感染性标本的采样、储存、运输的具体操作方法
感染性标本收集流程
感染性标本收集流程英文回答：Infection Specimen Collection Procedure.Introduction.Collection of infection specimens is crucial for accurate diagnosis and appropriate treatment of infectious diseases. The correct collection and handling of specimens is essential to ensure optimal results and patient safety. This document outlines the general procedure for collecting infection specimens, including types of specimens, collection techniques, and specimen handling.Types of Infection Specimens.The type of specimen collected depends on the suspected infection and the specific diagnostic test being performed. Common types of infection specimens include:Blood: Used for bacterial, viral, and fungal cultures, serology tests, and molecular diagnostics.Urine: Used for urinary tract infections, sexually transmitted infections, and some systemic infections.Stool: Used for gastrointestinal infections, parasites, and ova and cysts.Sputum: Used for respiratory tract infections.Wound swabs: Used for skin and soft tissue infections.Cerebrospinal fluid (CSF): Used for meningitis, encephalitis, and other central nervous system infections.Collection Techniques.The collection technique varies depending on the typeof specimen. General principles for specimen collection include:Use sterile containers: Use sterile, leak-proof containers provided by the laboratory.Collect at the appropriate site: Collect specimens from the site where the infection is suspected.Obtain sufficient volume: Collect an adequate amount of specimen for the required tests.Avoid contamination: Prevent contamination of the specimen with other substances, such as saliva or skin flora.Specific collection techniques for different specimen types include:Blood: Collected from a vein using a sterile needle and syringe.Urine: Collected midstream in a sterile container.Stool: Collected in a sterile container without additives.Sputum: Collected by coughing deeply into a sterile container.Wound swabs: Collected by gently rotating a sterile swab over the wound surface.Cerebrospinal fluid: Collected from the lumbar space using a sterile needle and syringe.Specimen Handling.Once collected, specimens should be properly handled to preserve their integrity and prevent contamination. General principles for specimen handling include:Label specimens: Clearly label containers with the patient's name, date of collection, and specimen type.Transport promptly: Transport specimens to thelaboratory as soon as possible.Keep specimens