标本采集2019
新冠肺炎病毒(CoVID-19)标本的采集及检测详解
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怎样识别新冠病毒感染者呢?
• 离不开实验室检测
标本采集与实验室检测
• 医疗卫生机构要及时采集实验室检测标本 • 应在12小时内反馈实验室检测结果 • 标本采集、运送、存储和检测严格按照新型冠状病毒肺
炎实验室检测技术指南执行 • 各地区聚集性疫情病例,以及境外输入病例的所有原始
标本应当送至中国疾控中心进行复核 • 各地发生的首例和感染来源不明的病例以及环境监测发
拭子鼻拭子或特定部位组织样本,储存的样本可用 于后续的核酸等检测实验。 • 不能用于病毒培养分离。 • pH:不要求。
非灭活型病毒保存液
• 低温非冻型保存,不破坏病毒的外壳,保持病 毒完整性;
• 采样液中的抗生素能有效防止细菌和真菌污染; • 采样液添加了牛血清白蛋白,能保护病毒样本,
提高分离率。 • pH要求:7.4-7.6。 • 可用于病毒核酸提取等后续检测,也可用于病
• 上呼吸道标本:包括鼻咽拭子、咽拭子等。 • 下呼吸道标本:深咳痰液、肺泡灌洗液、
支气管灌洗液、呼吸道吸取物等。 • 便标本/肛拭子:留取粪便标本约10g(花生
米大小),或者3-5ml便液。推荐采集肛拭 子。 • 血液标本:尽量釆集发病后7天内的急性期 抗凝血,采 集量5ml,建议使用含有EDTA抗 凝剂的真空釆血管采集血 液。
• 商品化的采样器材:病毒采样管。咽拭子。 真空采血管及采血针等。
咽拭子
• 缠绕式咽拭子,植绒式咽拭子; • 有折断点位的; • 保存期(一般3年); • 长短粗细不同规格。
咽拭子
商品化病毒采样管
• 病毒保存液:病毒样品在采集之后,通常 样品采集处都不能进行及时进行PCR检测, 所以需要对采集的病毒拭子样品进行运输, 而病毒本身在体外很快就会裂解掉影响后 续检测,所以在保存及运输时,就需要加 入养分离。 • 具有操作者被感染的潜在危险。
标本采集及注意事项PPT课件
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关键要点
◆ 采血指征 ◆ 采血时间 ◆ 采血次数 ◆ 接种血量 ◆ 怀疑血流感染时应常规行血培养
怀疑患者有血流感染的症状: 1.不明原因的发热(>38℃)或低温(<36℃) 2.休克、寒战、僵直 3.白细胞增多(>10×10^9/L,特别有"核左移"未 成熟的或带状的白细胞增多) 4.粒细胞减少(成熟的多核白细胞<1×10^9/L)
12
血培养
◆ 定义
将新鲜离体的血液标本接种于营养 培养基上,在一定温度、湿度等条件 下,使对营养要求较高的细菌生长繁 殖并对其进行鉴别,从而确定病原菌 的一种人工培养法。用于菌血症、败 血症及脓毒败血症的病因学诊断。一 般需要5-7天,才能出报告。
13
血培养意义
◆ 血流感染严重影响患者的生命安全 ◆ 明确诊断是何种病原菌感染 ◆ 减少抗菌药物的误用和滥用 ◆ 大大的改善患者的预后 ◆ 降低患者的病死率,减少医疗花费
针头? ◆ ——无需更换,对提升阳性率无统计差异,增加了针刺伤的几率
38
血培养标本采集注意事项
◆ 1.严格无菌操作,避免污染。 ◆ 2.不应从留置静脉或动脉导管处抽血,
因为导管易被固有菌群污染。 ◆ 3.采血量及采血间隔 成人8~10ml,婴幼
儿1~3ml。两部位采血时间小于5min。 ◆ 4、根据是否使用过抗生素,准备合适
6
一、血液标本采集
