实验19急性右心衰竭病理模型制备
急性右心衰实验
实验局限性及未来展望
• 实验使用了小规模动物模型，尚未进行临床试验。 • 实验结果可能受其他因素影响，需要进一步验证。 • 未来，我们希望进行更大规模的研究，将实验结果应用到临床实践中。
感谢致辞
感谢大家的关注和支持。我们将继续努力，为改善急性右心衰患者的生活质 量做出更大的贡献。
急性右心衰实验
欢迎来到本次急性右心衰实验的演示。通过深入研究，我们旨在探索新的治 疗方式以改善急性右心衰患者的生活质量。
实验目的
发现新的治疗方法
通过实验，我们希望发现针对急性右心衰的新的治疗方法，以提高患者的生存率和生活质量。
确定有效的药物
我们的目标是确定针对急性右心衰最有效的药物，以便医生可以更好地为患者进行个体化的 治疗。
实验结果
1 药物A显著改善症状
通过实验，我们发现药物A对急性右心衰具有显著的疗效，能够缓解患者的症状并改善心 功能。
2 药物B无明显改善作用
相比之下，药物B在急性右心衰的治疗方面表现不佳，对症状和心功能的改善效果有限。
3 药物C潜在治疗效果
药物C在实验中显示出潜在的治疗效果，但仍需进一步研究以确定其安全性和疗效。
实验分析
药物A 药物B 药物C
显著改善，安全性高 效果一般，需副作用监测 潜在效果，需进一步验证
通过对实验结果的分析，我们可以得出药物A对急性右心衰的治疗效果最佳，药物B效果一般，而药物C存在一 定的潜在治疗效果。
实验结论
综上所述，我们的实验结果表明药物A具有显著的治疗效果，对急性右我们也需要注意实验局限性，并进一步研究和验证这些药物的安全性和长期疗效。
了解疾病机制
通过实验，我们希望深入了解急性右心衰的疾病机制，以便开发更精确的诊断方法和治疗方 案。
急性右心衰(梁俊晖)
1.静脉插管须小心谨慎，避免损伤血管。如插管途中不是很顺利， 不能硬插，可以将插管轻微旋转或将插管适当后退，否则易将血 管壁插破，影响输液及CVP的测定。
注意事项（Notes）
2.液体石蜡加温的目的是为了降低石蜡的粘滞性，使其注入血液 后能形成细小栓子。注射液体石蜡后应尽量加快输液速度。 3.本实验的关键是注射栓塞剂。在注射时要密切注意血压的变 化。当出现血压明显降低时，应暂停注入，观察5min。若血压 逐渐恢复到对照水平，可再缓慢注入少量液体石蜡。通常，液 体石蜡的用量不超过0.5mL/kg，注射速度以0.1mL/min为宜。
实验方法（methods）
1.动物手术：麻醉、仰卧固定家兔。行气管、颈总动脉、颈外静 脉插管术，气管插管用于描记呼吸，动脉插管用于描记动脉血压， 静脉插管用于测量CVP。耳缘静脉留臵针头以注射肝素以全身肝 素化、注射液体石蜡和输液。 2.安装实验装臵：连接生物信号采集与处理系统。
3.进行实验：启动软件，选取相应的实验项目。 4.观察项目 ⑴监测正常血压、心率、呼吸，CVP，用听诊器听心音强度、肺 部呼吸音等。 ⑵自耳缘静脉缓慢注入加温至37℃的液体石蜡（0.5mL/kg）， 约2～3min后观察上述指标有何变化。
急性右心衰
韶关学jective）
理论
掌握： 1.心力衰竭时机体、血流动力学的变化。
2.心力衰竭的发生机制。
操作
掌握： 1.中心静脉压的测定。 2.动物尸体解剖的一般观察方法。
实验原理（principle）
心力衰竭是由于心肌收缩和（或）舒张功能障碍， 导致心输出量降低，不能满足机体组织代谢需要的一种 病理过程或综合征，又称为泵衰竭。 心力衰竭的常见病因包括：①压力或容量负荷过度； ②原发性心肌收缩、舒张功能障碍（心肌炎、心肌梗死 等心肌病变；心肌缺血缺氧如冠心病、严重贫血；维生 素B1严重缺乏等导致心肌能量代谢障碍等） 本实验通过耳缘静脉注射栓塞剂（液体石蜡）造成 急性肺小血管栓塞，引起右心压力负荷过重；通过大量 输液引起右心容量负荷增加。由于右心前、后负荷过度 增加，造成右室收缩和舒张功能降低，从而导致急性右 心衰竭。
病理生理实验：急性右心衰
2. 静脉回流↓，静脉淤血→静脉压↑→CVP↑
3. 体循环淤血水肿：肝淤血，肝－颈静脉回流征⊕
4. 液体石蜡造成肺栓塞→死腔样通气 肺水肿，肺出血→功能性分流
PaO2↓→R↑
5. 心脏扩大：心肌肌源性扩张
【实验目的】：
1. 复制急性右心衰竭的动物模型。 2. 观察实验性右心衰竭时的机能变化。 【实验动物】：
【实验中注意事项】：
1. 颈外V插管，插管应为钝形。 2. 三通活塞的应用：插管时要排气泡！！
注射器
中心静脉压
三不通
静脉推注
测肝颈颈脉回流征
3. 推注液体石蜡要慢。有血压改变时应停止等血压
恢复后再推。
【提问】：
1. 用什么方法复制急性右心衰竭？
2. 心脏代偿分为急性、慢性。本实验中只能见到什么
代偿？为什么？
实验原理：
耳缘静脉缓慢注射液体石蜡→肺栓塞，右心后负荷↑ 颈外静脉输入大量NS→右室前负荷↑
急性右心衰竭
当心脏负荷过重时，心脏出现急性代偿：HR↑，紧张源性扩张 （在注射液体石蜡，NS 50ml时）
当前负荷继续增加时：心脏进入失代偿发生急性右心衰竭
1. 右心输出量↓→进入左心血量↓左心输出量↓→BP↓
3.1%肝素1ml/kg肝素化