refrigerated: Refrigerate specimens at 2-8°C if not processed immediately.Follow laboratory instructions: Adhere to the laboratory's specific instructions for specimen handling and transport.Conclusion.Adherence to proper infection specimen collection and handling procedures is essential for accurate diagnosis and appropriate treatment of infectious diseases. By following these guidelines, healthcare professionals can ensure the collection of high-quality specimens that will contribute to optimal patient outcomes.中文回答：感染性标本采集流程。
检验科样本采集保存和运输规定
检验科样本采集保存和运输规定一、背景介绍在医疗检验中，样本的采集、保存和运输是确保检验结果准确可靠的重要环节。
本文将针对检验科样本的采集、保存和运输进行规范，以确保样本的质量和可追溯性。
二、样本采集1. 采集前准备（1）合理安排采集时间，避免患者饮食或用药对样本产生干扰；（2）确保采集器械的洁净，消毒器械；（3）检查采集器械是否完好，避免损坏导致样本污染或无法采集。
2. 采集操作（1）向患者详细说明采集过程，解答其疑问和担忧；（2）采用无菌技术进行血液或体液样本的采集，注意遵循标本稳定性和抗凝剂的要求；（3）遵循标本采集顺序的原则，避免交叉污染；（4）按照要求采集足够的样本量，以确保后续检验的需要。
三、样本保存1. 样本分类（1）按照不同类型的样本，如血清、尿液、唾液等进行分类；（2）对于不同样本类型，采用适当的保存方式和温度，以维持样本的稳定性。
2. 储存条件（1）避免样本受到阳光直射，存放在干燥、阴凉且温度稳定的环境中；（2）在保存样本时，确保密封性，避免样本受到雾气、湿气或灰尘的污染；（3）对于特殊的储存条件要求，如低温保存或深冷保存，遵循相应的要求和操作规范。
四、样本运输1. 包装要求（1）在运输过程中，采用合适的包装材料，保护样本免受外界冲击或温度变化的影响；（2）对于易碎或液体样本，采用特殊的包装材料和容器，以避免破损或泄漏。
2. 运输环境（1）确保样本在运输过程中处于合适的环境条件，避免样本受到严重震荡或温度波动；（2）对于特殊要求的样本，如冷冻样本，采用冷链运输方式，保证低温环境的稳定性。
3. 文件记录（1）对每一次样本的采集、保存和运输情况进行详细的记录，包括时间、地点、操作人员等信息；（2）建立样本追踪系统，确保样本的可追溯性和安全性。
五、样本处理1. 检验前准备（1）按照标本要求进行预处理，如离心、分装等操作；（2）确保操作人员在处理样本时遵循规范的操作流程和要求。
2. 样本分发（1）对于检验科内部的样本分发，确保样本的准确性和完整性；（2）对于外部转运的样本，遵循相关规定，确保样本在转运过程中的安全和稳定。
检验标本采集储存运输交接处理制度
检验标本采集储存运输交接处理制度临床检验的任务就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室结果，并为临床提供咨询服务。
因此，检验标本的正确采集储存运输交接处理是确保临床检验顺利进行的重要条件。
为此，制订检验标本采集储存运输交接处理制度。
1检验标本采集按照检验标本采集与送检须知及采集标本注意事项（附件1，2）要求采集合格的标本，并及时送检。
2标本的储存，未能及时检验的标本按实验的要求正确保存，有专用保存标本的冰箱，冰箱有温度记录，报告结果后的标本至少保存48小时，以便复查或与重新采集的标本进行对比分析。
3标本的运输和交接按临床实验标本送检暂行规定执行（附件3），防止标本丢失。
4检验后的标本必须按照医疗废物处置规定处置（附件4）。
附件1检验标本收集与下架须知一、采集标本要求1．血细胞分析(包含血细胞五分类、细胞分类、eos计数、ret计数、疟原虫等)：紫色真空改采血管(edta盐抗凝管、血细胞五分类试管)，只须献血1管及至刻度充份搅匀(特别注意：充份搅匀：通常指快速将血液和抗凝剂轻轻的倒转搅匀，防止用力震荡!)。
2．血氨、糖化血红蛋白：紫色真空采血管，采血1管至刻度充分混匀。
3．淋巴细胞亚群测定：紫色真空采血管，采血1管至刻度充分混匀。
4．hla组织配型：紫色真空采血管，采血3管至刻度充分混匀；pra分析采1管不抗凝血3-4毫升。
5．血栓与止痛项目(pt四项、凝血因子、d-二聚体、纤维蛋白原、3p试验等)：兰色真空改采血管(枸橼酸钠抗炎凝管、pt试管)，只须献血1管及至刻度充份搅匀(特别注意：务必献血至刻度!若就是心肌、甲状腺、血量太少或血量多的标本，须要再次献血，否则检测结果不可信!)。
6．hla-b27检测：兰色真空采血管，采血1管至刻度充分混匀。
7．三溶试验：献血2管，1管用兰色真空改采血管，献血至刻度充份搅匀，另1管及白唇抗凝血2-3毫升。
8．血沉：3.8％枸橼酸钠液0.4毫升，血1.6毫升充分混匀。
传染病病例标本采集和运输参考课件
▪ 庆大霉素 (250 mg/L):广谱抗生素 ▪ 制霉菌素 (0.5 x 106 IU/L) ▪ 盐酸氧氟沙星 (60 mg/L)：广谱菌，对多数肠杆菌科细菌等G-菌较
强的抗菌活性 ▪ 磺胺甲基异恶唑 (0.2 g/L)
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病原微生物标本的采集
