实验三 重组蛋白的表达及Western boltting鉴定
重组蛋白的Dot
重组蛋白的Dot-Western blot 分析【实验目的】熟悉利用Dot-Western blot进行微量重组蛋白鉴定分析的原理和方法。
【实验原理】微量重组蛋白（纯化或未纯化的）固定在硝酸纤维素（NC）膜上以后，用脱脂奶粉封闭NC 膜上其他结合位点，利用兔抗重组蛋白的抗体（一抗）可特异与重组蛋白结合的特点，当NC膜与一抗溶液温育时，(Q往圣科技3452125268提供12万种免费质粒加慢病毒包装)抗体可特异结合在重组蛋白上，当NC膜再与辣根过氧化物酶（HRP）标记的羊抗兔IgG的抗体（二抗兔）溶液温育时，则该抗体可特异的与一抗结合，将NC膜浸泡在含辣根过氧化物酶底物的溶液中，HRP与二氨基联苯胺（DAB）及H2O2反应生成褐色产物，沉淀于NC膜上重组蛋白所在部位，故可以检测目的蛋白的存在。
【器材与试剂】(Q往圣科技3452125268提供免费基因慢病毒包装)1．实验仪器微量移液器，脱色摇床2．实验试剂封闭液：5%脱脂奶粉，150 mmol/L NaCl，20 mmol/L Tris-Cl，pH7.5；漂洗液：150 mmol/L，NaCl 20 mmol/L Tris-Cl，pH7.5；显色液：20mmol/LTris-Cl,pH8.0，0.1%NiCl2 ，0.01% H2O2，0.01% 3,3’二氨基联苯胺（DAB）3．实验材料 1 mg/mL重组牻牛儿基牻牛儿焦磷酸合成酶，1 mg/mL牛血清白蛋白，兔抗牻牛儿基牻牛儿焦磷酸合成酶抗血清，羊抗兔IgG的抗体【实验步骤】1．分别取重组牻牛儿基牻牛儿焦磷酸合成酶和牛血清白蛋白（阴性对照）溶液各2 µL点在NC膜上的两处，用铅笔标记。
(Q往圣科技3452125268提供张峰Science的CRISPR/cas9免费送)2．将NC膜放在一个干净培养皿中，加入20 mL封闭液于脱色摇床上温育1 h。
3．加入10 μL兔抗牻牛儿基牻牛儿焦磷酸合成酶抗血清（按照抗体效价调整一抗加入量），混匀，继续摇动2 h。
Western-blotting 技术鉴定人血清免疫球蛋白lgG分子实验报告
Western-blotting 技术鉴定人血清免疫球蛋白lgG摘要：本实验利用Western-blotting 技术鉴定人血清免疫球蛋白lgG，主要包括利用SDS-PAGE进行蛋白质分离之后，将其转移至NC膜上进行蛋白免疫印迹并进行检测，实验中我们用了正常人血清蛋白，肺炎患者，白血病人患者三种血清，使用彩虹Marker，并用其作出标准曲线，以此求出其余IgG的分子质量，并根据不同样本条带颜色，面积等简要判断不同样本LgG含量的多少并给予解释。
关键词：免疫印迹技术；免疫球蛋白；SDS-PAGE引言：蛋白质免疫印迹技术,是1979年斯坦福大学乔治.斯塔克发明的蛋白质印迹法,继southern-blotting 之后起名 Western-blotting,是分子生物学、生物化学和免疫遗传学中常用的一种实验方法,广泛应用于基因在蛋白水平的表达研究,抗体活性检测和疾病早期诊断等多个方面，是一种将高分辨率凝胶电泳和免疫化学分析技术相结合的杂交技术，其分析容量大，敏感度高，特异性强，是检测蛋白质性质、表达与分布的一种最常用的方法。
聚丙烯酰胺凝胶电泳是网状结构，具有分子筛效应，蛋白在其中依三种因素分开：蛋白大小，形状和电荷。
SDS是阴离子去污剂，作为变性剂和助溶试剂，它能断裂分子内和分子间的氢键，使其去折叠。
聚丙稀酰胺是由丙稀酰胺和N,N’-亚甲基双丙稀酰胺经共聚合而成。
此聚合过程是由四甲基乙二胺和过硫酸胺激发的。
被激活的单体和未被激活的单体开始了多聚链的延伸，正在延伸的多聚链也可以随机地接上双丙稀酰胺，使多聚链交叉互连成为网状立体结构，最终多聚链聚合成凝胶状。
人血清中含有人类免疫球蛋白，根据其重链稳定区的分子结构和抗原特异性的不同，分为五类: lgG、lgA、lgM、lgD、lgE、lgG 是血清的主要抗体成分，占血清免疫球蛋白总量的70%~75%。
在电泳之后，利用抗原抗体结合的特异性，进行蛋白免疫印迹。
1.目的与要求a)掌握SDS-PAGE电源分离蛋白的实验技术和操作；并绘制蛋白质标准曲线,求目的蛋白分子量的方法；b)垂直板电泳装置的安装及灌胶；电泳所用试剂的配制；c)了解电泳过程中常见问题的原因及处理办法，不连续电泳系统分离蛋白质的原理以及垂直板电泳装置的安装和灌胶。
基础生物化学实验课件PPT-Western blot 法鉴定目的蛋白的表达及表达量大小
Bio Rad Trans-Blot Plus Cell
1．染胶 用考马斯亮兰染色，经脱色液脱色后，看胶上是否还有蛋白来反映转移的效果。
2．染膜 有两类染液选择，可逆的和不可逆的。不可逆的染料，如考马斯亮兰、india ink、
Amido.black 10B等，染色后膜就不能用于进一步的分析。可逆的有丽春红染色液 （ponceau-s red）、Fastgreen FC、CPTS等，这类染料染色后，色素可以被洗 掉，膜可以用做进一步的分析用。将薄膜漂在ponceau-s red中快速染色，直至分 子量标准显现时取出，记录下标准位置。转膜的效果可以观察所使用的预染蛋白 质分子量标准，通常分子量最大的1-2条带较难全部转到膜上。
5. Hold the cover level and slide it gently down onto the stack.
6. weigh down the lid in order to ensure even contact with the stack.
