健能力。
ABCD
运动训练
在医生指导下进行适量的运动训练，如散步、慢 跑等，以增强心肺功能和耐力。
定期评估
定期对患者进行评估，了解病情变化和康复进展 ，以便及时调整康复计划。
05 呼吸功能不全的案例分析
慢性阻塞性肺疾病导致的呼吸功能不全
病理生理学呼吸功能不 全
汇报人：可编辑
2024-01-11
目录
Contents
• 呼吸功能不全概述 • 呼吸功能不全的病理生理机制 • 呼吸功能不全的治疗方法 • 呼吸功能不全的预防与护理 • 呼吸功能不全的案例分析
01 呼吸功能不全概述
定义与分类
定义
呼吸功能不全是指由于各种原因导致的肺通气和/或换气功能障碍，使机体在静息状态下亦不能维持足够的气体 交换，导致低氧血症或伴有不同程度的高碳酸血症，进而发生一系列病理生理改变和相应临床表现的综合征。
戒烟
戒烟是预防呼吸功能不全的重要措施，可以 减少对呼吸系统的刺激和损伤。
避免空气污染
避免长时间暴露于空气污染的环境中，如雾 霾、工业废气等。
保持健康的生活方式
保持适度的运动、均衡的饮食、充足的休息 等，有助于增强呼吸系统的健康。
定期检查
定期进行肺功能检查，以便及时发现和处理 潜在的呼吸系统问题。
呼吸功能不全ppt课件
胸廓和胸膜 肺
18
呼吸肌活动障碍 ：
中枢或周围神经的器质性病变 过量镇静、麻醉药的应用 呼吸肌的病变
胸廓的顺应性降低：畸形 纤维化 肺的顺应性降低：纤维化 PS 胸腔积液或气胸：
19
(2)阻塞性通气不足
由气道狭窄或阻塞使气道阻力增 加所致的通气障碍
气道阻力 ： R=8ηL / πr4 η：气体的黏滞系数 L ：气道长度 r ：气道半径
5.真性分流增加
43
第三节 呼吸功能不全时机体的变化
44
(一）酸碱平衡及电解质紊乱
1、呼吸性酸中毒：CO2潴留 血钾 增高、血氯降低
2、代谢性酸中毒：低氧血症等所致 3、呼吸性碱中毒：代偿性过度通气所致 4、代谢性碱中毒：呼吸功能不全伴消化
功能障碍
45
（二）呼吸系统变化：
1、低氧血症和高碳酸血症的影响：
低氧血症型（Ⅰ型）
高碳酸血症型 （Ⅱ型 ）
通气性
换气性
中枢性
外周性
急性 慢性
分类
13
第二节 原因和发病机制
14
一、原因
1.呼吸中枢受损：脑外伤、肿瘤、炎症、缺氧、麻醉剂 2.周围神经受损：脊髓损伤、脊髓灰质炎、多发性神经炎 3.呼吸肌受损：多发性肌炎、重症肌无力、低血钾 4.胸廓病变：胸廓畸形、多发性肋骨骨折 5.胸膜腔疾患：胸膜积液、气胸、胸膜粘连增厚 6.呼吸道疾患：喉头水肿、气管异物、慢性阻塞性肺疾患 7.肺部疾患：肺炎、肺肿瘤、肺结核、肺气肿、肺不张 8.肺循环障碍：肺动脉栓塞、肺内ＤＩＣ、肺动脉炎15
（二）提高PaO2： Ⅰ型呼吸衰竭
较高浓度的氧
Ⅱ型呼吸衰竭 较低浓度的氧
58
（三）降低PaCO2:
呼吸运动调节及急性试验性呼吸功能不全的急救
二氧化碳分压高于80mmHg，呼吸抑制
呼衰代谢变化
• 循环系统变化 初期：心血管中枢兴奋，心输出量
增加 严重：心血管中枢抑制，血管扩张，
血压下降，心肌收缩力下降 呼衰：右心肥大（肺源性心脏病）
其他
• 中枢：肺性脑病 • 肾：功能性肾衰 • 胃肠道：胃肠粘膜糜烂、坏死、
出血、溃疡
呼吸性酸中毒：II型呼衰，大量二氧化碳潴 留
代谢性酸中毒：严重缺氧，无氧代谢增加， 乳酸等酸性代谢产物增加
呼吸性碱中毒：I型呼衰，过度通气，血钾 降低，血氯升高
呼衰代谢变化
• 呼吸活动变化 氧分压低于60mmHg，呼吸运动增加
（颈动脉体，主动脉体化学感受器）