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病原微生物标本的采集
▪ 禽流感环境标本采集 ▪ 采样液： ▪ 可使用 PH 7.4-7.6 Hank‘s或Eagle’s等培养液加入以下抗菌素和
0.5%BSA(也可以使用MEM、EMEM、DMEM，价格相对较高 )：采 样液最好现配现用
▪ 氨苄青霉素 (2 x 106 IU/L)：主要对G+菌作用强 ▪ 链霉素 (200 mg/L) ：主要对G-菌，结核杆菌有抑制作用
平相适应的设备，包括个人防护用品（隔离衣、帽、 口罩、鞋套、手套、防护眼镜等）、防护材料、器材 和防护设施等； ▪ 3)具有有效的防止病原微生物扩散和感染的措施； ▪ 4)具有保证病原微生物样本质量的技术方法和手段。
4
病原微生物标本的采集
▪ 采样时间及部位 ▪ 时间:一般在怀疑细菌感染时应尽量在急性发病期和使用抗生素之前
第一次于发病初期（1～3天），越早越好，第二次血样一般在恢复期（第一次采血后 3～4周）。双份血清同时检测，如抗体滴度有4倍以上升高才有意义。 （2）粪便采集：应在急性腹泻期及用药前采集自然排出的粪便。采集时应用灭菌棉拭子 多点蘸取患者新鲜排出粪便的脓血、粘液、水样便或稀便部分，采样量一般3-5克。 （3）咽拭子：令患者仰头张口，用压舌板压舌，将无菌棉拭子伸入口腔，适度用力拭涂 抹咽后壁和两侧扁桃体部位，放入盛有3-5mlHank’s液的采样管中，在靠近顶端处折 断棉签杆，旋紧管盖并密封。
新冠肺炎的标本采集、保存和运输
标本的保存
用于病毒分离和核酸检测的标本应尽快进行检测，能在24小时 内检测的标本可置于4℃保存；24小时内无法检测的标本则应置 于-70℃或以下保存（如无-70℃保存条件，则于-20℃冰箱暂存） 血清可在4℃存放3天，-20℃以下可长期保存。 应设立专库或专柜单独保存标本。 保存用冰箱应双人双锁 临时保存也要做好记录。
人员受到物理、化学及生物等有害因子伤害。
采样及检测人员 防护装备要求： N95及以上防护 口罩、护目镜、 防护服、乳胶手 套、防水靴套； 如果接触患者血 液、体液、分泌 物或排泄物，戴 双层乳胶手套； 手套被污染时， 及时更换外层乳 胶手套。
个人防护穿戴流程
1.手消毒 2. 戴一次性帽子（头发均在帽内） 3；戴医用防护口罩（双手塑造鼻夹），并进行密合性测 试（无漏气） 4、戴第一层乳胶手套（先检查手套密闭性）； 5穿一次性防水靴套（长靴套）； 6穿一次性防护服（尺寸合适，检查有效期和完整性， 下蹲检查防护隔离服舒适性）； 7、穿隔离衣 8、戴第二层手套（医用外科手套；先检查手套密闭性，. 手套完全覆盖袖口） 9.戴防护目镜或防护面屏（位置正确、贴合紧密）； 10. 检查；
防护装备脱卸的注意事项
1.脱卸时尽量少接触污染面。 卸下口罩时：首先提起面具下方 松紧带越过头部，然后提起面具 上方松紧带使面具脱离面部 2.脱下的防护眼罩等非一次性使用的物品应直接放入盛
有消毒液的容器内浸泡；其余一次性使用的物品应放入
黄色医疗废物收集袋中作为医疗废物集中处置。
3．脱卸防护装备的每一步均应进行手消毒，所有防护
Huai’an Center for Disease Control and Prevention
新冠肺炎的标本采集、保存和运输中 生物安全防护
感染性物质的运输管理与操作规范
辅助容器
(吸收材料)
A类 防水，防穿刺，防泄漏 B类 防水，防破损、防泄漏
A类外包装(制冷器件、衬垫材料)
B类外包装(制冷器件、衬垫材料)
A、B类感染性物质及包装区别
区别
定义 运输专用 名称 英文运输 专用名称 UN编号 UN专用标 记 运输对象 需要 《名录》规定的第一类、第 二类病原微生物菌（毒）种 及其样本；第三类中包装分 类为A类的病原微生物菌 （毒）种及其样本
《可感染人类的高致病性病原微生物菌 （毒）种或样本运输管理规定》
第十一条 对于为控制传染病暴发、流行或者 突发公共卫生事件应急处理的高致病性病原微 生物菌（毒）种或样本的运输申请，省级卫生 行政部门与卫生部之间可以通过传真的方式进 行上报和审批；需要提交有关材料原件的，应 当于事后尽快补齐。 紧急时，省与部间可传真方式上报和审 批，材料事后补齐
(条例 第十二条 不得通过公共电（汽）车和城市铁路运输 ）
专车、溢出紧急处理箱、受训人员
《可感染人类的高致病性病原微生物菌 （毒）种或样本运输管理规定》 第十五条 高致病性病原微生物菌（毒）种或样本在运输 之前的包装以及送达后包装的开启，应当在符合生物安 全规定的场所中进行。 申请单位在运输前应当仔细检查容器和包装是否符 合安全要求，所有容器和包装的标签以及标本登记表是 否完整无误，容器放置方向是否正确。 运输前仔细检查容器和包装，要符合安全要求 运输前的包装和送达后的开启，在规定的场所中进行
《可感染人类的高致病性病原微生物菌 （毒）种或样本运输管理规定》
第二条 (定义)本规定所称可感染人类的高致 病性病原微生物菌（毒）种或样本是指在 《人间传染的病原微生物名录》中规定的 第一类、第二类病原微生物菌（毒）种或 样本。
临床微生物标本的采集,储存和转运
临床微生物标本的采集，储存和转运微生物检验的基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查2.在抗菌药物使用前采集标本3.采样时严格执行无菌操作4.采样后立即送检5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂6.送检标本应注明来源和检验目的标本采集1.尽早采集2.无菌操作3.合适部位4.适量标本5.适当方法6.安全采集1-尽早采集标本“采集重在时效性”1.1最好是病程早期、急性期1.2尽量在抗生素使用之前采集1.3对已用抗生素又不能停药者，可在下次用药前采集2-合适部位“背景干扰”2.1无菌标本:注意局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作与外界相通的腔道:避开腔道口区标本，以免皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊。