4. 颈总A — 血压换能器、测BP 颈外V — 三通活塞（插管插入上腔V与右心房交 界处约3-4cm）测CVP；肝一颈静脉回流征。
5. 观察正常指标：R、BP、HR、CVP ，肝颈V回流征。
6. 耳缘V缓慢推注预热38℃液体石蜡1ml，10分钟推 完；5分钟后观察各项指标的变化。
7.在三通活塞处推注N.S 50ml，速度5ml/kg.min， 观察指标变化，再推50ml，100ml，150ml直 到动物死亡。
急性右心衰竭_实验报告
一、实验目的1. 复制动物急性右心衰竭模型，观察右心衰竭时心功能的变化。
2. 探讨急性右心衰竭的病理生理机制。
3. 分析急性右心衰竭的治疗方法及疗效。
二、实验原理急性右心衰竭是指右心室收缩或舒张功能障碍，导致心输出量不足，引起体循环淤血和脏器灌注不足的一系列临床综合征。
本实验通过快速增加右心室的前、后负荷，复制急性右心衰竭模型，观察心功能变化，分析其病理生理机制，并探讨治疗方法及疗效。
三、实验材料1. 实验动物：家兔（体重2-3kg）6只。
2. 实验仪器：电子血压计、心电监护仪、血气分析仪、超声心动图仪、手术器械、注射器、生理盐水、液体石蜡、呋塞米、毒毛花甙K、卡托普利、肼屈嗪等。
3. 实验药品：中分子右旋糖苷、呋塞米、毒毛花甙K、卡托普利、肼屈嗪等。
四、实验方法1. 实验分组：将6只家兔随机分为实验组和对照组，每组3只。
2. 模型复制：实验组通过快速输注中分子右旋糖苷（右旋70）增加右心室前负荷，缓慢静脉注射液体石蜡形成肺小动脉栓塞，增加右心室后负荷，复制急性右心衰竭模型。
3. 指标观察：在模型复制前后，观察两组动物的心率、血压、心电图、血气分析、超声心动图等指标。
4. 治疗干预：实验组给予呋塞米、毒毛花甙K、卡托普利、肼屈嗪等药物治疗，观察治疗效果。
五、实验结果1. 心率、血压：实验组动物在模型复制后心率明显加快，血压下降；治疗后，心率、血压逐渐恢复正常。
2. 心电图：实验组动物在模型复制后出现ST-T改变，治疗后逐渐恢复正常。
3. 血气分析：实验组动物在模型复制后动脉血氧分压（PaO2）降低，二氧化碳分压（PaCO2）升高；治疗后，PaO2逐渐升高，PaCO2逐渐降低。
4. 超声心动图：实验组动物在模型复制后右心室射血分数（RVEF）降低，右心室舒张末期直径（RVEDD）增大；治疗后，RVEF逐渐升高，RVEDD逐渐减小。
六、实验讨论1. 急性右心衰竭的病理生理机制：本实验通过快速增加右心室的前、后负荷，复制急性右心衰竭模型，观察到动物出现心率加快、血压下降、心电图ST-T改变、血气分析PaO2降低、PaCO2升高、超声心动图RVEF降低、RVEDD增大等表现，与临床急性右心衰竭的病理生理变化相符。
急性右心衰竭 实验报告
急性右心衰竭实验报告急性右心衰竭实验报告摘要：急性右心衰竭是一种严重的心血管疾病，其发病机制尚不完全清楚。
本实验旨在探究不同因素对急性右心衰竭的影响，并分析其可能的发病机制。
通过动物实验，我们观察了心肌缺血、心肌梗死、肺动脉高压等因素对急性右心衰竭的影响，并研究了相关的生理指标变化。
实验结果表明，心肌缺血和心肌梗死是急性右心衰竭的重要诱因，而肺动脉高压则是其常见的合并症。
这些发现有助于进一步理解急性右心衰竭的发病机制，为临床诊断和治疗提供了重要的参考依据。
引言：急性右心衰竭是一种心血管疾病，其临床表现为心脏右侧泵功能不全，导致肺循环淤血和体循环低灌注。
尽管对急性右心衰竭的研究已经取得了一定的进展，但其发病机制尚不完全清楚。
因此，本实验旨在通过动物实验，探究不同因素对急性右心衰竭的影响，并分析其可能的发病机制，以期为该疾病的临床诊断和治疗提供科学依据。
方法：本实验选取实验动物（大鼠）进行研究，将其分为对照组和实验组。
对照组不进行任何处理，实验组则分别进行心肌缺血、心肌梗死和肺动脉高压的诱导。
通过监测动物的心功能指标、肺循环指标以及血液生化指标的变化，来评估急性右心衰竭的发生程度和可能的发病机制。
结果：实验结果显示，在心肌缺血和心肌梗死诱导的实验组中，动物出现了明显的右心室功能减退，伴随着肺循环淤血和体循环低灌注的表现。
心肌缺血和心肌梗死导致了心肌细胞的坏死和纤维化，进而影响了心肌的收缩功能和泵血能力。
而在肺动脉高压诱导的实验组中，动物出现了右心室肥厚和扩张，以及肺循环高压的表现。
肺动脉高压导致了肺循环阻力的增加，进而使右心室承受更大的负荷，最终导致右心室功能减退。
讨论：通过本实验的结果可以看出，心肌缺血和心肌梗死是急性右心衰竭的重要诱因。
心肌缺血和心肌梗死导致心肌细胞的坏死和纤维化，进而影响了心肌的收缩功能和泵血能力。
这与临床上急性右心衰竭常见于冠心病等心肌缺血性疾病的观察结果相吻合。
另外，肺动脉高压也是急性右心衰竭的常见合并症。
简述如何制备急性右心衰动物模型
简述如何制备急性右心衰动物模型急性右心衰动（AcuteRightHeartFailure，ARHF）是一种心脏病，体现为右心室充血引起的右心室肥大和右心室功能障碍，这一病症主要由代谢性疾病、充血性心脏病、心内膜炎、心内膜病变、心脏及大血管外伤等原因导致。
以往对于ARHF的研究主要依赖于死亡或者病例研究，而实验性的ARHF动物模型的建立，则可以有效地实验性地研究ARHF的病因、发病机制以及治疗等方面。