氧分压低于30mmHg，呼吸运动抑制 二氧化碳分压高于50mmHg，呼吸加深
实验项目
(1) 描记动物正常呼吸运动曲线 (2) 吸入气氧分压（PO2）下降对呼吸运动的影响（与盛有钠
石灰的瓶相连）
(3) 增加吸入气中CO2浓度对呼吸运动的影响（与装有CO2的 球胆管呈直角，打开球胆管的活动双凹夹，使球胆内的 CO2随呼吸进入气管）
(4) 血中酸性物质[H+]增多对呼吸运动的影响（由耳缘静脉快速 注入3%乳酸溶液2ml）
思考题
呼吸运动的体液调节因素有哪些？ 如何调节？
呼吸功能不全
• 动脉氧分压低于正常，伴有或不 伴有二氧化碳分压升高的病理过 程。
分类
• 根据二氧化碳分压是否升高 低氧血症型，高碳酸血症型 • 根据发病部位不同 中枢性，外周性 • 根据发病机制不同 通气性，换气性
呼衰代谢变化
• 酸碱平衡紊乱和电解质紊乱
实验对象
Hale Waihona Puke 实验器材与药品实验步骤与观察项目
呼吸功能不全
弥漫性的呼吸膜损伤
ARDS病因
由冠状病毒引起的严重急性呼吸综合征 (severe acute respiratory syndrome,SARS)， 其病理过程就是ARDS。
胸部X光片
正常
ARDS
Ventilatory disorder
机制：阻力升，动力降，气道-肺泡通气少 血气变化： PaO2↓+ PaCO2↑——Ⅱ型呼衰
(1)气体进出均受阻 (2)克服阻力，呼吸肌做功增强，氧耗↑、CO2↑
PAO2=PiO2－ PACO2/R PaCO2=PACO2=0.863×VCO2/VA
肺换气功能
呼吸道阻塞或狭窄，气道阻力增加引起的通气障碍。
气道阻力
泊肃叶定律: R = 8ηL/πr4 层流与湍流的气道阻力
泊肃叶定律：
层流：R = 8ηL/πr4
湍流：R ≈ 8ηL/πr5
气道阻力
80%—大气道
20%—直径<2mm的小气道
中央性：气管分叉处以上的气道阻塞 外周性：直径小于2mm的小气道阻塞
I型呼衰 Ⅱ型呼衰
呼酸+代酸 呼碱+代酸
呼吸系统变化
PaO2 ↓<60mmHg 反射性兴奋呼吸中枢 PaO2 ↓<30mmHg 直接抑制呼吸中枢 PaCO2↑>50mmHg 兴奋呼吸中枢 PaCO2↑>80mmHg 抑制呼吸中枢（此时呼吸
运动主要依靠PaO2对外周化学感受器 的刺激得以维持）。
呼吸节律变化
肺性脑病（pulmonary encephalopathy）
由慢性呼吸衰竭引起的脑功能障碍。
《机能实验学》临床,呼吸c讲课教案
【实验项目】
1、记录正常呼吸运动曲线。 2、吸入CO2：CaCO3 + 稀HCl。 3、缺氧： 4、增大无效腔（长管呼吸）： 5、增加[H+]：3%乳酸2ml耳缘静脉快速注射 6、切断左、右侧迷走神经： （观察呼吸的节律、频率、幅度）
CO2 、H+和低O2对呼吸运动的调节
H+↑
低O2 CO2↑
+H2O ↓ HCO-3
醉 （2）注意抽药量。
药 （2）小心拿、放针筒，防止内筒脱出。
（3）手不要触及针筒内筒。
（4）排气时药液不要喷到电脑。
P56 辨清耳缘静脉（耳背薄侧外侧缘）
﹠ →拔去或剪去被毛→轻弹或轻揉兔
兔 耳→压迫耳根部耳缘静脉以阻断血
耳 液回流，使血管充分扩张→左手食
缘 指和中指夹住静脉近心端，拇指和
静 脉
戊巴比妥钠 P5
5
适用于大多数动物。易溶于水，水溶液稳 定，但久置易析出结晶，稍加碱性溶液可防 止析出结晶。根据实验动物不同，可配制成 1-5%的水溶液，由静脉或腹腔注射。一次给 药的有效麻醉时间约 3-4小时，如在实验过 程中动物醒来或未达到麻醉效果时，可补注 原剂量的 1/5，切不可随意加药，麻醉过量 可导致呼吸、循环抑制，甚至动物死亡。