◆ 5、采血部位:严禁在输液、输血针头或皮 管内抽取血标本。当取血不顺利时,切忌 在同一处反复穿刺,易导致标本溶血或有 小凝块,影响监测结果。输液时应在输液 的另一侧手臂采血。用注射器采血时,不 要用力抽吸,往采血管内注入血液时要拔 掉针头,沿试管壁缓缓注入,避免产生泡 沫和溶血。
血液标本采集及送检ppt课件
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•
静脉采血法根据采血方式可分为
普通采血法和负压采血法
静脉采血法
采血部位
采血器材
采血步骤
静脉采血部位
采血器材
• (1)负压采血法 负 压采血法又称为真空 采血法,具有计量准 确、传送方便、封闭 无尘、标识醒目、刻 度清晰、容易保存、 一次进针多管采血等 优点。 • (2)主要器材:负压 采血器材由双向采血 针、采血管构成
• 动脉血气分析是判断呼吸衰竭最客观 的指标
动脉采血常用的部位
通常选用桡动脉、肱动脉、股动脉、足 背动脉,婴幼儿也可以选择头皮动脉
首选桡动脉
血液标本送检
标本应尽快送检,不应放置过久,一般2小时送检,以免影响 检查结果。新生儿血糖要及时送检,晚送血糖测不出 特殊标本必须注明采集时间,并按规定时间送检 特殊情况无法及时送检,标本室温放置不超过4小时, 严禁冷冻保存以免造成溶血
• 对艾滋病病毒抗体检测的影响 可能造 three 成假阳性的检测结果
THANK
YOU
SUCCESS
2019/4/23
血标本溶血的原因
• 1、静脉充盈不良,血管弹性差 • 2、止血带扎得太紧,时间过长并用力拍打 穿刺部位 • 3、使用注射器采集标本后,未按操作规程 将血液沿试管壁缓缓注入 • 4、抽血时负压过大血标本中混有泡沫 • 5、静脉穿刺处消毒液未干即开始采血 • 6、标本在混匀过程中动作过猛 • 7、血标本采集后未及时送检,放冰箱受冻
• 患者发热期间越早越好,从正在发冷、 发热时,或发热前半小时为宜
采血量
• 不低于16—20ml,先将8—10ml注 入蓝色的需氧血培养瓶中,再将剩 下的注入红色厌氧血培养瓶中
血培养采血部位
2019护士资格证考试试题及答案:标本采集
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2019护士资格证考试试题及答案:标本采集魏老师第十四节标本采集一、A11、留24小时尿标本时加入甲醛的作用是A、固定尿中有机成分B、防止尿液中的激素被氧化C、防止尿液被污染变质D、保持尿液中的化学成分E、防止尿液改变颜色2、做真菌培养时,取分泌物的部位是A、双侧腭弓B、咽部C、扁桃体D、溃疡面E、舌面3、留取血吸虫孵化检查的粪便标本应A、于进试验饮食3~5天后留取B、留全部粪便及时送检C、将便盆加热后留取全部粪便D、用竹签取脓血黏液粪便置培养管内E、取少量异常粪便置蜡纸盒内送检4、采集血细菌培养标本时,血量宜为A、2mlB、4mlC、5mlD、7mlE、10ml5、护士经股静脉采血,其穿刺部位是A、股动脉内侧0.5cmB、股动脉外侧0.3cmC、股神经内侧0.3cmD、股神经外侧0.5cmE、股动脉与股神经之间6、做血气分析的血标本应放置于A、干燥试管中密封B、肝素抗凝注射器中密封C、无菌试管中密封D、枸橼酸钠试管中密封E、草酸钾抗凝试管中密封7、护士为亚急性细菌性心内膜炎患者采集血培养标本时,最适宜的采集时间应在A、发热前,抗生素应用前B、发热前,抗生素应用后C、发热时,抗生素应用后半小时D、发热后,抗生素应用1天后E、任何时间均可8、对17-羟类固醇检查的尿标本使用浓盐酸防腐剂的作用是A、防止尿中激素被氧化B、固定尿中有机成分C、保持尿液的化学成分不变D、