7. Connect the unit to a suitable power supply.
• Western blot analysis can detect one protein in a mixture of any number of proteins while giving you information about the size of the protein.
• It does not matter whether the protein has been synthesized in vivo or in vitro.
结合率：80－150 ug Pr/cm2
western blot检测蛋白质的表达实验的结论和注意事项
western blot检测蛋白质的表达实验的结论和注意事项Western blot（免疫印迹）是一种常用的实验技术，用于检测蛋白质的表达水平和鉴定特定的蛋白质。
下面将分别介绍Western blot的实验结论和注意事项。
实验结论：通过Western blot实验可以得出以下结论：1. 确定蛋白质的表达水平：Western blot可以定量检测特定蛋白质在样本中的表达水平，比如癌细胞中的肿瘤抑制因子的表达水平是否下调，通过和对照组的比较可以得出结论。
2. 确定蛋白质的鉴定：Western blot可以用于鉴定特定蛋白质的存在与否，通过与已知目标蛋白的分子量进行比较，可以确定其身份。
3. 确定蛋白质的修饰状态：一些蛋白质在翻译后会发生修饰，如磷酸化、糖基化等，这些修饰状态可能会影响蛋白质的功能。
通过Western blot可以检测修饰状态，并进一步探究其功能。
注意事项：在进行Western blot实验时，有一些注意事项需要遵守，以保证实验的准确性和可靠性：1. 样品制备：样品的制备至关重要，要确保样品蛋白质的完整性和稳定性。
使用磷酸化酶抑制剂、蛋白酶抑制剂等，避免蛋白质在制备过程中被降解。
2. 蛋白质的分离：Western blot一般需要将蛋白质进行SDS-PAGE电泳，要注意合理选择电泳条件和胶液浓度，以达到最佳的蛋白质分离效果。
同时还需要确保样品装载均匀，可与内参蛋白进行标准化。
3. 转膜条件：Western blot的关键步骤是将分离的蛋白质迁移到聚丙烯酰胺薄膜。
转膜条件包括电流、时间和转膜缓冲液的配方，需要根据蛋白质的大小和性质进行优化，以确保迁移的效率和完整性。
4. 主抗体选择：选择适当的主抗体对目标蛋白进行检测，主抗体的产地、克隆型和浓度都会影响实验结果。
需要进行充分的文献调研和优化，以保证实验的准确性和特异性。
5. 二级抗体选择：Western blot实验中一般需要使用带有酶标记物（如HRP）的二级抗体来检测主抗体与蛋白质结合情况。
第五部分重组蛋白的Western Blotting
“夹心饼”的制作（1）
4. 次序：负极（黑孔板）－> 纤维垫->1－ 2张滤纸->凝胶->PVDF膜-> 1-2张滤纸-> PVDF 纤维垫->正极板（白孔板）－>扣上吊扣 －>插进转膜槽中。
“夹心饼”的制作（2）
_ +
纤维垫 PVDF膜 滤纸
凝胶
电转移
�
按上示意图，接上电源（凝胶一边接负 极，纤维膜一边接正极），恒流电泳2小 时，电流为：膜面积(cm2)x2mA。 关闭电源，将膜取出，观察预染蛋白 marker 的转移情况。
试 剂
5． AP底物显色液: 5mL AP substrate buffer + 50uL NBT solution + 50uL BCIP solution (用前配制） 7． SDS-PAGE电泳用溶液和试剂（上周已 配好）。
器 材
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SDS-PAGE电泳装置一套 电转移膜装置 抗体-酶反应摇床 杂交盒 其它
实验安排
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第一天上午：（1）SDS-PAGE, （2）转移 缓冲液和洗膜液配制； 第一天下午：蛋白转移，封闭过夜（？） 第二天：杂交、显色、结果观察、拍照。 上交实验报告：下周二前交到211室伍俭儿 老师处。
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建议的点样次序
不 诱 导 诱 导 上 清 穿 流 峰 纯 化 正 对 照 M
�
封闭与杂交
mL封闭液，置脱色摇床中 6. 将膜放入塑料盒中，加入20 20mL 缓慢摇动，室温1小时或4℃（层析冷柜）封闭过夜。 〈三〉靶蛋白与第一抗体结合 7 ．弃去封闭液，用 Blocking solution 稀释一抗（ 1 ： 400 = 40ml, 全班用），分2份各20mL加入盒中，室温平缓 摇动温育 1 小时。然后尽量回收抗体溶液， - 20 ℃ 保 存，可重复使用。 用TBST室温洗膜3次，每次20mL/10 min－15min。
westernblotting实验操作步骤讲解
westernblotting实验操作步骤讲解蛋⽩免疫印迹杂交（Western Blot, WB）WB是将蛋⽩样本通过聚丙烯酰胺电泳按分⼦量⼤⼩分离，再转移到杂交膜上，然后通过⼀抗/⼆抗复合物对靶蛋⽩进⾏特异性检测的⽅法。