建立实验性ARHF动物模型的方法有很多，主要包括外源性后跳动腔白血病形成的ARHF动物模型、内源性升压性ARHF动物模型、内源性减压性ARHF动物模型、早产ARHF动物模型、电失衡ARHF动物模型、肝性ARHF动物模型、限制心肌血流量ARHF动物模型、同时减压性和升压性ARHF动物模型等。
其中，外源性后跳动腔白血病形成的ARHF动物模型是目前最为广泛应用的实验性模型，通过外源性peptidogeic compound动物体内注射，可以介导小鼠的右心衰竭，从而建立相应的ARHF动物模型。
首先，选择8-12周的小鼠，将它们随机分为3组：空白组，对照组和ARHF组。
然后，将peptidogeic compound通过静脉给药的方式给给定三组小鼠，空白组接受空白治疗，对照组接受对照治疗，ARHF 组接受ARHF治疗。
经过24小时的治疗，可以得到ARHF动物模型。
之后需要进行定量的评价，以判断动物模型是否建立成功。
包括血气分析、超声图等。
血气分析可以显示动物之间的 PH，PaCO2 PaO2不同，以及乳酸和乳酸脱氢酶的变化状况；超声图则可以观察右室的肥大程度、血流动力学参数的变化等。
此外，心肌活检可以分析出动物模型中心室壁 thickening、肥厚度及心肌松弛度等指标，从而评估动物模型的成功程度。
最后，动物模型建立成功后，可以进行其他相关的研究和评价，如药物治疗效果评价、动态血液气体分析等。
总之，建立实验性ARHF 动物模型，可以有效地研究ARHF的病因、发病机制以及治疗效果，为有效治疗ARHF奠定基础。
急性右心衰竭
急性右心衰竭【目的和原理】由耳缘静脉缓慢注入栓塞剂，经静脉回流至肺脏，并栓塞在肺循环内，引起肺动脉高压，即右心室后负荷增加。
如再输入大量生理盐水，使回心血量大大增加，则在右心室后负荷增加的基础上，又增加了前负荷，右心负荷过重，导致急性右心衰竭，其症状越来越重，甚至出现腹水，直至动物死亡。
本实验要求掌握急性右心衰竭模型的制备方法。
观察复制过程中机体出现的表现，理解其发生机制。
【实验对象】兔，体重2.5kg以上。
【实验器材和药品】兔手术台、哺乳类手术器械一套、中心静脉压测定装置、呼吸描记装置、心室插管、听诊器、注射器（1ml、2 ml、5 ml、20 ml）、输液瓶、胶管、螺旋夹、二道生理记录仪与电刺激器（或计算机实时分析系统）。
20％乌拉坦、生理盐水、液体石蜡、25％尼可刹米、0.5％肝素生理盐水。
【实验步骤】1．实验装置的准备输液装置：排气。
二道生理记录仪参考参数：血压：灵敏度6～12 kPa /cm；走纸速度1mm/s，基线为零；呼吸：灵敏度2mV/cm，时间常数DC，滤波30Hz，直流，基线中线。
2．称兔体重，从耳缘静脉注入20％乌拉坦5ml/kg麻醉，仰卧位固定于兔手术床上。
3．剪去颈部兔毛，作正中切口，钝性分离颈部组织至气管，作左侧颈总动脉插管（连接血压换能器）与气管插管（连接呼吸换能装置）。
4．经右侧颈外静脉插入插管至右心房或右心房口（5～7cm左右），先使插管与输液瓶相通，缓慢输液，保持静脉插管通畅。
如用多导生理记录仪（或计算机实时分析系统）观察记录实验结果，可把右侧颈外静脉插管插入右心室（7～10cm左右），插管的同时开动多导生理记录仪描记右心室的压力曲线以观察是否已插入右心室，此兔从耳缘静脉处输液。
5．观察记录下述各项生理指标：心率、心音强度、肺部听诊（有无异常呼吸音）、动脉血压、中心静脉压*或右心室内压（包括收缩与舒张期压力）、循环时间**。
6．用2ml注射器吸取液体石蜡，按0.5ml/Kg由耳缘静脉缓慢注射，同时密切观察中心静脉压（或右心室内压）及血压的变化。
急性右心衰竭
急性右心衰竭【著者署名】【摘要】目的：学习家兔急性右心衰竭模型的制备方法。
观察急性右心衰竭过程中家兔血压、中心静脉压、呼吸的变化，了解变化的发生机制。
方法：由耳缘静脉缓慢注入栓塞剂，经静脉回流至肺脏，并栓塞在肺循环，引起动脉高压，即右心室后负荷增加。
观察记录注射前后家兔血压、呼吸发生的变化。
结果：相比于注射前，兔子呼吸加快加深，血压下降。
结论：家兔耳缘静脉注射液体石蜡造成急性肺小血管栓塞，右心后负荷增加，造成急性右心衰竭，导致呼吸加深加快，呼吸困难，血压下降。
【关键词】急性右心衰竭呼吸血压一、实验材料和方法1.1实验动物：家兔；1.2实验仪器：高灵敏度压力换能器、血压换能器、生物信号采集处理系统、呼吸换能器、注射微量注射泵、手术剪、持针器、烧杯、手术盘、流量头。
1.3实验药品：氨基甲酸乙酯、生理盐水、液体石蜡、肝素。
二、实验方法2.1 系统连接和参数设置：血压换能器、高灵敏度压力换能器、呼吸换能器分别连接生物信号采集处理系统1、2通道。
1通道模式为血压滤波频率100HZ,灵敏度90mmHg;2通道模式为流量，滤波频率100Hz，灵敏度100mL/s；1、2通道时间常数为直流，采样频率800Hz。
2.2 麻醉固定：家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。
待兔麻醉后，仰卧固定。
剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤5 ~7cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉，分离颈外静脉，气管，左侧颈总动脉。
2.3 气管插管：在气管下两根粗棉线备用，在环状软骨下约1cm处，做倒T形剪口，用棉签将气管切开及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用意粗棉线将插管口结扎固定，另一棉线在切口的头端结扎止血。
2.4 左侧颈总动脉插管：用注射器向三通管内注射肝素，使之充满液体，并与插管相连。
在右颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面穿线备用；用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。
急性右心衰实验报告
急性右心衰实验报告急性右心衰实验报告引言：急性右心衰是一种临床上常见的疾病，其发生机制和治疗方法一直备受关注。
本实验旨在通过动物模型，探究急性右心衰的发展过程及其对心功能的影响，为临床治疗提供参考。
实验设计：本实验采用大鼠作为实验动物，将其随机分为两组：实验组和对照组。
实验组大鼠通过手术操作，制造急性右心衰模型，对照组大鼠则进行假手术。
实验期为四周，每周进行一次检测。
实验结果：1. 急性右心衰模型的建立：通过手术操作，成功制造了急性右心衰模型。
实验组大鼠在手术后出现明显的右心室负荷过重，心功能下降等症状，与对照组相比，有显著差异。
2. 心功能变化：实验组大鼠的心功能逐渐下降，表现为心脏收缩力减弱，心脏舒张功能受损等。
对照组大鼠的心功能无明显变化。
实验组大鼠的心脏负荷明显增加，导致右心室肥厚和扩张。
3. 血流动力学改变：急性右心衰导致血流动力学的改变。
实验组大鼠的心输出量明显降低，周围组织灌注不足。
此外，肺动脉压力明显升高，肺循环阻力增加，导致肺部充血。
4. 组织损伤：急性右心衰模型的建立引起了心肌和肺组织的损伤。
实验组大鼠的心肌细胞出现明显的变性和坏死，肺组织中出现充血、水肿等病理改变。
讨论：本实验成功建立了急性右心衰模型，并观察到了心功能、血流动力学和组织损伤的改变。
这些结果与临床观察一致，说明该模型具有一定的可靠性。
急性右心衰的发展过程中，心脏负荷的增加是主要的影响因素之一，而心功能的下降则是其结果。
此外，肺循环的改变也是急性右心衰的重要特点之一。
因此，在临床治疗中，应该注重减轻心脏负荷、改善心功能，并及时干预肺循环的异常。
结论：通过本实验，我们成功建立了急性右心衰模型，并观察到了心功能、血流动力学和组织损伤的改变。
这些结果对于进一步研究急性右心衰的发病机制和治疗方法具有重要意义，为临床治疗提供了一定的参考。
然而，由于本实验的局限性，还需要进一步的研究来验证这些结果，并寻找更有效的治疗策略。
实验19急性右心衰竭病理模型制备
实验19 急性右心衰竭病理模型制备【目的】本实验要求掌握急性右心衰竭模型的制备方法。
观察复制过程中机体出现的表现，理解其发生机制。
1．材料健康成年兔；呼吸换能器，高灵敏度压力换能器，血压换能器，生物信号处理系统，微量注射泵，流量头；氨基甲酸乙酯，生理盐水，液体石蜡。
2．方法2．1 系统连接和参数设定血压换能器接生物信号采集处理系统1通道，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12Kpa（90mmHg）；高灵敏度换能器接生物信号采集处理系统2通道，时间常数为直流，滤波频率30Hz，灵敏度25cmH2O，呼吸换能器接生物信号采集处理系统3通道，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度95ml；采样频率800Hz。
2．2 手术和插管2．2．1 兔称重、麻醉固定按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L 氨基甲酸乙酯麻醉家兔。
仰卧固定。
颈部剪毛，作正中切口，切口5~7cm，钝性分离颈部组织、肌肉。
分离气管、左侧颈总动脉。
行左侧颈总动脉插管、右颈外静脉插管、气管插管。
2．3 实验观察2．3．1 观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．2 以10ml/min的速度静脉注射生理盐水50ml。
每2min标记一次。
观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．3按0.5ml/kg体重剂量由耳缘静脉注射37℃的液体石蜡，用微量注射泵控制在2~3min （0.5ml/min）注射，观察中心静脉压、血压、呼吸、呼吸音的变化。
待呼吸加强时，停止注射，观察血压是否下降20mmHg，中心静脉压是否持续升高，如是，停止注射液体石蜡。
否则继续注射。
2．3．4 血压下降20mmHg稳定5~10min后，以1ml/min的速度静脉注射生理盐水，直至动物死亡。
连续观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．5 待动物出现明显的心衰血流动力学变化后，处死家兔并尸检。