避免尿液被污染变质E、防止尿液颜色改变9、不符合血培养标本采集原则的是A、标本容器外贴标签B、采集量一般为3mlC、在使用抗生素前采集D、采集时严格执行无菌操作E、血液注入标本瓶后轻轻摇匀10、留24h尿标本时加入甲醛的作用是A、固定尿中有机成分B、防止尿液中的激素被氧化C、防止尿液被污染变质D、保持尿液中的化学成分E、防止尿液改变颜色11、采血进行哪项检查时,需用抗凝管采血A、甘油三酯的测定B、肝功能检查C、血清酶测定D、尿素氮测定E、血钠测定12、防止血标本溶血,下列哪项是错误的A、选用干燥注射器和针头B、避免过度震荡血标本C、采血后带针头沿管壁将血液注入D、标本应及时送检E、需全血标本时,应采用抗凝管二、A21、患者男,70岁。
标本采集及注意事项课件
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要点二
详细描述
新生儿和儿童由于体格发育尚未成熟,在进行血液标本采 集时需注意采血量和使用合适的采血方法,以避免对患儿 造成伤害。孕妇在进行标本采集时,应遵循安全、无创的 原则,尽量避免对胎儿造成影响。而老年人由于身体机能 下降,在进行标本采集时需注意其身体状况和药物使用情 况,以避免对检测结果产生影响。
采集方法不正确
总结词
采集方法不正确可能导致标本的质量下降或 无法满足实验要求。
详细描述
采集方法不正确的可能原因包括采集流程不 规范、采集部位不当或采集时患者状态不佳 。为解决此问题,应制定并遵守规范的采集 流程,确保采集部位的准确性和安全性;同 时,在采集前应对患者进行评估,确保其在 最佳状态下接受采集。
尽量选择在早晨空腹时采集标本 ,以避免饮食对标本的影响。
02
确定采集时间后,准时到达,避 免延误。
选择合适的容器
根据采集的标本类型选择合适的容器,如尿液常规检查可使用清洁干燥的尿杯或 尿液收集器。
容器应足够清洁,避免污染标本。
正确的采集方法
根据采集的标本类型,采用正 确的采集方法。
如尿液常规检查,先清洗外阴 ,取中段尿,避免前段尿和后 段尿的干扰。
使用清洁容器收集尿液, 避免污染,记录尿液采集 时间。
注意事项
尿液采集前需清洗外阴部 ,避免月经期间采集尿液 ,尿液需及时送检。
粪便标本采集
标本类型
新鲜粪便、24小时粪便等 。
采集方法
使用干净容器采集粪便, 避免污染,记录粪便采集 时间。
注意事项
粪便采集前需告知患者避 免食用影响检测结果的食 物,如含有色素、纤维等 食物,粪便需及时送检。
总结词
除了上述问题外,标本采集过程中还可能遇到其他一些问题,如患者依从性差 、成本高等。
临床常用标本的采集PPT医学课件
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24小时尿标本采集方法
• 在第一次留取尿液时应加防腐剂,使之与尿 液充分混合,防止尿变质,并将尿容器置于 阴凉处,盖上盖子;
• 根据检查要求不同,防腐剂种类亦不同;
常用的几种防腐剂及用法
名称
40%甲 醛
浓盐酸 甲苯
红头 无添加剂(血清) 生化、免疫
黄头
促凝剂+分离胶管 生化、免疫、肿瘤
蓝头
枸橼酸钠1:9抗凝管 凝血、D-二聚体
黑头
枸橼酸钠1:4抗凝管 血沉
绿头 肝素锂抗凝管
急诊生化、血流变、TNT
紫头
EDTA-K2抗凝管
血常规、血型、交叉配血、糖化血红蛋白
血培养
• 目的:预防败血症;确定致病细菌,确定抗生 素;监控抗生素的浓度和细菌杀死的情况;
用无菌棉签取中央部分或脓血、粘 液部分2-5g致培养瓶内,塞紧瓶盖。
