酶活测定基本方法

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前处理:

称取叶片0.5克,加5ml(1+4)提取液PH7.8 Pbs,冰浴研磨,12000g,4℃,20min,上清液即为粗酶提取液。

注:粗酶提取液要全部转移;加入石英砂后离心需配平

1.SOD测量

取透明度好的指形管,按下表加入各溶液:

试剂(酶)用量(ml)

0.05M磷酸缓冲液 1.5

65mM Met溶液0.3

500uM NBT溶液0.3

100uM EDTA-Na

2

0.3

200uM核黄素0.3

酶液0.1(对照管加缓冲液)

蒸馏水0.5

总体积 3.3

混匀后将一支对照管置暗处作空白对照,其余各管于4000lx光下反应20-30min,反应结束后,以不照光的对照管为空白,560nm测定OD值。按下式计算SOD活性。

SOD总活性=[(A

CK —A

E

)×V]/[ A

CK

×1/2×W×a]

SOD比活力=SOD总活性/蛋白质浓度

SOD总活性以每克鲜重每单位表示:比活力单位以酶单位/mg蛋白表示A

CK

—照光对照管的消光度值

A

E

—样品管的消光度值

V—样液总体积(ml)

a—测定时样品用量(ml)

W—样重(g)

蛋白质浓度单位为:mg蛋白/g样重。

【试剂配制】

磷酸缓冲液配制:

母液:A:Na

2HPO

4

•12H

2

O 36g,稀释至500ml

B:NaH

2PO

4

•2H

2

O 15.92g,稀释至500ml

提取液配制:取0.0186gEDTA(0.1mM),5g PVP (1%(g/ml)),用磷酸缓冲液(PH7.8)稀释至500ml。

PH7.8 Pbs配制:A 114.35ml + B 10.625ml,定容至500ml。

PH7.0 Pbs配制:A 152.5ml(76.25ml)+ B 97.5ml(48.75ml)稀释至1000ml (500ml)。

65 mmol/L Met: 取0.97g Met 用磷酸缓冲液(PH 7.8)定容至100ml;

500 umol/L NBT:取0.0409g NBT用磷酸缓冲液(PH 7.8)定容至100ml(避光保存);

100 umol/L EDTA-Na

2: 0.03721g(0.0186g)EDTA-Na

2

磷酸缓冲液(PH 7.8)定

容至1000ml(500ml);

200 umol/L 核黄素:0.0753(0.03765)g核黄素磷酸缓冲液(PH 7.8)定容至1000ml(500ml);(现用现配)

注:若要抑制Cu-Zn/SOD的活性,可加入30mM的KCN0.3ml;若要抑制Cu-Zn/SOD

Fe-SOD的活性,可加入50mM的H

2O

2

(0.52ml 30%的H2O2稀释至100ml) 0.3ml;

2.CAT

酶提取液:取材料0.5g,置研钵中,加入5ml 4℃下预冷的提取液和少量石英砂研磨,12000g,4℃,20min,上清液即为过氧化氢酶粗提液,4℃下保存备用。(同上)

0.1 ml 酶提取液+ 2.9 ml CAT 反应液,240nm比色,(10s∕20s)。

【E=39.4mMcm-1】活性=OD×1000/E(umol/L);

CAT反应液:0.28ml 30%的H

2O

2

用pH7.0的磷酸缓冲液稀释至250ml。(H

2

O

2

10mM)。

3.APX

酶液提取液配制:取材料0.5g,置研钵中,加入5ml 4℃下预冷的提取液(同上)和少量石英砂研磨,12000g,4℃,20min,上清液即为APX酶粗提液,4℃下保存备用。(如果是长期保存的材料,则提取液为0.186g EDTA,0.7418g ASA,用pH7.0的缓冲液定容到500ml,此处作用是防止APX失活,但是新鲜材料则两种提取方法对后来结果影响差异不明显)。

APX 反应液:11.2ul 30%H

2O

2

+0.04718gASA,磷酸缓冲液(pH7.0)定容到500ml。

(此反应液必须现配现用)

0.1 ml 酶提取液+2.9 ml APX反应液,290nm比色(0~40s)。

4.POD

酶液提取液配制:取材料0.5g,置研钵中,加入5ml 4℃下预冷的提取液(同上)和少量石英砂研磨,12000g,4℃,20min,上清液即为POD粗提液,4℃下保存备用。

POD反应液:0.125ml愈创木酚+0.2553ml 30%H

2O

2

,用pH7.0的磷酸缓冲液稀释

至250ml。

20ul酶提取液+3ml POD反应液,470nm比色(0s/30s)。

5.可溶性蛋白测定

0.1 ml酶提取液(测SOD的酶提取液)+5ml 考马斯亮蓝G250,反应2 min,595nm 比色,按下式计算蛋白质含量:

蛋白质含量(mg/g鲜重)=(C×V/a)/W

C—查标准曲线所得每管蛋白质含量(mg)

V—提取液总体积(ml)

a—测定所取提取液体积(ml)

W—样品重(g)

考马斯亮蓝G250:0.1g考马斯亮蓝G250溶于50ml 90%乙醇中,加入85%磷酸100ml,蒸馏水定容至1000ml。(配好后最好过滤)

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