默克密理博超滤实验方法
默克超滤系统CUF200型设备操作规程
默克超滤系统CUF200型设备操作规程1、超滤的手动操作1、1产水操作( 1 )气动阀门动作及状态确认超滤装置上的产水、浓水排放、进水气动阀开启。
气动阀门的开关通过超滤装置上的就地控制柜完成。
保证超滤处于产水状态时，再启动原水进水阀的操作，从而保证超滤运行负荷不超标。
(2)混凝剂加药确认药箱液位足够，开启加药泵进出口阀门，启动加药泵。
停原水进水阀门后，再停加药系。
2、反洗操作2、1简反洗《包括上反洗和下反洗)关闭一台超滤进水、产水和浓水排放气动阀，再启动两台反洗水泵对这台装置执行反洗操作，简反洗流量为31OM3/H。
(1上反洗上反洗采用超滤产水作为反冲水，由组件产水口进入，浓水出口流出。
此时入口水阀和产水阀关闭，反洗至排水清澈。
(2)下反洗下反洗采用超滤产水作为反冲水，由组件产水口进入，进水口流出。
此时浓水出口阀和产水阀关闭，反洗至排水清澈。
二台超滤的反洗时间应错开，即一台执行反洗程序时另一台应处在特机或运行状态。
超谑反洗完成后，先关闭反洗水泵。
2、2完整反洗(1)前正冲由组件进水口至浓水出口，产水阀门关闭。
(2)上反洗上反洗采用超滤产水作为反冲水，由组件产水口进入，浓水出口流出。
此时入口水阀和产水阀关闭。
执行此步骤时随反洗泵的投运启动次氧酸钠加药泵,投加浓度约为 15OPPM。
(3)下反洗下反洗采用超滤产水作为反冲水，由组件产水口进入，进水口流出。
此时浓水出口阀和产水阀关闭,执行此步骤时随反洗泵的投运启动次氯酸钠加药泵,投加浓度约为1l50PPM、(4)后正冲由组件进水口至浓水出口，产水阀门关闭。
冲洗至出水清滋为止。
2、3化学加强反洗程序在反洗过程中向反洗水中假如化学药品。
为了增加化学药品的反应时间，在彻底反洗后可增加一定时间的浸泡时间。
3、性能检测手动对膜组件进行完整性检副时，用气泡观察法。
3、1原理检测完全浸泡过的膜组件时，当洁净的压缩气体从进水端进入膜组件时，气体会经过中空纤锥的内腔的破裂处或大孔缺陷处，漏入纤锥丝外侧，气泡经过中空纤维丝内腔上端或直接从产水端流入产水端透明管，即可观察到泄露的气泡，进而确定有问题的组件，3、2检测步骤(1)组件内充满水，开启压缩空气进气阀、产水端清洗回流阀，关闭其余阀门、(2)进气,缓慢增压至0、1MPA，保压5MIN 、(3)如果产水端透明管中看到连续气泡，即可确定该膜元件有损坏。
实验室超滤的操作方法
实验室超滤的操作方法超滤是一种分离和浓缩溶液中高分子量物质的常见操作方法。
它基于超滤膜的选择性排除原理，通过应用压力将溶液分离成两部分：通过膜孔的低分子量物质和被膜孔阻挡的高分子量物质。
超滤广泛应用于生物化学、环境科学、食品工业等领域。
以下是超滤的基本操作方法：1. 实验前准备：a. 准备超滤设备，包括超滤膜、过滤系统等。
b. 清洗超滤膜：使用去离子水或合适的洗涤液轻轻清洗膜表面，去除可能存在的污染物。
c. 检查超滤膜：确保超滤膜完整且无损伤，避免脱落或破损。
2. 样品预处理：a. 根据需要，将待处理的溶液进行必要的预处理，如悬浮固体颗粒的去除、胶体粒子的沉淀等。
b. 调整溶液的pH值，以确保最佳操作条件。
c. 样品浓缩：如果需要浓缩样品，可以通过超滤前减少溶液体积。
3. 超滤操作：a. 将装有超滤膜的装置连接到压力源，确保连接紧密无泄漏。
b. 将预处理后的溶液注入超滤装置的进样孔。
c. 打开调节压力源，并逐渐增加压力，使溶液由进样孔进入超滤膜。
d. 超滤速率的控制：可以通过调节压力或液体流速来控制超滤速率。
过高的压力或流速可能导致膜孔的堵塞。
e. 接收溶液：通过超滤膜的孔洞较大的一侧收集透过物质，较小的一侧收集截留物质。
注意收集的容器要干净，以避免污染。
4. 超滤后处理：a. 清洗超滤膜：操作完成后，用逆流清洗超滤膜，以去除吸附在膜上的溶质和杂质。
b. 膜的保养：定期清洗和维护超滤膜，使其保持良好的通透性。
c. 截留物处理：对于截留在超滤膜上的高分子量物质，可以进行进一步的分析或处理。
需要注意的是，超滤操作过程中要小心操作，避免膜的破损或污染。
此外，根据所处理溶液的性质和要求可能需要选择合适的超滤膜和操作条件。
merck millipore 默克密理博纯水超纯水一体系统明澈D24UV操作手册
您的纯水系统不适于家庭使用。
纯水系统长时间断电会使计时器的电池放电，导致失去时间和日期记录。如果长 时间关闭纯水系统，应使用实验室关闭模式请与您的服务代表联系。
经常保存系统的历史记录-每三个月或每半年。参见 Millitrack 文档。
这个“紫外线辐射”标签指纯水系统机柜上或机柜内部有可能暴 露于紫外光的地方。 这个“危险”标签指纯水系统机柜上或机柜内部可能危险的地 方。 这个“电气接地”标签指纯水系统机柜上或机柜内部需要进行电 气接地连接的地方。 这个“电气危险”标签指纯水系统机柜上或机柜内部可能存在电 气危险的地方。
重要提示！
Millitrack 软件用户也能通过标准 TCP/IP 网络对交互式网页进行实时 远程访问，所述网页描述了纯水系统的状态、配置、即时水质参数、 设置、标识号以及仪表板。
主要优势：
o 本土化的网页图形用户界面。
o 纯水系统实时仪表板和远程仪表板。
o XML 数据格式，用于打印或下载任何电子数据库。 o 与任何实验室数据管理系统兼容，如 LIMS、ELN 和 SDMS/ECM。
任何动作。 显示维护警告或报警（从左到 右），表明：
o 需要进行 CL2 消毒： 对 RO 膜进行消毒。
o 需要更换终端过滤器 （如果该选项被激 活）
o 需要进行 Cl2 消毒或 pH 清洗
o 产水电阻率低于设定 点。
o 检测到进水压力低。
o 检测到漏水（如果安 装漏水检测器）。
项目 3 4
5 6
说明 o 请 与 Merck Millipore 联系。
见下面的示例：
3 个帮助指示灯：
o 按住 （Mode 键）切换系统模式。
超滤标准操作规程
甲型肝炎减毒活疫苗原液超滤SOP目的: 为保证CUF-20型超滤器在生产过程中的使用达到规范化、标准化，特制定本操作规程。
范围: 本操作规程适用于CUF-20型超滤器超滤透析甲肝原液。
职责: 纯化组人员应严格按本标准操作程序的要求进行超滤操作。
QA应监督检查本标准的实施效果。
内容：1.操作前检查1.1工作环境的检查超滤操作应在万级环境的百级层流罩下进行，操作前应检查以下事项：1.1.1操作间处于清洁状态，无上次工作遗留物，无与本次操作无关的物品。
1.1.2 操作间备有废弃物收集容器。
1.1.3 生产状态标识已挂好。
1.1.4 提前30分钟开启层流罩。
1.2 设备仪器运行检查1.2.1 超滤器型号：CUF-20 资产编号：01D002074 厂家：美国密理博公司状态完好，备用。
1.2.2 蠕动泵型号：ZG60-600 资产编号：01G001061 厂家：保定兰格恒流泵有限公司。
状态完好，备用。
1.3 物料及器具检查1.3.1透析液：核实批号、数量及有效期。
1.3.2 0.1NNaOH：核实批号、数量及有效期。
1.3.3 10倍浓缩199培养液、8.0%碳酸氢钠液：核实批号、数量及有效期。
1.3.4 待透析原液的确认:确认原液的批号及液量。
1.3.5 0.1%新洁尔灭溶液或3%来苏儿溶液：经0.2um除菌过滤. 核实批号及有效期。
1.3.6 10L瓶、桶盖、10号栓、100mL瓶、10mL吸管、钢瓶经0.105Mpa.121C 60分钟湿热灭菌，核实数量及有效期。
1.3.7 超滤管道、分液管道、50L桶、20L桶经0.105Mpa.123C 、90分钟湿热灭菌，核实数量及有效期。
2. 操作过程2.1 启动蠕动泵，进液管道、回液管道、膜下排液管道用0.1N NaOH溶液循环30分钟。
2.2 管道连接：进液管道、回液管道、膜下管道和已灭菌的超滤管道无菌连接。
膜下排液管道无菌放入回收桶中，将收集原液的管道放入20L桶内，用止血钳夹住，待收集原液备用。
Pellicon2操作手册1
Millipore BioProcesss Division维护手册Pellicon & Pellicon 2超滤膜堆MILLIPORE目录:手册使用方法................................................................................................................... P 3 Pellicon & pellicon 2 膜堆............................................................ P 4冲洗步骤 ........................................................................................................................... P 5 清洗步骤 ........................................................................................................................... P 6 消毒步骤 ......................................................................................................................... P10 除热原步骤 ..................................................................................................................... P11 水通量的测量................................................................................................................. P12 膜堆的完整性检测......................................................................................................... P14 储存步骤 ......................................................................................................................... P17 化学兼容性 ..................................................................................................................... P19本手册对如何维护Millipore 公司生产的切向流超滤膜、膜堆和超滤系统提供了一些建议。
超滤净水器墨水实验
• 用烧杯取出水样
超滤净水器实验步骤五
• 观察取出的水样
超滤净水器实验步骤六
• 墨水被截留在超滤膜内，打开排污阀， 放出净水器内过滤掉的脏水。
超滤净水器 墨水演示实验
超滤净水器实验所需材料
软管三根
超滤净水器
黑墨水一瓶
烧杯一个
透明储水盒ห้องสมุดไป่ตู้
超滤净水器实验步骤一
• 组装超滤净水器，将储水盒前置于净水器进水口
超滤净水器实验步骤二
• 将墨水注入储水盒内
超滤净水器实验步骤三
• 打开水阀，墨水被超滤膜截留，从净 水端流出净化后清澈干净的水
超滤净水器实验步骤四
默克密理博除菌过滤验证
过滤工艺相关法规及验证内容解析时优默克密理博验证实验室认识我们使用的过滤器⏹折叠式⏹膜在支撑材料间⏹热熔⏹2-5种结构材料议题与过滤相关的法规及指南检查缺陷及解决方案如何进行过滤器验证世界各国ＧＭＰ法规要求进行过滤器验证⏹US GMP 21 CFR Parts 210 & 211美国GMPAppropriate written procedures…shall be established and followed. Suchproceduresshall include validation of any sterilization process必须建立和跟进相应的证明性文件….,，这些文件中包括所有的除菌工艺的验证文件。
⏹EU GMP Annex 1 Sterile Medicinal Products欧盟GMP 无菌药品附录All sterilization processes should be validated.所有除菌工艺必须进行验证。
