考马斯亮蓝法测蛋白质含量
考马斯亮蓝法测定蛋白质含量
蛋白质的含量测定
目前常用的5种经典方法： 凯式定氮法（Kjedahl法） 紫外吸收法 双缩脲法（Biuret法） Folin-酚试剂法（Lorry法） 考马斯亮蓝法（Bradford法）
（一）凯式定氮法
原理： 蛋白质是含氮的有机化合物。蛋白质与硫酸和催 化剂一同加热消化，使蛋白质分解，分解的氨与 硫酸结合生成硫酸铵。然后碱化蒸馏使氨游离， 用硼酸吸收后再以硫酸或盐酸标准溶液滴定，根 据酸的消耗量乘以换算系数，蛋白质含量。
Bradford 法的优点
(1)灵敏度高 其最低检测蛋白质含量可达1ug/ml,
这是因为蛋白质与染料相结合后产生 的颜色变化很大,蛋白质-染料复合物有 更高的吸光系数 ,因而光吸收要比Folin –酚试剂法大得多。
(2)测定快速,简洁
只需要加一种试剂，完成一个样品 的测定，只要5分钟左右。由于染料与 蛋白质结合的过程，大约只要2分钟即 可完成，其颜色可以在1小时内保持稳 定，且在5分钟至20分钟之间，颜色的 稳定性最好。
(3)干扰物质少 一些阳离子如K+、Mg+、Na+和硫酸铵 等不干扰测定。
干扰物质：去污剂、 SDS、TritonX-100 、0.1 MNaOH
Bradford 法的缺点
(1)由于各种蛋白质中的精氨酸和芳香族氨基酸的含
量不同，因此 Bradford 法用于不同蛋白质时有较
大的偏差，最好选用与待测样品氨基酸成份相同 的标准蛋白。 (2)仍有一些物质干扰此法的测定，主要的干扰物质 有去污剂等。 (3)标准曲线也有轻微的非线形，因而不能用比尔定 律进行计算而只能用标准曲线来测定未知蛋白质 的浓度。
缺点： 操作比较复杂、费时（8-10小时） 灵敏度低，适用于0.2-1.0mg氮测定。
实验8考马斯亮蓝法测蛋白质的含量
对实验条件进行优化，如调整PH值、反应时间、温度等，以提高实验
结果的稳定性。
03
应用拓展
进一步研究考马斯亮蓝法在特殊蛋白质或不同来源蛋白质测定中的应用，
拓展其应用范围。同时，可以探索与其他蛋白质测定方法的比较研究，
为蛋白质定量分析提供更多选择。
THANKS
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标准曲线的绘制
加样
将标准蛋白溶液分 别加入相应的试管 中。
测定光密度值
在特定波长下测定 各试管的光密度值， 记录数据。
准备标准蛋白溶液
制备一系列不同浓 度的标准蛋白溶液。
显色反应
向每个试管中加入 适量的考马斯亮蓝 溶液，混合均匀。
绘制标准曲线
根据测得的光密度 值与标准蛋白浓度 绘制标准曲线。
加样
样品稀释
根据实验需求，将蛋白质 样品进行适当稀释，以便 后续测量。
样品标记
对每个样品进行标记，以 便后续结果分析时能够准 确对应。
考马斯亮蓝溶液的配制
准备试剂
储存与使用
按照实验要求准备考马斯亮蓝溶液所 需的试剂。
将配制好的考马斯亮蓝溶液储存于棕 色瓶中，避免光照，使用前摇匀。
配制溶液
将各试剂按比例混合，制备出考马斯 亮蓝溶液。
影响因素
考马斯亮蓝法测定蛋白质含量时，PH值、反应时间、温度等因素 可能影响实验结果。
适用范围
考马斯亮蓝法适用于大多数蛋白质的定量测定，但对于某些特殊蛋 白质或不同来源的蛋白质可能存在一定误差。
对实验的改进建议与展望
01
标准化操作
为提高实验准确性，建议对实验操作进行标准化，减少人为误差。
02
优化条件
考马斯亮蓝与蛋白质结合的机制
蛋白质含量测定法考马斯亮蓝法
蛋白质含量测定法——考马斯亮蓝法[实验目的]学习、掌握考马斯亮蓝法（Bradford 法）测定蛋白质含量的方法[实验原理]（蓝色）变为氨基酸芳香族碱性染料考马斯亮蓝磷酸nm G 595250max λ−−→−+-[器材与试剂]器材722型可见光分光光度计、漩涡混合器、试管16支 试剂1.标准蛋白质溶液，用牛血清清蛋白（BSA ），配制成1.00mg/ml 。
2.考马斯亮蓝G-250染料试剂：称100mg 考马斯亮蓝，溶于50ml 95%的乙醇后，再加入120ml 85% 的磷酸，用水稀释至1升。
[实验方法]标准方法1.取10支试管，分别编号后按 表1 剂量依次加入标准蛋白（或未知蛋白）、去离子水和考马斯亮蓝染料。
每支试管加完后，立即在漩涡混合器上混合。
2.加完染料20min 后，使用722分光光度计，塑料比色皿，在595nm 处测量吸光度A 595。
3.用标准蛋白浓度（mg/ml ）为横坐标，用A 595为纵坐标，进行直线拟合，得到标准曲线。
根据测得的未知样品的A 595，代入公式即可求得未知样品的蛋白质含量。
根据所测样品的吸光度,在标准曲线上查得相应的蛋白质含量,按下式计算: 样品蛋白质含量(μg/g 鲜重) =）测定时提取液体积（）样品重（）提取液总体积（）查得的蛋白质（ml g ml g g ⨯⨯/μSDS 干扰实验1.取5支试管，分别编号后按表2剂量依次加入标准蛋白、SDS 、去离子水和考马斯亮蓝染料。
每支试管加完后，立即在漩涡混合器上混合。
2.加完染料20min 后，使用753分光光度计，塑料比色皿，在595nm 处测量吸光度A 595。
