细胞培养常见问题的原因及对策
细胞培养污染拯救及预防方法
细胞培养污染拯救及预防方法概论污染是细胞培养的大敌。
预防和避免污染是细胞培养成功的关键之一。
一开始就要十分重视，防止污染，否则会前功尽弃，不仅浪费时间，而且浪费人力、物力，甚至造成无法弥补的损失。
(一)污染的类型细胞培养过程中的污染不仅仅指微生物，而且还包括所有混入培养环境中的、对细胞生存有害或造成细胞不纯的物质，包括生物和化学物质。
1、细菌污染细菌污染是实验室细胞培养中常见的污染，即使在细胞培养液中加入了抗菌素，也可能因为操作不慎而引起污染。
最常见的有革兰氏阳性菌，如枯草杆菌以及大肠杆菌、假单胞菌等革兰氏阴性菌，其中又以白色葡萄球菌较常见。
培养细胞受细菌污染后，会出现培养液变混浊，pH改变。
污染后细胞发生病理改变，胞内颗粒增多、增粗，最后变圆脱落死亡。
2、真菌污染真菌污染是细胞培养过程中最常见的一种，最常见的真菌有烟曲霉、黑曲菌、孔子霉、毛霉菌、白色念珠菌和酵母菌。
培养细胞受真菌污染后，可见培养液中漂浮着白色或浅黄色的小点，有的散在生长，培养液一般不发生混浊;倒置显微镜下可见丝状、管状或树枝状的菌丝纵横交错在细胞之间或培养基中，有的呈链状排列。
真菌污染后，细胞生长变慢，但最后由于营养耗尽及毒性作用而使细胞脱落死亡。
丝状菌污染3、支原体污染支原体是介于细菌与病毒之间能独立生活的最小微生物，最小直径0.2μm，一般过滤除菌无法去除它，光镜下难以看清它的形态结构。
开始不易发现，能在偏碱条件下生存，对青霉素有抗药性。
多吸附于细胞表面或散在于细胞之间。
培养细胞受支原体污染后，部分敏感细胞可见细胞生长增殖变慢，部分细胞变圆，从瓶壁脱落。
但多数细胞污染后无明显变化，或略有变化，若不及时处理，还会产生交叉污染。
阳性阴性支原体污染4、病毒污染组织细胞培养过程中，如果没有除去潜在的病毒，就会产生病毒污染。
目前，从原代猴肾细胞的培养中已发现不少于20种血清性病毒。
尽管病毒污染的细胞不影响原代培养，但生产疫苗是不安全的。
细胞培养常见问题的原因及对策
细胞培养常见问题的原因及对策细胞培养中的注意事项1 冷冻管应如何解冻？取出冷冻管后，须立即放入37 C水槽中快速解冻，轻摇冷冻管使其在1分钟内全部融化，并注意水面不可超过冷冻管盖沿，否则易发生污染情形。
另冷冻管由液氮桶中取出解冻时，必须注意安全，预防冷冻管之爆裂。
2 细胞冷冻管解冻培养时，是否应马上去除DMSO？除少数特别注明对DMSO敏感之细胞外，绝大部分细胞株（包括悬浮性细胞），在解冻之后，应直接放入含有10-15ml新鲜培养基之培养角瓶中，待隔天再置换新鲜培养基以去除DMSO 即可，如此可避免大部分解冻后细胞无法生长或贴附之问题。
3 可否使用与原先培养条件不同之培养基？不能。
每一细胞株均有其特定使用且已适应之细胞培养基，若骤然使用和原先提供之培养条件不同之培养基，细胞大都无法立即适应，造成细胞无法存活。
4 可否使用与原先培养条件不同之血清种类？不能。
血清是细胞培养上一个极为重要的营养来源，所以血清的种类和品质对于细胞的生长会产生极大的影响。
来自不同物种的血清，在一些物质或分子的量或内容物上都有所不同，血清使用错误常会造成细胞无法存活。
5 何谓FBS, FCS, CS, HS ?FBS (fetal bovine serum) 和FCS (fetal calf serum) 是相同的意思，两者都是指胎牛血清，FCS乃错误的使用字眼，请不要再使用。
CS (calf serum) 则是指小牛血清。
HS (horseserum) 则是指马血清。
6 培养细胞时应使用5 %或10% CO2？或根本没有影响？一般培养基中大都使用HCO3-/CO32-/H+ 作为pH 的缓冲系统，而培养基中NaHCO3的含量将决定细胞培养时应使用的CO2浓度。
当培养基中NaHCO3 含量为每公升3.7 g时，细胞培养时应使用10% CO2；当培养基中NaHCO3为每公升1.5 g时，则应使用5% CO2培养细胞。
7 何时须更换培养基？视细胞生长密度而定，或遵照细胞株基本数据上之更换时间，按时更换培养基即可。
细胞培养中的污染问题与对策
细胞培养中的污染问题与对策细胞培养是一种常见的实验室技术，用于研究细胞的生长、分化和功能。
然而，在进行细胞培养的过程中，污染是一个不可忽视的问题。
污染源可以来自外部环境、工作环境或实验操作不当。
对于细胞培养的研究结果的准确性和有效性而言，解决污染问题的对策至关重要。
首先，污染问题可能来自实验室环境以及操作者自身。
实验室环境中存在的微生物污染可能会导致细胞培养的受损。
因此，保持实验室环境的清洁是非常重要的。
定期进行实验室卫生和表面消毒是降低微生物污染的有效措施。
此外，操作者在进行细胞培养时需要严格遵守无菌操作规程，以减少自身的污染对细胞的影响。
操作者需要穿戴合适的实验室清洁工作服、手套和口罩，并在操作过程中注意避免直接接触细胞培养物。
其次，细胞培养中使用的培养基和试剂也是潜在的污染源。
为了避免污染，选择高纯度的培养基和试剂是至关重要的。
购买来自可靠供应商的培养基和试剂，严格遵循使用说明书的指导，可以减少产品本身的污染。
此外，在实验进行过程中，避免将培养基和试剂暴露在不洁的环境中，并妥善保存这些试剂，以防止其受到污染。
另外，细胞培养过程中的传代也是容易导致污染的环节。
细胞传代是保持细胞生长的关键步骤，但传代时的细胞污染可能会导致细胞功能和表型的变化。