急性有心衰竭动物模型设计 Word 文档
机能实验学实验设计大纲实验名称：急性右心衰竭动物模型设计课题来源：自选设计班级：2008级临床本科7班设计人员：王超设计日期：2011年3月25日指导老师：荣成成都医学院实验技术教研室2011年制标准差（三、完成时间的条件：实验器械，实验动物，实验药品。
实验设备：兔手术台、哺乳类手术器械一套、中心静脉压测定装置、呼吸描记装置、心室插管、听诊器、注射器（1ml、2 ml、5 ml、20 ml）、输液瓶、胶管、螺旋夹、二道生理记录仪与电刺激器（或计算机实时分析系统）。
实验动物：家兔（20只）实验药品：20％乌拉坦、生理盐水、液体石蜡、25％尼可刹米、0.5％肝素生理盐水。
出师表两汉：诸葛亮先帝创业未半而中道崩殂，今天下三分，益州疲弊，此诚危急存亡之秋也。
然侍卫之臣不懈于内，忠志之士忘身于外者，盖追先帝之殊遇，欲报之于陛下也。
诚宜开张圣听，以光先帝遗德，恢弘志士之气，不宜妄自菲薄，引喻失义，以塞忠谏之路也。
宫中府中，俱为一体；陟罚臧否，不宜异同。
若有作奸犯科及为忠善者，宜付有司论其刑赏，以昭陛下平明之理；不宜偏私，使内外异法也。
侍中、侍郎郭攸之、费祎、董允等，此皆良实，志虑忠纯，是以先帝简拔以遗陛下：愚以为宫中之事，事无大小，悉以咨之，然后施行，必能裨补阙漏，有所广益。
将军向宠，性行淑均，晓畅军事，试用于昔日，先帝称之曰“能”，是以众议举宠为督：愚以为营中之事，悉以咨之，必能使行阵和睦，优劣得所。
亲贤臣，远小人，此先汉所以兴隆也；亲小人，远贤臣，此后汉所以倾颓也。
先帝在时，每与臣论此事，未尝不叹息痛恨于桓、灵也。
侍中、尚书、长史、参军，此悉贞良死节之臣，愿陛下亲之、信之，则汉室之隆，可计日而待也。
臣本布衣，躬耕于南阳，苟全性命于乱世，不求闻达于诸侯。
先帝不以臣卑鄙，猥自枉屈，三顾臣于草庐之中，咨臣以当世之事，由是感激，遂许先帝以驱驰。
后值倾覆，受任于败军之际，奉命于危难之间，尔来二十有一年矣。
先帝知臣谨慎，故临崩寄臣以大事也。
心力衰竭模型制备及实验性治疗
心力衰竭模型制备及实验性治疗姓名：学号：班级：一、实验目的1.学习急性心力衰竭模型的制备。
2.急性心力衰竭的抢救方案。
3.急性心力衰竭时的各项心功能及生化免疫等变化意义。
二、实验材料1.实验动物：家兔2.器材：手术台，1ml、2ml、10ml注射器，心导管，气管套管，动脉夹，手术器械一套，7.5号针头，头皮针头，木夹，压力换能器，小动物呼吸机，泰盟BL420F生物机能实验系统3.药品： 25%乌拉坦，2%戊巴比妥钠，去乙酰毛花苷注射液，肝素生理盐水，生理盐水三、实验方法和步骤1.泰盟BL420F生物机能实验系统设置信号输入:1)第1通道：左心室内压；2)第4通道：心电。
2.实验动物麻醉取家兔一只，称重，用20%乌拉坦溶液，按5ml/kg静脉注射进入麻醉，将兔背位固定于手术台上。
3.颈部手术1)气管插管做一倒T形切口，连接气管插管。
2)连接呼吸机插入与动物呼吸机连的气管插管，结扎固定。
将呼吸频率调至35次/min。
3)左侧颈外静脉插管，左侧颈外静脉插管，插至右心房开口处（取血）按试管编号，在造模前、造模后、治疗后用5毫升玻璃针管分别从静脉插管内取血3~4毫升，打开抗凝管瓶塞移入，测BNP，测生化指标（心肌酶谱等）。
4)左心室插管（测左室内压）分离右侧颈总动脉将心导管插入颈总动脉内，观察屏幕显示先出现血压波形，继续将导管插向左室腔。
当波形由血压波变成下沿达0 mmHg附近具有明显舒张期而峰顶平坦的波形时，即表明导管口已通过主动脉瓣进入左室腔内，再送入导管约0.2~0.4cm，若还保持同样波形则可把心导管结扎固定。
4.连接心电将心电输入线的三个针形电报分别插入右前肢及右、左后肢皮下，记录II导联心电。
5.建立静脉通路将头皮针连接在输液瓶（NS），然后用头皮针头刺入耳缘静脉中，并用木夹或胶布固定，用于心衰模型造模给药。
6.连续记录正常心室内压、心电7.戊巴比妥钠制备心衰模型先以2%戊巴比妥钠溶液2.2ml/kg缓慢静脉注射，待左心室内压下降至给药前的30%~40%为急性心衰指标。
实验性急性右心衰竭及其抢救
【实验目的】（1）了解实验性急性右心衰竭动物模型的复制方法。
（2）观察急性右心衰竭时血流动力学的主要变化。
（3）初步分析讨论急性右心衰竭的病因和发病机制。
【立题依据】心力衰竭指在各种致病因素的作用下，心脏的收缩和（或）舒张功能发生障碍，使心输出量绝对或相对下降，以致不能满足机体代谢需要的病理生理过程。
导致心力衰竭的基本病因为原发性心肌舒缩功能障碍和心脏负荷（包括前负荷和后负荷）过度。
前负荷指心脏舒张时所承受的容量负荷，后负荷指心脏收缩时所承受的压力负荷。
通过静脉注射油酸，可增加肺动脉压，导致右心室后负荷增加，大量快速注射静脉输液可增加右心室的前负荷。
当右心室前后负荷的快速增加超过右心室的代偿能力时，则可发生急性右心功能衰竭。
强心苷类药物可抑制Na+-K+ ATP酶，加强心肌收缩能力，增加心脏做功和每搏输出量。
毒毛花苷K静脉注射5-10min后开始起效，常用于治疗急性心衰。
速效利尿药可减少血容量，降低右心后负荷。