潜血标本(OB)检查前3天禁食肉类、肝、血、含大 量绿叶素的食物或含铁剂药物,三 天后留取标本送检。
寄生虫或虫卵 虫卵:不同部位的异常粪便5-10g
标本
蛲虫 :用透明胶带粘肛门周围
阿米巴:便器加热致人体体温
采集粪便标本的注意事项:
• 2.注射器采血顺序: 为避免血液在注射器中停留时间过长,造成血 液微小凝集,故采血顺序略有更改如下: 血培养瓶(厌氧优先) 凝血试管(蓝色) 其它有抗凝剂管(黑-绿-紫-灰) 无添加剂 管(红色,金黄色管)
注意事项
• 严禁在输液、输血的针头处抽取血标本,以免 影响检验结果。应在对侧肢体采取。
• 容器:一次性转运拭子 • 送检:2小时内送检; • 操作方法:
尿液标本采集
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尿液标本采集规范
采集时机:宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。
清洁尿(中段尿、导尿、膀胱穿刺尿):适用于细菌培养,应注意无菌操作。
采集方法:1)清洁中段尿
女性:采样前用肥皂水或0.1%的高锰酸钾溶液等清洗外阴,用手指分开阴唇,弃其前端段尿,不终止排尿,留取中段尿10-20ml于无菌容器内。
男性:采样前用肥皂水或0.05%-0.1%的碘伏溶液等清洗尿道口,擦干后上翻包皮,弃其前端段尿,不终止排尿,留取中段尿10-20ml于无菌容器内。
2)导管导尿:
直接导尿法:使用0.05%-0.1%的碘伏溶液等消毒剂消毒会阴局部,用导尿管经尿道插入膀胱,先弃其前段尿液约15ml,再留取中段尿液10-20ml于无菌容器内。
留置导尿管法:采集前先夹闭导尿管,采集时则松管弃其前段尿液,使用0.25%-0.5%的碘伏溶液等消毒剂消毒导尿管的采样部位,使用无菌注射器斜刺入导尿管(从采样口或靠近尿道的导尿管管壁)抽取10-20ml尿液于无菌容器内。
标本运送:标本采集后应及时送检并接种,室温下保存时间不应超过2h(夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存),如果不能及时送检或接种,应4℃冷藏,但保存时间也不应超过8h。
注意事项:不应从集尿袋中采集尿液。
尿液中不应加防腐剂或消毒剂。
多次采集或24小时尿不应用于尿液培养。
若尿液培养前患者曾使用抗菌药物,应反复多次送检。
不应对长期留置导尿管病人常规进行尿液培养。
2019年5月22日。
卓顶精文2019检验标本采集运输指南
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封面前言医学检验的目的就是对临床标本进行检测分析,为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室依据。
为确保实验结果的及时、准确、可靠,就必须保证分析前标本的质量,这就要求广大医护工作者及就诊患者了解各类标本采集、运输等方面的知识和要求。
为此,医学检验科、护理部、感染管理科共同制订《检验标本采集运输指南》手册,供全院医务人员使用,以确保实验室分析前的标本质量,并真诚希望广大医务人员在使用本手册的过程中多提宝贵意见,以利于进一步的提高和完善。