⏹Australian TGA GMP澳大利亚TGA GMPFiltration processes used as the sterilizing step for products should bevalidated.除菌级的过滤工艺应该验证。
⏹Health Canada GMP加拿大GMPDocumented evidence is available establishing validation and validity ofeachsterilization process.每步除菌工艺必须要有验证其有效性的证明性文件。
FDA法规对过滤器验证的要求FDA Aseptic Processing Guidelines (2004) FDA无菌工艺指南•Filter validation should be conducted using the worst case conditions, (pH, temperature, flow rate, pressures etc.)挑战试验必须模拟最差工艺条件• Challenge fluid should simulate product as closely as in practice 挑战液应该尽可能保持和实际产品相同中国新版GMP附录1第四十一条过滤器应当尽可能不脱落纤维。
默克密理博的Amicon离心超滤
默克密理博的Amicon离心超滤装置是一种理想的工具，可以用来对盐分、糖类、核酸、非水溶剂及其他一些低分子量物质进行去除和更换。
他们还可以用来分离未结合上的游离标记物。
密理博离心超滤装置具有快速、方便、回收率高的特点，可替代并优于透析及乙醇沉淀。
Amicon Ultra-4和Amicon Ultra-15具有高速度高回收的特点。
他们使用低吸附性的Ultracel 再生纤维素超滤膜，可用于蛋白质、抗原、抗体、酶和微生物的浓缩纯化。
其快速和高回收的特点非常适合于脱盐和缓冲液置换。
Amicon Ultra离心超滤装置经常用于对蛋白质色谱纯化过程产生的色谱柱组分进行浓缩和脱盐。
以下两个例子展示了Amicon Ultra离心超滤装置对于蛋白质和活性酶回收的应用。
方法1.选择具有合适NMWL和体积的离心超滤装置；2.把样品置于过滤装置的储液管中；3.如果样品体积小于过滤装置的最大体积，则可以把它稀释到最大体积后再离心，这有助于更有效地除去盐分；4.在特定的离心力下和推荐的时间进行离心；5.将滤过液从滤管中取出，放置一旁；6.加入水或缓冲液使样品体积达到4ml(Amicon Ultra-4)或15ml(Amicon Ultra-15);7.再次离心；8.取出滤过液，放置一旁；9.回收浓缩的已脱盐样品。
注意：请将两次的滤过液一直保留到浓缩的样品分析测试完成。
结果：盐分通过滤膜的过程不依赖样品的浓度和体积，用超滤的方法来脱盐并不改变缓冲液的组成，比如说，含有500mM盐分的溶液在初次离心后它的盐浓度并不发生改变。
再往超滤管中剩余溶液中加入水或无盐缓冲液，再次离心，则会降低溶液中的盐浓度。
这个过程我们将它称为等体积超滤，反复多次地操作，可以使溶液盐分降到最低。
如果我们想将样品用不同打分缓冲液溶解，则我们可以使用等体积超滤达到目的。
样品浓缩后，然后加入目的缓冲液，再进行反复得稀释和浓缩。
如表3.1-3.4中所示，使用默克密理博的离心超滤装置，只需一次过滤，样品中90%以上的盐分都被去除。
默克密理博Microcon横膜超滤管
Microcon® 超滤管
值得信赖的ＤＮＡ／蛋白样品制备的经典工具
Microcon® 为横膜式超滤管，没有死体积，用于大分子样品的浓缩、除盐、换液都非常高 效方便；实际应用中还常用于大分子与其它分子的分离，比如蛋白酶切后的处理及药物结 合率分析等等。这种小管可在几乎所有1.5mL离心机中使用。 Ultracel® 超低结合膜对于蛋白 及其它成分都表现出极低的非特异性结合，连同医药级O型圈封闭设计，确保更少的样品 丢失，更稳定的数据结果，使 Microcon® 成为最好的样品制备工具。
更小截留分子量产品请垂询
包装 100 100 100
目录号 MRCPRT010 MRCF0R030 MRCF0R100
最便捷的蛋白制备工具：
• 行业金标：Amicon® Ultra超滤管 • 一体化纯化超滤新工具：Amicon® Pro • 温和透析、复性：D-tubeTM 透析管 • 不同操作通量、体积样品处理的灵活选择
• 即使是稀释溶液，样品回收率也大于95% • 反转离心设计，方便在浓缩产物体积极小时提高回收率 • 便于在标准的微管中存放浓缩样品和滤过样品 • 浓缩倍数达到100X
Microcon® DNA Fast Flow 超滤管专门设计用于从 含有SDS的溶液中浓缩和回收基因组DNA。反转回收 使样品量极小时可保证DNA理想的得率，浓缩倍数 可以达到20X。
广州
广州市黄埔大道西638号 富力科讯大厦803A室 邮编：510627 电话：020-37883048 传真：020-37883072
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pellicon切向流超滤系统-使用手册
目录I. 概述.........................................................................................................................................- 2 -A. 切向流过滤....................................................................................................................- 2 -B. PELLICON系统的应用................................................................................................- 3 - II. PELLICON系统如何工作....................................................................................................- 4 - III. PELLICON系统的组装.......................................................................................................- 6 - A．拆箱................................................................................................................................- 6 - B．系统的装配..................................................................................................................- 6 -C. 泵和管子的装配............................................................................................................- 7 -D. 对泵的检查....................................................................................................................- 9 -F 膜包的安装.................................................................................................................- 12 -G 压紧步骤.......................................................................................................................- 12 -H．泵的操作......................................................................................................................- 14 -I. 泵和连接件的更换.......................................................................................................- 15 -J.标准有机玻璃的夹具到低残留夹具的转换............................................................- 15 - IV. Pellicon系统使用前的准备.............................................................................................- 16 -A. 预清洗和膜润湿..........................................................................................................- 16 -B. 标准水透过率(NWP)的测定......................................................................................- 16 -C. 完整性测试..................................................................................................................- 16 -D. 膜包的预先处理..........................................................................................................- 16 - V. Pellicon系统的操作..........................................................................................................- 17 -A. 操作模式......................................................................................................................- 17 -B. 主要操作参数..............................................................................................................- 23 -C. 测定参数......................................................................................................................- 23 - VI 用双泵操作Pellicon系统用于悬浮液的分离..................................................................- 27 -A.为什么增加一个泵.........................................................................................................- 27 -B. 双泵系统的应用...........................................................................................................