P56
﹠
兔 耳 缘 静 脉 注 射 法
若注射阻力较大或出现局部肿胀， 说明针头没有刺入静脉，应立即拔 出针头重刺；若推注阻力不大，可 将药物缓慢注入。注射完毕拔出针 头后，随即用纱布压迫针眼，以防 止出血；注射器及时用清水冲洗。
最佳麻醉深度指标：P57
﹠ 皮肤夹捏反应消失，头颈、四肢
兔 耳
及腹壁肌肉松驰，呼吸深慢而平
【思考题】
1、给兔子增加CO2、制造缺氧、注射 乳酸时，对呼吸运动有何影响？说明它 们的作用机制。
呼吸运动的影响因素与急性呼吸功能不全
呼吸运动的影响因素与急性呼吸功能不全首先，呼吸肌肌力是影响呼吸运动的一个重要因素。
呼吸肌包括膈肌和肋间肌。
当呼吸肌肌力减弱时，膈肌的下降和胸廓的扩张就会受到限制，使得通气容积减少。
呼吸肌负荷增加，如慢性阻塞性肺疾病患者的肺气肿，也会导致呼吸肌疲劳，进一步影响呼吸运动。
其次，呼吸频率也是影响呼吸运动的一个重要因素。
正常情况下，人体的呼吸频率受到自主神经系统的调控，但一些疾病或刺激因素可能会导致呼吸频率异常增加或减少。
比如，急性呼吸窘迫综合征（ARDS）患者往往会出现呼吸频率增快，以增加通气量和气体交换。
而对于呼吸麻痹患者，呼吸频率减少，导致肺泡的通气不足，使得呼吸运动受到限制。
此外，肺泡通气量也是影响呼吸运动的重要因素之一、肺泡通气量是指单位时间内进入肺泡的气体量。
当肺泡通气量减少时，肺泡气体交换不足，导致氧合不良和二氧化碳排出不畅。
肺泡通气量减少的原因可能包括肺脏组织病变、肺容积减少以及肺通气血流比例失调等。
这些因素都会导致通气量减少，从而影响呼吸运动。
最后，胸廓的可塑性也影响呼吸运动。
胸廓包括肋骨、脊柱和胸骨等。
正常情况下，胸廓具有一定的可塑性，能够适应不同的呼吸负荷和肺容积的变化。
然而，当胸廓受到限制时，如肋骨骨折、胸部手术等，就会限制呼吸运动的幅度和深度。
此外，脊柱畸形也可能影响胸廓的可塑性，进而影响呼吸运动。
综上所述，呼吸运动的影响因素包括呼吸肌肌力、呼吸频率、肺泡通气量和胸廓的可塑性等。
这些因素受损或异常变化时，可能会导致急性呼吸功能不全，表现为通气不足、氧合不良和二氧化碳排出不畅等症状。
对于呼吸功能不全的患者，需要通过适当的呼吸支持和治疗来改善呼吸运动，以提高氧合和通气功能。
急性呼吸功能不全
实验五急性呼吸功能不全【实验目标】1．复制家兔急性呼吸功能不全模型。
2．观察家兔呼吸的变化。
【实验时间】学时【实验原理】呼吸是指机体与外界环境之间的气体交换过程。
通过这一过程，机体从大气中摄取新陈代谢所需要的O2，排出所产生的CO2。
呼吸过程重要的一环是外界空气与肺之间的气体交换，也就是肺通气。
呼吸过程的原动力是呼吸肌的收缩与舒张所造成的胸廓的扩大与缩小，也就是呼吸运动。
胸廓的运动带动肺的扩大与缩小，导致肺内压的升高与降低，造成外界大气压与肺内压的差值，推动气体通过呼吸道进出肺。
正常时，呼吸运动按照一定的节律和深度活动，当机体内外环境改变，由于调节机制的存在，呼吸运动将会作出相应的改变以适应机体的需要。
当外伤、疾病使胸膜腔的密闭性破坏（如气胸、窒息）都会导致胸膜腔的负压消失，产生呼吸功能不全。
【实验内容及操作步骤】1．实验内容：家兔急性呼吸功能不全2．实验用物：（1）实验器材及药品：动物实验手术器械兔手术台 Y型气管插管水检压计 Pclab-UE生物医学信号采集处理系统张力传感器1个压力传感器1个 3%戊巴比妥钠 5ml、2ml注射器 16号针头蛙心夹（2）实验动物：家兔3．操作步骤：（1）兔子秤重后，从耳缘静脉缓慢注入 3%戊巴比妥钠1ml/kg体重，将麻醉后的兔子仰卧固定在兔台上。