宾阳县人民医院检验科、护理部、感染管理科2019年8月4日目录第一部分检验科各检测项目标本采集要求 (4)第二部分检验标本采集运输要求 (5)第三部分患者采血前的准备 (6)第四部分检验标本采集运输作业指导书 (6)一、静脉血液采集运输作业指导书 (6)二、末梢血采集运输作业指导书 (8)三、动脉血液采集运输作业指导书 (9)四、尿液标本采集运输作业指导书 (10)五、粪便标本采集运输作业指导书 (11)六、前列腺液采集运输作业指导书 (11)七、精液采集运输作业指导书 (12)八、脑脊液标本采集运输作业指导书 (13)九、浆膜腔积液(胸水)采集运输作业指导书 (14)十、浆膜腔积液(腹水)采集运输作业指导书 (15)十一、骨髓采集运输作业指导书 (16)十二、临床微生物标本采集运输作业指导书 (18)第五部分标本采集运输流程 (20)第六部分检验标本的接收、拒收标准及流程 (21)1.检验标本的接收标准: (21)2.不合格标本拒收标准: (21)3.检验标本接收流程: (22)4.不合格标本拒收流程: (23)第一部分检验科各检测项目标本采集要求项目容器规格(头盖颜色)标本量备注生化项目(肝功、肾普通管(红色)3-5ml功、电解质、心肌酶学、血脂、血糖、特定蛋白组合、超敏C反应蛋白、胰腺炎组合、血淀粉酶、结核抗体等)免疫项目(五项检普通管(红色)3-6ml查、乙肝六项、乙肝两对半(定量)、甲型、戊型肝炎病毒抗体检测、EB、肿瘤标志物、性激素六项、甲功五项、HCG、孕酮等)优生九项、产前筛查、免费三项、ANA谱、肥达氏反应等普通管(红色)4-6mlHBV-DNA 普通管(红色)2ml凝血四项、D2聚体柠檬酸钠9:1(蓝色)准确抽血至刻度(需混匀)血沉柠檬酸钠4:1(黑色) 1.6ml 准确抽血至刻度(需混匀)血液流变学肝素钠抗凝(绿色)>5ml 不能少于5ml(需混匀)血常规+血型、地贫基因检查EDTAK2抗凝(紫色)2-3ml (需混匀)地贫筛查、微量元素检测肝素钠抗凝(绿色)1-2ml (需混匀)HPV、CT、NG、UU、HSV专用管(加分泌物)血培养专用血培养瓶(蓝色、绿色为成人、黄色为儿童瓶)成人:>5ml;儿童:2-5ml 到微生物室领专用血培养瓶尿常规尿杯留取半杯到检验科一楼6号窗领尿杯至少15ml大便常规试管指头大小3-5克到检验科一楼6号窗领试管脑脊液、胸腹水常规+生化干净试管2-5ml 迅速送检第二部分检验标本采集运输要求1.标本采集要求1.1采集标本时所需要的与生物安全防护水平相适应的设备。
各种标本采集检测与注意事项ppt课件

*留尿过程中将盛尿容器置 阴凉处,并根据检验要求加 入防腐剂.
12
二.尿标本采集法
名称
甲醛 浓盐酸
甲苯
常用防腐剂的作用及用法
作用
用法
固定尿中有机成 24小时尿中加
分,
40%甲醛1m
防腐
l~2ml
防止尿中激素被 24小时尿液中
氧化,
加5ml~10
防腐
ml
举例
爱迪计数
17-羟类固醇 17-酮类固醇
保持尿液的化学 成分不变
防腐
每100ml尿 尿蛋白定量,尿
中加0.5%~ 糖定量
1%甲苯2ml, K.Na.Cl
应在第一次尿液 肌酐.肌酸的定
倒入后再加
量检查
13
二.尿标本采集法
3.尿培养标本 取未污染的尿液做细菌
学检查 采集方法:导尿术和留
取中段尿法(嘱病人自 行排尿,弃去前段,用 试管夹夹住无菌试管, 接取中断尿约5ml, 盖紧塞子,贴标签,标 标签,及时送验)
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三.粪便标本采集
4.培养标本: 检查粪便中的致病菌 (1).用物:粪便培养管或
无菌蜡纸盒,无菌棉签 (2).操作步骤: 向病人解释目的,嘱病人排便
于盆中,用无菌棉签取带脓血 或黏液的粪便少许,置培养管 或无菌蜡纸盒中,立即送检. 如病人无便意时,用长棉签蘸 无菌生理盐水,由肛门插入约 6cm~7cm,顺一方向轻 轻旋转并退出棉签,置于无菌 培养管中送验.