- 27 -C.增加透过液泵/双泵系统的操作................................................................................- 27 - VII PELLICON系统维护........................................................................................................- 30 -A.泵.....................................................................................................................................- 30 -B. 夹具和膜包....................................................................................................................- 30 - 附录I 系统优化.........................................................................................................................- 32 - A．流量曲线(流通量与切向流速)....................................................................................- 32 - B．流通量随压力变化曲线..............................................................................................- 33 - C．流通量的衰减..............................................................................................................- 34 - D．优化运行条件..............................................................................................................- 35 - 附录II 问题与解决....................................................................................................................- 37 - 附录Ⅲ膜维护手册...............................................................................................................- 39 -A.选择清洗方法：..........................................................................................................- 40 -B.冲洗步骤.......................................................................................................................- 42 -C.清洗步骤.......................................................................................................................- 43 -D.清洗条件.......................................................................................................................- 46 -E.消毒步骤.......................................................................................................................- 47 -F.除热原步骤...................................................................................................................- 48 -G.水通量（NWP) 测量................................................................................................- 49 -H.膜堆的完整性检测.....................................................................................................- 51 -I.保存步骤........................................................................................................................- 54 -密理博中国有限公司I. 概述A. 切向流过滤在分离中通常有两种类型的过滤：垂直过滤和切向流过滤。
Millipore 超滤管 0.5ml 中文说明书
• Amicon® Ultra 3K 超滤管 — 3,000 NMWL • Amicon® Ultra 10K 超滤管 — 10,000 NMWL • Amicon® Ultra 30K 超滤管 — 30,000 NMWL • Amicon® Ultra 50K 超滤管 — 50,000 NMWL • Amicon® Ultra 100K 超滤管 — 100,000 NMWL
用，则让液体保留在滤膜上，直到使用。
如何使用Amicon® Ultra-0.5超滤离心管
1. 将Amicon® Ultra-0.5超滤内管插入所提供的一个微量离心管中。 2. 向Amicon® Ultra内管中加入不超过500 μL的样本，并盖上盖子。 3. 将盖好盖子的超滤管放入离心转子中，让盖子的连接带朝着转子的中央；用一个类似的超滤管平衡。 4. 以14,000 x g离心约10-30分钟，具体时间取决于所使用超滤管的NMWL。为了确定合适的离心时
≥ 90 ≥ 90 ≥ 95
PCR引物去除率 （%）
≥ 90 ≥ 85 ≥ 75
≥ 90 ≥ 90 ≥ 80
≥ 90 ≥ 90 ≥ 90
≥ 90 ≥ 95 ≥ 95
TE洗涤 （次数）
0 1 2
0 1 2
0 1 2
0 1 2
离心条件：40º固定角度转子，14,000 x g，室温，100 μL PCR样品和400μL TE缓冲液合计起始体积500 μL，20-30 μL终体积，10分钟离心，n = 12。
2
74
7
42
12
millipore超滤管使用原理
millipore超滤管使用原理Millipore超滤管使用原理Millipore超滤管是一种常用的膜分离技术设备，通过其特殊的膜结构和分离原理，能够实现对溶液中不同分子的分离和浓缩。
它在生物医药、食品加工、环境监测等领域都有广泛的应用。
Millipore超滤管的使用原理主要基于超滤技术。
超滤是一种利用压力驱动液体通过半透膜分离的过程。
Millipore超滤管中的膜材料是由特殊的聚合物制成，具有微孔大小可调的特点。
这些微孔能够有效地截留溶液中的大分子物质，如蛋白质、多糖等，同时允许小分子物质和溶剂通过。
Millipore超滤管的使用步骤相对简单。
首先，将待分离的溶液注入超滤管中，然后施加一定的压力使溶液通过膜材料。
在这个过程中，大分子物质被截留在超滤管内部，而小分子物质和溶剂则通过膜孔排出。
通过调整压力、膜孔大小和溶液浓度等参数，可以实现对不同分子大小的选择性分离。
Millipore超滤管的原理基于物质的分子大小和膜孔的选择性。
在溶液中，分子的大小不同，因此对于不同分子的截留效果也不同。
一般来说，Millipore超滤管能够截留分子量较大的物质，如蛋白质和多糖，而对分子量较小的物质，如离子和小分子药物，则具有较高的透过性。
这个原理使得Millipore超滤管在生物医药领域的蛋白质纯化和浓缩中得到了广泛的应用。
除了分子大小选择性外，Millipore超滤管的分离效果还受到其他因素的影响。
例如，溶液中的离子浓度、pH值、温度等因素都可能影响膜材料的性能和分离效果。
因此，在使用Millipore超滤管进行分离时，需要根据实际情况进行参数的优化和调整，以获得最佳的分离效果。
Millipore超滤管的优点在于其操作简单、分离效果好、适用范围广。
它可以用于蛋白质的纯化和浓缩，在生物医药领域具有重要的应用价值。
此外，Millipore超滤管还可以用于食品加工中的浓缩和分离、环境监测中的样品净化等领域。
Millipore超滤管是一种基于超滤技术原理的膜分离设备。
MILLIPORE密理博实验室纯水超纯水系统明澈
MILLIPORE密理博实验室纯水超纯水系统明澈-D 24 UVMERCK MILLIPORE 默克密理博实验室纯水超纯水系统明澈-D 24 UV是“基于原密理博成熟技术全新开发的高品质实验室纯水系统”，它以“集成资源，联合开发”的研发模式，建立在原密理博成熟领先的技术，法国优秀的设计，德国严谨的制造基础上，结合中国消费者真实需求全新开发而成。
是直接以自来水为进水生产纯水和超纯水，其中纯水流速为24 升每小时，日产水量在100 升以上；超纯水流速为2 升每分钟。
MERCK MILLIPORE 默克密理博实验室纯水超纯水系统明澈-D 24 UV系统描述：MERCK MILLIPORE 默克密理博实验室纯水超纯水系统明澈-D 24 UV采用原密理博最核心的纯化技术：反渗透、核子级离子交换树脂，185/254 nm 双波长紫外灯，高效率终端除菌过滤器，将自来水处理为满足各类理化、生物等众多实验要求的高品质超纯水。
系统特征CKD-Completely Knock Down-完全进口散件组装明澈-D 24 UV 是以国际先进的CKD 方式生产，及所有散件原装法国生产，国内组装；其次，明澈-D 24 UV 配件均采用国际顶级知名品牌和最好的材质，如Parker、PVDF、PFA 材质软管等。
从而最大限度的保证了设备的耐用性又为客户带来了实惠。
舒适灵活取水明澈-D 24 UV 自带远程取水单元，可实现远程取水，从而节省了实验室大量空间；手臂上可显示产水水质，并给予报警提醒；同时可360 度移动，适合各种容量的玻璃器具250mL 量筒、5 L 长颈瓶、甚至30 L 的大瓶；高精度电导率仪明澈-D 24 UV采用Millipore和德国计量研究员合作开发的高精度电阻率检测器,电导池/电极常数达到0.01 cm-1，温度灵敏度为0.1°C。
该电阻率测量仪能以温度补偿和非温度补偿两种模式显示。
高回收率明澈-D 24 UV 均自带反渗透弃水回收功能，可以将弃水回收，从而提高自来水的利用率，最高回收率可以做到50%。
Pellicon 超滤（UF） 浓稠化（DF）操作指南说明书