2.2正常菌群寄生部位：采集时应特别小心；应明确检查的目的菌在进行分离培养时，采用特殊选择性培养基2.3血标本采集:应避免输液的影响。
3-无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或粘膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本。
3.1.在采集血液、脑脊液、胸腔积液、关节液等无菌标本时，应注意对局部及周围皮肤的消毒，严格进行无菌操作；3.2.对于采集与外界相通的腔道标本时，如窦道标本，应从窦道底部取活组织检查，而非从窦道口取标本，以免受皮肤表面正常菌群的污染，造成混淆和误诊；3.3.采集的标本均应盛于无菌容器内送检。
盛装标本的容器须先经高压灭菌、煮沸、干热等物理方法灭菌，或使用一次性无菌容器，不能用消毒剂或酸类处理。
标本中也不得添加防腐剂，一面降低病原菌的分离率。
4-适量标本4.1标本采集应足量。
标本量过少，可能会导致假阴性结果。
4.1.1血液标本:通常成人采血量每瓶8-10ml,儿童每瓶1-5ml;脑脊液、骨髓、4.1.2脓肿、穿刺液、引流液、痰液等标本：三1ml尿液标本：＞3ml4.1.3粪标本：1-3g 或 1-3ml4.2结核标本采集量要求特殊：4.2.1痰、肺泡灌洗液或支气管冲洗液：>5ml;4.2.2清晨中段尿：5-10ml;4.2.3粪标本：>1g;4.2.4穿刺液(胸水、腹水、关节液等)：5- 10ml。
可感染高致病菌或样本运输管理规定
第二层：可以采用专用二级包装桶或耐高 压塑料袋。
第三层：将密封好的第二层包装放入运输 包装盒，运输包装盒要求有保持冷藏低温 功能。
样本包装的系统要求：
容器 材料 标识
密封 无菌
两耐 三防
警告用语 生物危害 放置位置 提示用语
高/低温（-40 ～ 55 ℃ ）（液氮-196 ℃ ） 高压（95kPa）
水 损 泄露
必须在符合生物安全规定的场所中进行包装
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主容器
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3、感染性物质的正确运输 《病原微生物实验室生物安全管理条例》
第二章 病原微生物分类和管理 第十条～第十三条 具备基本条件：符合规定、运输容器、生物危险标识 运输方式：陆路、水路和航空（部分机场出港及进港受限 制或无资质），有关单位或者个人不得通过公共电(汽)车和 城市铁路运输病原微生物菌(毒)种或者样本。 运输审批权限：省级卫生（兽医）部门（省内），部级 （省 际和国际），出入境检疫机构、航空主管部门 运输过程：不少于2人，不得通过公共电（汽）车和城市铁 路 承运单位：批准文件和安全措施
• 病原微生物分类及名称、运输包装分类见卫 生部制定的《人间传染的病原微生物名录》
• 其它材料
• 法人资格证明材料（复印件） • 接收单位同意接收的证明文件（原件）
样品采集、运送和保存
二、样品的采集和处理
艾滋病检测最常用的样品：血液，包括血清、
血浆和全血。
唾液或尿液有时也可作为测试样品。
1. 血清样品采集：
用一次性注射器（或真空采血管） 抽出一定量静脉血，一般为5mL，放入 一次性塑料试管，室温下自然放置1-2 小时，待血液凝固和血块收缩后再用 3000rpm离心15分钟，吸出血清备用。
首选EDTA。 肝素是PCR反应的一个潜在的抑制剂，会使核 酸检测出现假阴性结果。且HIV-RNA降解的速 率显著高于EDTA和枸橼酸钠处理的血浆 。 采集样品应避免微生物和核酸污染。
病毒载量测定对样品的要求
血清和血浆的测定结果具有高度的相关性。 血清的检测结果大约是血浆的50%（ 3080% ）。因为部分HIV病毒颗粒被包裹在纤 维蛋白网络中。 首选血浆标本，血清标本也可。但每位病人 每次检测使用的标本类型应始终保持一致。
样品管应为螺旋口的塑料管（1.5ml），检 查有无破损，将螺旋盖旋紧，防止样品渗漏。 血清样品量至少应大于600μ l 。 禁止使用扳盖式样品管。 建议第一层:螺旋口的塑料管（1.5ml） 第二层：血清盒。5份或5份以下可以使 用一次性乳胶手套（每个手指放一个） 第三层：冰瓶（内置冰块） 禁止第二层使用封口塑料袋
普遍性防护原则（WHO推荐）
2.对所有器具严格消毒 为保证消毒效果，器具必须用热水和清洁剂洗干净 后再消毒，所有符合消毒规范的消毒程序都足以杀 灭HIV、乙型肝炎病毒和丙型肝炎病毒。 常用的灭菌方法足以使HIV灭活。常用的两种灭菌 方法是煮沸和化学灭菌。煮沸是有效的灭菌方法， 已清洗过的器具应煮沸20分钟。 医务人员的手常常带有病原微生物，这也是造成病 原体在病人中传播和主要原因之一。医务人员手上 沾着的体液，可以很容易地用肥皂和水清除干净。
病原微生物标本的采集运送标准操作程序
SOP_15-5 病原微生物标本的采集运送标准操作程序一、病原微生物标本采集和运送基本原则1.及时采集微生物标本作病原学检查。
2.采样时严格执行无菌操作，将污染情形降至最低。
3.在感染的急性期、使用抗生素前或伤口局部治疗前收集样本。
4.收集真正感染的病灶处的样本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
5.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
6.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的样本，尽量不要以棉花拭子收集样本。