[实验数据与结果分析]（一）标准方法的数据和图表1 考马斯亮蓝标准法实验表格根据表1，以A595为纵坐标，标准蛋白质量/（μg）为横坐标，作图1。
图1 考马斯亮蓝标准法根据线性拟合公式y=a x+b计算所测溶液的蛋白质的含量。
（二）SDS干扰数据和图表2 考马斯亮蓝SDS干扰实验表格根据表2，以A595为纵坐标，SDS浓度为横坐标，作图2。
蛋白质含量的测定考马斯亮蓝染色法
➢ 蛋白质与考马斯亮蓝G-250结合2min左右达到平衡，完成反应
十分迅速，其结合物在室温1h内保持稳定
➢ 考马斯亮蓝G-250染色法简单迅速，灵敏度高，一些阳离子如
K些+去、污Na剂+、如MTgri2t+o、nXN-H104+0以、及SD乙S等醇严等重物干质扰都测不定干，扰且测样定品，测但定一 后不能回收
度计的光源
➢ 单色器 把混合光波分解为单一波长光的装置 在分光光度计中多用棱镜或光栅作为色散元件 ✓ 棱镜：是根据光的折射原理而进行的分光系统，当一束平行光进入棱镜散
射器后就会按波长顺序分解成单一波长的单色光
✓ 光栅：是利用光的衍射和干涉原理进行的分光系统
转动棱镜或光栅的波长盘，可以改变单色器出射光束的波长，调节出入射
狭缝隙的宽度，可以改变出射光束的带宽和单色光的纯度
纯粹的单色光只是一种理想情况，实际上只是具有一定波长范围的谱带，
对于单色光纯度来说，狭缝是越窄越好，但光的强度也就越弱
➢ 吸收池
亦称样品室、比色池或吸收池，由透明材料（有机玻璃、石英或蓝宝石等）
制成
在紫外光波区检测选用石英、蓝宝石比色杯；在可见光波区检测可选用有机
➢血清蛋白质含量的计算：利用标准曲线，根据血清蛋白测定的 吸光值求出相应的蛋白含量，注意稀释倍数
பைடு நூலகம்
六、实验思考
➢如何正确使用722型可见光分光光度计？ ➢考马斯亮蓝G-250染色法测定蛋白质含量的原理是什么？ ➢考马斯亮蓝G-250染色法测定蛋白质含量有什么优缺点？
➢人眼可见的光只占电磁波谱的很小一部分（400~760nm）。它是一种频率较 大的电磁波。电磁波按频率大小，从频率最小的无线电波到频率最大的γ-射线 排成一列，即组成电磁波的波谱，如下图所示
蛋白质含量测定法考马斯亮蓝法
蛋白质含量测定法——考马斯亮蓝法[实验目的]学习、掌握考马斯亮蓝法（Bradford 法）测定蛋白质含量的方法[实验原理]（蓝色）变为氨基酸芳香族碱性染料考马斯亮蓝磷酸nm G 595250m ax λ−−→−+-[器材与试剂]器材722型可见光分光光度计、漩涡混合器、试管16支 试剂1.标准蛋白质溶液，用牛血清清蛋白（BSA ），配制成1.00mg/ml 。
2.考马斯亮蓝G-250染料试剂：称100mg 考马斯亮蓝，溶于50ml 95%的乙醇后，再加入120ml 85% 的磷酸，用水稀释至1升。
[实验方法]标准方法1.取10支试管，分别编号后按 表1 剂量依次加入标准蛋白（或未知蛋白）、去离子水和考马斯亮蓝染料。
每支试管加完后，立即在漩涡混合器上混合。
2.加完染料20min 后，使用722分光光度计，塑料比色皿，在595nm 处测量吸光度A 595。
3.用标准蛋白浓度（mg/ml ）为横坐标，用A 595为纵坐标，进行直线拟合，得到标准曲线。
根据测得的未知样品的A 595，代入公式即可求得未知样品的蛋白质含量。
根据所测样品的吸光度,在标准曲线上查得相应的蛋白质含量,按下式计算: 样品蛋白质含量(μg/g 鲜重)=）测定时提取液体积（）样品重（）提取液总体积（）查得的蛋白质（ml g ml g g ⨯⨯/μ以蛋白标准溶液浓度为横坐标，以吸光度为纵坐标，绘制标准曲线。
计算出回归方程。
如Y=aX+b让后把待测样品的吸光值代入回归方程，算出待测样品浓度 SDS 干扰实验1.取5支试管，分别编号后按表2剂量依次加入标准蛋白、SDS 、去离子水和考马斯亮蓝染料。
每支试管加完后，立即在漩涡混合器上混合。
2.加完染料20min 后，使用753分光光度计，塑料比色皿，在595nm 处测量吸光度A 595。
[实验数据与结果分析]（一）标准方法的数据和图表1 考马斯亮蓝标准法实验表格根据表1，以A595为纵坐标，标准蛋白质量/（μg）为横坐标，作图1。
考马斯亮蓝法测蛋白质含量
标准曲线制作—考马斯亮蓝法测蛋白质含量欧阳学文一、标准曲线一般用分光光度法测物质的含量，先要制作标准曲线，然后根据标准曲线查出所测物质的含量。
因此，制作标准曲线是生物检测分析的一项基本技术。
二、蛋白质含量测定方法1、凯氏定氮法2、双缩脲法3、Folin酚试剂法4、紫外吸收法5、考马斯亮蓝法三、考马斯亮蓝法测定蛋白质含量—标准曲线制作（一）、试剂：1、考马斯亮蓝试剂：考马斯亮蓝G—250 100mg溶于50ml 95%乙醇，加入100ml 85% H3PO4，用蒸馏水稀释至1000ml,滤纸过滤。
最终试剂中含0.01%（W/V）考马斯亮蓝G—250,4.7%（W/V）乙醇，8.5%（W/V）H3PO4。
2、标准蛋白质溶液：纯的牛血清血蛋白，预先经微量凯氏定氮法测定蛋白氮含量，根据其纯度同0.15mol/LNaCl配制成100ug/ml蛋白溶液。
（二）、器材：1、722S型分光光度计使用及原理（）。