Notice: The information in this document is subject to change without notice and should not be construed as a commitment by Merck Millipore or an affiliate. Neither Merck Millipore nor any of its affiliates assumes responsibility for any errors that may appear in this document.Introduction .........................................................................................................................................3Objectives, Methods and Materials ...............................................................................................4Installation ...........................................................................................................................................6Pre-use Flushing Procedure ............................................................................................................7Normalized Water Permeability (NWP) Measurement ............................................................9Determination of System Hold-up Volume..............................................................................11System Equilibration ......................................................................................................................12Determination of Optimum TMP ................................................................................................13Concentration ..................................................................................................................................14Diafiltration ......................................................................................................................................15Recovery Operations ......................................................................................................................17Clean In Place (CIP) ........................................................................................................................19Post CIP Normalized Water Permeability Measurement .....................................................20Storage ...............................................................................................................................................21Appendix 1: Diafiltration Buffer Volume Requirements (22)Pellicon ® Ultrafiltration (UF)/ Diafiltration (DF) Operations Protocol GuideIntroductionObjectives of a UF/DF StudyThe objectives of a UF/DF study include determination of cassette capacity (volume/area) and sizing estimations for large volume processing of a given feed stream.Methods of a UF/DF StudyFeed StreamThe feed stream used in the study should be as representative (as possible) to the actual process (temperature, concentration, density, etc.). Initial and filtrate (post-testing) samples should be taken and tested for product recovery.MaterialsPellicon® 3 88 cm2 Cassettes with Ultracel® MembranePellicon® 3 88 cm2 Cassettes with Biomax® MembranePellicon® 2 Mini Cassettes with Ultracel® MembraneObjectives, Methods and Materials AccessoriesAdditional Ordering Information1.1 Set up system per general arrangement drawing. In principle, the tubing lengths should be minimized so as to minimize the working volume of the system. This enhances the ability to reach higher concentrations and lowersnon-recoverable volumes (recovery loss).1.2 The permeate (or filtrate) pressure gauge may be omitted in standard UF operation since there should not be any filtrate pressure in this line.1.3 Install the membrane as per the installation guide included in the membrane device box. Silicone gaskets areincluded in the Pellicon® 2 Device Box and must be used with the Pellicon® 2 membranes to achieve a proper device to holder seal. Pellicon® 3 devices (mini and micro) have gaskets that are integral to the device that make the device to holder seal.1.3.1 When working with micro (0.88cm 2) devices the required torque might be lower than the specification. If during the flushing procedure a high feed pressure (≥14psig) is observed loosen the membrane fromthe holder and re-torque to 140 in-pounds.3-Way Figure 1.UF/DF SystemGeneral Arrangement2.1 Pellicon® devices come from the factory pre-wet with preservative solution that must be removed beforeprocessing product. See Table 1 for flush volume recommendations.2.2 Arrange the system flowpath into the Single-Pass Filtrate Open mode (SPFO) as shown in Figure 2.2.3 Fill the feed vessel with the required purified water volume from Table 1.3-Way Figure 2.Single-Pass Filtrate Open mode (SPFO) ArrangementTable 1.Sanitization Solution and Flushing VolumeMethods2.4 Set the retentate Valve to fully open. Set the pump to supply 5 LMM (L/min/m 2) feed flow rate.2.5 Start the pump and monitor the feed pressure gauge. The pressure should stabilize to between 5-14 psig. If the pressure is outside this guideline, re-check the installation and torque wrench settings.2.6 Set the retentate pressure to 5 psig so as to ensure that the membrane is being fully flushed. Continue until the volume in the feed vessel is minimized, then stop the pump. Do not entrain air into the system.2.7 See Table 1 and add required volume of sanitization solution, to the feed vessel. Set the system in ‘Single Pass’ flow path. Start thepump to displace the water from the lines and the internal volume of the membrane to avoid dilution. When the sanitization solution level in the feed vessel had been minimized, stop the pump before air is entrained into the system.2.8 Set the system flowpath to the total recycle mode (Figure 3). Fill the vessel with required volume of sanitization solution,see Table 1.2.9 Recirculate at 5 LMM feed flowrate for 30-60 min. Set the retentate pressure to ~5 psig to ensure CIP (Clean-In-Place) of the full membrane area.2.10 Stop the pump after the CIP time interval. Return the system flowpath to the SPFO mode (Figure 2). Start the pump again andpump the feed vessel out to the receiver vessel. When CIP solution level in the feed vessel had been minimized, stop the pump before air is entrained into the system.2.11 Fill the feed vessel with purified water and start the pump. Flush the system to drain back to neutral pH. A microcassette basedsystem will require approximately 1 L of purified water. Monitor pH with a meter or pH paper that sensitive in the neutral range.Check both retentate and permeate lines separately to ensure the system is truly back to neutral pH. Stop the pump.Figure 3.Total Recycle Mode3.1 Add additional purified water to the feed vessel if necessary to ensure that the NWP measurement can be made without entraining air into the system.3.2 Set the system flowpath to the total recycle mode. Start the pump and manipulating the feedflow, set the system feed pressure to read 10 psig and the retentate pressure to read 5 psig.3.3 Allow the system to recirculate for a minute or two. Measure the temperature of the feed vessel contents. Set the system flowpath to the UFconcentration mode (Figure 4) and measure the change in mass over an elapsed time of 1 min, to find the permeate flowrate.3.4 Calculate the Normalized Water Permeability of the membrane using the following formulas:Equation 1J = Qp/AWhere: J= Volumetric Flux (L/M 2/Hr) Qp = permeate flow rate in L/hrA =Area of the membrane device(s)andEquation 2NWP = J * F /Transmembrane pressure (TMP)Where: NWP = Normalized Water Permeability (L/M 2/Hr/psid) J= Volumetric Flux (L/M 2/Hr) F = Temperature Correction FactorTMP = Transmembrane pressure (P feed + P ret )/2 – Pperm (pressure drop across the membrane in psid)3-Way Figure 4.Concentration ModeNormalized Water Permeability (NWP) MeasurementTemperatureF TemperatureFTemperatureF*Based on Water Fluidity Relative to 25°C (77°F) Fluidity Value F= (μT°C /μ25°C) or (μT°F/μ77°F)3.5 This is now the baseline permeability of the device. Record this value in the experimental notebook or runsheet.Table 2. Normalized Water Permeability Temperature Correction Factor (F)*4.1 Set the retentate valve to fully open. Adjust the feedflow to 5 LMM and reduce the volume in the feed vessel to just above the vessel discharge. Stop the system pump.4.2 Obtain a suitable container to capture the remaining volume in the system (50 mL tube for a microcassette based system). Record the tare weight of the container. Set the system feed rate to 2-3 LMM.4.3 Set the system flowpath to the recovery mode (Figure 5). Close the permeate isolation valve. Start the pump and collect all of the remainingliquid in the system into the sample container.4.4 Weigh the gross weight of the container and record the net weight of container and convert this to volume. Add 5 mL to the amount to calculate the total hold-up volume in the system for a micro-cassette based system. Add 31 mL to the amount to calculate the total hold upvolume for a mini-cassette based system.3-Way Figure 5.Recovery Mode5.1 Arrange the system flowpath into the Single-Pass, Filtrate Open mode (Figure 2). Open the permeate isolation valve.5.2 Fill the feed vessel with the equilibration buffer volume (see recommended volumes in Table 1).5.3 Set the pump to supply 5 LMM feed flow rate. Set the retentate pressure to 5 psig by restricting retentate flow with the retentate valve.Collect ~ 3 working volumes into the receiver.5.4 Fully open retentate valve, then stop the pump and place the system into the total recycle mode. Start the pump, set retentate pressure to 5psi,and operate in total recycle for ~5 min.=20 psig,5.5 Stop the pump and reset the system in to the SPFO mode. Set the Transmembrane pressure of the system to ~15 psid (e.g., PfeedP=10 psig). Start the pump and reduce the volume in the feed vessel to just above the vessel discharge. Do not withdraw too much liquid retfrom the feed vessel and entrain air into the system. Stop the pump. Open the retentate valve to full open. The system now has just the hold-up volume of buffer in it and is ready to accept the protein feed.5.6 Add the feed to the feed vessel. The total system volume = amount of feed added + the hold-up volume. The total system volume isconsidered Vo and is used to calculate concentration factor, diafiltration number, etc.6.1 Set the system flowpath to the total recycle mode (Figure 3).6.2 Start the agitator. The agitator should spin fast enough to cause a slight depression in the surface of the liquid in the vessel. The agitator should be monitored during the process and never be allowed to vortex the liquid and entrain air or cause foaming.6.3 Set the feedflow to 5 LMM. Allow the system to operate in the total recycle mode for ~5 minutes with the retentate valve fully open. Record temperature, Feed pressure, Retentate pressure and elapsed time. 6.4 Measure the permeate flowrate by redirecting the permeate line to a receiver on a balance or by collecting in a graduate cylinder. Measure thevolume (mass) for 1 min. Record the volume and calculate flux.6.5 Manipulating the retentate valve, increase the Transmembrane pressure by 5 psid. The TMP should increase but the DP (P feed -P ret ) should remain constant (see the example in Table 3).6.6 Repeat this measurement until the membrane flux becomes insensitive with the change in TMP. Reduce the TMP to and re-measure 1-2 of the flux measurements. If they are different by greater than 