清洁玻璃瓶 (2)操作步骤: 核对无误,向病人解释目的,以取得
合作. 嘱病人将晨起第一次尿约100ml
留于清洁玻璃瓶内,因晨尿浓度较高, 未受饮食影响,故检验较准确. *尿潴留或昏迷病人可通过导尿术留 取标本. *女病人在经期不宜留取尿标本
皮肤、软组织及伤口标本采集技术规范

皮肤、软组织及伤口标本采集技术规范【名词定义】采集患者创面、伤口及脓肿感染标本进行细菌培养及药物敏感试验。
【适应证】1.怀疑皮肤及软组织感染包括烧伤创面感染、手术后切口感染、急性蜂窝织炎、外伤感染、咬伤感染及压疮感染等时采样。
具体如下(1)皮肤或皮下脓肿受累部位出现红、肿、热、痛,需手术切开引流时。
(2)深部脓肿表现为局部疼痛和触痛并伴有全身症状,发热、乏力、食欲减退等。
(3)创伤或手术部位感染。
2.烧伤患者出现发热、创面恶化时,考虑采样。
3.烧伤的组织宜做定量培养,定量检验结果2105CFU/g则可预示有可能进展为创伤相关脓毒症。
【禁忌证】1.浅表伤口标本不能进行厌氧培养。
2.烧伤患者的早期创面无菌,烧伤后12小时勿采集标本,创面的拭子标本不能用于厌氧培养。
【目的】取皮肤、软组织标本进行细菌学检测,协助诊断皮肤、软组织及伤口感染。
【制度与依据】1.本规范理论部分主要依据:中华预防医学会医院感染控制分会发表于2018年第28卷第20期中华医院感染学杂志的《临床微生物标本采集和送检指南》。
感染性疾病的正确诊治需要以正确的病原学检测作为指导,而正确的病原学检测其前提是采集和送检合格标本。
因此,必须规范微生物标本的采集和运送,避免因标本的不合格,产生错误的病原学检测结果而误导临床治疗。
3.本规范操作部分主要依据:中华人民共和国国家卫生健康委员会2018年12月11日发布,2019年6月1日实施的《临床微生物学检验标本的采集和转运》,是中华人民共和国卫生行业标准,WS/T640—2018o本标准是按照GB/TL1—2009给出的规则起草;起草单位:北京大学人民医院、中日友好医院、安徽省立医院、首都医科大学附属北京友谊医院、北京医院、北京市垂杨柳医院。
【准备】1.用物准备:医嘱单、皮肤、软组织标本化验单或标本条形码、无菌治疗盘、75%酒精、棉签或棉球、无菌螺帽容器或棉拭子1〜2个、IOn I I注射器1〜2个、检查手套、手消液,需做厌氧菌检查者备厌氧血培养瓶1个,检查用物的有效期,物品处于备用状态。
基础护理-标本采集

采集的胸腔积液需要立即送检, 进行细胞计数、生化检测、细菌 培养和细胞学检查等,以协助诊
断和治疗。
关节液标本采集
关节液是关节内的润滑液,正常情况 下量较少,当出现异常增多时,可能 提示有关节炎症、感染或退行性病变 。
采集的关节液需要立即送检,进行细 胞计数、生化检测、细菌培养和免疫 学检查等,以协助诊断和治疗。
采集时间的记录
为确保可追溯性,应记录每个标本的采集时间,以便后续 分析。
采集量控制
标本量的影响
标本量不足或过多都会影响检验 结果的准确性。例如,血液样本 量不足可能导致某些指标无法检 测,而样本量过多则可能稀释样
本,导致结果偏低。
标准化采集量
为确保结果的准确性,应遵循标 准化采集量,避免误差。
特殊情况的处理
采集人员需配备必要的防护用品,如手套、口罩等,以保障自身安 全。
采集物品准备
1 2
选择合适的采集容器
根据采集目的和要求,选择合适的采集容器,如 真空采血管、培养瓶等。
检查采集物品的有效期和完好性
确保采集物品在有效期内且完好无损,避免因物 品问题影响采集结果。
3
准备必要的辅助工具
如止血带、消毒液、棉签等,以确保采集过程顺 利进行。
自主权。
02
常见标本采集技术
血液标本采集
静脉采血
从肘静脉或手背静脉采 集血液,常用作生化、
免疫等检测。
动脉采血
采集动脉血液,常用于 血气分析。
末梢采血
在手指或耳垂采集少量 血液,适用于快速血糖
检测。
骨髓穿刺
通过骨膜采集骨髓液, 用于诊断血液系统疾病
。
尿液标本采集
清洁中段尿
排尿前清洗外阴,取排尿中段 的尿液。
标本采集PPT课件

标本保存方法与期限
常温保存