为了避免细胞污染，应该定期对细胞进行鉴定和检测，特别是使用发展中的分子标识技术。
这些技术可以帮助确定细胞是否保持纯种，以及是否受到污染。
此外，定期保存冻存品库并且用来传代的细胞不要超过特定的传代次数，以保持细胞的良好生长状态。
另一个需要关注的污染问题是培养器具的污染。
培养器具包括培养皿、培养瓶、移液器等。
这些器具在使用之前需要经过高温高压灭菌处理，以确保其无菌状态。
在使用过程中，需要注意避免直接接触器具内外部分，以减少污染的可能性。
同时，定期更换使用的培养器具也是非常重要的，以防止积累污染物。
最后，除了以上提到的对策，培养载体选择也可以在一定程度上减少细胞培养时的污染问题。
细胞培养中的细胞生长受阻原因分析
细胞培养中的细胞生长受阻原因分析细胞培养是一项重要的生物学实验技术，通过在体外模拟和控制细胞的生长环境，可以对细胞的生理和病理过程做出研究。
然而，经常会遇到细胞生长受阻的情况，这会给实验结果带来负面影响。
本文将对细胞培养中细胞生长受阻的原因进行分析。
1. 细胞因子不足细胞因子是细胞生长和分化所必需的信号分子，它们可以刺激细胞增殖、分化和迁移等生理过程。
当细胞培养中细胞因子的浓度不足时，就会导致细胞生长受阻。
细胞培养基中通常会添加生长因子和血清等成分来提供细胞所需的因子，如果这些成分的浓度不够，就会导致细胞无法正常生长。
此外，细胞因子的失活、降解和结合等因素也可能导致细胞因子不足，从而影响细胞的生长。
2. 细胞培养基成分不合适细胞培养基的成分对细胞的生长起着重要作用。
培养基中的营养物质、无机盐和氨基酸等对细胞提供生长所需的能量和原料。
如果细胞培养基中这些成分的浓度或比例不合适，就会影响细胞的生长。
例如，缺乏特定的氨基酸或无机盐，细胞无法正常合成蛋白质或维持正常的细胞电位，从而导致生长受阻。
3. 细胞环境不适宜细胞培养的环境包括温度、湿度、气体组成等因素，这些因素对细胞的生长有着重要影响。
细胞培养一般需要保持在37°C的温度下，过高或过低的温度都会对细胞生长产生不利影响。
湿度的控制也很重要，如果湿度不适宜，细胞会失去活力。
此外，气体组成也会影响细胞的生长，例如，细胞需要适当的氧气浓度来进行代谢，过高或过低的氧气浓度都会导致细胞生长受阻。
4. 细胞污染细胞培养过程中，可能会出现细菌、真菌和病毒等污染物的存在。
这些污染物会竞争细胞培养基中的营养物质和生长空间，导致细胞生长受阻。
此外，某些污染物也可能释放毒性物质，对细胞产生直接伤害。
因此，在细胞培养过程中，严格的无菌操作和培养基消毒是细胞生长顺利进行的关键。
5. 细胞凋亡和细胞周期调控失衡细胞生长受阻的另一个重要原因是细胞凋亡和细胞周期调控失衡。
细胞培养中常见的问题
细胞培养中常见的问题2006-11-23 15:53细胞中的颗粒到底是怎么回事？我的细胞总有颗粒，开始是细胞中有，后来细胞之间也好像有许多颗粒。
好像是细胞碎片一样。
是什么东西啊？是支原体污染吗？这可是我刚买回来的细胞啊!我们实验室也有这种情况，是不是黑的小碎片，有人说是细胞代谢产物，后来拿到高倍镜下看还会动，就怀疑是污染了，也想问问大家到底是什么是黑色的小碎片。
我没注意到它会动，只是觉得不像是活的微生物。
我觉得是由于某种污染或外界因素导致的细胞状态变差，裂解出的东西。
但是，是什么东西不清楚。
的确很常见在以前帖子见到说是“黑焦虫”。
长时间培养的很容易出现，我根据自己的经验估计是一种污染，因为随着黑点增多，本来生长旺盛的细胞逐渐停滞甚至死亡。
而且我后来原代培养的几批细胞并没有发现，我怀疑有好多细胞系本身就是污染的。
不过增加换液次数的情况下，好象一般不太娇气的细胞生长不是很受影响。
以前听很有经验的老师说黑焦虫是国产血清的问题，可以有条件换进口血清试试，或者离心一下也可能能解决问题。
那么所谓的“黑焦虫”到底是什么东西啊？有谁知道？我培养的细胞也出现过此中问题，放到高倍镜下看时有东西在动，但培养液不混浊，估计不是细菌污染，可能是血清问题，是支原体污染。
我培养的细胞也出现过这样的问题，我个人认为是一种支原体污染。
国产血清是罪魁祸首，因为只要将细胞饥饿一下，不超过24小时，这种东西就会疯长我培养的细胞也有出现这中情况。
但是并不影响细胞生长。
应该不是支原体污染最近，我复苏细胞细胞的时候也发现过这样的东西，尽管我用的是GIBCO的FBS，后来，每天换液之前洗几遍后，就慢慢变少，现在没了细胞培养的细菌污染我们新建的细胞室。
每周都会做清洁，用0。
2%新洁尔灭消毒，照紫外。
实验前也会照至少30分钟。
培养基中加青霉素，链霉素。
可是培养细胞时还是常有细菌污染，有时甚至分析不出原因。
用培养瓶还好一点，用多孔板或平皿就更凄惨。
细胞培养过程中常见的变异问题分析与解决方法
细胞培养过程中常见的变异问题分析与解决方法细胞培养作为生物学研究中重要的实验手段之一，被广泛应用于细胞生物学、生物医学研究和药物研发等领域。
然而，在细胞培养过程中，常常会遇到各种变异问题，如细胞形态改变、生长速度减慢以及细胞死亡等等。
本文旨在分析这些常见的变异问题，并提供相应的解决方法。
一、细胞形态改变细胞形态的改变是细胞培养过程中较为常见的变异问题之一。
通常，细胞形态的异常变化可能包括细胞变大或变小、细胞伸长或收缩等。
这些变异往往会导致细胞功能和代谢活性的改变，从而影响实验结果的准确性。
解决方法：1. 检查培养条件：首先，应对培养基质及培养液的pH值、温度、含氧量等因素进行仔细的调控与监测，以确保细胞处于适宜的生长状态。
