免疫荧光技术操作步骤

免疫荧光技术操作步骤

直接免疫荧光法测抗原

基本原理

将荧光素标记在相应的抗体上，直接与相应抗原反应。其优点是方法简便、特异性高，非特异性荧光染色少，相对使用标记抗体用量偏大。

试剂与仪器

磷酸盐缓冲盐水（PBS）：0.01mol/L，pH7.4

荧光标记的抗体溶液：以0.01mol/L，pH7.4 的PBS 进行稀释

缓冲甘油：分析纯无荧光的甘油9 份+ pH9.2 0.2M 碳酸盐缓冲液 1 份配制

搪瓷桶三只（内有0.01mol/L，pH7.4 的PBS 1500ml）

有盖搪瓷盒一只（内铺一层浸湿的纱布垫）

荧光显微镜

玻片架

滤纸

37℃温箱等。

实验步骤

1. 滴加0.01mol/L，pH7.4 的PBS于待检标本片上，10min后弃去，使标本保持一定湿度。

2. 滴加适当稀释的荧光标记（饱和浓度可以用滴度发或公式法算出）的抗体溶液，使其完全覆盖标本，置于有盖搪瓷盒内，保温30min 定时间（参考：30min）。

3. 取出玻片，置玻片架上，先用0.01mol/L，pH7.4 的PBS 冲洗后，再按顺序过0.01mol/L，

pH7.4 的PBS 三缸浸泡，每缸3-5 min，不时振荡。

4. 取出玻片，用滤纸吸去多余水分，但不使标本干燥，加一滴缓冲甘油，以盖玻片覆盖。

5. 立即用荧光显微镜观察。观察标本的特异性荧光强度，一般可用“+”表示：

（-）无荧光；（±）极弱的可疑荧光；（+）荧光较弱，但清楚可见；（++）荧光明亮；（+++

--++++）荧光闪亮。待检标本特异性荧光染色强度达“++”以上，而各种对照显示为（±）

或（-），即可判定为阳性。

注意事项

1. 对荧光标记的抗体的稀释，要保证抗体的蛋白有一定的浓度，一般稀释在1：20-100 之

间，要自行摸索最佳梯度，建立最好的稀释比例，抗体浓度过低，会导致产生的荧光过弱，

影响结果的观察。

2. 染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化，染色时间可以从10 min 到数

小时，一般30 min 已足够。染色温度多采用室温（25℃左右），高于37℃可加强染色效果，

但对不耐热的抗原（如流行性乙型脑炎病毒）可采用0-2℃的低温，延长染色时间。低温染

色过夜较37℃30 min 效果好的多。

3. 为了保证荧光染色的正确性，首次试验时需设置下述对照，以排除某些非特异性荧光染

色的干扰。

（1）标本自发荧光对照：标本加1-2 滴0.01mol/L，pH7.4 的PBS。

（2）特异性对照（抑制试验）：标本加未标记的特异性抗体，再加荧光标记的特异性抗

体。

如果标本自发荧光对照和特异性对照呈无荧光或弱荧光，待检标本呈强荧光，则为特异性阳性染色。4. 一般标本在高压灯下照射超过3min，就有荧光减弱现象，经荧光染色的标本最好在当天观察，随着时间的延长，荧光强度会逐渐下降。