7.采样后立即送检，最好在2h内。
为保持微生物活性，棉拭子等标本宜放入恰当的运送培养基送检。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但存放一般不能超过24h。
8.混有正常菌群的标本，不可置肉汤培养。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
（要标明病区、病人姓名、住院号、标本来源、采集部位、采集时间等）二、血培养标本采集和运送1.采集指征：临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血流感染的患者,需做血液细菌培养以明确病原。
及时、准确地从患者血液中分离出病原菌,才能正确实施有效地抗菌治疗,从而有助于治愈率的提高和医疗费用的降低。
2.采集方法：1.采血时机:在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前,以正在发冷发热时或发冷发热前半小时为宜。
2.采血次数及间隔:在急性发热性疾病如脑膜炎、细菌性肺炎,需马上做抗菌治疗;或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本。
对感染性心内膜炎患者,在24h内取血3次,每次间隔不少于30min;必要时次日再做血培养2次。
对发热原因不明者两次抽血间隔60min;必要时于24～48h后再抽血2次。
因为1次血培养不足以说明问题,且会遗漏阳性结果。
国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80%,2次检出90%,3次检出99%。
国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8%,18家医院2次以上血培养阳性率14.8%。
新冠病毒标本采集与运输学习培训课件PPT教程(核酸采集工作人员教育培训)
标本的采集
发热
乏力
标本的采集
标本采集和处理
4．粪便标本：取1ml标本处理液，挑取黄豆粒大小的便标本加至管中，轻轻吹吸3～5次 ，室温静置10分钟，以8000rpm离心5分钟，吸取上清液进行检测。
也可使用HANK’S液或其它等渗盐溶液、组织培养液或磷酸盐缓冲液溶解便标本制备 便悬液。如患者出现腹泻症状，则留取粪便标本3～5ml，轻轻吹打混匀后，以8000rpm 离 心5分钟，吸取上清液备用。
发热 乏力 人群筛查应根据核酸提取、检测所用试剂的要求确定采样管，可选择含病毒灭活 剂（胍盐或表面活性剂等）的采样管。用于病毒分离的标本应放置于不含有病毒 灭活剂的采样管
标本的采集
采集标本种类
每个病例必须采集急性期呼吸道标本（包括上呼吸道标本和下呼吸道标本），重症 病例优先采集下呼吸道标本；根据临床需要可留取便标本、全血标本、血清标本和 尿标本。物品和环境标本根据检测需求采集。
病毒标本采集与运输
新
型
冠
状
病
毒
目
contents
录
01 标本的采集 02 标本的包装、保存与运输
壹
标本的采集
标本的采集
采集对象 新冠肺炎病例、可疑感染人员和其他需要进行检测的人员，以及可能被污 染的环境或物品等。
标本的采集
采样人员基本要求 从事新型冠状病毒检测标本采集的技术
人员应经过生物安全培训、监测技术培训 并合格，熟悉标本采集方法，熟练掌握标 本采集操作流程。应严格按照操作流程进 行采样，按要求做好标本信息记录，确保 标本质量符合要求、标本及相关信息可追 溯。
标本的采集
发热
采集要求： 用物准备 1. 采样拭子棉签 2. 病毒采集管和50ml离心管 3. 记号笔 4. 密封袋 5. 生物安全运输箱 6. 医疗垃圾袋
检验标本采集储存运输交接处理制度
检验标本采集储存运输交接处理制度集团标准化小组：[VVOPPT-JOPP28-JPPTL98-LOPPNN]检验标本采集储存运输交接处理制度临床检验的任务就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室结果，并为临床提供咨询服务。
因此，检验标本的正确采集储存运输交接处理是确保临床检验顺利进行的重要条件。
为此，制订检验标本采集储存运输交接处理制度。
1检验标本采集按照检验标本采集与送检须知及采集标本注意事项（附件1，2）要求采集合格的标本，并及时送检。
2 标本的储存，未能及时检验的标本按实验的要求正确保存，有专用保存标本的冰箱，冰箱有温度记录，报告结果后的标本至少保存48小时，以便复查或与重新采集的标本进行对比分析。
3 标本的运输和交接按临床实验标本送检暂行规定执行（附件3），防止标本丢失。
4 检验后的标本要按照医疗废物处理规定处理（附件4）。
检验标本采集与送检须知一、采集标本要求1．血细胞分析(包括血细胞五分类、细胞分类、Eos计数、Ret计数、疟原虫等)：紫色真空采血管(EDTA盐抗凝管、血细胞五分类试管)，只须采血1管至刻度充分混匀(注意：充分混匀：一般指迅速将血液和抗凝剂轻轻的颠倒混匀，避免用力振荡!)。
2．血氨、糖化血红蛋白：紫色真空采血管，采血1管至刻度充分混匀。
3．淋巴细胞亚群测定：紫色真空采血管，采血1管至刻度充分混匀。
4．HLA组织配型：紫色真空采血管，采血3管至刻度充分混匀；PRA分析采1管不抗凝血3-4毫升。
5．血栓与止血项目(PT四项、凝血因子、D-二聚体、纤维蛋白原、3P试验等)：兰色真空采血管(枸橼酸钠抗凝管、PT试管)，只须采血1管至刻度充分混匀(注意：务必采血至刻度!若是凝血、溶血、血量少或血量多的标本，需要重新采血，否则检测结果不可靠!)。
6．HLA-B27检测：兰色真空采血管，采血1管至刻度充分混匀。
7．三溶试验：采血2管，1管用兰色真空采血管，采血至刻度充分混匀，另1管采不抗凝血2-3毫升。
李新兰：标本的采集运输和保藏