（2）颈部正中切开皮肤、钝性分离暴露气管，并插入Y型气管插管（行“倒T”字形切口），气管插管的一端开口用胶管与压力传感器（吸换能器）相连，接通1通道——测呼吸备用（同时观察正常呼吸频率及幅度）。
（3）将蛙心夹夹在胸廓活动最明显处的胸壁上，另端用丝线系于张力传感器上，接2通道，记录呼吸运动的频率和辐度打开Pclab-UE主界面，从输入信号项中，1通道选择压力、2通道选择张力、调节好仪器各种参数，开始记录。
（4）复制窒息：①不完全性窒息：用止血钳将Y型气管插管侧管夹住1/2-2/3约30秒钟左右，观察呼吸频率及幅度，放开止血钳，约10分钟让动物呼吸恢复正常。
家兔呼吸运动的调节与呼吸机能不全课件
家兔呼吸运动的调节
目的
通过研究家兔呼吸运动的调节和呼吸机能不全，深入了解呼吸系统的生理和病理机制，为临床治疗提供理论依据和实践指导。
目标
掌握家兔呼吸系统的基本结构和功能，理解呼吸运动的调节机制，掌握家兔呼吸机能不全的表现、原因和治疗方法，提高对呼吸系统疾病的认识和治疗水平。
02
CHAPTER
家兔呼吸运动的调节与呼吸机能不全课件
目录
引言家兔呼吸系统的基本结构家兔呼吸运动的调节机制呼吸机能不全的病理生理学家兔模型在呼吸机能不全研究中的应用总结与展望
01
CHAPTER
引言
研究家兔呼吸系统的生理机制，包括呼吸中枢、呼吸肌和呼吸道的结构和功能，以及如何调节呼吸运动的频率、深度和节奏。
探讨家兔在各种病理条件下，如肺炎、肺水肿、慢性阻塞性肺疾病等，出现的呼吸机能不全的表现、原因和治疗方法。
呼吸机能不全的防治
针对家兔呼吸机能不全，应采取综合防治措施，包括改善饲养环境、加强饲养管理、及时治疗呼吸道疾病等。
03
开发新型防治方法
针对家兔呼吸机能不全，开发新型的防治方法，如药物治疗、基因治疗等。
01
深入研究家兔呼吸运动的调节机制
进一步探讨中枢化学感受器在呼吸运动调节中的作用，以及物理因素如何影响呼吸运动。
03
CHAPTER
家兔呼吸运动的调节机制
血液中的CO2浓度是调节呼吸运动的重要化学因素。CO2刺激呼吸运动的作用是通过刺激中枢化学感受器实现的，它能够将CO2转化为H+，进而影响呼吸中枢的活动。
CO2
血液中的O2浓度也对呼吸运动产生影响，低氧刺激可以增加通气量，以维持足够的O2供应。
O2
家兔的呼吸肌（如膈肌和肋间肌）具有自身的收缩机制，能够根据需要调整肌肉张力，从而改变肺通气量。
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呼吸运动调节与急性呼吸功能不全
一、实验目的：
1、观察不同因素对呼吸运动的影响
2、复制呼吸功能不全的动物模型
3、观察呼吸功能不全的动物表现
二、实验动物：家兔
三、实验方法：
1、取兔→称重→麻醉(20%乌拉坦5ml/kg)→固定(仰卧背位交叉固定)
2、手术:
颈部正中剪毛,沿正中线切开皮肤,剪开筋膜,钝性分离肌肉,暴露气管,穿单棉线备用,在气管第3~4软骨环之间作倒“T”型切口,插入气管插管并固定,连接张力换能器, 气管插管侧支橡皮管用“再”字夹夹住 (调节口径以便于观察呼吸曲线)
3、微机操作:
打开生物信号处理系统﹑开机→Medlab6→“文件”中“打开配置”→C盘→实验配置→呼吸张力模块
4、观察项目:
理化因素的影响
观察项目频率(次/分) 幅度曲线变化
前后前后
正常
缺氧
增大无效腔