2、移液管使用（）。
（三）、标准曲线制作：1、A595nm为纵坐标，标准蛋白含量为横坐标（六个点为10ug、20 ug、30 ug、40 ug、50 ug、60 ug），在坐标轴上绘制标准曲线。
1）、利用标准曲线查出回归方程。
2）、用公式计算回归方程。
3）、或用origin作图，测出回归线性方程。
即A595nm=a×X( )+6一般相关系数应过0.999以上，至少2个9以上。
4）、绘图时近两使点在一条直线上，在直线上的点应该在直线两侧。
（四）、蛋白质含量的测定：样品即所测蛋白质含量样品（含量应处理在所测范围内），依照操作步骤1操作，测出样品的A595nm，然后利用标准曲线或回归方程求出样品蛋白质含量。
一般被测样品的A595nm值在0.1—0.05之间，所以上述样品如果A595nm值太大，可以稀释后再测A595nm值，然后再计算。
（五）、注意事项：1、玻璃仪器要洗涤干净。
2、取量要准确。
3、玻璃仪器要干燥，避免温度变化。
考马斯亮蓝法测定蛋白质含量
考马斯亮蓝法测定蛋白质含量1. 前言嘿，朋友们，今天咱们聊聊一个有趣的话题——考马斯亮蓝法，听起来挺高大上的吧？其实这玩意儿就是用来测定蛋白质含量的，简单来说，就是看看你的食物里到底有多少“肌肉”的成分。
想象一下，咱们吃的肉、蛋、豆腐，都是富含蛋白质的食物，咱们用这个方法可以精确地知道它们含有多少蛋白质，绝对是个好玩的实验，来吧，跟我一起揭开它的神秘面纱。
2. 什么是考马斯亮蓝法？2.1 简单介绍首先，咱们来聊聊什么是考马斯亮蓝法。
它其实是一种颜色变化的实验，听起来是不是有点像魔法？你只要把样品（比如说一小块肉或者一勺蛋白质粉）放在试管里，加点特殊的染料，这染料就叫考马斯亮蓝，之后再加点酸溶液，哇，你会发现颜色发生了变化。
更厉害的是，颜色的深浅就能告诉你蛋白质的含量，简直像变魔术一样！这就是为什么它受到许多科学家和实验室的青睐。
2.2 原理揭秘那么，这个颜色变化的背后，究竟有什么科学原理呢？嘿，别着急，听我慢慢说。
考马斯亮蓝这种染料会和蛋白质中的氨基酸发生反应，形成一种稳定的复合物。
这就像是小伙伴们在一起聚会，越多人参加，气氛就越热烈。
随着蛋白质的浓度增加，复合物的数量也就随之增加，所以颜色也会越来越深。
只要用仪器测量一下颜色的深度，咱们就能算出蛋白质的含量，真是既简单又方便。
3. 实验步骤3.1 准备工作想要在家里试一试这个方法，当然得先做好准备。
首先，你得准备好一些材料：考马斯亮蓝染料、酸性溶液（一般用盐酸就可以）、待测样品（不妨试试豆腐或者鸡肉），还有一些基本的实验器材，比如试管、比色皿、量筒等。
别小看这些东西，有时候实验的成功与否就看这些小玩意儿了。
3.2 操作步骤接下来，就是真正的实验时刻了！首先，咱们把待测样品处理一下，比如切成小块，然后用水萃取出蛋白质。
接着，把提取液倒入试管，加入考马斯亮蓝染料，搅拌均匀。
再倒入酸性溶液，注意，这里要控制好比例，不然可就要出乱子了。
然后，静置几分钟，让颜色充分反应。
考马斯亮蓝法测蛋白质含量
标准曲线制作—考马斯亮蓝法测蛋白质含量一、标准曲线一般用分光光度法测物质得含量,先要制作标准曲线,然后根据标准曲线查出所测物质得含量。
因此,制作标准曲线就是生物检测分析得一项基本技术。
二、蛋白质含量测定方法1、凯氏定氮法2、双缩脲法3、Folin-酚试剂法4、紫外吸收法5、考马斯亮蓝法三、考马斯亮蓝法测定蛋白质含量—标准曲线制作(一)、试剂:1、考马斯亮蓝试剂:考马斯亮蓝G—250 100mg溶于50ml 95%乙醇,加入100ml 85% H3PO4,用蒸馏水稀释至1000ml,滤纸过滤。
最终试剂中含0、01%(W/V)考马斯亮蓝G—250,4、7%(W/V)乙醇,8、5%(W/V)H3PO4。
2、标准蛋白质溶液:纯得牛血清血蛋白,预先经微量凯氏定氮法测定蛋白氮含量,根据其纯度同0、15mol/LNaCl配制成100ug/ml蛋白溶液。
(二)、器材:1、722S型分光光度计使用及原理()。
2、移液管使用()。
(三)、标准曲线制作:1、2、以A595nm为纵坐标,标准蛋白含量为横坐标(六个点为10ug、20 ug、30 ug、40 ug、50 ug、60 ug),在坐标轴上绘制标准曲线。
1)、利用标准曲线查出回归方程。
2)、用公式计算回归方程。
3)、或用origin作图,测出回归线性方程。
即A595nm=a×X( )+6一般相关系数应过0、999以上,至少2个9以上。
4)、绘图时近两使点在一条直线上,在直线上得点应该在直线两侧。
(四)、蛋白质含量得测定:样品即所测蛋白质含量样品(含量应处理在所测范围内),依照操作步骤1操作,测出样品得A595nm,然后利用标准曲线或回归方程求出样品蛋白质含量。
一般被测样品得A595nm值在0、1—0、05之间,所以上述样品如果A595nm值太大,可以稀释后再测A595nm值,然后再计算。
(五)、注意事项:1、玻璃仪器要洗涤干净。
2、取量要准确。
3、玻璃仪器要干燥,避免温度变化。
考马斯亮蓝染色法测定蛋白质的含量
实验一 考马斯亮蓝染色法测定蛋白质的含量【实验目的】1．掌握考马斯亮蓝染色法测定蛋白质含量的原理和过程。
