定点突变
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1.1.1 基因定点突变
简介(INTRODUCTION )
定点突变(site-directed mutagenesis )是指通过聚合酶链式反应(PCR )等方法向目的DNA 片段(可以是基因组,也可以是质粒)中引入所需变化,包括碱基的添加、删除、点突变(单点/多点)等。定点突变能迅速、高效的提高DNA 所表达的目的蛋白的性状及表征,是基因研究工作中一种非常有用的手段。原理上分两种:1. 搭桥法(重叠PCR )2. 一步法(全质粒PCR ) ► 搭桥法(重叠PCR )定点突变
搭桥法共需要两对引物(两端引物,中间引物),三次PCR ,其中前两次PCR 可同时完成,原理如图一所示:两次PCR 的产物回收,作为模板加上两端引物primer F 和primer R 进行PCR3。
PCR1:以primer F 和
primer Rm 为引物对扩增
PCR2:以primer R 和primer Fm 为引物对扩增
实验步骤(PROCEDURE )
1. 两对引物的Tm 值都应相当。两端PCR 引物参照普通引物设计并无特殊要求。所需引入突
变包含在中间引物互补区域内 (需要在两条引物上均引入点突变),请勿将突变位点置于引物3’ 末端且突变位点距离3’ 端最少要有15个碱基,因为有非匹配碱基的存在,太短会导致引物与模板无法结合。
2. 对于一对中间引物的设计,如左图所示(高亮处是突变碱基),两引物间可以是完全互补,
也可是部分互补。但两引物间互补部分的Tm 值不能太低(太低导致PCR3无法配对延伸)。
搭桥法定点突变
一对中间位置的点突变引物设计 3.
PCR :PCR1:以primer F 和primer Rm 为引物对扩增;PCR2:以primer R 和primer Fm 为
引物对扩增。两次PCR 的产物回收,作为模板加上两端引物primer F 和primer R 进行PCR3。(注意前两次不能使用taq 聚合酶,因为taq 在产物3’ 端多加一个A ,导致后续的PCR3出现移码突变)
4. 克隆:回收PCR3产物,酶切,连接,转化。
► 一步法定点突变
一步法是以质粒为模板,考虑扩增效率需将正向引物和反向引物分开扩增,避免二聚体的产生。原理如图
实验步骤(PROCEDURE )
5. 引物设计:设计一对含有目标突变的引物,除所需要引入的突变位点外,其余序列与质粒模
5’-NNNNNNNNNNNNNNNANNNNNNNNNNNNNNNNN-3’
3’-NNNNNNNNNNNNNNNTNNNNNNNNNNNNNNNNN-5’
完全互补
5’-NNNNNNANNNNNNNNNNNNNNNNN-3’
3’-NNNNNNNNNNNNNNNTNNNNNNN-5’
部分互补
5’-NNNNNNANNNNNNNNNNNNNNNNN-3’
3’-NNNNNNNNNNNNNNNT-5’
部分互补
板完全匹配。不同于搭桥法的一对中间引物,全质粒PCR法的一对引物最好不是完全配对,因为这对引物是放在一个PCR反应中,完全配对极易形成引物二聚体,而不是与模板质粒结合。这就要求两条引物间配对区域的Tm值要小。
6.PCR。PCR1:质粒+正向引物扩增,PCR2:质粒+反向引物扩增。两次PCR均按照常规PCR
程序进行,不同的是只反应12个而不是30个循环。PCR3:PCR1和PCR2反应完成后,将二者体系混合成一个体系并补加适量的高保真聚合酶(如Pfu 或Pfu-X1),然后按照常规PCR程序继续反应16个循环。
▲关键步骤:
♫不能用taq酶,一是taq酶无3’-5’外切酶活性导致保真性差,全质粒PCR片段长,易出现非目标突变。二是因为taq酶具有5’-3’外切酶活性这就导致当PCR以质粒
为模板复制一圈回到最初引物位置时,原有引物会被外切导致引入的突变又变回
野生型质粒的序列。
♫为防止非目标突变,PCR循环数不要太多(建议不超过25个cycle)
♫在质粒能正常扩增的前提下,应尽量减少质粒模板使用量以免模板质粒消化不完全背景增加。(酶切和PCR都无法区分)
7.PCR产物的甲基化酶处理
8.待突变的质粒通常来源于DH5α等dam+大肠杆菌,在这些dam+细菌中质粒会被甲基化修
饰,而在体外通过PCR扩增得到的质粒不会被甲基化。这样用特异性识别甲基化位点的酶DpnI处理,可以消化掉待突变的质粒模板,而使通过PCR扩增出来的含有突变位点的质粒被选择性地保留下来(DpnI酶只消化甲基化的DNA)。随后把DpnI处理过的产物转化感受态细菌后,突变质粒中的两个nick位点可以被大肠杆菌修复,得到的克隆就会含有预期的突变质粒了。
9.向PCR产物中加入1 μL DpnI酶和4 μL的10× NEB cutsmart buffer消化模板质粒置于37°C
反应1 h,取出5 μL跑胶检测,剩余的取部分做细菌转化,涂板。筛选转化子,测序。