2. 检测浓度：根据细胞系的特性，调整培养基中添加物的浓度，如血清、酶消化液等，以维持适当的细胞形态。
3. 鉴别混杂：定期进行细胞株的鉴别，避免因细胞混杂导致形态异常。
二、生长速度减慢细胞在培养过程中，如果出现生长速度减慢的情况，可能会严重影响实验进展与结果的获取。
细胞生长速度的减慢可能是由多种因素引起的，如细胞老化、细胞密度过高、培养液中营养物质不足等。
解决方法：1. 细胞分离：及时将细胞进行适当的分离，避免细胞在培养中过度堆积，从而影响生长速度。
2. 营养补充：调整培养基中的营养物质浓度，确保细胞处于良好的生长环境中，并加强对细胞的营养补充。
3. 细胞凋亡检测：定期检测和评估细胞凋亡的情况，如有需要，可采取相应的干预措施，以保证细胞群体的健康状态。
三、细胞死亡细胞死亡是细胞培养过程中常见的变异问题之一，其发生率可能由多种因素决定，如感染、细胞凋亡、培养条件不良等。
细胞死亡不仅会影响细胞培养的连续性，也会对实验结果的可重复性产生不良影响。
解决方法：1. 检测感染：对培养基进行微生物污染检测，避免细菌、真菌等微生物的感染，导致细胞死亡。
2. 调整培养条件：对培养条件进行优化，如温度、培养基组分等，保证细胞处于最适宜的生长状态。
细胞实验中常见问题
细胞实验中常见问题
一、细胞培养问题
1.1 细胞生长缓慢或停止生长：可能原因是营养物质不足、血清质量不佳、培养箱温度不稳定或CO2浓度不正确等。
1.2 细胞形态异常：可能是由于培养基问题、营养不足、感染或污染等原因。
1.3 细胞结块：可能是由于细胞密度过大或血清用量过多等原因。
二、细胞活性检测问题
2.1 实验结果不一致或不准确：可能是由于试剂问题、操作误差或实验条件不稳定等原因。
2.2 假阳性或假阴性结果：可能是由于抗体交叉反应、实验操作不当或细胞状态不佳等原因。
三、细胞转染问题
3.1 转染效率低：可能是由于转染方法不正确、转染试剂选择不当或细胞状态不佳等原因。
3.2 细胞毒性：可能是由于转染试剂用量过多或转染条件不适应等原因。
四、细胞计数与消化问题
4.1 细胞黏附性强，不易消化：可能是由于细胞类型或状态不适应于消化方法等原因
4.2 细胞碎片多，影响计数：可能是由于消化过度或消化不充分等原因。
五、细胞标记与染色问题
5.1 染色不均匀或不显色：可能是由于染色时间过短或过长、抗体浓度不当或细胞状态不佳等原因。
5.2 非特异性染色问题：可能是由于抗体交叉反应或抗体纯度不佳等原因。
六、细胞分型与鉴定问题
6.1 分型结果不准确：可能是由于抗体选择不当、操作误差或细胞状态不稳定等原因。
6.2 鉴别困难：可能是由于细胞分化程度高、抗原表达量低或鉴别方法不敏感等原因。
七、细胞感染与病毒问题
7.1 细菌污染：可能是由于培养基或细胞株本身带菌等原因。
7.2 支原体污染：可能是由于培养环境不洁净、操作过程中污染等原因。
组培中易出现的问题及解决措施
组培中易出现的问题及解决措施组织细胞培养是一项非常重要的生物技术，它可以用来从单个细胞中培养出成千上万个细胞。
组织细胞培养的应用非常广泛，从基础生物学到医学应用都有着重要的作用。
组织细胞培养的成功需要正确的实验计划、培养条件和技术操作等多个方面因素的支持。
尽管组织细胞培养已经有着相对成熟的技术和应用，但是在实验过程中还是经常会出现一些问题，这些问题可能会导致实验出现失败，影响实验的准确性和可靠性。
因此，在组织细胞培养中，我们需要特别注意常见问题，并尝试寻找解决方案。
一、细胞培养过程中细胞死亡在组织细胞培养过程中，细胞死亡是一个非常常见的问题。
细胞死亡可能是由于培养环境不适宜、细胞器受损等多种原因引起的。
首先，我们需要确认细胞死亡的原因。
若是由于细胞培养环境不适宜所引起的，则我们可以通过调整培养条件来解决问题。
例如，我们可以改变培养基配方、调整 pH 值或温度来提高培养环境的适宜性。
此外，如果细胞死亡是由于受到刺激性化合物的作用或者细胞器损伤所致，我们可以考虑加入一些细胞保护剂或体外作用因子，保护细胞的生命活力。
如果细胞死亡造成严重损失，我们需要重新设计和实施实验。
二、细胞表型不稳定在细胞培养中，细胞表型不稳定也是一个常见问题。
细胞表型不稳定有时候可能由于细胞培养环境的改变，例如培养温度或半衰期等变化，也可能由于细胞的遗传学变异。
为了解决这个问题，我们需要尽可能保持细胞培养环境的稳定性并且进行维护，避免温度、血清物质浓度和酸碱度等变化。
此外，通过使用抗生素、氢化叶酸和选择性试剂等方法可以限制细胞遗传学变异的发生。
三、细菌侵染在细胞培养中，细菌侵染也是一个常见的问题，尤其在长期培养和细胞密度过高的情况下。
细菌侵染可能会损害细胞生长、侵入细胞免疫系统，甚至造成病毒和真菌感染。
为了解决这个问题，我们需要加强无菌技术操作，避免细菌的外源性污染，并及时采取细胞毒性药物或细菌毒素的处理措施来杀灭细菌。
四、细胞品种污染细胞品种污染也是组织细胞培养中经常遇到的问题之一。
细胞培养失败常见原因及对策
表：细胞培养失败常见原因及对策
出现问题可能原因解决办法
培养基中pH 错误的CO2浓度调节C02浓度
快速改变[NaHC02]2-3.7g/L,[C02]5-10%
培养瓶盖子过紧稍放松盖子
缓冲液量不足加HEPES至最终浓度为10-20mM
细菌、酵母和丢弃培养物、避免污染
真菌污染
细胞不贴壁过量的胰酶消化减少胰酶浓度或消化时间
培养基中无粘附因子加大血清浓度或增加粘附因子
细菌、霉菌、支原体污染检查并去除污染或丢弃