2．熟悉蛋白质含量测定的影响因素。
【实验原理】1976年Bradford 等建立了用考马斯亮蓝G-250与蛋白质结合，迅速、灵敏的定量测定蛋白质的方法。
染料与蛋白质结合后引起染料最大吸收的改变，从465 nm 变为595 nm ，光吸收增加。
蛋白质-染料复合物具有较大的吸光系数，因此大大提高了蛋白质测定的灵敏度，最低检出量为1 g 蛋白。
染料与蛋白质的结合是很迅速的过程，大约只需2分钟，结合物的颜色在1小时内是稳定的。
由于该法简单迅速，干扰物质少，灵敏度高，现已广泛应用于蛋白质含量的测定。
N CH 2CH 3CH 2N +CH 3CH 2CH 2NHCH 3CH 3O CH 2CH 3SO 3-SO 3Na蛋白质+ 蛋白质-染料复合物H +考马斯亮蓝G-250（蓝色，λmax595nm ）【仪器与试剂】1．紫外-可见分光光度计，微量注射器。
2．考马斯亮蓝G-250，95%乙醇，85%(W/V)磷酸。
【实验步骤】1．标准蛋白质溶液的配制称取牛血清白蛋白适量，加水溶解并配制成1 mg/ml 的溶液。
2．蛋白试剂的配制称取100 mg考马斯亮蓝G-250，加入95%乙醇50 ml溶解，再加入85%(W/V)磷酸100 ml，将溶液用水稀释至1000 ml。
试剂的终浓度为0.01%考马斯亮蓝G-250，4.7%乙醇和8.5%(W/V)磷酸。
3．标准曲线的制作取标准蛋白质溶液5、10、20、50、100 μl于小试管中，用水稀释至0.1 ml，然后分别加入5 ml蛋白试剂，充分振荡混合，2分钟后于595 nm测定其吸光度值。
以0.1 ml水及5 ml蛋白试剂作为空白对照。
以蛋白浓度为横坐标，吸光度值为纵坐标，绘制标准曲线作为定量依据。
4．样品测定取含10~100 μg蛋白质溶液于小试管中，加水稀释至0.1 ml，然后加入5 ml 蛋白试剂，充分振荡混合，2分钟后于595 nm测定其吸光度值。
考马斯亮蓝法测蛋白质含量原理
考马斯亮蓝法测蛋白质含量原理考马斯亮蓝法是一种常用的蛋白质含量测定方法，其原理是利用考马斯亮蓝与蛋白质结合形成蓝色络合物，通过比色测定蛋白质含量。
这种方法具有操作简便、灵敏度高、结果稳定等优点，被广泛应用于蛋白质含量的测定。
首先，将待测样品与考马斯亮蓝溶液充分混合，使蛋白质与考马斯亮蓝发生络合反应。
考马斯亮蓝与蛋白质结合后，形成蓝色络合物，其吸光度与蛋白质的含量成正比。
然后，利用分光光度计测定络合物的吸光度，根据标准曲线或计算公式，可以精确地计算出待测样品中蛋白质的含量。
在进行考马斯亮蓝法测定蛋白质含量时，需要注意一些关键操作。
首先，样品的制备要求精确，必须保证待测样品中蛋白质的完全溶解和混合均匀。
其次，在与考马斯亮蓝溶液混合后，需要充分反应一定时间，以保证蛋白质与考马斯亮蓝充分结合形成稳定的络合物。
最后，在测定吸光度时，应选择合适的波长，并进行零点校正，确保测定结果的准确性。
考马斯亮蓝法测定蛋白质含量的优点之一是操作简便。
相比于其他方法，考马斯亮蓝法无需复杂的仪器和操作步骤，只需常见的实验设备和基本的化学品即可完成测定。
另外，该方法的灵敏度高，可以测定微量的蛋白质，适用于各种类型的样品。
此外，考马斯亮蓝法的结果稳定可靠，具有较高的重复性和准确性，被广泛用于生物化学、分子生物学等领域的蛋白质研究中。
总的来说，考马斯亮蓝法是一种简便、灵敏、稳定的蛋白质含量测定方法，其原理是利用考马斯亮蓝与蛋白质形成络合物，通过比色测定蛋白质含量。
在进行测定时，需要注意样品制备、反应时间和吸光度测定等关键操作，以确保测定结果的准确性和可靠性。
考马斯亮蓝法已成为蛋白质研究中常用的技术手段，为科研工作者提供了重要的实验数据支持。
考马斯亮蓝法测蛋白质含量
考马斯亮蓝法测蛋白质含量实验概要bradford法是最常用的蛋白质快速定量方法。
coomassie brilliant blue g-250与蛋白质结合使染料的最大吸收峰由465 nm变为595 nm，溶液的颜色由棕色变为蓝色，595nm波长下吸光度值与蛋白含量成正比。
灵敏度比lowry法高4倍，与bca法相当。
反应迅速，2分钟即可达到平衡并在1小时内保持稳定。
操作简便，只需要一种反应试剂。
实验原理考马斯亮蓝(coomassie brilliant blue)法测定蛋白质浓度，是利用蛋白质―染料结合的原理，定量的测定微量蛋白浓度的快速、灵敏的方法。
这种蛋白质测定法具有超过其他几种方法的突出优点，因而正在得到广泛的应用。
这一方法是目前灵敏度最高的蛋白质测定法。
考马斯亮兰g-250染料，在酸性溶液中与蛋白质结合，使染料的最大吸收峰(lmax)的位置，由465 nm变为 595 nm，溶液的颜色也由棕黑色变为兰色。
通过测定595 nm处光吸收的增加量可知与其结合蛋白质的量。
研究发现，染料主要是与蛋白质中的碱性氨基酸(特别是精氨酸)和芳香族氨基酸残基相结合。
主要试剂考马斯亮蓝g-250染色工作液： 10mg考马斯亮蓝g-250粉末溶于5ml 95%乙醇中，彻底溶解后，加入10ml 85%磷酸中，边加边搅拌（市售液体磷酸（h3po4）的质量分数≥85.0%，稠状透明液体，可直接使用，对皮肤有很强的腐蚀作用，建议使用5ml移液枪缓慢吸取使用）蒸馏水稀释至100ml。