WB 是进⾏微量蛋⽩质分析⽐较成熟的技术之⼀。
以下是总结Western Blot 操作⽅法及常见问题分析，有助于成功完成WB。
A第⼀部分：蛋⽩样本提取制备蛋⽩样品制备是Western Blotting的第⼀步，更是决定WB成败的关键步骤，总体原则和注意事项：1.尽可能提取完全或降低样本复杂度只集中于提取⽬的蛋⽩（通过采⽤不同提取⽅法或选择不同的试剂盒产品）；2.保持蛋⽩处于溶解状态（通过裂解液的pH 、盐浓度、表⾯活性剂、还原剂等的选择）；3.提取过程防⽌蛋⽩降解、聚集、沉淀、修饰等，（低温操作，加⼊合适的蛋⽩酶和磷酸酶抑制剂）；4.尽量去除核酸，多糖，脂类等⼲扰分⼦（通过加⼊核酸酶或采取不同提取策略）；5.样品分装，长期于-80℃中保存，避免反复冻融。
⽅法的选择◆⾃⾏配制抽提试剂，根据⽂献⽅法或经验提取；◆购买商品化试剂盒，按其说明书的⽅法提取。
Example 1：实验中提取肾脏总蛋⽩，具体实验过程如下：1.提前⼀天4℃解冻RIPA，⼀定要完全融化；配PBS（⽤于细胞试验则需⾼压）；2.配制裂解液：PMSF:RIPA=1:99,PMSF终浓度为100mM（根据样本数配制所需的量，临⽤临配）；3.裂解组织：每个样品称取100mg，加1ml裂解液，匀浆后4℃静置2h使其充分裂解，14000g，4℃离⼼10min，取上清。
4.蛋⽩定量：取少量上清稀释30倍蛋⽩定量，然后计算出各样本原液蛋⽩浓度。
注意由于裂解液⾥含有较⾼浓度的洗涤剂，蛋⽩定量不能选⽤Bradford法，可以选⽤改良的Lowry’s法或者BCA法。
5.样品蛋⽩浓度均⼀化：根据蛋⽩定量计算的结果将各样品蛋⽩浓度调整⼀致。
实验三 重组蛋白的表达及Western boltting鉴定
实验三重组蛋白的表达及Western boltting鉴定一、实验内容1．重组蛋白在大肠杆菌中的诱导表达。
2．重组蛋白的Western boltting鉴定。
二、实验要求通过实验，要求学生掌握外源基因在原核细胞中表达的方法，掌握Western bolt的基本原理、实验操作步骤及注意事项。
三、实验方法1．重组蛋白的原核表达与SDS-PAGE分析（1）将含有重组质粒的细胞在LB平板（含抗生素）上划线，37℃培养过夜。
（2）从LB平板挑取单菌落分别移至2 mL的LB培养液（含抗生素），37 ℃振荡培养过夜。
（3）将过夜培养物按1：100转接于2 mL的LB培养液（含抗生素），37℃继续振摇培养至细菌生长对数中期（OD600值达0.5～0.6）。
（4）加入IPTG至终浓度0.5 mmol/L，37℃诱导表达3～6 hr。
（5）取200 μL菌液装入1.5 mL Eppendorf管中，以5000 rpm离心1 min，得到菌体细胞。
将细胞重悬于30 μL水，再加入10 μL 4 × SDS-PAGE加样缓冲液，混匀，100℃煮沸10 min后，12,000 rpm离心2 min，吸取上清转移至另一新的离心管中。
（6）样品取5~10 μL进行SDS-PAGE分析。
2．Western blot分析（1）取4 μL阳性克隆诱导后的样品，利用15%SDS-PAGE电泳分离。
（2）用半干式电转移法将蛋白转至NC膜上。
a.将聚丙稀酰胺凝胶浸泡在电转移缓冲液中平衡10 min。
b.裁剪与凝胶大小相同的NC膜，在电转移缓冲液中平衡10 min。
c.裁剪合适大小的滤纸，用电转移缓冲液浸润，按阳极、三层滤纸、NC膜、凝胶、三层滤纸、阴极的顺序叠放电转移三明治。
d.按0.5 mA/cm2膜恒流电转移30～50 min。
（3）杂交a.将NC膜在5%脱脂奶封闭液中室温反应1 hr。
b.TBST漂洗3 × 10 minc.转移膜至用TBST1：100稀释的一抗工作液（抗六个组氨酸单克隆抗体）中，室温反应1 hr。
western blot检测蛋白质的表达实验的结论和注意事项 -回复
western blot检测蛋白质的表达实验的结论和注意事项-回复西方博LOT检测蛋白质的表达实验的结论和注意事项引言：蛋白质是细胞功能的重要组成部分，对于研究蛋白质的表达和功能非常关键。
西方博LOT（Western blot）是一种常用的蛋白质检测方法，可以用于分析特定蛋白质的表达水平、鉴定蛋白质的大小和相对丰度以及判断蛋白质的分子量。
本文将介绍西方博LOT检测蛋白质的表达实验的结论和注意事项。
一、实验结论：1. 确定目标蛋白质的存在与否：在Western blot实验中，通过探针的特异性结合，可以确定目标蛋白质在待检样品中的存在与否。
如果探针与待检样品中的蛋白质结合，会出现特异的蛋白质带，从而可以确定目标蛋白质的存在。
2. 确定目标蛋白质的大小和相对丰度：通过Western blot实验的结果，可以确定目标蛋白质的大小和相对丰度。
在蛋白质电泳分离后，较大的蛋白质会相对较靠近电极负极，较小的蛋白质会相对较靠近电极正极。
通过与已知分子量蛋白质标准曲线的对比，可以确定待检样品中目标蛋白质的分子量。
3. 分析蛋白质的表达水平：通过Western blot实验的结果，可以分析目标蛋白质在不同样品中的表达水平。
通过比较待检样品中蛋白质带的强度，可以初步判断蛋白质的相对表达量。