物理、化学污染去除相关污染
细胞生长速度降低改变培养基或血清比较培养基中成分,新旧血清比较
缺乏促进生长成分传代培养,加新鲜培养基和
如谷氨酰胺或生长因子生长促进成分
培养基储存不当保存在2-8℃，
血清培养基应尽量避光
初次细胞接种量少增加细胞接种数量
细胞衰老取得新细胞株
低度细菌和真菌污染无抗生素的培养基,如被污染，
则丢弃
支原体污染隔离培养,如污染,丢弃
细胞死亡无C02 检测C02
温度波动检验温度
抗生素浓度超量有毒性少量使用抗生素
细胞复苏受损重新复苏
渗透压错误检测培养基渗透压
产生毒性代谢物去除并更换培养基
细胞成团悬浮Ca，Mg离子存在用无Ca2+，Mg2离子的平衡
盐溶液清洗细胞
支原体污染隔离培养,检验支原体污
染,
如已经污染,则丢弃
胰酶过量,细胞DNA释放用DNase处理细胞
细胞形态、生长
状况改变细胞间污染更换细胞。
细胞培养常见细菌污染原因
细胞培养常见细菌污染原因细胞培养是生物学研究中常用的实验技术，用于研究细胞的生理、生化和分子生物学特性。
然而，细胞培养过程中常常会受到细菌污染的影响。
细菌污染会对细胞培养的可靠性和准确性产生不良影响，因此控制细菌污染是细胞培养实验中至关重要的一步。
细胞培养常见的细菌污染原因主要有以下几个方面：1. 操作不当：细胞培养的整个过程都需要严格的无菌操作，而操作不当是导致细菌污染的主要原因之一。
无菌操作包括更换培养基、移液操作、接种细胞等，如果在操作过程中没有严格遵守消毒和无菌操作规范，就会导致细菌的进入和繁殖。
2. 试剂和培养物污染：试剂和培养物是细胞培养中常用的重要物质，如果试剂和培养物本身存在细菌污染，那么在培养过程中就会引入细菌。
试剂如培养基、酶、胎牛血清等的批次变化或不良质量，都可能导致细菌污染。
此外，非无菌的操作也会导致试剂和培养物的污染。
3. 实验室环境污染：实验室环境中存在微生物的存在，如桌面、空气、实验器皿等都可能存在细菌。
如果实验室的环境清洁度不够高，容易造成细菌污染。
此外，实验器皿如培养皿、离心管等的洗涤和保存也需要保证无菌操作。
4. 人员因素：人员的操作能力和操作习惯也会影响到细菌污染的发生。
操作人员应该保持良好的个人卫生习惯，定期对手套、实验服等进行更换和清洗。
如果操作人员不注意操作细节，如不合理的移液操作、使用不干净的仪器等，都可能导致细菌的污染。
5. 培养器具污染：培养器具如试管、离心管、细胞培养板等在使用之前需要经过高温和化学消毒处理，以杀灭其中潜在存在的细菌。
然而，如果器具处理不彻底或者保存环境不好，就容易导致细菌的残留或再次感染。
细胞培养中细菌污染的危害是非常严重的。
首先，细菌污染会干扰细胞培养体系的稳定，导致无法准确观察和研究细胞的生理和生化特性。
其次，细菌代谢产物和细胞培养物中含有的抗生素等成分会干扰细胞培养的正常生长和发育，降低实验结果的可靠性和准确性。
此外，由于细菌的存在，还容易导致细胞死亡和污染的蔓延，对细胞培养的连续性和稳定性造成不可逆的伤害。
大规模动物细胞培养问题及对策
细胞培养技术及常见问题
六、细胞的冻存和复苏 1、冻存 • 冻存液 7份培养液、2份FBS、1份DMSO或甘 油。 • 细胞密度 （1~10）×106个/ml • 步骤 4℃30分钟→-80 ℃24小时→液氮 • 冻存细胞应选取处于对数生长期的细胞。 2、复苏 • 液氮中取出的细胞应马上放入37 ℃水浴中，快 速摇晃融化。 • 0.4%台盼蓝染色，检测细胞存活率。
次 ↓ 加0.8ml无血清培液至Lipofectin-DNA混合物中，混 匀，滴加在细胞上，轻轻混匀。 ↓
37℃，5%CO2培养箱内培养5~24小时 ↓ 弃去转染液，加入2ml完全培养基，继续培养 ↓ 转染48~72小时，测定细胞瞬时表达情况，或于 转染48小时后更换选择培养基，进行筛选，获得 稳转细胞
4、灌流法→血管内皮细胞、成年动物心肌细胞 培养 • 胰酶、胶原酶可以单独或混合使用 5、密度梯度离心法→淋巴细胞、单核细胞培养 • Ficoll • Percoll 可以得到较纯的单核细胞 • 分离液成分为多糖复合物，可能与细胞表面受 体结合，影响后续实验结果。
※如何收集细胞进行实验检测
1、应该选用处于对数生长期，状态良好的细胞 用于实验。 2、细胞应处于70%左右融合，形态饱满，折光性 好。提前24小时换无血清培养基，避免血清 干扰，控制细胞生长速度。 3、选择适当的分离液，避免所分离的细胞表面 受体和其他标记分子被遮盖。 4、酚红有类似雌激素作用，为避免类固醇反应， 某些检测使用的细胞要用不加酚红的培养基。
2、污染的排除 • 及时高压灭菌污染的细胞，然后丢弃。（首选） • 对于污染较轻，且来源困难的高价值细胞
（1）用无抗培养基传代细胞，接种于多孔板中 （2）将浓度梯度稀释后的抗生素加入孔内，例如，两性 霉素B推荐下列浓度：0.25、0.5、1.0、2.0、4.0、 8.0mg/ml。 （3）每天观察细胞毒性指标，如脱落、空泡、变圆等。 （4）确定抗生素毒性水平后，使用低于毒性浓度2~3倍 浓度的抗生素培养液培养细胞2~3代。 （5）在无抗培养基中传代一次。 （6）重复步骤4 （7）在无抗培养基中培养4~6代，确定污染已被消除。
小鼠主动脉平滑肌细胞原代培养常见问题及处理对策