后经滤纸过滤后储存于棕色试剂瓶中，避光保存。
长时间不用，可放置于4℃冰箱中保存1年，再次使用还需过滤，加入反应管前需要升至室温，否则虽不影响精度，但测得的od值较低，对仪器要求较高。
标准牛血清白蛋白（bsa）：精确称取4mg bsa粉末，溶于1ml 0.15mol/l nacl溶液配制成4mg/ml标准蛋白溶液，-20℃保存。
（如用1cm比色皿测定，建议精确称取40mg bsa 粉末，溶于10ml 0.15mol/l nacl溶液配制成4mg/ml标准蛋白溶液，分装成小管，-20℃保存。
考马斯亮蓝染色法测定蛋白质的含量
实验一 考马斯亮蓝染色法测定蛋白质的含量【实验目的】1．掌握考马斯亮蓝染色法测定蛋白质含量的原理和过程。
2．熟悉蛋白质含量测定的影响因素。
【实验原理】1976年Bradford 等建立了用考马斯亮蓝G-250与蛋白质结合，迅速、灵敏的定量测定蛋白质的方法。
染料与蛋白质结合后引起染料最大吸收的改变，从465 nm 变为595 nm ，光吸收增加。
蛋白质-染料复合物具有较大的吸光系数，因此大大提高了蛋白质测定的灵敏度，最低检出量为1 g 蛋白。
染料与蛋白质的结合是很迅速的过程，大约只需2分钟，结合物的颜色在1小时内是稳定的。
由于该法简单迅速，干扰物质少，灵敏度高，现已广泛应用于蛋白质含量的测定。
N CH 2CH 3CH 2N +CH 3CH 2CH 2NHCH 3CH 3O CH 2CH 3SO 3-SO 3Na蛋白质+ 蛋白质-染料复合物H +考马斯亮蓝G-250（蓝色，λmax595nm ）【仪器与试剂】1．紫外-可见分光光度计，微量注射器。
2．考马斯亮蓝G-250，95%乙醇，85%(W/V)磷酸。
【实验步骤】1．标准蛋白质溶液的配制称取牛血清白蛋白适量，加水溶解并配制成1 mg/ml 的溶液。
2．蛋白试剂的配制称取100 mg考马斯亮蓝G-250，加入95%乙醇50 ml溶解，再加入85%(W/V)磷酸100 ml，将溶液用水稀释至1000 ml。
试剂的终浓度为0.01%考马斯亮蓝G-250，4.7%乙醇和8.5%(W/V)磷酸。
3．标准曲线的制作取标准蛋白质溶液5、10、20、50、100 μl于小试管中，用水稀释至0.1 ml，然后分别加入5 ml蛋白试剂，充分振荡混合，2分钟后于595 nm测定其吸光度值。
以0.1 ml水及5 ml蛋白试剂作为空白对照。
以蛋白浓度为横坐标，吸光度值为纵坐标，绘制标准曲线作为定量依据。
4．样品测定取含10~100 μg蛋白质溶液于小试管中，加水稀释至0.1 ml，然后加入5 ml 蛋白试剂，充分振荡混合，2分钟后于595 nm测定其吸光度值。
蛋白质含量的测定(考马斯亮蓝)
Coomassie Dye-Based 蛋白质定量
O CH 2CH 3
Coomassie G-250
NH
PROTEIN
+
CH 3 C + CH3CH 2 N CH 2 SO3CH 3 N CH 2CH 3 CH 2
Hale Waihona Puke SO3NaAcid
BLUE
Protein - Dye Complex
Amax = 595nm
2、样品的测定
取一EP管 加入样品液1.0ml＋4.0ml考马斯亮蓝液 取一EP管，加入样品液1.0ml＋4.0ml考马斯亮蓝液4.0ml，同上操 考马斯亮蓝液4.0ml， 作，测A595
五、 结果及分析
1、以标准管的浓度为横坐标，A595为纵坐 、以标准管的浓度为横坐标， 标做标准曲线图 2、根据标准曲线，求出样品的浓度。 、根据标准曲线，求出样品的浓度。
标准蛋白溶液(mL) 标准蛋白溶液(mL) 0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.9％ 0.9％ NaCl(mL) 1.0 0.9 0.8 0.7 0.6 标准蛋白含量( 10 20 30 40 标准蛋白含量(µg) 0 考马斯亮蓝试剂(mL) 4.0 mL 考马斯亮蓝试剂(mL) 颠倒摇匀，静置5min， 号试管为空白对照， 595nm处比色 颠倒摇匀，静置5min，以 1 号试管为空白对照，在595nm处比色 A595（OD595） 0
六、 注意事项
1、EP管、试剂要求干净，不含有去污剂。 EP管 试剂要求干净，不含有去污剂。 2 、 蓝色物质不易洗去 ， 测定完后用乙醇将蓝 蓝色物质不易洗去， 色的比色杯洗干净。 色的比色杯洗干净。
七、 思考题
1、与其它测定蛋白质浓度的方法相比，考马 与其它测定蛋白质浓度的方法相比， 斯亮蓝染色法测定有何优点？ 斯亮蓝染色法测定有何优点？ 2、制作标准曲线及测定样品时，为什么要将 制作标准曲线及测定样品时， 各管中溶液颠倒混合 ？
实验考马斯亮蓝测蛋白质含量
实验考马斯亮蓝测蛋白质含量蛋白质是构成生物体的基本组成部分，对于生命的正常运行起着重要的作用。
因此，准确测量蛋白质的含量对于生物学研究至关重要。
考马斯亮蓝法（Coomassie Brilliant Blue method）是一种常用的蛋白质定量方法，本文将介绍这一实验方法的步骤和原理。