进一步，可以使用图像分析软件对蛋白质带的强度进行定量分析，获得更精确的表达量数据。
二、实验注意事项：1. 样品处理：西方博LOT实验的样品处理是关键的一步。
样品的存储和处理方式可能会对实验结果产生影响。
为了保持蛋白质的完整性和稳定性，样品应尽快冷冻保存，并在实验前严格遵循相关处理方法。
2. 磷酸盐缓冲液的配制和pH调整：磷酸盐缓冲液是Western blot实验中的关键试剂，用于制备电泳缓冲液、转膜缓冲液和洗涤缓冲液。
正确配制磷酸盐缓冲液的浓度和pH值是确保实验的准确性和稳定性的重要因素。
3. 蛋白质的电泳分离和转膜：蛋白质的电泳分离要求严格的电泳条件。
完整word版,Western-Blotting实验报告
Western Blotting本次试验的目的是使同学们掌握Western Blotting法鉴定目标蛋白的原理和熟悉Western Blotting的方法，并了解抗原抗体结合反应的影响因素。
Western Blotting的blotting译为印迹法，是指将样品转移到固相载体上，而后利用相应的探测反应来检测样品的一种方法。
1975年，Southern建立了将DNA转移到硝酸纤维素膜（NC膜）上，并利用DNA－RNA杂交检测特定的DNA片段的方法，称为Southern印迹法。
而后人们用类似的方法，对RNA和蛋白质进行印迹分析，对RNA的印迹分析称为Northern印迹法，对单向电泳后的蛋白质分子的印迹分析称为Western印迹法，对双向电泳后蛋白质分子的印迹分析称为Eastern印迹法。
Western既可以定性，又可以半定量，是初步鉴定蛋白质最方便也是最通用的方法。
它通常分为两种方法：Western Blotting 方法一: 直接法方法二: 间接法优点： 1.快速（一种抗体）2.没有二抗交叉反应引起的非特异性条带1. 免特异性不受标记影响2. 信号放大灵敏度高（多个二抗结合位点）3. 多种标记的二抗可供选择4. 可选择不同的Marker缺点： 1.免疫反应性降低2.无信号二级放大3.抗体标记费时昂贵,使用不方便1. 交叉反应引起的非特异性条带2. 额外的二抗孵育以及条件优化同时Western又具有多种识别蛋白质的显色方法，主要有以下几种：i. 放射自显影ii. 底物化学发光ECL iii. 底物荧光ECF iv. 底物DAB呈色现常用的有底物化学发光ECL和底物DAB呈色。
一、实验原理Western Blotting（蛋白质免疫印迹法）是将经聚丙烯酰胺凝胶电泳奋力的蛋白质样品，转移到固相载体（例如硝酸纤维素薄膜）上，固相载体以非共价键形式吸附蛋白质，且能保持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。
western blot实验内容
western blot实验内容Western Blot实验内容可以简单描述为一种生物化学分析技术，主要用于检测特定蛋白质在细胞或组织中的存在和表达水平。
该实验通常包括以下步骤：1. 样品制备：首先，从细胞培养物或组织中提取蛋白质。
这可以通过细胞裂解和蛋白质提取试剂盒等方法来完成。
2. SDS-PAGE电泳：将提取的蛋白质样品通过SDS-PAGE凝胶电泳进行分离。
在SDS-PAGE中，样品中的蛋白质按照大小被分离成不同的带状条带。
3. 转印：将分离的蛋白质通过电泳转印技术转移到聚丙烯酰胺薄膜（或称为膜）上。
膜可以是尼龙膜或聚乙烯膜。
4. 阻断：将膜置于含有蛋白质阻断剂（如牛血清蛋白或脱脂奶粉）的缓冲液中，以阻止非特异性结合。
5. 一抗孵育：将膜与特异性抗体（一抗）一起在某种缓冲液中孵育。
这些一抗可以结合到目标蛋白质上。
6. 洗涤：通过多次洗涤，去除与一抗非特异性结合的蛋白质。
7. 二抗孵育：膜与与一抗的物种不同的次级抗体（二抗）一起在缓冲液中孵育。
二抗与一抗结合，形成复合物。
8. 洗涤：去除与二抗非特异性结合的蛋白质。
9. 显色：将特定酶底物添加到膜上，使目标蛋白质变色。
例如，常用的酶底物是辣根过氧化物酶（HRP）和4-氨基乙基硅烷（DAB），可以生成棕色的色斑。
10. 图像获取和分析：使用相应的设备（如基于膜的成像系统）捕捉膜的图像，并使用分析软件定量分析蛋白质的表达水平。
通过Western Blot实验，研究人员能够检测和定量不同细胞组分中蛋白质的存在和表达水平，从而深入了解生物系统的功能和调控机制。
本实验室Westernblotting实验步骤
1Western blotting 实验步骤 第一步：蛋白质的提取取冻存或新鲜组织黄豆大小200μl 细胞裂解液（用时加DTT 1：100，PMAF 1：100）用玻璃匀浆器捣碎，匀浆---200μl 涮管（注意：组织一定要碎到几乎所有的细胞都破裂）转移至冻存管中几乎所有的细胞都破裂）转移至冻存管中液氮反复冻溶裂解细胞：液氮冷冻---RT 自来水冲洗解冻自来水冲洗解冻3-5次转移至离心管中，4℃高速离心℃高速离心 12000转/分钟分钟80min （60min+30min ） 离两次，每次30min 取上清液，分装，取上清液，分装，--20℃保存备用℃保存备用如果定量检测蛋白质，做Bradford 检测；如果只是定性，此步可省！检测；如果只是定性，此步可省！ 《精编分子生物学实验指南》《精编分子生物学实验指南》P332 P332第二步：跑胶将制胶装置洗净装好将制胶装置洗净装好,,配分离胶（随所测蛋白的分子量而变化） 注意：最后加聚合剂TEMED 时一定要边加边摇动配液烧杯，否则会发生局部聚合而使配胶失败用枪将胶沿边缘小心，快速注如板中，体积[3.2 ml]蒸馏水水封蒸馏水水封((加水液封时要很慢，否则胶会被冲变型。