狭 窄等心血管疾病的核心病理变 化， 以Ｖ Ｓ ＭＣ 为 实 验 对 象 ， 研 究调控 Ｖ Ｓ ＭＣ增 殖 及 迁 移 的 信 号 转 导 机 制 ， 以及寻 找 Ａ Ｓ和 Ｐ Ｃ Ｉ 术 后 再 狭 窄 的分 子 治 疗 靶 点 是 目前 研 究 的重 点［ １ ］ 。因此 ， 提高 Ｖ Ｓ ＭＣ培 养 成 功 率 ， 增强细胞生物 学活性 ， 保 证 细 胞 质 量 是 进 行 分 子 生 物 学 研 究 的 重 要 基 础 。 在 利 用 组 织 块 贴 壁 法 培 养 小 鼠 主 动 脉 ＶＳ ＭＣ过 程 中 ， 作者通 过实践和摸 索， 对 Ｖ Ｓ ＭＣ 原 代 培 养过 程 中 常 见 问 题 进 行 了 分 析 ， 提 出了解决方 法 ， 现 综
细胞 爬 满 瓶 底 还 是 选 择 进 行 传 代 是 大 多 数 初 次 原 代 培 养 者 面
临 的一 个 问题 。笔 者 尝 试 过 继 续 观 察 等 待 细 胞 爬 面 瓶 底 。 发 现 原来 细胞 生 长 密 集 的地 方 ， 细胞 已经融合成 一 片， 细 胞 形 态 不
规则 ， 部 分 细 胞 已 经 老 化 。经 胰 酶 消 化 后 细 胞 抱 成 一 团 ， 很 难
过 程 中要 注 意无 菌操 作 ， 器具不 能交叉使 用 ， 所 使 用 的 培 养 基 和 平 衡 盐 溶 液应 含 １％青 霉 素 、 链 霉素［ ２ ］ 。
述于下 。 Leabharlann 孔内的组 织块 上， 迫使组 织块贴 壁。在原 代培养 前 ３天 ， 切勿
轻 易 挪 动 培养 瓶 ／ 板， 因为 培 养 液 的晃 动 容 易 导 致 组 织 块 松 动 、 漂 浮 。在 原代 培 养 第 ４ 、 ５天 可 首 次 换 液 ， 吸 取 废 液 和加 入 液 体 时 动 作要 缓 慢 ， 避 免 将 已贴 壁组 织块 从 壁 上 脱 落 下 来 ［ ５ ］ 。
细胞培养过程中可能出现的问题及其解决方法
细胞培养过程中的常见问题及其解决方法一、培养液pH 值变化太快可能原因：1、CO2 张力不对；2、培养瓶盖拧得太紧；3、NaHCO3 缓冲系统缓冲力不足；4、培养液中盐浓度不正确；5、细菌、酵母或真菌污染。
解决方法：1、（1）按培养液中NaHCO3 浓度增加或减少培养箱内CO2 浓度，2.0g/L 到3.7g/L 浓度NaHCO3 对应CO2 浓度为5％到10％。
（2）改用不依赖CO2 培养液。
2、松开瓶盖1/4 圈。
3、加HEPES 缓冲液至10 到25mM 终浓度。
4、在CO2 培养环境中改用基于Earle′s 盐配制的培养液，在大气培养环境中培养改用Hanks 盐配制的培养液。
5、丢弃培养物或用抗生素除菌。
二、培养液出现沉淀，但pH值不变解决方法：1、用洗涤剂清洗后残留磷酸盐将培养基成分沉淀下来。
冰冻保存培养液。
2、用去离子水反复冲洗玻璃器皿，然后除菌。
3、将培养液加热到37℃，摇动使其溶解如沉淀仍然存在，丢弃培养液。
三、培养液出现沉淀，同时pH 发生变化原因：细菌或真菌污染解决方法：丢弃培养物。
或用抗生素除菌。
四、培养细胞不贴壁原因：1、胰蛋白酶消化过度；2、支原体污染；3、培养液中无贴壁因子。
解决方法：1、缩短胰蛋白酶消化时间或降低胰蛋白酶浓度。
2、分离培养物，检测支原体。
清洁支架和培养箱。
如发现支原体污染，丢弃培物。
五、悬浮细胞成簇原因：1、培养液中含钙、镁离子；2、支原体污染；3、蛋白酶过度消化使得细胞裂解释放DNA。
解决方法：1、用无钙镁平衡盐溶液洗涤细胞，轻轻吹吸细胞获得单细胞悬液。
2、分离培养物，检测支原体。
如发现支原体污染，丢弃培养物。
3、用DNase I 处理细胞。
六、培养细胞死亡原因：1、培养箱内无CO2；2、培养箱内温度波动太大；3、细胞冻存或复苏过程中损伤；4、培养液渗透压不正确；5、培养液种有毒代谢产物堆积。
解决方法：1、检测培养箱内CO2；2、检查培养箱内温度；3、取新的保存细胞种；4、检测培养液渗透压，注意：大多数哺乳动物细胞能耐受渗透压为260 – 350 mOsm/kg；5、加入额外试剂如HEPES或药物都有可能影响培养液渗透压；6、换入新鲜培养液。
骨髓瘤细胞SP20 培养过程中遇到的问题及对策
骨髓瘤细胞SP2/0 培养过程中遇到的问题及对策
1，细胞长的慢或细胞死亡
正常生长情况下，细胞一天传代一次，生长越好，贴壁越多
对策：①培养基配方不对；②接种密度太低，低于10的4次方；③污染了支原体或者其他不明细菌，支原体的现状是出现小黑点；细菌污染是浑浊；霉菌污染是出现白色肉眼可见菌落；不明细菌污染出现砂状平铺背景，视野发暗。
④细胞瓶刷洗不干净
2，细胞形态异常
正常生长情况下，细胞浑圆，透亮，成对数生长，生长越好，贴壁多，悬浮少
对策：①培养基配方不对；②接种密度太低，低于10的4次方；③污染了支原体或者其他不明细菌，支原体的现状是出现小黑点；细菌污染是浑浊；霉菌污染是出现白色肉眼可见菌落；不明细菌污染出现砂状平铺背景，视野发暗。
④细胞瓶刷洗不干净。
细胞培养过程中氨含量增高的原因
标题：细胞培养过程中氨含量增高的原因一、概述在细胞培养过程中，氨含量的增高可能导致细胞生长受到影响甚至细胞逝去，因此了解氨含量增高的原因对于细胞培养的研究和应用具有重要意义。
本文将分析细胞培养过程中氨含量增高的原因，以期为相关领域的研究提供参考。
二、培养基中氨含量增高的原因1. 细胞代谢产生在细胞培养过程中，细胞会进行代谢活动，产生氨作为代谢产物。
细胞的代谢活动受到许多因素的影响，如细胞种类、培养条件等，这些因素均可能影响细胞产生氨的量。