咽拭子和鼻咽拭子
发热72小时内采集。最好用生理盐水将无菌棉拭子沾湿，但 不要用标本运输液，以防青霉素过敏。 鼻咽拭子是将棉签平行于上颚插入鼻孔，保持几秒钟，吸收 分泌物；拭抹双侧鼻孔。 咽拭子采集是用棉签适度用力擦拭双侧咽后壁部位，应避免 触及舌部； 采完后迅速将然后把拭子放到有旋转盖的并装有病毒保存液 的带垫圈的螺口塑料管冻存管中,在靠近顶端处折断棉签杆， 旋紧管盖； 在48小时内冷藏运输到实验室（4-8℃）。如果没有病毒保 存液，等渗盐溶液、组织培养液或磷酸盐缓冲液也可使用
嗽口液:
发热72小时内采集。含漱液通过用小体积（5-10ML） 的无菌盐水含漱获得， 并收集液体到有旋转盖的50ml塑料管离心管中.
痰液:
只采集重症病人，无时间限制。病人将痰液咳入无菌 平皿中，然后用棉签刮取痰液放入含4～5 ml样本运输液 的螺口试管中。病人将痰液咳入无菌、内装4～5 ml标本 运送液、带垫圈的50ml螺口塑料管中。
废弃物的处理
所有感染性材料（血液，鼻咽拭子，咽 拭子，痰液标本，尸检标本）及接触感染 性材料的物品，均应在P-3级生物安全实 验室的生物安全柜（Ⅱ级）中操作；其废 弃物应置于牢固塑料高压袋中密封，高压 121℃，30分种或焚烧。
标本保藏设备
专用普通冰箱： -20º C以下冰箱，用于保藏 血清标本，避免与其他实验材料混用； 专用深低温冰箱：-70º C或以下冰箱，用于保 藏鼻咽拭子、咽拭子、痰液标本及尸检标本， 避免与其他实验材料混用； 标本数据的储存和管理设备。
SARS病人标本采集安全操作原则
1、非典型肺炎标本采集时要严格执行采集人的生物 安全防护要求，采集人必须穿好防护鞋套、衣裤、 帽子、眼罩、口罩和手套。标本采集完毕后，首先 消毒手套，然后带着手套依次脱掉帽子、眼罩、口 罩、衣裤和鞋套，最后脱去手套，再用消毒巾擦拭 面部和双手。采集样品必须放入无菌塑料管内，加 无菌外包装后才能传送。 2、样本检验采取就地检验的原则，当地医院能开展 的项目在当地检测，同时将血清样本和咽拭子等相 关样本送省或地级市疾控中心检验。
感染性标本收集流程
传染病实验室诊断、传染源调查、自然疫源地监测、流行病学调查研究，都以检出特定的病原微生物或其相关物质为目的。
这类样本来源主要是人和宿主动物、媒介昆虫，也包括水、土壤、食品等样本供调查传染源。
1、病原微生物样本采集的一般注意事项1）针对性：不要求样品代表性，强调针对性，尽可能采集病原微生物含量最多的部位。
2）足量：应采用足够检测用的样本，否则可能会得到假阴性结果。
3）多样性：应采集各种可能作为污染源的食物和环境样本，以及各种可能含有病原体的临床样本。
4）及时性：取样后应尽快测定，以利于疾病控制和患者的治疗。
2、样本保存、包装、运送1）保存：为分离样本中病原细菌或病毒，应根据样本运送时间的长短及不同病原微生物对干燥、温度、营养、pH 值的耐受能力，选择合适的培养基和推荐保存温度。
分离培养细菌的样本：在运送培养基中运送并保存于合适的温度，确保目标细菌的存活并抑制其他微生物的过度生长。
除脑脊液、尿液和唾液，其他样本若不能在 24小时内处理，多数可存放在室温；若长期保存，除一些低温敏感细节处，应存放在4℃~8℃条件下。
分离病毒的样本：一般应放在保温容器（0℃~4℃）里，不可放置超过 2 天，尽早送到实验室进行病毒分离。
如无条件立即运送或不能立即分离病毒时，应将样本冻存保存。
若长期储存，最好置-70℃冻存。
检测抗原或抗体的样本：检测抗体的血清可在 4℃条件下保存约 1 周，最长 10 天，超过 1 周必须在-20℃条件下冷冻。
注意避免不必要的反复冻融。
运送过程中若无设备保证血清的冷冻状态，最好不要冷冻血清。
在室温存放血清虽不理想，但仍可用于检测抗体，甚至是存放数周的血清。
不要仅因为没有冷冻设备而将已采集的血清轻易弃去。
保证样品运送温度的方法：为维持4℃~8℃，运送盒中围绕第 2 层容器至少要填充 4个冰袋，可维持冷藏 2~3 天。
为保证-20℃条件，在外包装袋内用 2kg 干冰，但需确保二氧化碳能释放以防爆炸，这样可维持样本冷冻 1~2 天，为保证-70℃条件，可采用液氮来储存和运送。
检验标本的采集储存转运和处理制度
检验标本的采集储存转运和处理制度1.采集标本：(1)标本采集室与检验科室之间要有明确的分工和责任，采集人员必须接受专业培训，并持有相应的资格证书。
(2)采集人员应穿戴干净整洁的工作服，佩戴帽子、口罩和手套，以防止污染标本和感染疾病。
(3)标本采集前，采集人员应核对患者的个人信息，确保采集的标本与患者信息一致。
(4)标本采集应使用专用的采集器具，包括采血针、尿采集容器等，以减少污染和损伤标本的可能性。
(5)采集人员在标本采集时应注意采集的时间和量，及时记录并告知相关人员。
2.储存标本：(1)标本应储存在经过专门设计的贮存设施中，保持适宜的温度和湿度，以防止标本的腐坏和变质。
(2)不同类型的标本应分开储存，避免交叉污染和混淆。
(3)标本要进行全面的标识，包括患者信息、采集时间、采集者等重要信息，确保标本的可追溯性。
(4)对于特殊标本，如生物危险品等，要有专门的处理和贮存方案，并按照规定的程序进行储存，以确保工作人员和环境的安全。
3.转运标本：(1)标本应根据不同的要求进行分装和包装，以防止标本的泄漏和损坏。
(2)标本转运前应及时通知收件人，并按照规定的时间和方式进行转运。
(3)在标本转运过程中，要避免长时间的震动和高温，以保证标本的稳定性和准确性。
(4)转运过程中要保持标本的完整性，防止标本以外的数据和信息的泄漏。
4.处理标本：(1)标本到达检验科室后，应及时进行接收和登记，确保标本的准确性和完整性。
(2)标本处理前，应核对标本的相关信息，以确保操作的正确性。
(3)标本处理要按照相应的检验方法和程序进行，避免操作上的差错和污染。
(4)处理完标本后，要及时进行储存和保存，并根据需要留样，以备追溯和复查。