）当水和胶之间有一条折射线时，当水和胶之间有一条折射线时，说明胶已凝了。
说明胶已凝了。
说明胶已凝了。
再等再等3min 使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。
可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。
用枪头和滤纸吸净蒸馏水用枪头和滤纸吸净蒸馏水配浓缩胶 （与所测蛋白分子量无关）1ml注胶，插梳子注胶，插梳子RT RT，静置，静置30min自来水冲掉多余的胶自来水冲掉多余的胶装电泳内槽，加电泳Buffer Buffer，拔梳子，拔梳子，拔梳子50μgSample 蛋白蛋白+Sample Buffer +Sample Buffer （6x;6x;微波煮沸微波煮沸3min 3min，冷却，冷却，冷却加样，加样，10-15ul 10-15ul 10-15ul，具体加多少看跑的条带清晰度而定，具体加多少看跑的条带清晰度而定，具体加多少看跑的条带清晰度而定注意：1.1.样品中如果有非蛋白成分会影响电泳效果，应除去。
western blotting技术心得
western blotting技术心得Westernblotting技术，又称西方印迹技术，一种很常用的蛋白质识别和定量方法，是将乳杆菌中的蛋白质从功能角度进行分离和分析的一种技术，它是利用介雷氏染料（Coomassie Brilliant Blue）和硫酸铵或电泳来获得蛋白质分子量和结构的一种技术。
Western blotting技术的实验方法包括以下几个步骤：1）收集样品：要求将样品的血清、非植物或植物细胞系统中的蛋白质收集到一定的浓度；2）蛋白质分离：将样品中的蛋白质分离为单一蛋白质或不同蛋白质；3）蛋白质检测：将收集的蛋白质进行检测，并通过Western blotting技术获得蛋白质的分子量和结构数据；4）结果分析：将获得的数据按照蛋白质的分子量和结构进行分析，以获得有关蛋白质的完整结构、功能和分子量的信息。
Western blotting技术的应用非常的广泛，主要用于蛋白质的鉴定、检测、代谢和定量研究以及纯化研究等，同时，它还可以用于病毒和细菌的识别，是遗传学分析的重要工具之一。
它的实验方法简单，结果准确，操作方便，可以通过比较质谱图来鉴定蛋白质。
Western blotting技术在蛋白质研究中起着重要作用，但是也有一些弊端，比如检测效率低，检测出的蛋白质信号不够清晰，以及操作过程比较复杂等。
因此，在使用Western blotting技术进行蛋白质定量研究的时候，需要谨慎，遵循一定的操作流程，以最大限度地保证实验结果的准确性和可靠性。
总而言之，Western blotting技术是一种有效而可靠的蛋白质识别和定量方法，在蛋白质研究中发挥着重要作用。
它的实验方法较为简单，但准确性和精度却不容忽视，因此在操作时应谨慎，以最大限度地保证实验数据的准确性和可靠性。
western blot检测蛋白质的表达实验的结论和注意事项
western blot检测蛋白质的表达实验的结论和注意事项西方博(Western blot) 是一种常用的蛋白质检测技术，通过将蛋白质样品经过电泳分离并转移到膜上，再使用特异性抗体检测蛋白质的表达水平。
以下是西方博检测蛋白质表达实验的结论和注意事项。
结论：1. 蛋白质的分子量：西方博通过与已知分子量的标准品比较，可以确定待测蛋白质的精确分子量。
根据蛋白质在凝胶上的迁移距离，可以使用特定的分子量标准品绘制标准曲线，并在曲线上确定待测蛋白质的分子量。
2. 蛋白质的表达水平：西方博使用特异性抗体来检测特定蛋白质的表达水平。
利用特异性抗体与目标蛋白质的特定区域结合，然后使用辅助抗体标记抗体，并通过光学或化学方法检测抗体标记物的表达水平。
比较待测蛋白质与内参蛋白质的表达水平可以确定其相对表达量。
注意事项：1. 样品的提取和准备：蛋白质的准备和提取是西方博实验的首要步骤。
样品应该被充分破碎，并使用适当的提取缓冲液来维持蛋白质的稳定性。
注意，使用不同类型的组织或细胞时，提取条件和方法可能有所不同。
2. 蛋白质的电泳分离：西方博通常使用SDS-PAGE (聚丙烯酰胺凝胶电泳) 来进行蛋白质的分离。
凝胶的浓度和隔离电泳条件应选择适当，以分离不同分子量的蛋白质。
3. 转膜：将电泳分离的蛋白质转移到膜上是西方博的关键步骤之一。
选用合适的膜（如聚偏氟乙烯或硝酸纤维素膜），并选择适当的电泳缓冲液进行转膜。
确保蛋白质能够均匀地转移到膜上。
4. 抗体的选择和试验条件：特异性抗体的选择和充分优化是确保实验准确性的关键因素。
保证抗体的特异性和亲和性，并验证抗体的工作浓度。
此外，充分优化抗体和探针的试验条件，包括反应温度、时间和抗体浓度等。
5. 成像和分析：西方博实验完成后，使用适当的成像方法（如化学发光或荧光成像）检测抗体标记物的表达水平。