而扩血管药物硝普钠可降低中心静脉压，也可用于治疗心衰。
【实验方案】1、实验对象：家兔2、实验药品与器材：20%氨基甲酸乙酯（乌拉坦）溶液，1%普鲁卡因，1%肝素生理盐水溶液，油酸，0.9%生理盐水、10mg/ml呋塞米、0.25mg/ml毒毛花苷K注射液、100mg/ml硝普钠；兔台，婴儿秤，MedLab生物信号处理系统，压力换能器两套，张力换能器一套，三通管，哺乳动物实验手术器械一套，静脉输液装置一套，注射器（1ml、5ml、10ml、30ml），丝线，纱布，棉球，听诊器3、实验方法和步骤：（1）家兔称重后，腹腔注射20%氨基甲酸乙酯（5ml/kg）麻醉，然后仰卧固定于兔台，颈部剪毛备皮。
（2）颈部正中皮下注射1%普鲁卡因局部麻醉，在甲状软骨与胸骨切迹之间作正中切口，逐层分离颈部组织，游离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉。
（3）由耳缘静脉注入1%肝素（1ml/kg）抗凝。
（4）进行右侧颈外静脉和左侧颈总动脉插管。
家兔急性右心衰竭模型建立的实验研究
家兔急性右心衰竭模型建立的实验研究殷骏;何文娟;廖卫公;高志奇;唐中伟;倪兵【期刊名称】《局解手术学杂志》【年(卷),期】2022(31)6【摘要】目的探索家兔急性右心衰竭模型复制中氢氧化铁注入浓度及剂量的最佳条件,明确它们在右心衰竭形成过程中的作用,优化家兔急性右心衰竭模型。
方法对照组家兔未注射氢氧化铁;氢氧化铁设计2个不同浓度,3个不同剂量,得到6个实验组,实验组家兔麻醉、插管、注入氢氧化铁后,观察家兔口唇皮肤颜色、呼吸频率(RF)、心率(HR)、血压(BP)、中心静脉压(CVP)、右室收缩压(RVSP)、右心功能指标[+dp/dtmax(右室压力上升最大速率)、右室舒张压(RVDP)、-dp/dtmax(右室压力下降最大速率)]等栓塞前后变化情况,紧接着快速输入生理盐水后,观察家兔口唇皮肤颜色、RF、HR、BP、CVP、右心功能指标等变化情况,复制家兔急性右心衰竭模型。
结果各实验组家兔均发生不同程度的急性右心衰竭,栓塞成功,与对照组比较,各实验组家兔口唇紫绀、皮肤黏膜苍白;CVP、RVDP、-dp/dtmax显著增加(P<0.05),BP、RVSP、+dp/dtmax显著降低(P<0.05);分别与实验组5和实验组6相比,对照组、实验组1、实验组2、实验组3家兔RVSP、+dp/dtmax显著增加(P<0.05)。
栓塞成功并注入10 mL、30 mL、50 mL、70 mL生理盐水后,分别与实验组5和实验组6相比,对照组、实验组1、实验组2、实验组3家兔CVP显著下降(P<0.05);此外,栓塞成功并注入90 mL生理盐水后,分别与实验组5和实验组6相比,对照组、实验组1、实验组2、实验组3家兔CVP、RVDP、-dp/dtmax 均显著下降(P<0.05);与其他组家兔相比,实验组5和实验组6家兔胸水、腹水、肝腹水程度更严重,心腔体积更大。
结论用氢氧化铁进行肺栓塞能成功复制家兔急性右心衰竭模型,掌握氢氧化铁浓度、剂量的最佳条件是成功复制家兔急性右心衰竭模型的前提,以1 mL/kg氢氧化铁(4%)进行家兔肺栓塞辅助输液后HR和BP相对稳定,复制家兔急性右心衰竭模型效果最佳。
简述如何制备急性右心衰动物模型
简述如何制备急性右心衰动物模型急性右心衰动（AcuteRightVentricularFailure，ARVF）是一种严重的心脏疾病，可以导致呼吸衰竭、血液循环不畅等。
因此，研究ARVF的动物模型对于开发治疗方法具有重要意义。
本文简述了如何制备急性右心衰动动物模型，以便开展ARVF研究。
急性右心衰动动物模型的制备可以通过药物或外科操作实现。
首先，在实验动物身上需要施行麻醉，以减轻动物的痛苦。
其次，可以采用外科方式，如改变分流结构或应用脱氧血红蛋白（deoxyhemoglobin）等方法，来破坏或抑制右心室功能，以实现急性右心衰动。
最后，对于口服药物，可以使用药物如血管紧张素转换酶抑制剂（angiotensin converting enzyme inhibitors）或β受体阻滞剂（β-blockers）等，以抑制右心室功能，以实现急性右心衰动。
在制备ARVF模型的过程中，需要注意以下几点：首先，在实验动物身上应尽可能选择低毒、低刺激的药物，以减少损伤难以控制的可能性；其次，建议在制备急性右心衰动动物模型时，采用外科操作，它可以在更短的时间内产生更明显的效果；最后，需要定期对实验动物进行监测，以便及时发现并处理药物或外科过程中可能出现的不良反应。
在制备ARVF动物模型时，需要密切关注实验动物的血液循环情况，以及右心室功能的改变情况，以确保实验可靠。
为了达到这一目的，需要定期监测实验动物的血液流变学指标（如血管顺应性、收缩容积、收缩期心输出量和室间压差），以及血气分析数据（如血氧饱和度、二氧化碳分压和血清心肌酶），以及电生理指标（如心室节律和传导速度）。
总之，研究ARVF的动物模型制备应采取安全、可靠的方法，以减少实验动物的损伤和痛苦。
外科方式和口服药物可以有效实现急性右心衰动动物模型的制备，并定期监测实验动物的血液、血气及电生理指标，以确保实验的可靠性。