以上是一套较为完整的检验标本的采集储存转运和处理制度，它涵盖了从标本采集到结果处理的全过程，旨在确保检验结果的准确性和可靠性。
配合专业的人员培训和严格的质量管理体系，可以有效提高医学检验工作的质量和效率。
人感染H7N9禽流感病毒标本采集、运送及保存
100 A/chicken/Karachi/NARC-23/2003_H7N3_Pakistan A/quail/Aichi/1/2009_H7N6_Japan
87
99
A/duck/Hong_Kong/301/1978_H7N2_Hong_Kong
A/black_kite/Egypt/054/2004_H7N7_Egypt
时-70℃冻存。流感病毒在-20℃～-40℃时不稳 定，故长期保存应在-70℃温度以下，不要冻存 于-20℃，会降低流感病毒的检出率 ➢ 避免反复冻融，冰上一周也比冻融一次要好 ➢ 血清标本暂时存在可在4℃冰箱，长期保存于20℃冰箱。
标本包装和运输
➢ 根据《人感染H7N9禽流感疫情防控方案（第一 版）》规定，H7N9禽流感病毒实验室活动和样本 运输按照《人间传染的病原微生物名录》中高致 病性禽流感病毒进行管理
在无菌的带螺旋塑料管分装2-3ml采样液。最好储存在:– 20℃,4℃可放48–96h,室温1–2天。
➢ 采样拭子：使用头部为聚酯纤维的病毒采样拭子（鼻 及口咽型），铝或塑料做柄，不推荐棉拭子和木柄
采集对象
1.监测病例，同时具备以下4项条件的病例： （1）发热(腋下体温≥38℃)； （2）具有肺炎的影像学特征； （3）发病早期白细胞总数降低或正常,或淋巴细胞分类计 数减少； （4）不能从临床或实验室角度诊断为常见病原所致肺炎。
核酸检测流程
• 若检测结果为甲型通用阳性，H7N9阴性，送剩余 的2份呼吸道相关原始标本送当地市级流感网络实 验室进行其他流感病毒型别鉴定；
• 市级流感网络实验室若不能分型或H5阳性标本应 立即送省级疾控中心流感参比实验室；
• 若检测结果全部阴性，将剩余的2份呼吸道相关原 始标本送省级疾控中心进行SARS、新冠状等病原 体检测；
呼吸系统疾病患者标本采集运送接收储存流程
呼吸系统疾病患者标本采集运送接收储存流程呼吸系统疾病患者标本采集、运送、接收、储存流程是一个非常重要且复杂的过程。
这个过程的目的是确保采集到的标本是准确、可靠和安全的，以便进行合适的检测和分析。
下面将详细介绍呼吸系统疾病患者标本采集、运送、接收、储存流程。
一、标本采集1.准备工作：提前准备所需的采集工具和试剂，并确保其无菌和完好无损。
3.采集方法：根据具体的疾病类型和采集部位选择合适的采集方法，如吸痰、咳痰、喉拭子或鼻拭子等。
4.采集过程：对于吸痰和咳痰，要求患者在清晨醒来后进行采样，用无菌器具采集患者产生的痰液。
对于拭子采集，先用无菌盐水润湿拭子，然后轻轻擦拭部位，再将拭子放入标本容器中。
6.包装：将标本装入带有密封功能的袋子或容器中，并确保该容器有足够的密封性能，以避免标本的泄露。
7.文档记录：把每个患者的标本相关信息记录在标本记录表中，包括患者信息、采集日期、采集人和采集部位等。
二、标本运送1.物流选择：选择合适的物流方式进行标本运送，根据标本特性选择冷藏方式或室温运输。
对于高感染性和易变质的标本，应该使用冷藏方式运输。
2.包装：使用合适的包装材料，如冷链包装盒、吸收棉等，以保持标本在运输过程中的稳定性和完整性。
3.运输条件：确保标本在运输过程中的稳定和安全，包括适当的温度、湿度和震动控制。
4.文档记录：在标本包装上标明患者信息、采集日期和运送时间，并在运输时填写运输记录，包括运输公司、运输方式和运输时间等信息。
三、标本接收1.检验室接收：检验室接收到标本后，应及时进行登记和记录，并核对接收数据与实际标本数据是否一致。
3.样本拆封：若标本被密封在袋子或容器中，将其拆封，并按照相应方法从容器中取出样本。
4.样本分装：根据需要将标本进行分装，如将血液或尿液转移到适当的试剂管或容器中，并确保样本数量和质量符合要求。
5.样本登记：将拆封后的样本登记到实验室信息管理系统中，包括样本编号、接收日期、接收人等信息。
感染性标本的采样、储存、运输的具体操作方法
感染性标本的采样、储存、运输的具体操作方法所有的采样工作都必须根据疾病的特点，在严格做好防护的基础上进行。
常见传染病需采集的标本见表1（一)呼吸道标本的采集（如不明原因肺炎）1.采样器材拭子、压舌板、塑料瓶、采样杯或器皿、15ml 的离心管、移液管、注射器、1０ml真空取血管、冰壶、采样运输管、有生物安全标志或标有“感染性物质”的外包装容器（见图1);其他:酒精灯、剪刀、纸漏斗、酒精、碘酒、吸耳球、塑料袋、记号笔、标签、登记表等。
2．采集方法(1）鼻拭子(上呼吸道)：将棉签轻轻插入鼻道内鼻腭处，停留片刻后缓慢转动退出。
以同一拭子拭两侧鼻孔。
将棉签浸入４-5 mｌ采样液的管中，尾部弃去。
然后，塞紧或盖好管盖。
(2）咽拭子（上呼吸道):用棉签用力擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁(见图2），同样将棉签头浸入4-5 ml采样液的管中，尾部弃去,塞紧或盖好管盖。
注:亦可将鼻、咽拭子收集于同一采样管中，以便提高分离率,减少工作量。
(3）鼻洗液(上呼吸道）：患者取坐姿，头稍后仰，用移液管将5ml生理盐水注入一侧鼻孔，嘱患者同时发K音以关闭鼻腔。
然后让患者低头使生理盐水流出，用平皿或烧杯收集洗液。
重复此过程洗两侧鼻孔。
(4）鼻咽抽取物或抽取气管和支气管分泌物（下呼吸道)：用与负压泵相连的收集器从鼻咽部抽取粘液或从气管抽取气管和支气管分泌物。
先将收集器头部插入鼻腔或气管,接通负压,旋转收集器头部并缓慢退出。
收集抽取的粘液，并用采样液涮洗收集器３次。
近来国内有用小孩导尿管接在50 mｌ注射器上来替代收集器。
（5)漱口液：用１0 ml采样液漱口。
漱时让患者头部微后仰,发噢声，让洗液在咽部转动。