使用适当的成像系统记录图像，确保信号处于线性范围内。
使用图像分析软件进行定量分析，比较待测蛋白质与内参蛋白质的表达水平。
western boltting乳蛋白表达变化检测实验报告
实验报告Western Blotting依然是目前分离和检测蛋白最常用到的一种技术方法，但是要将这种技术变成你的有利手段，并不容易。
因此优化实验操作手册至关重要，但是，正如Bio-Rad成像系统市场经理Ryan Short所说的，“大多数研究人员并不是Western blot技术专家——他们要解答的是更大的问题”，Ryan继续说道，“问题是大多数人都不知道何处需要优化。
坦率地说，Western blot检测过程耗时太长。
如果每个印迹实验都有花费你两天时间，那么还有多少时间确实能用于优化Western blot呢？”当然，类似抗体质量，封闭液和转印效率等因素也扮演了关键角色，让我们来仔细看看，现今还有哪些优化的技巧和工具。
加入合适数量的蛋白虽然步骤优化至关重要，但是传统的Western Blot整个过程本身过长确实也带来了困难。
Short相信一个成功的Western Blot实验操作指导中，最重要的因素之一就是确定每份凝胶中加入的蛋白量。
“这是非常重要的，因为大多数进行WB实验的研究人员都有一个兴趣蛋白，需要与内参（看家蛋白）比对”，Short说，“如果您的兴趣蛋白是一个低表达的蛋白，而你的内参蛋白是一种高表达的蛋白，那么在检测的动态范围内就必须有两种蛋白，以确保结果的可靠性。
因此可能需要加大低表达蛋白的数量，大概有50-60ug蛋白，但在这个量上内参蛋白信号可能会远远超出了线性检测范围了。
了解这些动力学对于Western blot获得好结果十分重要。
”有效的封闭：脱脂牛奶以外使用正确的封闭液将获得完全不同的一个结果。
虽然牛奶是经常被使用到的封闭液，但现如今这种封闭液也许不如高质量商业化的封闭液。
“封闭液应该结合到膜上不与相应抗体结合的区域”，Thermo Scientific公司Priya Rangaraj表示，“如果做不到这一点，你会看到斑点和增加的背景”。
目前Western市面上一些封闭液包括Thermo Scientific的StartingBlock Blocking Buffer，LI-COR Bioscience公司的Odyssey Blocking Buffer，以及来自Bio-Rad的PBS（含有1%酪蛋白封闭液）。
蛋白质免疫印迹实验WesternBlot
摇动，待所检测的蛋白带显色达到最深程度后，将硝 酸纤维素薄膜转入 PBS 溶液中停止显色反应。取出 硝酸纤维素薄膜，自然晾干后拍照保存结果。
四 思考题
• 1. 为什么裁剪的滤纸必须与凝胶大小 完全一致？若不是这样结果会怎样？
• 2. 电转移时为什么都必须带手套小心 操作并除去气泡， 否则结果会怎样？
• 在进色后应时应注意哪些问题？ • 请简述免疫印迹实验的原理，并将之与
免疫学相关概念联系起来。
2024/2/11
2024/2/11
一 实验原理
• 电泳将蛋白质从凝胶转移到固体支持物 上是通过电转移仪器完成的。它是将固 体支持物面对阳极、凝胶面对阴极，二 者结合在一起，然后将外面二侧用 Whatman 3MM滤纸结合，形成“三明治 ”结构，放入电转移仪器上，加入电泳 缓冲液，通上电源后，蛋白质即可从凝 胶上转移到固体支持物上。
2024/2/11
一 实验原理
其定量关系符合以下公式： • Ve=Vo+KV1 • Ve：某一溶质的洗脱体积 • Vo：层析柱的外水体积 • Vi：层析柱的内水体积 • K：某一溶质的分配系数
2024/2/11
二试剂和器材
1．试剂
电转移缓冲液 pH8.3 • 39mM甘氨酸 • 4.8mM Tris碱 • 0.037% SDS • 20% 甲醇 • 混合2.9克甘氨酸，5.8克Tris,0.37克SDS,加200ml甲2源自24/2/11三 操作步骤
生物化学实验southwestern blotting实验步骤 -回复
生物化学实验southwestern blotting实验步骤-回复Southwestern blotting是一种生物化学实验技术，用于检测和确定在特定生物样品中的DNA结合蛋白质。
这项技术结合了Southern blotting 和Western blotting两种方法，在实验中使用了蛋白质和DNA结合的特性。
下面将逐步介绍这个实验的步骤。
第一步：制备样品和试剂首先，需要准备需要检测的生物样品，可以是细胞培养物、组织样本或纯化的蛋白质。
同时，还需要准备一系列试剂，包括缓冲液、酶、特异性探针和适当的抗体。
第二步：制备DNA探针DNA探针是用于检测特定的DNA序列的一种标记化DNA片段。
制备DNA探针的第一步是通过PCR扩增目标DNA序列。
在PCR反应中，选择特异性引物，使其与目标DNA序列互补。
然后，在PCR反应中加入dNTPs（脱氧核苷酸三磷酸盐）、DNA聚合酶和缓冲液，进行多次的循环反应，以扩增目标DNA序列。
最后，通过各种纯化技术（如凝胶电泳和柱层析）从PCR反应混合物中纯化出DNA探针。
第三步：制备核酸和蛋白质混合物接下来，在准备样品中加入适当数量的DNA探针和蛋白质提取剂。