病理生理学实验：急性右心衰竭
病理生理学实验：急性右心衰竭介绍：心力衰竭：在各种致病因素的作用下，心脏的收缩和/或舒张功能发生障碍，使心输出量绝对或相对的下降，以至不能满足机体代谢需要的病理生理过程或综合征。
心力衰竭按照病情严重程度分为：轻度、中度、重度；按起病及病程发展速度分为：急性和慢性；按心输出量的高低分为：低输出量性和高输出量性；按发病部位分为：左心衰竭、右心衰竭和全心衰竭。
左心衰竭时左心室泵血功能下降，是从肺循环流到左心的血液不能充分射入主动脉，因而出现肺淤血及肺水肿；右心衰竭常见于大块肺栓塞、肺动脉高压、慢性阻塞性肺疾病等等，衰竭的右心室不能将体循环回流的血液充分排至肺循环，导致体循环淤血，静脉压上升而产生下肢甚至全身性水肿。
心脏负荷分为：压力负荷和容量负荷；压力负荷又称后负荷，指心室射血所要克服的阻力，即心脏收缩所承受的阻力负荷；容量负荷又称前负荷，指心脏收缩前所承受的负荷，相当于心腔舒张末期容量。
肺动脉高压、肺动脉狭窄等可引起右室压力负荷过度（想想我们今天用什么增加右室压力负荷的？）；三尖瓣或肺动脉关闭不全时引起右心室容量负荷过度（想想我们今天用什么增加右室容量负荷的？）。
一、实验目的：1：复制急性右心衰竭的动物模型。
2：观察增加前、后负荷对心脏功能的影响。
3：观察急性心力衰竭时血流动力学的变化。
二、实验步骤：1. 称重:需掌握捉拿家兔的正确方法--用一只手的拇指与其他四指抓住家兔项背部皮肤，再以另一只手托住其臀部，将其重心承托在掌上；切忌以手抓提兔耳或捉拿腰背部（可伤耳、造成皮下出血）。
2. 麻醉：耳缘静脉缓慢注入200g/L乌拉坦（5ml/kg）行全身麻醉。
3. 固定：背位交叉固定法先把固定带系4个活扣，分别套在家兔的四肢上，前肢套在腕关节以上，后肢套在踝关节以上，抽紧固定带的长头。
2个同学，1个人抓住两前肢和耳朵，1个抓住两后肢，把兔子翻过来仰卧位放在兔台上，(翻转过程中，家兔会出现剧烈的挣扎，同学们一定要抓住家兔，勿放松，以免被家兔抓伤)。
急性右心衰实验报告
急性右心衰实验报告
实验目的：研究急性右心衰在实验大鼠体内的表现和影响。
实验方法：40只健康雄性大鼠随机分为两组，一组为实验组，另一组为对照组。
实验组采用右心房压迫法诱导急性右心衰，对照组则进行假手术。
在诱导急性右心衰的同时，记录大鼠的心肺功能指标以及血液学指标，并在术后的第1、3、7、14天进行动态监测。
实验结果：实验组大鼠心肺功能指标和血液学指标在手术后明显下降，其中右心室收缩压、肺小动脉舒张压和肺小动脉压均下降明显，心脏指数和心输出量也明显降低；血红蛋白、白细胞、血小板等血液学指标也呈下降趋势。
对照组大鼠则无明显变化。
实验结论：右心室收缩压、肺小动脉舒张压和肺小动脉压的降低是急性右心衰在实验大鼠体内的表现之一，同时心肺功能指标和血液学指标也明显下降。
这些结果说明，急性右心衰能够显著影响动物的生理功能和整体健康状况，从而导致病死率的增加。
结论建议：右心衰是临床常见的疾病之一，需要对其进行进一步的研究和治疗。
本实验提供了一种模拟急性右心衰的方法，并初步验证了急性右心衰对生理功能和整体健康状况的影响，为临床诊断和治疗提供了参考和依据。
急性右心衰竭实验报告
急性右心衰竭实验报告
急性右心衰竭是一种严重的心血管疾病，常常由于肺栓塞、肺动脉高压、心脏
瓣膜疾病等原因引起。
本实验旨在模拟急性右心衰竭的病理生理过程，探讨其发病机制及治疗方法。
实验设计及方法：
首先，我们选取实验动物（家兔）进行实验。
将家兔随机分为实验组和对照组，实验组注射一定剂量的肺动脉血栓素，模拟肺栓塞引起的急性右心衰竭；对照组注射生理盐水作为对照。
记录实验组家兔在注射后的生理参数变化，包括心率、呼吸频率、肺动脉压、右心室压力等指标，观察家兔的临床症状和体征。
实验结果：
实验组家兔在注射肺动脉血栓素后出现明显的呼吸困难、心率加快、肺动脉压
升高、右心室压力增加等症状，且随着时间的推移，症状逐渐加重。
对照组家兔未出现上述症状。
实验讨论：
根据实验结果，我们可以得出结论，急性右心衰竭的发病机制主要是肺动脉压
升高导致右心室负荷过重，最终导致右心室功能不全。
治疗方法主要是降低肺动脉压力，减轻右心室负荷，改善心脏功能。
在实验中，我们尝试了利尿剂、血管扩张剂等药物的治疗效果，发现对急性右心衰竭有一定的疗效。
结论：
通过本实验，我们对急性右心衰竭的发病机制和治疗方法有了更深入的了解，
为临床实践提供了一定的参考价值。
然而，由于实验条件的限制，本实验还需要进一步完善和验证，以更好地指导临床实践。
疾病模型复制之-急性右心衰竭ppt课件
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步骤及方法
死亡动物的观察包括：
①剪开气管并挤压胸壁，观察气管内有无分泌物及其性状 ②打开胸、腹腔（不要损伤脏器及大血管），观察有无胸、腹水 及其量 ③观察心脏各腔体积、肺脏外观及切面观、肝脏体积和外观情况 ④剪破腔静脉，让血液流出，观察肝脏和心脏体积的变化
2、插管前调节电脑并调零。双击桌面MD2000，实验 中选病生，选右心衰。放开插管的血管钳后进行 调零。注意区分两根插管，记录数据单位分别是 mmHg和cmH2O。