2. 培养基成分培养基中含有氨基酸、蛋白质或其它氨源，这些物质在细胞培养的过程中会分解产生氨，从而导致培养基中氨含量增高。
3. 细胞数量增多在细胞培养过程中，细胞会进行增殖，随着细胞数量的增多，细胞所产生的氨也会随之增加，因此细胞数量的增多是导致培养基中氨含量增高的一个重要原因。
4. 培养条件培养条件包括温度、pH值、氧气供应等因素，这些因素对细胞代谢活动产生影响，进而影响细胞产生的氨量。
温度过高或过低、pH值偏离生理范围、氧气供应不足等都可能导致细胞产生过多的氨。
5. 氨的外源污染在细胞培养过程中，培养器具、试剂或培养环境中可能存在外源氨的污染，这些外源氨会导致培养基中氨含量增高。
6. 细胞逝去释放氨在细胞培养过程中，细胞逝去释放的氨也是导致培养基中氨含量增高的一个重要原因。
细胞逝去释放氨的量受到许多因素的影响，如细胞健康状态、培养条件等。
三、影响氨含量增高的因素1. 细胞类型不同类型的细胞在培养过程中产生氨的速率和量可能不同，这与细胞的代谢途径、代谢产物和酶活性等有关。
2. 培养条件温度、pH值、氧气供应等培养条件会直接影响细胞的代谢活动和氨的产生量，因此培养条件是影响氨含量增高的重要因素。
3. 细胞密度细胞密度的增加会导致培养基中氨含量的增加，因此细胞密度也是影响氨含量增高的一个重要因素。
4. 氨的新陈代谢一些细胞对氨的新陈代谢能力较差，会导致氨在培养基中积累，进而导致氨含量增高。
细胞培养污染问题及解决方法
细胞培养污染问题及解决方法1、细菌：细菌在普通倒置显微镜下为黑色细沙状，根据感染细菌的不同，可有不同的外形，培养液一般会浑浊变黄，对细胞生长影响明显。
仔细检查一下器皿的灭菌情况，是否在高压灭菌时放气时间足够，压力足够！尤其是和储存培养液接触的移液管等物品，连续两次污染的话有可能造成储存液污染，一定要注意！下次使用前检查一下培养液是否存在浑浊的现象！可在培养液中加相应的抗生素处理。
2、霉菌：培养液是清亮的，倒置显微镜下无杂质，37度孵箱培养2-3天，仍清亮，但出现絮状杂质，镜下可见呈细丝状的团状漂浮物，可看到明显的菌丝，细胞仍可生长，但时间长之后，细胞的活力状态变差。
用硫酸铜溶液擦拭CO2孵箱内，再把水盘里也加上饱和量的硫酸铜。
或者在培养箱的托盘加入饱和的消毒磷酸氢二钠高盐液体,可以防止霉菌污染。
CO2孵箱被霉菌污染后，可把所有细胞暂时转移，采用过氧乙酸擦洗孵箱（包括隔板，箱壁）。
并把过氧乙酸放置在孵箱内一个小时，使其蒸汽弥漫。
待过氧乙酸的气味消散后，再移入细胞。
孵箱应定期清洁（2月左右），尤其在多雨的季节。
其它培养箱清洗方法是：用84液擦洗－清水擦洗－75%酒精擦洗－紫外灯照。
预防霉菌污染，可在培养基里加3u/ml的两性霉素或制霉菌素或放线菌素D或双抗；但细胞一旦污染，很难挽救，制霉菌素或放线菌素D或双抗都于事无补，建议舍弃该污染细胞。
将环境彻底消毒，如果所有细胞都污染，可能是系统污染，检查一下培养基和器材，如果只是个别污染，可能是操作问题，就要注意操作。
3、支原体：黑色的，多为多形，培养液一般会浑浊，支原体感染，国内血清很多都没有做支原体阴性检测，而支原体是牛血清中最常见的微生物之一。
而且它不能用过滤的办法除去。
支原体感染细胞以后，细胞病变不很明显，只是慢慢死去。
用泰乐菌素，兽用支原体病的药，但可用于细胞培养，无任何不良反应。
使用时用50ug/ml Tylosin培养液培养6天或连续传两代即可清除支原体污染。
细胞培养板的选择和使用问题与解决方法-3
细胞培养板的选择和使用问题与解决方法-3问：看到很多讨论说 96孔四周不做数据处理，那么还是要加细胞或培养基吗？如果我把四周设为空白孔（不加细胞）作为阴性对照，可以用来调零或计算抑制率不？答：可用只加培养基组作为正常对照组，来计算细胞生存率=给药组MTT/正常组MTT×100%，余空可不加任何物质。
MTT不同与做 ELISA需要设立空白对照、阴性对照和阳性对照，这其中的空白对照一般用P BS，目的是去除板底效应。
实际上，对于96孔板的细胞培养可以采取一个方法来改变出现误差的情况，就是将你的分组打乱，不要让你同一组的细胞集中排在一个区域，尽量打乱，就可以了首先，分析原因，即必须知道在96孔板四周做数据处理会有什么影响。
因为96孔板的密封性比较良好，也就是说培养箱内空气中的O2是透过板四周很小的空隙进入培养板的，细胞代谢产生的CO2也是通过四周空隙从板内排出来的。
在板内外气体交换时，37度条件下，板内的水汽也被大量带出板外。
这样，就会造成96孔四周孔内的体积减少，如果细心一点，就会发现外外周孔内培养基的体积明显小于内部的体积。
因此，如果最外一周有细胞进行培养，则会因培养基成分的浓度偏高而对细胞有影响，同时也会因为体积变化在做加入药物干预实验时，药物浓度偏高而对测定结果有影响。
因此，在具体操作时，可以采用以下对策：知道原因，我们可以跟据实验情况选择PBS或D－Hanks溶液，因为外周加入这种成本低廉的溶液，一方面可以减少内部各孔中细胞培养液中水份的损失，另一方面，可以做为分析染菌等突发事故的原因，进行排查，找到染菌源头。
当然，因为作MTT时，你本身会做空白对照与阳性对照，所以你可以完全不用管本底带来的误差了（建议你采用中间列6个孔为空白对照组，剩下共有9组54个孔，正好可以做三个药，每个药可设高、中、低三个浓度；加细胞时，你采用随机加细胞法，反正60孔细胞你加满就可以放心去培养了！）。