该提取剂将从样品中提取出核酸和蛋白质，以备后续的电泳和转印。
第四步：电泳分离和转移将核酸和蛋白质混合物分别加载到不同的凝胶槽中。
然后，进行电泳分离，将核酸分离到一个凝胶中，将蛋白质分离到另一个凝胶中。
经过一段时间的电泳分离后，核酸和蛋白质在凝胶中形成明确的带状和斑点。
接下来的步骤是将核酸和蛋白质从凝胶转移到固定膜上。
这个步骤被称为电转印。
它通常使用半湿式电转印系统，其中凝胶和固定膜在电场中进行转移。
经过一段时间后，核酸和蛋白质都会迁移到固定膜上。
第五步：固定和杂交将固定在膜上的核酸和蛋白质用适当的试剂进行固定，通常使用甲醛或紫外线进行固定。
然后，用特异性探针与固定膜上的核酸进行杂交。
探针是标记有放射性荧光或酶的DNA片段，在杂交过程中与目标DNA结合。
蛋白质印迹(Western blotting)实验操作步骤
蛋白质印迹/Western blotting实验操作步骤一、总蛋白的提取单层贴壁细胞总蛋白的提取：1)吸除培养液2)每皿细胞加4℃预冷的 PBS。
平放轻轻摇动 1min 洗涤细胞，然后弃去洗液。
重复上操作两次，共洗细胞三次以洗去培养液。
将PBS弃净后把培养瓶置于冰上。
（PBS会降低细胞裂解液的效价和总蛋白的浓度）3)加裂解液于冰上裂解 30 min，为使细胞充分裂解，培养瓶要经常来回摇动（可放置在4℃摇床裂解）。
4)裂解完后，用干净的刮棒将细胞刮于培养瓶的一侧（动作要快），然后用枪将细胞碎片和裂解液移至 1.5mL 离心管中。
（整个操作尽量在冰上进行）5)在EP管中将细胞震碎（10s/次，3次）6)于4℃下 12000rpm 离心 20-30 min。
（离心机提前预冷至4℃）7)将离心后的上清分装转移倒 1.5mL 的离心管中放于－20℃保存。
二、BCA法测蛋白浓度1)将BCA protein assay每孔 A液200μL,B液4μL混合，96孔板每孔加入22.5μLdd水，2.5μL蛋白提取液，200μLA+B混合液2)在烘箱中37℃，90r，孵育30min3)使用酶标仪测出吸光度后，使用公式y=0.9154x-0.118计算出蛋白浓度（浓度需要×10）4)将蛋白配成等浓度等体积（使用配置好的裂解液配），按照4：1加入5X loading buffer然后煮5min（100℃），放入-20℃保存三、SDS-PAGE电泳板子1.5mm，梳子1.5mm1）清洗玻璃板：一只手扣紧玻璃板，另一只手蘸点洗衣粉轻轻擦洗。
两面都擦洗过后用自来水冲洗2）验漏：玻璃板对齐后放入夹中卡紧，然后垂直卡在架子上，加满水验漏3）灌胶：验漏结束后用纸吸干水分，按方法配制下层胶（4mL+4mL+80μLAP),灌胶时，可用 1mL 枪吸取胶沿玻璃放出，待胶面升到绿带中间线高度时即可。
然后胶上加1 mL水，液封后的胶凝的更快。
蛋白质免疫印迹（WesternBlot）实验步骤和原理及注意事项
蛋⽩质免疫印迹（WesternBlot）实验步骤和原理及注意事项蛋⽩质免疫印迹（Western Blot ）实验步骤和原理及注意事项1.收集蛋⽩样品(Protein sample preparation)可以使⽤适当的裂解液。
收集完蛋⽩样品后，为确保每个蛋⽩样品的上样量⼀致，需要测定每个蛋⽩样品的蛋⽩浓度。
根据所使⽤的裂解液的不同，需要采⽤适当的蛋⽩浓度测定⽅法。
因为不同的蛋⽩浓度测定⽅法对于⼀些去垢剂和还原剂等的兼容性差别很⼤。
BCA法。
2. 电泳(Electrophoresis)(1) SDS-PAGE凝胶配制(2) 样品处理在收集的蛋⽩样品中加⼊适量浓缩的SDS-PAGE蛋⽩上样缓冲液。
例如2X或5X的SDS-PAGE蛋⽩上样缓冲液。
使⽤5X的SDS-PAGE蛋⽩上样缓冲液可以减⼩上样体积，在相同体积的上样孔内可以上样更多的蛋⽩样品。
100℃或沸⽔浴加热3-5分钟，以充分变性蛋⽩（根据蛋⽩分⼦的⼤⼩，煮沸时间可适当变化，⼀般不低于5min。
煮沸只是变性蛋⽩，⽽不是分解，⼀般加了抑制酶不会分解。
煮沸对于SDS-PAGE凝胶电泳是必须的，只有煮沸,才能消除蛋⽩质的⽴体⼆级结构,伸展为⼀维线性结构,所以⼀般来讲⼆聚体都会解体,才能完全按照分⼦量跑电泳,加的蛋⽩Marker才有指⽰分⼦量的意义。
蛋⽩样品变性后与SDS充分结合，SDS使每个氨基酸带相同的电荷,使整个蛋⽩呈线性结构. 抗体因为要是线性表位结合的，100度煮10min 后13000,离⼼5分钟,取上清电泳,因为沉淀会导致拖尾.也可以取上清到另⼀管,4度可以放⼀周备再次电泳）。
(3)电泳i.清洗玻璃板：⼀只⼿扣紧玻璃板，另⼀只⼿蘸点洗⾐粉轻轻擦洗。
两⾯都擦洗过后⽤⾃来⽔冲，再⽤蒸馏⽔冲洗⼲净后⽴在筐⾥晾⼲。
ii.灌胶与上样（1）玻璃板对齐后放⼊夹中卡紧。
然后垂直卡在架⼦上准备灌胶。
（操作时要使两玻璃对齐，以免漏胶。
）（2）配10%分离胶，加⼊TEMED后⽴即摇匀即可灌胶。
Western blotting检测大肠杆菌重组蛋白
实验三 Western blotting检测大肠杆菌重组蛋白一、实验目的利用Western Blotting技术，定性（或定量）检测苦荞黄酮醇合酶基因（Flavonol synthase gene, FtFLS）在大肠杆菌表达宿主菌Escherichia coli BL(DE3)中的诱导表达。