3、注入液体石蜡的量要适度，速度要慢，同时密切注 意BP及CVP数值的变化。若输液量超过200ml / kg，而各项指标变化不显著，可再补充栓塞剂
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病生实验
实验结果
1、循环指标变化
呼吸（次/min）
实验前 注射石蜡后 0.5ml 总量
心率（次/min）
血压（mmHg）
CVP（cmH2O）
肝-CVP反流实验
注射生理盐水 50ml 100ml 200ml 300ml
12发现：
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病生实验
注意事项
1、防止麻醉过量和保护耳缘静脉。保护颈外静脉（避 免插管尖端锋利，插管不要太深，插管需固定， 插管完成后检查是否有破口）。
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病生实验
步骤及方法
1.家兔称重，麻醉（20%乌拉坦， 5ml/kg，耳缘静脉注射；留针）
2.固定 3.剪毛 4.颈部正中切开，切口5~7cm
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病生实验
步骤及方法
5. 分离左颈总动脉及右颈 外静脉 ，留线备用
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实验19 急性右心衰竭病理模型制备
作者
（浙江大学级临床医学（八年制）专业班组）
【目的】本实验要求掌握急性右心衰竭模型的制备方法。
观察复制过程中机体出现的表现，理解其发生机制。
1．材料健康成年兔；呼吸换能器，高灵敏度压力换能器，血压换能器，生物信号处理系统，微量注射泵，流量头；氨基甲酸乙酯，生理盐水，液体石蜡。
2．方法
2．1 系统连接和参数设定血压换能器接生物信号采集处理系统1通道，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12Kpa（90mmHg）；高灵敏度换能器接生物信号采集处理系统2通道，时间常数为直流，滤波频率30Hz，灵敏度50cmH2O，呼吸换能器接生物信号采集处理系统3通道，时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度50~100ml；采样频率800Hz。
2．2 手术和插管
2．2．1 兔称重、麻醉固定按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L 氨基甲酸乙酯麻醉家兔。
仰卧固定。
颈部剪毛，作正中切口，切口5~7cm，钝性分离颈部组织、肌肉。
分离气管、左侧颈总动脉。
行左侧颈总动脉插管、右颈外静脉插管、气管插管。
2．3 实验观察
2．3．1 观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．2 以10ml/min的速度静脉注射生理盐水50ml。
观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．3 按0.5ml/kg体重剂量由耳缘静脉注射37℃的液体石蜡，用微量注射泵控制在2~3min （0.5ml/min）注射完毕，观察中心静脉压、血压、呼吸、呼吸音的变化。
待呼吸加强时，停止注射，观察血压是否下降20mmHg，中心静脉压是否持续升高，如是，停止注射液体石蜡。
否则继续注射。
2．3．4 血压下降20mmHg稳定5~10min后，以1ml/min的速度静脉注射生理盐水，直至动物死亡。
连续观察记录动脉血压、中心静脉压（或右心房内压），呼吸曲线，监听呼吸音。
2．3．5 待动物出现明显的心衰血流动力学变化后，处死家兔并尸检。
2．3．6 动物死亡后，剖开胸、腹腔（注意不要损伤脏器与大血管），观察有无胸、腹水、肠系膜血管充盈与脏器水肿。
3．结果
3．1 家兔正常平均动脉压mmHg，中心静脉压cmH2O,呼吸频率(次/min)，肺通气量ml/min，见表1。
3．2 以10ml/min的速度静脉注射生理盐水50ml，家兔平均动脉压由mmHg
至mmHg；中心静脉压由cmH2O 至cmH2O；呼吸频率由(次/min)至(次/min)，肺通气量由ml/min 至ml/min。
3．3 按0.5ml/kg体重剂量由静脉注射37℃的液体石蜡，家兔平均动脉压由mmHg
至mmHg；中心静脉压由cmH2O 至cmH2O；呼吸频率由(次/min)至(次/min)，肺通气量由ml/min 至ml/min。
表1 家兔急性右心衰竭动脉血压、中心静脉压、呼吸的变化
观察项目
平均动脉压
(mmHg)
中心静脉压
(mmHg)
呼吸频率
(次/min)
通气量
（ml/min）对照处理对照处理对照处理对照处理
i.v 生理盐水
i.v 石蜡0.5ml/kg
i.v 生理盐水
3．4 尸检胸、腹水、其他。
4．讨论
4．1 本实验右心衰竭模型的复制机制
4．2 家兔右心衰竭过程中动脉血压、中心静脉压、呼吸变化的机制。