2．细胞培养板与ELISA问：请教各位，做ELISA能否用培养板呢，有什么差别呢？答：应该用ELISA试验专用板子。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
细胞培养常见问题的原因及对策细胞培养中的注意事项1 冷冻管应如何解冻？取出冷冻管后，须立即放入37 C水槽中快速解冻，轻摇冷冻管使其在1分钟内全部融化，并注意水面不可超过冷冻管盖沿，否则易发生污染情形。
另冷冻管由液氮桶中取出解冻时，必须注意安全，预防冷冻管之爆裂。
2 细胞冷冻管解冻培养时，是否应马上去除DMSO？除少数特别注明对DMSO敏感之细胞外，绝大部分细胞株（包括悬浮性细胞），在解冻之后，应直接放入含有10-15ml新鲜培养基之培养角瓶中，待隔天再置换新鲜培养基以去除DMSO 即可，如此可避免大部分解冻后细胞无法生长或贴附之问题。
3 可否使用与原先培养条件不同之培养基？不能。
每一细胞株均有其特定使用且已适应之细胞培养基，若骤然使用和原先提供之培养条件不同之培养基，细胞大都无法立即适应，造成细胞无法存活。
4 可否使用与原先培养条件不同之血清种类？不能。
血清是细胞培养上一个极为重要的营养来源，所以血清的种类和品质对于细胞的生长会产生极大的影响。
来自不同物种的血清，在一些物质或分子的量或内容物上都有所不同，血清使用错误常会造成细胞无法存活。
5 何谓FBS, FCS, CS, HS ?FBS (fetal bovine serum) 和FCS (fetal calf serum) 是相同的意思，两者都是指胎牛血清，FCS乃错误的使用字眼，请不要再使用。
CS (calf serum) 则是指小牛血清。
HS (horseserum) 则是指马血清。
6 培养细胞时应使用5 %或10% CO2？或根本没有影响？一般培养基中大都使用HCO3-/CO32-/H+ 作为pH 的缓冲系统，而培养基中NaHCO3的含量将决定细胞培养时应使用的CO2浓度。
当培养基中NaHCO3 含量为每公升3.7 g时，细胞培养时应使用10% CO2；当培养基中NaHCO3为每公升1.5 g时，则应使用5% CO2培养细胞。
7 何时须更换培养基？视细胞生长密度而定，或遵照细胞株基本数据上之更换时间，按时更换培养基即可。
8 培养基中是否须添加抗生素？除于特殊筛选系统中外，一般正常培养状态下，培养基中不应添加任何抗生素。
9 附着性细胞继代时所使用之trypsin-EDTA浓度？应如何处理？一般使用之trypsin-EDTA 浓度为0.05% trypsin-0.53m MEDTA.4 Na。
第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中，保存于–20 C，避免反复冷冻解冻造成trypsin之活性降低，并可减少污染之机会。
10 悬浮性细胞应如何继代处理？一般仅需持续加入新鲜培养基于原培养角瓶中，稀释细胞浓度即可，若培养液太多时，可将培养角瓶口端稍微抬高，直到无法容纳为止。
分瓶时取出一部份含细胞之培养液至另一新的培养角瓶，加入新鲜培养基稀释至适当浓度，重复前述步骤即可。
11 欲将一般动物细胞离心下来，其离心速率应为多少转速？欲回收动物细胞，其离心速率一般为300xg (约1,000rpm)，5 - 10分钟，过高之转速，将造成细胞死亡。
12 细胞之接种密度为何？依照细胞株基本数据上之接种密度或稀释分盘之比例接种即可。
细胞数太少或稀释的太多亦是造成细胞无法生长之一重要原因。
13 细胞冷冻培养基之成份为何？动物细胞冷冻保存时最常使用的冷冻培养基是含5 - 10% DMSO (dimethyl sulfoxide) 和90 - 95 %原来细胞生长用之新鲜培养基均匀混合之。
注意：由于DMSO 稀释时会放出大量热能，故不可将DMSO直接加入细胞液中，必须使用前先行配制完成。
14 DMSO之等级和无菌过滤之方式为何？冷冻保存使用之DMSO等级，必须为Tissue culture grade之DMSO (如Sigma D2650)，其本身即为无菌状况，第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中，保存于4 C，避免反复冷冻解冻造成DMSO之裂解而释出有害物质，并可减少污染之机会。
若要过滤DMSO，则须使用耐DMSO之Nylon材质滤膜。
15 冷冻保存细胞之方法？冷冻保存方法一：冷冻管置于4 C 30~60分钟→(-20 C 30分钟) →-80 C 16~18小时(或隔夜) →液氮槽vapor phase长期储存。
冷冻保存方法二: 冷冻管置于已设定程序之可程序降温机中每分钟降1-3 C 至–80 C 以下，再放入液氮槽vapor phase长期储存。
*-20 C 不可超过1小时，以防止冰晶过大，造成细胞大量死亡，亦可跳过此步骤直接放入-80 C 冰箱中，惟存活率稍微降低一些。
16 细胞欲冷冻保存时，细胞冷冻管内应有多少细胞浓度？冷冻管内细胞数目一般为1x106 cells/ml vial，融合瘤细胞则以5x106 cells/ml vial 为宜。
17 应如何避免细胞污染？细胞污染的种类可分成细菌、酵母菌、霉菌、病毒和霉浆菌。
主要的污染原因为无菌操作技术不当、操作室环境不佳、污染之血清和污染之细胞等。
严格无菌操作技术、清洁的环境、与品质良好之细胞来源和培养基配制是减低污染之最好方法。
19 支原体(mycoplasma) 污染的细胞，是否能以肉眼观察出异状？不能。