10% the membrane may have become polarized or fouled. Generally, avoid operating too far into the flux insensitive region.6.6.1 If polarization has occurred a depolarization step is recommended. To achieve this, lower the flow rate to ~10% of the operating feed flow rate and let the system run in total recycle for a minimum of 5 minutes. After the time has elapse re-measure the flux and compare to the original value. If the re-measured flux continues to differ by more than 20% the membrane may be fouled. At this point it is likelythat the flux can only be restored by stopping the experiment and cleaning. (See section 9 for more on depolarization)6.7 The optimum TMP is found by selecting a pressure slightly below the “knee” of the flux vs. TMP curve. In the example the knee of the curve is23-24 psid (Figure 7). The optimum TMP at this concentration is 20 psid.6.8 The Optimum TMP experiment may be repeated at an intermediate concentration and at the final concentration or just the final concentrationto find an over-all process TMP optimum.V o l u m e t r i c F l u x (L M H )Transmembrane Pressure (Psid)302520151050Figure 6.Flux and TMP Excursion Example at 5 LMMTable 3.Flux Excursion Data7.1 Determine the required permeate volume needed to be collected to achieve the target concentration.Equation 3 Vp = Vsi - (Vs i x Conc i / Conc T )Where:= Initial System Volume (Feed Volume + Hold-up Volume)VsiConc= Initial Concentrationi= Target ConcentrationConcTVp = Target Permeate Volume7.2 Zero the balance and set the system flowpath to concentration mode and start the pump and the timer.7.3 Set the TMP to the previously determined optimum TMP. Record time, temperature, the pressures and the permeate weight.7.4 As the concentration step progresses, the feed pressure (and TMP) may rise due to viscosity increase as a function of concentration. Adjust theretentate valve to hold TMP constant. The retentate valve may be fully open before the concentration step is finished. Adjust the pump to hold TMP constant. At higher concentrations the viscosity may become so high, it is not possible to control TMP with the pump. This is aconcentration end point for the fluid & membrane pair. If a higher concentration is still desired, it may be necessary to select a more open screen type.7.5 Once the concentration target is reached, open the retentate valve to full open. Stop the pump and close off the permeate isolation valve.8.1 Arrange the system flowpath to the Vacuum Diafiltration mode (Figure 8).8.1.1 If creating a vacuum is not possible with the equipment being used a second pump can be used to draw the DF buffer into the retentate vessel. The flowrate on the DF buffer pump must be set to match the flowrate of the permeate line. Adjustments to the flowrate of the DF buffer pump might be necessary throughout the process. This will ensure that the concentration within the system remains constantthroughout the diafiltration step.8.2 The amount of diavolumes used for purification of a target impurity is usually selected as the minimum amount of diavolumes required to achieve the purity target, plus a 2 diavolume safety factor. For example, if 6 diavolumes are required to achieve the purity target, then 8 diavolumes are used in the DF step. 1 diavolume is equivalent to the amount of fluid in the system (Vf+Vh-Vp). The number of diavolumes, N required for purification can be calculated by the following equation. Alternatively the figure in Appendix 1 can be used.Equation 4Cf = Ci e-S*NWhere: Cf = Final concentration of solute being diafiltered out Ci = Initial concentration of solute being diafiltered out S = sieving/passage coefficient = C permeate/C retentate)N = Number of diavolumesThe target permeate volume required to achieve the number of calculated diavolumes can be determined using equation 5.Equation 5N*Vs = VpWhere: N = Number of diavolumesVs = Volume in the system post concentrationVp = Target permeate volumeFigure 7.Vacuum Diafiltration ModeDiafiltration8.3 Mark the level in the vessel with a marker or piece of lab tape to be sure that the volume remains constant during diafiltration. Obtaina container with the required amount of DF buffer. Attach the DF line to the feed vessel. Cap off the vessel and pull a vacuum on thevessel headspace with a syringe to prime the diafiltration line.8.4 Start the pump. Adjust the TMP to match the TMP at the end of the concentration step. Record temperature, Feed pressure,Retentate pressure temperature, elapsed time and permeate weight (volume).8.5 When the diafiltration target volume has been reached, open the retentate valve, stop the pump, stop the agitator and close thepermeate isolation valve.9.1 The first step in the recovery operation is depolarization of the membrane. Polarization is a concentration gradient that occurs due to convective transport of protein towards the membrane wall. The depolarization step is recirculation under low feedflow and TMP conditions with the permeate isolation valve shut. Running with the permeate isolation valve closed can give rise to reverse pressure within the device. Limit the ΔP to </=20 psid for Pellicon® 3 devices and </=10 psid for Pellicon® 2 devices.9.2 Arrange the system flowpath to the Depolarization mode (Figure 8) by closing the permeate isolation valve, setting the retentate valve fullyopen and starting the pump. Operate the pump at low feedflow rates – low enough to