二、实验原理黄酮醇合酶（FLS，EC 1.14.11.23）属于2-ODD家族，催化黄酮醇合成支路中最后一步氧化反应，也是直接合成黄酮醇的反应。
FLS可以使二氢黄酮醇在C3链中C2和C3之间氧化形成双键，从而生成黄酮醇：a Dihydroflavonol + 2-oxoglutarate + O2 a Flavonol + succinate + CO2 + H2O。
本实验采用PCR的方法，在苦荞黄酮醇合酶基因（FtFLS）ORF起始密码子前引入KpnІ酶切位点，去掉终止密码并引入Bam H І酶切位点。
克隆引入酶切位点后的FtFLS到表达载体pET-30b(+)质粒中，其表达产物分别在N-末端和C-末端各含有 6 ×His标签。
重组质粒（pET-30b(+)-FtFLS）经鉴定后转化表达宿主菌E. coli BL21(DE3)并使用IPTG进行诱导表达。
收集诱导0 h、2 h、4 h、6 h和8 h的产物，经SDS-PAGE后用于考马斯亮蓝R-250染色或Western blotting分析。
Western blotting的标准流程如下：蛋白质首先通过SDS-PAGE胺凝胶电泳分离，通过电泳转移到固相支持物上（硝酸纤维素膜、PVDF膜和尼龙膜）；将膜上未反应的位点封闭起来，以抑制抗体的非特异性吸附，固定的蛋白质即可与特异性的多克隆或单克隆抗体相互作用并通过放射、生色或化学发光的方法进行定位。
本实验采用小鼠抗聚组氨酸单克隆抗体（Anti-His tag IgG，一抗）与重组FtFLS蛋白的N-末端和C-末端6 ×His发生抗原-抗体特异反应，再利用辣根过氧化物酶标记羊抗小鼠IgG （peroxidase-Goat Anti- Mouse IgG，二抗）与一抗发生特异结合，最后使用DAB进行显色。
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实验三重组蛋白的表达及Western boltting鉴定
一、实验内容
1．重组蛋白在大肠杆菌中的诱导表达。
2．重组蛋白的Western boltting鉴定。
二、实验要求
通过实验，要求学生掌握外源基因在原核细胞中表达的方法，掌握Western bolt的基本原理、实验操作步骤及注意事项。
三、实验方法
1．重组蛋白的原核表达与SDS-PAGE分析
（1）将含有重组质粒的细胞在LB平板（含抗生素）上划线，37℃培养过夜。
（2）从LB平板挑取单菌落分别移至2 mL的LB培养液（含抗生素），37 ℃振荡培养过夜。
（3）将过夜培养物按1：100转接于2 mL的LB培养液（含抗生素），37℃继续振摇培养至细菌生长对数中期（OD600值达0.5～0.6）。
（4）加入IPTG至终浓度0.5 mmol/L，37℃诱导表达3～6 hr。
（5）取200 μL菌液装入1.5 mL Eppendorf管中，以5000 rpm离心1 min，得到菌体细胞。
将细胞重悬于30 μL水，再加入10 μL 4 × SDS-PAGE加样缓冲液，混匀，100℃煮沸10 min后，12,000 rpm离心2 min，吸取上清转移至另一新的离心管中。
（6）样品取5~10 μL进行SDS-PAGE分析。
2．Western blot分析
（1）取4 μL阳性克隆诱导后的样品，利用15%SDS-PAGE电泳分离。
（2）用半干式电转移法将蛋白转至NC膜上。
a.将聚丙稀酰胺凝胶浸泡在电转移缓冲液中平衡10 min。
b.裁剪与凝胶大小相同的NC膜，在电转移缓冲液中平衡10 min。
c.裁剪合适大小的滤纸，用电转移缓冲液浸润，按阳极、三层滤纸、NC膜、
凝胶、三层滤纸、阴极的顺序叠放电转移三明治。
d.按0.5 mA/cm2膜恒流电转移30～50 min。
（3）杂交
a.将NC膜在5%脱脂奶封闭液中室温反应1 hr。
b.TBST漂洗3 × 10 min
c.转移膜至用TBST1：100稀释的一抗工作液（抗六个组氨酸单克隆抗体）中，
室温反应1 hr。
d.TBST漂洗3 × 10 min
e.转移膜至用TBST1：2000稀释的辣根过氧化物酶（HRP）偶联的羊抗兔I gG
二抗工作液中，室温反应1 hr。
f.TBST漂洗3 × 10 min。
（4）显色
将膜浸泡在DAB显色液中，待出现清晰条带后，把膜转移至蒸馏水中中止反应。
（5）拍照和保存结果。
附：
溶液配制
电转移缓冲液
48 mmol/L Tris
39 mmol/L 甘氨酸
0.01% SDS
20% 甲醇
TBST
20 mmol/L Tris-HCl/pH 7.5
0.15 mol/L NaCl
0.05% Tween-20
Western blot封闭液：TBST + 5%脱脂奶粉或胎牛血清白蛋白
抗体稀释液：TBST + 1%脱脂奶粉或胎牛血清白蛋白
DAB显色液：二氧基联苯胺，Diaminobenzidine
由图可知，重组蛋白的分子量约为45KDa，由IPTG诱导表达的全菌、上清和沉淀均有表达，由乳糖诱导的仅在全菌和上清中有表达（与没有诱导的进行比较）。
由图可知，重组蛋白的分子量约为45KDa，IPTG诱导的重组蛋白均有表达，且上清表达量高，而乳糖诱导的表达仅在上清和全菌中，而且表达量比IPTG诱导的效果差。