适用于对温度要求不高的标本, 如部分免疫学检测标本。
冷藏保存
适用于需要低温保存的标本,如生 化检测标本、凝血功能检测标本等 。一般可保存24小时至数天不等。
冷冻保存
适用于需要长期保存的标本,如病 毒学检测标本、遗传学检测标本等 。可保存数月至数年不等。
行惩罚。
定期进行质量评估与改进
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02
03
04
定期对标本采集质量进行评估 ,包括标本合格率、污染率、
误差率等指标。
对评估结果进行分析,找出问 题所在,制定改进措施并跟踪
实施效果。
鼓励标本采集人员提出改进意 见和建议,促进质量管理体系
的持续改进。
与其他医疗机构或实验室进行 交流合作,分享经验和教训,
在接收标本时,要仔细核对标本信息、容器完整性以及运输文件 等,确保无误。
登记记录
将接收的标本信息进行详细登记,包括接收时间、接收人员、标 本状态等。
异常处理
如发现标本有损坏、污染或信息不符等情况,要及时与送检方联 系并妥善处理。
06
质量控制与安全管
理
建立完善质量管理体系
制定标本采集、运输、保存等各 环节的标准操作程序(SOP)。
设立专门的质量管理部门,负责 监督、检查标本采集全过程。
定期对质量管理体系进行内部审 核和外部评审,确保其有效性。
加强人员培训与考核
对标本采集人员进行专业培训, 包括理论知识、操作技能、安全
防护等方面。
定期对标本采集人员进行考核, 评估其操作技能水平和理论知识
掌握程度。
建立奖惩机制,对表现优秀的标 本采集人员给予表彰和奖励,对 操作不规范或造成质量问题的进
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? 婴幼儿采血量不超过患者总 血量的1%
CLSI M47A-Principle and procedures for blood cultures
采集血量
? 成人患者,每套采集 20~ 30ml(病原菌的阳性培 养率与血量成正比)。
? 婴幼儿患者,采血量不超 过患者总血量的 1%
感染、定植难 以
区分
社区获得性肺炎
? IDSA/ATS实践指南认为:
? 美国感染协会 /美国胸科协会
--治疗前抽取血培养2-4套 --合格痰标本的培养、革兰染色 --疾病严重且条件具备的话应做肺炎 链球菌、嗜肺军团菌尿液抗原检测
血培养是 一切感染 判断的试金石
? 血培养阳性检出率偏低 ? 血培养污染问题 ? 厌氧菌血培养不受重视
? 不建议24h内多次采集,除非痰外观性状出现改变
v抗酸染色和 TB培养:连续三天的 晨痰
咳痰标本
? 对于考虑细菌性肺炎的患者,痰标本 每天送检1次,连续2-3天;不建议 24h内重复送检。
? 考虑分支杆菌感染者,应连续3天清 晨取痰送检
痰标本质量的评估
? 不合格标本
指唾液或唾液严重污染 的痰标本,含鳞状上皮 细胞多,而白细胞少
—选择有意义的标本种类( 血液、无菌体液 ) —合格的标本( 无菌操作、原始样本采集手册 )
Garbage in = Garbage out
、
什么是有价值的标本
? 组织和无菌体液(血、骨髓、脑脊液、关节液、胸腹腔 穿刺液)标本进行细菌学检验,有很高的诊断价值,鼓 励多送检。
? 尿培养有助于尿路感染的诊断 ? 大便培养只能检出沙门和志贺菌;入院3天之后出现的
? 发热(≥38oC)或低温(≤36oC) ? 寒战 ? 白细胞增多(特别有“核左移”现象出
现) ? 血液病患者出现粒细胞减少(成熟的多
形核白细胞 <1000? 109/L)
血培养采集指征
? 皮肤粘膜出血 ? 血压降低 ? 昏迷 ? 多器官衰竭 ? 呼吸加快 ? 降钙素原升高(PCT) ? C反应蛋白升高(CRP)
采集时间
寒战或发热初期采集
超过发热峰值后,病 原菌的检出率会随 之降低。
黑色,细菌 红色,体温
chills
CLSI M47A-Principle and procedures for blood cultures
血培养采集套数
双侧双套!