avoid the ΔP limits outline in step 9.1.9.3 Recirculate the system in the depolarization mode for 5-10 min. Stop the pump after the recirculation time limit.9.4 Set the system flowpath to the blowdown/recovery mode as shown in Figure 9. Pump the protein product out at low ΔP into an appropriate sized container. When air bubbles appear stop the pump. Do not allow the protein product to foam.9.5 Add to the feed vessel 1 minimum working volume of buffer. Start the pump and recover this pool separately in container. As before, when air bubbles appear stop the pump. Do not allow the protein product to foam. Add this buffer chase pool to the recovery pool to increase recovery if the pool can tolerate dilution.9.6 Set the system into the total recycle mode (Figure 3). Add to the feed vessel 1-2 diavolumes of buffer to the system. Set the retentate valve to fully open. Set the feed flowrate to 2-3 LMM and recirculate for 5-10 min.9.7 Set the system flowpath to the blowdown/recovery mode as shown in Figure 9 (next page). Pump the recirculated buffer out at low ΔP intoan appropriate sized container. When air bubbles appear stop the pump.3-Way Figure 8.Depolarization ModeRecovery Operations3-WayFigure 9.Recovery Mode10.1 Add 200-300 mL of recommended CIP / Sanitization (Table 1) solution to the feed vessel. Set the system flowpath to the total recyclemode (Figure 3).10.2 Recirculate at 5 LMM feed flowrate for 30-60 min. Set TMP to approximately 15psid.10.3 Stop the pump after the CIP time interval. Return the system flowpath to the SPFO mode (Figure 2). Start the pump again and pump the feedvessel out to the receiver vessel.10.4 Add purified water to the feed vessel and start the pump. Flush the system to drain back to neutral pH. A microcassette based systemwill require approximately 1 L of purified water. Monitor pH with a meter or pH paper that sensitive in the neutral range. Check both retentate and permeate lines separately to ensure the system is truly back to neutral pH. Stop the pump.11.1 Add additional purified water to the feed vessel if necessary to ensure that the NWP measurement can be made without entraining airinto the system.11.2 Set the system flowpath to the total recycle mode. Start the pump and manipulating the feedflow, set the system feed pressure to read 10 psigand the retentate pressure to read 5 psig.11.3 Allow the system to recirculate for a minute or two. Measure the temperature of the feed vessel contents. Set the system flowpath to theUF concentration mode (Figure 4) and measure the change in mass over an elapsed time of 1 min, to find the permeate flowrate.11.4 Calculate the post CIP Normalized Water Permeability as we did in Section 3 using equations 1 and 2.11.5 Compare the Base-line NWP to the post CIP NWP. The Post CIP NWP should be >/= 80% of the Base-line NWP. (Post Post NWP/Base-lineNWP * 100%). If the comparison is less than 80%, then the membrane can be re-cleaned. CIP at an elevated temperature may be more effective at restoring NWP. NWP is a single indicator of membrane cleaning success. Data such as batch to batch process time, product quality and carryover studies should be used to determine criteria for successful membrane CIP processes.12.1 Arrange the system flowpath into the Single-Pass, Filtrate Open mode (Figure 2). Open the permeate isolation valve.12.2 Fill the feed vessel with 4 diavolumes of 0.1N NaOH solution.12.3 Set the pump to supply 5 LMM feed flow rate. Set the retentate pressure to 5 psig by restricting retentate flow with the retentate valve.Collect ~ 2 diavolumes into the receiver.12.4 Fully open retentate valve, then stop the pump and place the system into the total recycle mode (Figure 3).12.5 Start the pump, recirculate the remaining 2 diavolumes at 5 LMM for 5-10 min. Set TMP to approximately 15 psid.12.6 Remove membrane and store in 0.1N NaOH in a 2-8º C refrigerator.% S o l u t e R e m a i n i n g# of Diafiltration VolumesSolute Remaining vs. # of Diafiltration Volumes% Solute Passed = 100 - % Solute1001010.1Figure 10.Solute remaining versus number of diafiltration volumes To Place an Order or Receive Technical AssistanceIn Europe, please call Customer Service: France: 0825 045 645Germany: 01805 045 645Italy: 848 845 645Spain: 901 516 645 Option 1 Switzerland: 0848 645 645United Kingdom:***********For other countries across Europe, please call: +44 (0) 115 943 0840Or visit: /offices For Technical Service visit:/techserviceMerck Millipore, the M logo, Ultracel, Biomax, Labscale and Pellicon are registered trademarks of Merck KGaA, Darmstadt, Germany.Masterflex and StableTemp are registered trademarks of Cole-Palmer Instrument Company. Luer-Lok is a trademark of Becton Dickinson.MICROMETER is a registered trademark of RMFPT, Inc.Nalgene is a registered trademark of Nalge Nunc International Corporation.Lit No. RF1159EN00 Ver. 3.0 4/2016© 2016 EMD Millipore Corporation, Billerica, MA USA. All rights reserved.。
密理博超滤膜包水通量测量方法
密理博超滤膜包水通量测量方法你知道超滤膜吧？对，就是那种看起来不怎么样，但其实挺神奇的东西，它可以在水处理上发挥大作用。
那今天咱们就聊聊它的“包水通量测量方法”，也就是怎么评估它到底能处理多少水，水流得多快。
简单来说，就是测试超滤膜的能力，看看它能多高效地“搞定”水。
这听起来有点复杂，但你稍微用点心就能明白。
别担心，咱们一步一步来，轻松点，没啥难度。
你得知道，超滤膜主要是用来过滤水中的细小颗粒、细菌、一些有机物什么的。
它的作用挺大，可以用在很多地方，比如饮用水处理、污水处理，甚至是食品工业。
你想，能把脏水过滤成干净水，那得多牛！但咱们不是要讲它怎么做的，而是要讲它到底有多能干。
那就得测它的“包水通量”——就像你跑步一样，量一下你每秒钟能跑多少米，膜就是用这个方法来告诉你它的“跑步能力”。
好，咱们先搞明白，什么是“包水通量”。
其实就是单位时间内，超滤膜能通过多少水。
想象一下，你有一块海绵，水从上面倒下去，海绵吸水的速度就是它的“包水通量”。
如果海绵吸得快，说明它能处理更多的水，膜也是一样的道理。