除极有经验之专家外，大多数遭受支原体污染的细胞株，无法以其外观分辨之。
20 支原体污染会对细胞培养有何影响？支原体污染几乎可影响所有细胞之生长参数，代谢及研究任一数据。
故进行实验前，必须确认细胞为mycoplasma-free，实验结果之数据方有意义。
22 CO2培养箱之水盘如何保持清洁？定期(至少每两周一次) 以无菌蒸馏水或无菌去离子水更换之。
23 为何培养基保存于4 C 冰箱中，颜色会偏暗红色，且pH值会越来越偏碱性？培养基保存于4 C 冰箱中，培养基内之CO2会逐渐溢出，造成培养基越来越偏碱性，而培养基中之酸碱指示剂(通常为phenol red) 的颜色也会随碱性增加而更偏暗红。
培养基偏碱之结果，将造成细胞生长停滞或死亡。
若培养基偏碱时，可以通入无菌过滤之CO2，以调整pH 值。
24 各种细胞培养用的dish，flask是否均相同？不同厂牌的dish或flask，其所coating的polymer不同，制造程序亦不同，虽对大部分细胞没有太大之影响，惟少数细胞则可能因使用厂牌不同之dish或flask而有显著之生长差异。
25 购买之细胞冷冻管经解冻后，为何会发生细胞数目太少之情形？研究人员在冷冻细胞之培养时出现细胞数目太少，大都是因为离心过程操作上的失误，造成细胞的物理性损伤，以及细胞流失。
建议细胞解冻后不要立刻离心，应待细胞生长隔夜后再更换培养基即可。
26 购买之细胞死亡或细胞存活率不佳可能原因？研究人员在细胞培养时出现存活率不佳，常见原因可归纳为：培养基使用错误或培养基品质不佳。
血清使用错误或血清的品质不佳。
解冻过程错误。
冷冻细胞解冻后，加以洗涤细胞和离心。
悬浮细胞误认为死细胞。
培养温度使用错误。
细胞置于–80 C太久。
27 收到之冷冻管瓶身破裂，瓶盖有裂纹，或瓶盖脱落之原因？冷冻管瓶盖裂纹，或瓶身破裂，可能是因为操作者夹取冷冻管时用力不当，造成冷冻管裂损，建议使用止血钳小心夹取。
另冷冻管瓶盖松动或松脱，乃因热胀冷缩之物理现象，冷冻管有可能因此而造成细胞污染，故冷冻管于放入和取出液氮桶时，均应立刻将冷冻管再一次扭紧。
28 如何选用特殊细胞系培养基？培养某一类型细胞没有固定的培养条件。
在MEM中培养的细胞，很可能在DMEM或M199中同样很容易生长。
总之，首选MEM做粘附细胞培养、RPMI-1640做悬浮细胞培养是一个好的开始，各种目的无血清培养最好首选AIM V（12005）培养基（SFM）。
29 L-谷氨酰胺在细胞培养中重要吗？它在溶液中不稳定吗？L-谷氨酰胺在细胞培养时是重要的。
脱掉氨基后，L-谷氨酰胺可作为培养细胞的能量来源、参与蛋白质的合成和核酸代谢。
L-谷氨酰胺在溶液中经过一段时间后会降解，但是确切的降解率一直没有最终定论。
L-谷氨酰胺的降解导致氨的形成，而氨对于一些细胞具有毒性。
30 GlutaMAX-I是什么？培养细胞如何利用GlutaMAX-I？这个二肽有多稳定？GlutaMAX-I 二肽是一个L-谷氨酰胺的衍生物，其不稳定的alpha-氨基用L-丙氨酸来保护。
一种肽酶逐渐裂解二肽，释放L-谷氨酰胺供利用。
GlutaMAX-I二肽非常稳定，即使在121磅灭菌20分钟，GlutaMAX-I 二肽溶液有最小的降解，如果在相同条件下，L-谷氨酰胺几乎完全降解。
32 培养基中丙酮酸钠的作用是什么？丙酮酸钠可以作为细胞培养中的替代碳源，尽管细胞更倾向于以葡萄糖作为碳源，但是，如果没有葡萄糖的话，细胞也可以代谢丙酮酸钠。
33 目录上说，Hank’s 平衡盐溶液(HBS)要在空气中使用，不需要CO2培养箱。
原因是什么？Hank’s 平衡盐溶液(HBS)和Earle’s平衡盐溶液(EBS)有什么本质的功能差别？HBS和EBS 的主要差别在于碳酸氢钠的水平，在Eagles (2.2g/L)中比在Hanks (0.35g/L) 中高。
碳酸氢钠需用高水平的CO2平衡，以维持溶液的PH值。
Eagles液在空气水平的CO2 中，溶液会变碱，Hanks 液在CO2培养箱中会变酸。
如果希望在CO2培养箱中保存组织，需要用Eagles液，。
如果仅仅是清洗将要在细胞培养基中储存的组织，用Hanks液就可以了。
35 当在无血清培养基中添加抗生素时，降低至少在有血清培养基中所使用浓度的50%。
血清蛋白会结合和灭活一些抗生素。
在无血清培养条件下，抗生素不被灭活，可能对于细胞达到毒性水平。
36 一旦您在新鲜培养基中添加了血清和抗生素时，您应该在两到三周内使用它。
因为一些抗生素和血清中的基本成分在解冻后就开始降解。
37 大部分添加物和试剂最多可以冻融3次，如果次数更多都会在包含蛋白的溶液引起一定水平的降解和沉淀，将会影响它的性能。
38 在溶解的一周内使用贮存在4℃冰箱中的液体胰蛋白酶溶液。
胰蛋白酶在4℃就可能开始降解，如果在室温下放置超过30分钟，就会变得不稳定。
细胞培养常见问题的原因及对策：1. 培养液pH值变化太快：CO2张力不对。
培养瓶盖拧得太紧。
NaHCO3缓冲系统缓冲力不足。
培养液中盐浓度不正确。
细菌、酵母或真菌污染。
按培养液中NaHCO3浓度增加或减少培养箱内CO2浓度，2.0g/L到3.7g/L浓度NaHCO3对应CO2浓度为5％到10％。
（2）改用不依赖CO2培养液。
松开瓶盖1/4圈。
加HEPES缓冲液至10到25mM终浓度。
在CO2培养环境中改用基于Earle’s盐配制的培养液，在大气培养环境中培养改用Hank’s盐配制的培养液。
丢弃培养物或用抗生素除菌。