3%乳酸0.6ml/只
25%尼克刹米0.2ml/kg
不全窒息(夹闭侧管径一半)
完全窒息(完全夹闭侧管径)
5、制备肺水肿：
兔头抬高30度,20%葡萄糖溶液2ml匀速滴入气管,5分钟滴完后仍维持30度角放置5分钟,观察家兔口唇黏膜颜色,呼吸频率和幅度的变化,然后在气管插管的下缘用单棉线结扎气管,带动物死亡后，开胸,完好的驱除肺脏,观察其大体改变,于气管隆突上方1cm处结扎,剪除结扎线上方的气管,在天平上称取重量,计算肺系数。
6、数据处理：
肺系数=肺湿重(g)/体重(kg),正常值:4.5-5.5g/kg
四、实验结果：见观察项目表格
五、实验讨论：
1、缺氧→PaO2↓→颈A体、主A体外周化学感受器受刺激↓，经窦N、迷走N
传入延髓呼吸中枢→呼吸中枢（＋）→反射性呼吸加深加快→呼吸频率、幅度均↑。
2、增大无效腔：
通气阻力↑→通气障碍
死腔样通气↑→有效肺泡通气量↓→换气障碍→PaO2↓PaCO2↑
（1）PaO2↓→刺激颈A体、主A体外周化学感受器，经窦N、迷走N传入延髓呼吸中枢→呼吸中枢（＋）→反射性呼吸加深加快→呼吸频率、幅度均↑。
（2）PaCO2↑→①使外周化学感受器（＋），经窦N、迷走N传入延髓呼吸中枢→呼吸中枢（＋）→反射性呼吸加深加快→呼吸频率、幅度均↑。
②PaCO2↑→CO2易通过血脑屏障→使CSF.的酸度↑→中枢化学感受器（＋）
→协同作用反射性呼吸加深加快→呼吸频率、幅度均↑。
3、ivHL：血液中[H+]↑→颈A体、主A体外周化学感受器（＋）→经窦N、迷走
N传入延髓呼吸中枢→呼吸中枢（＋）→反射性呼吸加深加快→呼吸频率、幅度均↑。
4、尼克刹米：
（1）直接兴奋呼吸中枢→呼吸频率、幅度均↑
（2）提高呼吸中枢对CO2的敏感性→呼吸频率、幅度均↑
（3）刺激颈A体、主A体外周化学感受器→呼吸频率、幅度均↑
5、不完全窒息：当夹闭侧管口径的1/2时,由于气道阻力与1/r 4成正比,可引
起气道阻力增加，通气功能障碍，体内CO2排出减少，O2摄入减少，使PaO2↓、PaCO2↑，刺激外周以及中枢化学感受器→呼吸中枢（＋）→呼吸频率、幅度均↑
6、完全窒息：完全夹闭侧管口径，气道完全阻塞，通气障碍，吸气、呼气均困
难，急剧产生大量的CO2，使PaCO2↑↑↑，PaO2↓↓→呼吸中枢抑制→呼吸频率、幅度均↓→死亡
7、高渗糖：动物表现呼吸急促，口唇粘膜青紫，气管内由啸鸣音，并有大量泡
沫状痰。
取肺观察：两肺水肿明显，呈红白相间，摸之由捻发音，切开肺叶由白色液体流出。
肺系数＝肺重量（g）/体重(kg) >5.5
→气管内局部高渗→肺泡周围血管内液体外渗到肺间质、肺泡→肺水肿
20%GS. →应激引起全身血管收缩→体循环血量↓→肺循环血量↑→滤过↑→肺水肿→应激损伤导致血管通透性↑→血浆外渗→肺水肿造成：
（1）J-感受器（＋）→迷走神经→呼吸中枢→呼吸浅快→限制性通气功能障碍；（2）缺氧：①血管通透性↑→红细胞渗出→粉红色；
蛋白质渗出→泡沫（由于其粘稠度高，在气流的
冲击下易形成泡沫）
②肺血管收缩→.α—R分布不均→红白相间；
（3）血管收缩不均→V/Q↓或↑→气体交换障碍；
（4）弥散膜的厚度↑，有效面积↓→弥散障碍→气体交换障碍。
虽然PaO2↓，PaCO2
↑可以使呼吸加深加快，但是由于肺水肿，肺的顺应性↓，限制了肺泡的扩张回缩，使呼吸幅度变浅。
【注意事项】
1、每一项实验须有正常呼吸曲线对照。
2、注入尼克刹米速度要慢,如果注入过快,会造成家兔过度兴奋以至发生惊厥。
3、取肺脏的时候勿损伤血管,称肺湿重前,不要用水冲洗肺脏。