如果海绵吸得慢，那水就滞留在上面，处理的能力就差。
这就像你去超市购物，购物车的容量越大，装得东西就越多。
膜的“购物车容量”就是它的包水通量。
要测这个，你得有一个固定的实验环境，免得测出来的结果不是很准确。
你需要一台专门的设备，把水通过超滤膜来。
实验的过程中，记得要保证水的压力、温度、流速这些因素都要控制好，不能让它们随便波动。
就像你去健身房，想测你能举多少斤的杠铃，杠铃的重量得保持不变，不然你哪知道自己到底有多强？你测量的时候，通常会在一定的压力下，通过膜来流动一定量的水，然后就可以计算它的包水通量了。
一般情况下，你还得看水的温度和水质，因为这两者会直接影响膜的性能。
比如水的温度太高，膜的性能可能会下降，水太脏，膜也会堵塞，流量就小了。
所以呢，你测试的水最好是清洁水，温度也要合适，这样得出来的数字才靠谱。
测量结果出来后，你可以通过一个公式来算出膜的通量。
Millipore的超滤管使用经验
蛋白浓缩和换Buffer通常使用的超滤管，可重复使用，使用一次就扔掉太浪费。
常用Millipore的Amicon-Ultra-15超滤管（MWCO10kD）。
也有其它型号的、不同体积大小和MWCO超滤管可选，视目的蛋白的分子量与浓缩前体积、浓缩目标体积而定。
以下是个人总结的使用方法和注意事项。
1、选择合适的超滤管，主要考虑MWCO和浓缩体积，最常见的是Ultra-15（10kD）。
到底选择多大截留分子量比较合适呢？10kDa、5kDa、还是30kDa？通常应截留分子量不应大于目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量为35kDa，就可以选择10kDa截留分子量的超滤管。
若目的蛋白分子量为10kD左右，则可以用截留分子量3kD的超滤管。
认真阅读使用说明书，注意超滤膜对各种化学物质的耐受程度有所不同，表格中有。
2、新买来的超滤是干燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全过膜，冰浴或冰箱里预冷几分钟。
然后将水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超过管顶的白线为准。
操作要轻，加入蛋白液前，超滤管需要插在冰上预冷。
3、平衡。
质量和重心二者都要达到平衡。
注意转速和加速度不可太快，否则直接损坏超滤膜。
开始离心超滤（离心机预冷至4度）。
不同离心机的转速rpm 换算成g之后，有所不同。
具体可参阅附件里的说明书。
离心机的加速度调至最低档，减小对膜的压力。
注意，一定要等离心机达到目的转速之后，方可离开离心机，否则离心机出问题时，无法第一时间处理，后果不可预测！膜与转轴的方向根据说明书调整（角转离心机的情况是膜与轴垂直）。
在实际使用中，一般转速开的比说明书里的要低，这样可以延长离心管的使用寿命。
4、当浓缩到剩下1ml时，【取50ul国产Bradford溶液，加入10ul流穿，看有没变蓝色，以此判断超滤管是否漏掉蛋白。
如果管漏了，将上层和流穿重新倒入新管中开始超滤。
要精确判断是否漏管，用5mgml的BSA离心10min，再取流穿，跑蛋白胶或Bradford粗测】，继续加入剩下的蛋白液浓缩（在冰上操作，防止蛋白受热），直到所有浓缩液都加完为止。
MILLIPORE密理博实验室纯水超纯水系统明澈
MILLIPORE密理博实验室纯水超纯水系统明澈-D 24 UVMERCK MILLIPORE 默克密理博实验室纯水超纯水系统明澈-D 24 UV是“基于原密理博成熟技术全新开发的高品质实验室纯水系统”，它以“集成资源，联合开发”的研发模式，建立在原密理博成熟领先的技术，法国优秀的设计，德国严谨的制造基础上，结合中国消费者真实需求全新开发而成。
是直接以自来水为进水生产纯水和超纯水，其中纯水流速为24 升每小时，日产水量在100 升以上；超纯水流速为2 升每分钟。
MERCK MILLIPORE 默克密理博实验室纯水超纯水系统明澈-D 24 UV系统描述：MERCK MILLIPORE 默克密理博实验室纯水超纯水系统明澈-D 24 UV采用原密理博最核心的纯化技术：反渗透、核子级离子交换树脂，185/254 nm 双波长紫外灯，高效率终端除菌过滤器，将自来水处理为满足各类理化、生物等众多实验要求的高品质超纯水。
系统特征CKD-Completely Knock Down-完全进口散件组装明澈-D 24 UV 是以国际先进的CKD 方式生产，及所有散件原装法国生产，国内组装；其次，明澈-D 24 UV 配件均采用国际顶级知名品牌和最好的材质，如Parker、PVDF、PFA 材质软管等。
从而最大限度的保证了设备的耐用性又为客户带来了实惠。
舒适灵活取水明澈-D 24 UV 自带远程取水单元，可实现远程取水，从而节省了实验室大量空间；手臂上可显示产水水质，并给予报警提醒；同时可360 度移动，适合各种容量的玻璃器具250mL 量筒、5 L 长颈瓶、甚至30 L 的大瓶；高精度电导率仪明澈-D 24 UV采用Millipore和德国计量研究员合作开发的高精度电阻率检测器,电导池/电极常数达到0.01 cm-1，温度灵敏度为0.1°C。
该电阻率测量仪能以温度补偿和非温度补偿两种模式显示。
高回收率明澈-D 24 UV 均自带反渗透弃水回收功能，可以将弃水回收，从而提高自来水的利用率，最高回收率可以做到50%。
L129 默克密理博超纯水机操作规程-20150519
1 目的规范本检测中心默克密理博Elix Essential Milli-Q超纯水机操作程序。
2 适用范围本规程适用于默克密理博Elix Essential Milli-Q超纯水机。
主要用于检测中心用普通实验用水超纯水和高精仪器超纯水的制备。
3 职责检测中心使用人员应严格按照本使用规程进行操作、维护。
4 定义（无）5 操作方法5.1 接通水源后，接通电源打开机箱后部电源开关，当有原水时，屏幕会显示电导率、剩余水量等。
本机系统即启动运行。
5.2运行一段时间后，水箱达到高水位，增压泵自动停机，屏幕左侧余水显示区满格显示。
水箱水位下降至设定值（默认95%）时，增加泵自动启动主机开始工作，屏幕左侧余水显示区闪动，直到高水位时再自动停机。
5.3纯水取水：打开蓄水水箱正中间的阀门，水箱出水。
再关闭阀门即可停止取用纯水。
5.4超纯水取水5.4.1 不定量取水：当按下取水器Q-POD时，与之连接的底座显示当前水质的电阻值、温度、TOC 值并出水。
再按下即可停止取用超纯水。
根据按压取水器Q-POD的5.4.2 Q-POD底座屏幕，通过“”“”设定需要取水的量后，按最中间的量筒形状的按钮，即可定量取水，待取水量达到所设定的量，超纯水机自动停止出水。
6 注意事项6.1 在按最上方菜单键后出现“沙漏”图标和虚线，制水功能将停止。
超纯水机进入待机模式，等待“沙漏”图标消失，可对仪器进行参数设置。
按向左键“”和菜单键可退出，恢复正常工作。
6.2 不要在水箱没水时取水。
6.3 定期检查预处理器所用耗材更换的时间。
6.4 当仪器出现红色报警信息时或发出蜂鸣报警声时，请及时通知仪器负责人。
7 本文解释权归无穷食品有限公司检测中心。
8 相关文件/资料名称文件编号8.1《水净化系统的性能的检查记录》 WQL-ZJ-839 相关记录（无）10 附录（无）。
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超滤实验
1、实验目的：通过超滤除去细胞收集液中的杂质，使得细胞收集液中的有效成分得到富集。
2、实验原理：超滤是一种加压膜分离技术，即在一定的压力下，使小分子溶质和溶剂穿过一定孔径的特制的薄膜，而使大分子溶质不能透过，留在膜的一边，从而使大分子物质得到了部分的纯化。
3、试剂和器材
3.1、试剂
3.1.1 PBS溶液：取PBS一包，溶于超纯水中并稀释至２L，现配现用。
3.1.2 0.5mol/L氢氧化钠溶液：称取氢氧化钠200.000g，溶于超纯水中并稀释至10L。
3.1.3 0.1mol/L氢氧化钠溶液：称取氢氧化钠40.000g，溶于超纯水中并稀释至10L。
3.1.4 1%亚硫酸氢钠溶液：称取亚硫酸氢钠10.000g，溶于超纯水中并稀释至1L。
3.2、材料
培养过细胞的收集液
3.3、器材
3.3.1 蠕动泵1个
3.3.2 30KD膜包、3KD膜包
3.3.3 可高压灭菌带把手细口大瓶4个
3.3.4 冰箱（-20℃）1台
3.3.5 PH试纸（范围6-8）若干
3.3.6 计时器1个
3.3.7 5L大烧杯4个
3.3.8 灭菌的10ml离心管5支
3.3.9 灭菌的1.5ml EP管5支
3.3.10 封口膜若干
3.3.11 千分位的电子天平一台
3.3.12 保鲜膜一卷
3.3.13 橡胶管子3根（1m/根）
4、操作方法
4.1、超滤除杂
4.1.1系统安装：放好垫片，将30KD 0.5㎡膜包放于Pellicon夹具中，将螺丝拧紧（对角线）；
4.1.2冲洗：在清洗罐中加入无菌纯水，将透过管和回流管处于排放状态，回流阀全开，调节泵转速为35rmp左右，进行回流端冲洗，冲洗体积为10L-20L/㎡（5L）；随后将回流管放回清洗罐，透过管处于排放状态，调节泵转速和回流阀至透膜压达到0.2bar，进行透过端冲洗，冲洗体积为10L-20L/㎡（5L）；
4.1.3超滤除杂：在进料罐中装入料液（留样），将回流管放入进料罐中，透过管放入收集容器中，调节泵转速与回流阀至透膜压达到0.9bar（进口压1.2bar，回流压0.6bar），当透过液进入容器时开始计时，超滤过程中向进料罐中按照1:1（料液：PBS缓冲液）加入PBS缓冲液，分2-3次进行洗滤，至浓缩液体积达到500mL 左右，终止超滤，留样。
4.1.4冲洗：同4.1.2；
4.1.5清洗：在清洗罐中加入0.5M NaOH，将透过管和回流管处于排放状态，回流阀全开，调节泵转速为35rmp左右，进行回流端清洗，清洗体积为10L-20L/㎡（5L）；随后将回流管放回清洗罐，透过管处于排放状态，调节泵转速和回流阀至透膜压达到0.2bar，进行透过端清洗，清洗体积为10L-20L/㎡（5L）；
4.1.6冲洗：在清洗罐中加入超纯水，将透过管和回流管处于排放状态，回流阀全开，调节泵转速为35rmp左右，进行回流端冲洗，用PH试纸对回流端流出的液体进行pH检测，至pH达到中性即可终止冲洗；随后将回流管放回清洗罐，透过管处于排放状态，调节泵转速和回流阀至透膜压达到0.2bar，进行透过端冲洗，用PH试纸对透过端流出的液体进行pH检测，至pH达到中性即可终止冲洗；
4.1.7卸膜包：将膜包和垫片从夹具中取出，浸泡于1%的亚硫酸氢钠中。
4.2、超滤浓缩
4.2.1系统安装：将3KD 0.5㎡膜包平行放于Pellicon夹具中，将螺丝拧紧（对角线）；
4.2.2冲洗：在清洗罐中加入无菌纯水，将透过管和回流管处于排放状态，回流阀全开，调节泵转速为35rmp左右，进行回流端冲洗，冲洗体积为10L-20L/㎡（5L）；随后将回流管放回清洗罐，透过管处于排放状态，调节泵转速和回流阀至透膜压达到0.9bar，进行透过端冲洗，冲洗体积为10L-20L/㎡（5L）；
4.2.3超滤浓缩：在进料罐中倒入除杂透过液，将回流管放入进料罐中，透过管处于排放状态，调节泵转速与回流阀至透膜压达到0.9bar（进口压1.2bar，回流压0.6bar），当透过液流出时开始计时，至浓缩液体积达到500mL左右，终止超滤，留样。
4.2.4冲洗：同4.2.2；
4.2.5清洗：在清洗罐中加入0.1M NaOH，将透过管和回流管处于排放状态，回流阀全开，调节泵转速为35rmp左右，进行回流端清洗，清洗体积为10L-20L/㎡（5L）；随后将回流管放回清洗罐，透过管处于排放状态，调节泵转速和回流阀至透膜压达到0.9bar，进行透过端清洗，清洗体积为10L-20L/㎡（5L）；
4.2.6冲洗：在清洗罐中加入超纯水，将透过管和回流管处于排放状态，回流阀全开，调节泵转速为35rmp左右，进行回流端冲洗，用PH试纸对回流端流出的液体进行pH检测，至pH达到中性即可终止冲洗；随后将回流管放回清洗罐，透过管处于排放状态，调节泵转速和回流阀至透膜压达到0.9bar，进行透过端冲洗，用PH试纸对透过端流出的液体进行pH检测，至pH达到中性即可终止冲洗；
4.2.7卸膜包：将膜包从夹具中取出，浸泡于1%的亚硫酸氢钠中。
注：
5、注意事项
5.1每次实验前应该应该提前1小时打扫超滤间，并打开紫外线进行灭菌。
5.2将膜包放于Pellicon夹具中后应该成对角线方向旋紧螺丝，这样可以防止膜包由于局部承压过大造成物理损伤。
5.3实验过程中操作人员应全程跟踪，防止由于压力突变对设备造成损害。
5.4认真填写设备使用维护记录表以备相关监督人员检查。