实验步骤：1. 样品制备准备待测样品，可以是纯蛋白质溶液、组织细胞提取液或药物制剂等。
确保样品无颗粒物和杂质，使用管道和其他实验工具保持清洁。
2. 标准曲线制备准备一系列已知浓度的蛋白质标准溶液，推荐使用0.1mg/ml至1.0mg/ml的浓度范围。
将标准溶液分别与考马斯亮蓝试剂混合，并在可见光波长范围内（通常为595nm）测量吸光度。
绘制标准曲线，将吸光度值作为纵坐标，蛋白质浓度作为横坐标。
使用线性回归等方法确定标准曲线的拟合方程。
3. 样品测量将待测样品与考马斯亮蓝试剂按照适当比例混合，使混合液呈现出明显的蓝色。
搅拌混合液以确保充分反应。
放置混合液在室温下静置一段时间，通常为10-30分钟。
4. 吸光度测量使用分光光度计设置在595nm处，选择比较液为含有等量水的空白样品，记录吸光度值。
对于待测样品，同样记录吸光度值。
5. 蛋白质含量计算根据标准曲线的拟合方程，将待测样品的吸光度值代入，计算出对应的蛋白质浓度。
实验原理：考马斯亮蓝法基于考马斯亮蓝G-250试剂与蛋白质之间的非共价相互作用。
在酸性条件下，考马斯亮蓝G-250试剂分子的分子结构被蛋白质分子上的亲水基团改变，使其从无色转变为蓝色。
吸光度测量蛋白质试剂复合物的蓝色强度，可推断蛋白质的含量。
实验注意事项：1. 仪器校准在开始实验之前，确保分光光度计在595nm处校准准确。
通过使用已知浓度的蛋白质标准溶液验证仪器的准确性和灵敏度。
2. 每个样品的重复测量为了保证测量结果的准确性，建议对每个样品进行重复测量，并计算平均值和标准偏差，以评估实验的可重复性。
3. 注意混合液比例样品与考马斯亮蓝试剂的比例需根据样品的特性进行调整。
考马斯亮蓝 法测定蛋白质含量
二、Bradford法(一）、原理：考马斯亮蓝G250 ( CBB- G-250）与蛋白质结合后形成蓝色的化合物，在595nm有最大吸收峰，且蓝色的深浅与蛋白浓度成正比。
这是一种快速、准确、重复性好的蛋白质定量方法。
该方法快速、准确、干扰因素少。
CBB- G-250在2分钟内即可完全与蛋白结合，并在2小时内保持稳定，该反应几乎不受钠、钾等阳离子的干扰，更不受蔗糖等碳水化合物的干扰。
但较高浓度的十二烷基硫酸钠（Soldium dodecyl sulfate），Triton X－100等对其有干扰，此影响可通过选择适当的对照品来消除。
（二）器材及试剂1、器材A. 分光光度计B. 微量加样器C. 移液管、试管及试管架D. 坐标纸2. 试剂（1）考马斯亮蓝G-250溶液：称取CBB- G-250 100毫克溶于50 ml 95%(V/V)乙醇溶液中，然后加入100毫升85%（V/V）磷酸，最后加蒸馏水定容至1000毫升。
（2）0.14mol/L 氯化钠溶液（生理盐水）（3）标准蛋白质溶液（0.1mg/ml）：精确称取10.0毫克牛血清白蛋白，用生理盐水定容至100毫升。
(4) 血清样品(已稀释200倍)(5) 层析样品(三）、操作（标准曲线制作）：取7支试管按下表操作：混匀，室温放置5分钟，在595nm测定各管O.D值并以蛋白浓度为横坐标，以O.D 值为纵坐标绘制标准曲线．以Bradford法测定层析分离蛋白内的蛋白浓度取试管从层析样品中各取20.0ul，加入生理盐水20ul,最后加入考马斯亮蓝G-250溶液5.0ml，混匀，以595nm 波长测定二者光密度，在标准曲线上查出其蛋白浓度以上需要购买的试剂有：1、标准蛋白质即牛血清白蛋白。
教学内容：实验八考马斯亮蓝法（Bradford法）测定蛋白质含量【实验目的】1. 掌握考马斯亮蓝染色法定量测定蛋白质的原理与方法2. 熟练分光光度计的使用和操作方法【实验原理】此方法是1976年Bradform建立。
考马斯亮蓝法法测定蛋白质含量
（优选）考马斯亮蓝法法测定 蛋白质含量
【实验原理】
考马斯亮蓝G250测定蛋白质含量属于 染料结合法的一种。
考马斯亮蓝G250在酸性溶液中呈棕 红色，最大吸收峰在465nm；当它与蛋白 质通过范德华键结合成复合物时变为蓝色， 其最大吸收峰移至595nm，而且消光系数 更大。
考马斯亮蓝G-250在游离状态 下呈红色，最大光吸收在 465nm；当它与蛋白质结合 后变为青色，蛋白质-色素结 合物在595nm波长下有最大 光吸收。其光吸收值与蛋白质 含量成正比。
蛋白质与考马斯亮蓝G250的 结合十分迅速，约2min即可 反应完全，其复合物在1h内 保持稳定。
考马斯亮蓝R250与蛋白 质反应虽然比较缓慢， 但是可以被洗脱下去， 所以可以用来对电泳条 带染色。
在一定蛋白质浓度范围内 (1～1000µg/ml）,
考马斯亮蓝G-250在游离状态下呈红色，最大光吸收在465nm；
蛋白质－染料复合物在595nm处的光吸收与蛋白 考马斯亮蓝试剂（mL）
蛋白质与考马斯亮蓝G250的结合十分迅速，约2min即可反应完全，其复合物在1h内保持稳定。 考马斯亮蓝法法测定蛋白质含量
质含量成正比，故可用于蛋白质的定量测定。 当一束平行单色光(I0)照射有色溶液时，光的一部分被吸收，一部分透过溶液(I)