100
同时从不同部位 采集2~3套 80 65
注意:
60
1“套”是指一次静脉穿刺 40
腹泻多为抗生素相关,不建议送大便常规培养, 如难辨梭
菌
? 口腔和肠内容物、直肠周围脓肿、褥疮、恶露、呕吐物 等诊断价值低,做细菌培养需与实验室联系
微生物学标本采集的一般原则
? 早期采集
用抗菌药物前 下次用药前
? 无菌观念
不污染标本
? 正确的采集方法
? 适量的标本
? 生物安全 不感染人、不污染环境
标本运送原则
? 运送时间
1小时,最长不超过2小时
? 延长运送
使用运送培养基
? 保证运送温度和储存温度
? 苛养菌的运送 及时、保温
上呼吸道标本-咽拭
运送培养基对于苛养菌的活 性保存优于无菌棉签。
运送培养基
无菌棉签
咳痰标本
? 痰是临床送检率最高的标本
? 中国耐药监测网2019 : 46.9% (血11.6%) ? 卫生部全国耐药监测网 2019: 45.5% (血7.2% )
临床微生物标本的规范采集 输血标本采集及规范输血记录
输血科
临床微生物标本的规范采集
临汾市中心医院
刘荣华
病原体复杂化 多样化细菌、真菌、病毒、非典型病原体、寄
生虫等;
? 新病原体不断出现
奴卡,军团菌,,无乳链球菌,曲霉菌, 毛霉菌
? 老病卷土重来
布氏,结核,淋球菌
? 免疫缺陷人群不断增加
肺孢子菌肺炎?ranse
? 细菌耐药愈演愈烈
临床微生物室的核心任务
? 提供快速、准确的病原学诊断 ? 提供最接近真实的药敏结果,指导
临床合理使用抗菌药物 ? 细菌耐药性监测与分析,为临床抗
感染经验性治疗提供依据 ? 监测及预防医院感染的发生
关注微生物学标
本分析前的处理, 对准确性至关重
要
分离和鉴定真正的病原菌
? 标本的留取至关重要
l 血培养送检率低 l 采血时机不合适 l 药物对细菌培养的影响 l 采血量不足影响细菌生长
l 套数的影响
? 血培养瓶的保存与运送不当
? 没有及时送检及时上机检测
提高血培养阳性率,关键在临床!
“双抽四瓶”,每瓶8 医嘱单标示“左侧”、
24
怀疑分枝杆菌、真菌时: 再加一个右侧瓶子:
25
血培养采集指征
血培养污染
定义为在几次血培养中单个血培养下列细菌 阳性:
?凝固酶阴性葡萄球菌 ?棒状杆菌 ?微球菌 ?丙酸杆菌 ?芽孢杆菌
n 合格标本
WBC ≥25/LP 上皮细胞<10/LP
下呼吸道标本的采集
? 经气管插管吸引物(TTA) ? 经胸壁穿刺吸引物(TNA) ? 支气管肺泡灌洗液(BAL) ? 防污染保护性毛刷(PSB) ? 肺活检组织标本
我国痰培养的现状 方案
苛养菌检出率低 结果重复性差
标本送检率高
药敏结果与治疗反应 存在差距
? 痰培养阳性:感染?定植?污染 ?
?临床很难回答,微生物检验更难回答
? 痰菌构成比的不科学性
? 苛养菌比例低
咳痰标本
? 标本采集方法
? 病人先生理盐水漱口,去除表面的菌群 ? 教育病人深咳,收集从下呼吸道咳出的痰液
? 临床上约半数咳痰标本不合格!
痰培养送检次数
? 对于普通细菌性肺炎,痰标本每天送检 1次,连续 2~3d 。
尽可能短时间内采集 2~3套 20
此后的2~5天内不必重复采集 0 1
80
96
99
2
3
4
Blood nciple and procedures for blood cultures
采集血量
? 成人患者,8-10ml/瓶 (5<需氧<10,
? 5<厌氧<12)。
CLSI M47A-Principle and procedures for blood cultures
采血量与检出率
100
Yield Relative
80 60 40
% 20
0 5
15
25
35
45
55
ml
血培养物每增加一毫升,
成年人菌血症微生物的检出率增加 3%
但并非越多越好,血液与肉汤的最佳比例为 1:5-1:10