然后,用平皿或烧杯收集漱液。
注:取漱口液时，需预先了解患者是否对抗菌素有过敏史,如有，含漱液中不应含抗菌素。
(6)肺活检材料:肺活检组织在无菌条件下,用灭菌过的乳钵磨碎,用生理盐水配成20%悬液，2000rpm离心1０min，取上清加入上述提到的抗菌素。
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感染性标本的采样、储存、运输的具体操作方法所有的采样工作都必须根据疾病的特点，在严格做好防护的基础上进行。
常见传染病需采集的标本见表1
（一）呼吸道标本的采集（如不明原因肺炎）
1．采样器材
拭子、压舌板、塑料瓶、采样杯或器皿、15ml 的离心管、移液管、注射器、10ml真空取血管、冰壶、采样运输管、有生物安全标志或标有“感染性物质”的外包装容器（见图1）；其他：酒精灯、剪刀、纸漏斗、酒精、碘酒、吸耳球、塑料袋、记号笔、标签、登记表等。
2．采集方法
（1）鼻拭子（上呼吸道）：将棉签轻轻插入鼻道内鼻腭处，停留片刻后缓慢转动退出。
以同一拭子拭两侧鼻孔。
将棉签浸入4-5 ml采样液的管中，尾部弃去。
然后，塞紧或盖好管盖。
（2）咽拭子（上呼吸道）：用棉签用力擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁（见图2），同样将棉签头浸入4-5 ml采样液的管中，尾部弃去，塞紧或盖好管盖。
注：亦可将鼻、咽拭子收集于同一采样管中，以便提高分离率，减少工作量。
（3）鼻洗液（上呼吸道）：患者取坐姿，头稍后仰，用移液管将5ml生理盐水注入一侧鼻孔，嘱患者同时发K音以关闭鼻腔。
然后让患者低头使生理盐水流出，用平皿或烧杯收集洗液。
重复此过程洗两侧鼻孔。
（4）鼻咽抽取物或抽取气管和支气管分泌物（下呼吸道）：用与负压泵相连的收集器从鼻咽部抽取粘液或从气管抽取气管和支气管分泌物。
先将收集器头部插入鼻腔或气管，接通负压，旋转收集器头部并缓慢退出。
收集抽取的粘液，并用采样液涮洗收集器3次。
近来国内有用小孩导尿管接在50 ml注射器上来替代收集器。
（5）漱口液：用10 ml采样液漱口。
漱时让患者头部微后仰，发噢声，让洗液在咽部转动。
然后，用平皿或烧杯收集漱液。
注：取漱口液时，需预先了解患者是否对抗菌素有过敏史，如有，含漱液中不应含抗菌素。
（6）肺活检材料：肺活检组织在无菌条件下，用灭菌过的乳钵磨碎，用生理盐水配成20%悬液，2000rpm离心10min，取上清加入上述提到的抗菌素。
（7）血清：血液标本采集后应放入10ml真空管中，静止或4℃冰箱，待血清自然析出。
图1 生物安全标志图2 咽拭子采样图
（二）消化道标本的采集
1.检测细菌的采便:取自然排出的新鲜粪便,成形便采集约5g标本;水样便或典型的米泔水样便采集约5ml。
菌痢尽量挑取脓血部分，尽可能在急性期、抗生素使用前采集新鲜粪便。
保存及送样条件：所采标本立即接种于培养基；或将标本加入碱性蛋白胨水中，24小时内室温保存，立即送检（如霍乱、细菌性痢疾等）。
2检测病毒的采便：采集AFP麻痹出现后14天内采集，应采集应采集双份大便标本，两份标本采集时间至少间隔24小时；每份标本重量≥5克（约为大枣大小）。
放入AFP专用采便管内冰箱冷冻保存，7天内送检。
手足口、甲肝便采集后要立即放在无菌采编管内，4℃暂存，-20℃冷冻保存，在4℃下送检（如手足口病、AFP、甲肝等）。
3.呕吐物：用面试字条去少量呕吐物作为件材，放入自封塑料袋中并封好袋口或置于灭菌带盖瓶中，然后盖紧瓶盖，室温下立即送检，或置于冷藏箱中24小时内送检（如霍乱等）。
（三）脑脊液标本的采集
脑脊液：需要检测抗原时，在无菌条件下由腰椎穿刺，用无菌试管收集3～5ml，（作厌氧培养时标本应注入厌氧瓶内）；检测抗体时，一般于出现神经症状时采集，查IgM只需一份脑脊液，而查IgG则需收集两次。
操作最好在医院内由有经验的医生按腰椎穿刺术进行。
（四）血液标本的采集
作血液病原培养时，严格用无菌穿刺法采静脉血，一般采集3-5ml，移入无菌的有螺口的抗凝的容器或培养瓶中送检；检测抗体时，需要分离血。
3. 标本的包装
（1）标本必须放在大小适合的带螺旋盖内有橡胶圈的塑料管里，拧紧。
直接在塑料管上用油性记号笔写明样本的种类、采样时间、编号、姓名。
原始容器应该是防漏的，可盛容量不大于500ml。
（2）将密闭后的标本放入大小适合的塑料袋内密封；每袋装一份标本。
同一患者2份以上的密封标本，可以放在同一个塑料袋内再次做密封。
在原始容器与第二层包装之间应放置有吸附作用的材料。
并辅以第二层防漏包装。
（3）运输标本的第三层包装（外包装）必须有明确的标签，标明寄送人和接收人的详细联系方式、包装日期和运输日期等。
外包装一般为专用运输箱内（或疫苗冷藏包），放入冰排，然后以柔软物质填充，内衬具吸水和缓冲能力的材料。
若将进行病毒分离，可将密封好的装有标本的容器直接放入液氮运输罐内运输。
外包装必须有生物安全标识。
4．标本的保存与运送
按照样本的性质和检测需求，把样本放在合适的保存环境中。
如果是细菌样本一般常温保存。
如果是病毒或血清标本若不能在24小时内送达，则应尽快在－70 ℃以下保存。
无－70 ℃条件的需在－20 ℃冰箱短时间暂存，并尽快联系递送标本。
标本运送方式采取专人专车运送，主要用于近距离样品运送，地面运送标本时注意将装有标本的箱子紧紧固定在交通工具上，至少2人护送，车上还应备有吸水材料、消毒剂、手套、口罩、护目镜、密封防水的废弃物容器等防护用品，为避免路途颠簸引起标本溶血，可在运送前分离血清。
在国际、国家、商业的有关规定允许下，诊断标本也可空运，应注意规范包装。
5．标本的交接
样品采集后应与市疾控中心应急办负责样品接收人员取得联系进行样品交接，经双方验收确认后签字。
采集样品时应填写患者的相关信息，包括：姓名、性别、年龄、职业、家庭住址、样品名称、数量、保存方式等。