蛋白质与考马斯亮蓝G250的结合十分迅速，约2min即可反应完全，其复合物在1h内保持稳定。 由于蛋白质－染料复合物具有很高的消光系数，因此大大提高了蛋白质测定的灵敏度（最低检出量为1µg）。 考马斯亮蓝G250测定蛋白质含量属于染料结合法的一种。 （优选）考马斯亮蓝法法测定蛋白质含量
当它与蛋白质通过范德华键结合成复合物时变为蓝色，其最大吸收峰移至595nm，而且消光系数更大。 可见光范围内波长和颜色的关系
实验考马斯亮蓝测蛋白质含量
实验7考马斯亮蓝考G-250染色法测定蛋白质含量一、目的1、学习一种蛋白质染色测定的方法2、掌握考马斯亮蓝法测定蛋白质含量的基本原理和方法二、原理蛋白质的存在影响酸碱滴定中所用某些指示剂的颜色变化,从而改变这些染料的光吸收;在些基础上发展了蛋白质染色测定方法;涉及的指示剂有甲基橙、考马斯亮蓝、溴甲酚绿和溴甲酚紫;目前广泛使用的染料是考马斯亮蓝;考马斯亮蓝G-250在酸性溶液中为棕红色,其所含疏水基团在酸性条件下与蛋白质的疏水区具有亲和力,通过疏水作用与蛋白质相结合,形成蓝色的蛋白质染料复合物,在595nm处有最大吸光度,在一定的蛋白质浓度范围内,蛋白质染料符合物在595nm处的吸光度与蛋白质杭亮成正比,因此可用于蛋白质含量测定;反应2—5分钟即呈最大光吸收,至少稳定1小时;在—蛋白质/ml范围内均可;该法操作简便迅速,消耗样品量少,但不同蛋白质之间差异大,且标准曲线线性差;高浓度的Tris、EDTA、尿素、甘油、蔗糖、丙酮、硫酸铵和去污剂时测定有干扰;缓冲液浓度过高时,改变测定液pH值会影响显色;考马斯亮蓝染色能力强,比色杯不洗干净会影响光吸收值,不可用石英怀测定;三、材料、试剂与器具一试剂1、染色液：取考马斯亮蓝G-250100mg溶于50ml95%乙醇中,加100ml85%磷酸,加水稀释至1升;棕色瓶保存,该染色液可保存数月,若不加水可长期保存,用前稀释;2、标准蛋白溶液：ml牛血清白蛋白;3、未知浓度的蛋白质溶液用酪蛋白配制,浓度控制在10—30mg/ml二器具1、试管及试管架2、移液管1ml,5ml3、可见光分光光度计四、操作步骤一标准曲线的制作1、取7支试管,按下表加入试剂2、将试管摇匀,放置20分钟;3、用分光光度计比色测定吸光值A595nm;4、以A595nm为纵坐标,标准蛋白色质浓度为横坐标,绘制标准曲线;二样品的测定1、取一支试管,加入未知浓度的蛋白质溶液,蒸馏水考马斯亮蓝试剂5ml.2、将试管摇匀,放置20分钟;3、比色测定吸光值A595nm,对照标准曲线求得蛋白质的浓度;五、注意事项1、由于染料本身的两种颜色形式的光谱有重叠,试剂背景值会因与蛋白质结合的染料增加而不断降低,因而当蛋白质浓度较大时,标准曲线稍有弯曲,但直线弯曲程度很轻,不致影响测定2、测定工作应在蛋白质染料混合后2min开始,力争1hr内完成,否则会因蛋白质一染料复合物发生凝集沉淀而影响测定结果;六、实验报告绘制标准曲线,并将实验结果与其他蛋白质测定方法比较分析;七、思考题1、考马斯亮蓝法测定蛋白质的含量的原理是什么2、考马斯亮蓝法有什么优缺点Bradford法的优点是1灵敏度高,其最低蛋白质检测量可达1μg;这是因为蛋白质与染料结合后产生的颜色变化很大,蛋白质-染料复合物有更高的消光系数,因而光吸收值随蛋白质浓度的变化很大;2测定快速、简便、只需要加一种试剂;完成一个样品的测定,只需要5min左右,颜色在5min至20min之间稳定性也很好;3干扰物质相对其它方法少;缺点是1由于各种蛋白质中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同,因此Bradford法用于不同蛋白质测定时有较大的偏差;2仍有些物质干扰此法测定：去污剂、TritonX-100、十二烷基硫酸钠SDS和L的NaOH;3标准曲线也有轻微的非线性;操作注意事项：不可使用石英比色皿染色不易洗掉,可用塑料或者玻璃比色皿,使用后立即用少量95%的乙醇荡洗,以洗去染色;塑料比色皿决不可以用乙醇或丙酮长时间浸泡;721分光光度计的操作使用①在接通电源前,应对仪器的安全性进行检查,电源线接线应牢固,接地线通地要良好,各个调节旋钮的起始位置应该正确,然后再接通电源;②将灵敏度派或调至“1”档放六倍率最小;调波长调节器至所需波长;③开启电源开关,指示灯亮,选择开关置于“T”,调节透光度“100％”旋钮,使数字显示“”左右,预热20分钟;④打开吸收池暗室盖光门自动关闭,调节“0”旋钮,使数字显示为“”,盖上吸收池盖,将参比溶液置于光路,使光电管受光,调节透光度“100％”旋钮,使数字显示为“”;⑤如果显示不到“100”,则可适当增加电流放大器灵敏度档数,但应尽可能使用低档数,这样仪器将有更高的稳定性;当改变灵敏度后必须按④重新校正“0”和“100”;⑥按④连续几次调整“”和“100”后,将选择开关置于A,调节吸光度调零旋钮,使数字显示“.000”;然后将待测溶液推入光路,显示值即为待测样品的吸光度值A;⑦浓度C的测量;选择开关由“A”旋至“C”,将标准溶液推入光路,调节浓度旋钮;使得数字显示值为已知标准溶液浓度数值;将待测样品溶液推入光路,即可读出待测样品的浓度值;⑧如果大幅度改变测试波长时,在调整“”和“100”后稍等片刻因光能量变化急剧,光电管受光后响应缓慢,需一段光响应平衡时间,当稳定后,重新调整“”和“100”即可工作;五、注意事项比色皿使用注意事项：①拿取比色皿时,手指不能接触其透光面；②装溶液时,先用该溶液润洗比色皿内壁2～3次；测定系列溶液时,通常按由稀到浓的顺序测定；③被测溶液以装至比色皿的3/4高度为宜；④装好溶液后,先用滤纸轻轻吸去比色皿外部的液体,再用擦镜纸小心擦拭透光面,直到洁净透明；⑤一般参比溶液的比色皿放在第一格,待测溶液放在后面三格;。
考马斯亮蓝法测蛋白质含量实验报告
考马斯亮蓝法测蛋白质含量实验报告考马斯亮蓝法（Bradford assay）是一种常用于测定蛋白质含量的实验方法。
本文将对考马斯亮蓝法进行详细介绍，并展示一个实验报告的范例。
1. 引言蛋白质是生命体中不可或缺的重要分子，因此准确测定蛋白质的含量对于生物学研究至关重要。
考马斯亮蓝法是一种常用的蛋白质测定方法，其原理基于蛋白质与考马斯亮蓝染料之间的非共价结合。
2. 实验目的本实验的目的是利用考马斯亮蓝法测定给定溶液中蛋白质的含量。
3. 实验步骤3.1 准备工作首先，准备好所需的试剂和设备，包括考马斯亮蓝试剂、蛋白质标准品、显微管、离心机等。
3.2 制备标准曲线按照给定的浓度，分别取一系列蛋白质标准品，加入不同的显微管中。
然后，加入适量的考马斯亮蓝试剂，充分混合。
将显微管放入离心机中离心，使液体沉淀。
离心后，取出显微管，观察颜色变化，并使用分光光度计测定吸光度。
3.3 测定待测样品将待测样品加入显微管中，加入适量的考马斯亮蓝试剂，充分混合。
然后，将显微管放入离心机中离心，使液体沉淀。
离心后，取出显微管，观察颜色变化，并使用分光光度计测定吸光度。
4. 结果与讨论通过测定标准曲线，我们可以得到各个蛋白质标准品的吸光度与浓度之间的关系。
利用这个关系，我们可以计算出待测样品中蛋白质的浓度。
在实验中，我们观察到显微管中的液体颜色会随着蛋白质浓度的增加而加深。
这是因为考马斯亮蓝染料与蛋白质发生非共价结合，形成复合物，使溶液变色。
吸光度的测定则是通过分光光度计来实现的。
需要注意的是，考马斯亮蓝法对于某些物质的干扰较大，因此在实验中应该选择适当的样品稀释倍数，以确保测定结果的准确性。
5. 结论通过考马斯亮蓝法，我们成功测定了给定溶液中蛋白质的含量，并得到了标准曲线。
通过标准曲线，我们可以计算出待测样品中蛋白质的浓度。
6. 结束语考马斯亮蓝法是一种简单、快速且准确的测定蛋白质含量的方法。
它被广泛应用于生物学研究和实验室工作中。
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作业指导书
标题：考马斯亮蓝法测定蛋白质含量的检验方法
修改记录
1．目的
1.学习一种蛋白质染色测定的方法
2.掌握考马斯亮蓝法测定蛋白质含量的基本原理和方法
2．适用范围
组织中的蛋白质测定。
3．职责
3.1 检测人员按照本作业指导书进行该项试验，作好试验记录。
3.2 审核人员负责试验的审核，保证试验的准确性和科学性。
3.3 科室负责人负责监督试验指导书的执行。
4．正文
4.1 试验原理
蛋白质的存在影响酸碱滴定中所用某些指示剂的颜色变化，从而改变这些染料的光吸收。
在些基础上发展了蛋白质染色测定方法。
涉及的指示剂有甲基橙、考马斯亮蓝、溴甲酚绿和溴甲酚紫。
目前广泛使用的染料是考马斯亮蓝。
考马斯亮蓝G-250在酸性溶液中为棕红色，当它与蛋白质通过范德华键结合后，变为蓝色，且在蛋白质一定浓度范围内符合比尔定律，可在595nm 处比色测定。
2—5分钟即呈最大光吸收，至少稳定1小时。
在0.01—1.0 mg 蛋白质/ml范围内均可。
该法操作简便迅速，消耗样品量少，但不同蛋白质之间差异大，且标准曲线线性差。
高浓度的Tris、EDTA、尿素、甘油、蔗糖、丙酮、硫酸铵和去污剂时测定有干扰。
缓冲液浓度过高时，改变测定液pH值会影响显色。
考马斯亮蓝染色能力强，比色杯不洗干净会影响光吸收值，不可用石英怀测定。
4.2 材料、试剂与器具
（一）试剂
1、染色液：取考马斯亮蓝G-250 100mg溶于50ml 95%乙醇中，加100ml 85%磷酸，加水稀释至1升。
该染色液可保存数月，若不加水可长期保存，用前稀释。
2、标准蛋白溶液：0.5mg/ml牛血清白蛋白。
3、未知浓度的蛋白质溶液用酪蛋白配制，浓度控制在10—30mg/ml
（二）器具
1、试管及试管架
2、移液管（1ml,5ml）
3、可见光分光光度计
4.3 试验操作步骤
（一）标准曲线的制作
1、取7只试管，按下表加入试剂
2、将试管摇匀，放置20分钟。
3、用分光光度计比色测定吸光值A595nm。
4、以A595nm为纵坐标，标准蛋白色质浓度为横坐标，绘制标准曲线。
（二）样品测定
1、取一只试管加入未知浓度的蛋白质溶液0.2ML，蒸馏水0.8ML，考马斯亮蓝5ML。
2、将试管摇匀放置20分钟。
3、比色测定吸光值A595nm，考马斯亮蓝试剂调零。
4.5 注意事项
1、玻璃仪器要洗涤干净。
2、取量要准确。
3、玻璃仪器要干燥，避免温度变化。
4、对照：用被测物质以外的物质作空白对照。