标本采集2019
新冠肺炎病毒(CoVID-19)标本的采集及检测详解
怎样识别新冠病毒感染者呢？
• 离不开实验室检测
标本采集与实验室检测
• 医疗卫生机构要及时采集实验室检测标本 • 应在12小时内反馈实验室检测结果 • 标本采集、运送、存储和检测严格按照新型冠状病毒肺
炎实验室检测技术指南执行 • 各地区聚集性疫情病例，以及境外输入病例的所有原始
标本应当送至中国疾控中心进行复核 • 各地发生的首例和感染来源不明的病例以及环境监测发
拭子鼻拭子或特定部位组织样本，储存的样本可用 于后续的核酸等检测实验。 • 不能用于病毒培养分离。 • pH：不要求。
非灭活型病毒保存液
• 低温非冻型保存，不破坏病毒的外壳，保持病 毒完整性；
• 采样液中的抗生素能有效防止细菌和真菌污染； • 采样液添加了牛血清白蛋白，能保护病毒样本，
提高分离率。 • pH要求：7.4-7.6。 • 可用于病毒核酸提取等后续检测，也可用于病
• 上呼吸道标本：包括鼻咽拭子、咽拭子等。 • 下呼吸道标本：深咳痰液、肺泡灌洗液、
支气管灌洗液、呼吸道吸取物等。 • 便标本/肛拭子：留取粪便标本约10g（花生
米大小），或者3-5ml便液。推荐采集肛拭 子。 • 血液标本：尽量釆集发病后7天内的急性期 抗凝血，采 集量5ml，建议使用含有EDTA抗 凝剂的真空釆血管采集血 液。
• 商品化的采样器材：病毒采样管。咽拭子。 真空采血管及采血针等。
咽拭子
• 缠绕式咽拭子，植绒式咽拭子； • 有折断点位的； • 保存期（一般3年）； • 长短粗细不同规格。
咽拭子
商品化病毒采样管
• 病毒保存液：病毒样品在采集之后，通常 样品采集处都不能进行及时进行PCR检测， 所以需要对采集的病毒拭子样品进行运输， 而病毒本身在体外很快就会裂解掉影响后 续检测，所以在保存及运输时，就需要加 入养分离。 • 具有操作者被感染的潜在危险。
标本采集及注意事项PPT课件
关键要点
◆ 采血指征 ◆ 采血时间 ◆ 采血次数 ◆ 接种血量 ◆ 怀疑血流感染时应常规行血培养
怀疑患者有血流感染的症状： 1.不明原因的发热(>38℃)或低温(<36℃) 2.休克、寒战、僵直 3.白细胞增多(>10×10^9/L，特别有"核左移"未 成熟的或带状的白细胞增多) 4.粒细胞减少(成熟的多核白细胞<1×10^9/L)
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血培养
◆ 定义
将新鲜离体的血液标本接种于营养 培养基上，在一定温度、湿度等条件 下，使对营养要求较高的细菌生长繁 殖并对其进行鉴别，从而确定病原菌 的一种人工培养法。用于菌血症、败 血症及脓毒败血症的病因学诊断。一 般需要5-7天,才能出报告。
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血培养意义
◆ 血流感染严重影响患者的生命安全 ◆ 明确诊断是何种病原菌感染 ◆ 减少抗菌药物的误用和滥用 ◆ 大大的改善患者的预后 ◆ 降低患者的病死率，减少医疗花费
针头？ ◆ ——无需更换，对提升阳性率无统计差异，增加了针刺伤的几率
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血培养标本采集注意事项
◆ 1.严格无菌操作，避免污染。 ◆ 2.不应从留置静脉或动脉导管处抽血，
因为导管易被固有菌群污染。 ◆ 3.采血量及采血间隔 成人8~10ml,婴幼
儿1~3ml。两部位采血时间小于5min。 ◆ 4、根据是否使用过抗生素，准备合适
6
一、血液标本采集
◆ 5、采血部位：严禁在输液、输血针头或皮 管内抽取血标本。当取血不顺利时，切忌 在同一处反复穿刺，易导致标本溶血或有 小凝块，影响监测结果。输液时应在输液 的另一侧手臂采血。用注射器采血时，不 要用力抽吸，往采血管内注入血液时要拔 掉针头，沿试管壁缓缓注入，避免产生泡 沫和溶血。
血液标本采集及送检ppt课件
•
静脉采血法根据采血方式可分为
普通采血法和负压采血法
静脉采血法
采血部位
采血器材
采血步骤
静脉采血部位
采血器材
• （1）负压采血法 负 压采血法又称为真空 采血法，具有计量准 确、传送方便、封闭 无尘、标识醒目、刻 度清晰、容易保存、 一次进针多管采血等 优点。 • （2）主要器材：负压 采血器材由双向采血 针、采血管构成
• 动脉血气分析是判断呼吸衰竭最客观 的指标
动脉采血常用的部位
通常选用桡动脉、肱动脉、股动脉、足 背动脉，婴幼儿也可以选择头皮动脉
首选桡动脉
血液标本送检
标本应尽快送检，不应放置过久，一般2小时送检，以免影响 检查结果。新生儿血糖要及时送检，晚送血糖测不出 特殊标本必须注明采集时间，并按规定时间送检 特殊情况无法及时送检，标本室温放置不超过4小时， 严禁冷冻保存以免造成溶血
• 对艾滋病病毒抗体检测的影响 可能造 three 成假阳性的检测结果
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SUCCESS
2019/4/23
血标本溶血的原因
• 1、静脉充盈不良，血管弹性差 • 2、止血带扎得太紧，时间过长并用力拍打 穿刺部位 • 3、使用注射器采集标本后，未按操作规程 将血液沿试管壁缓缓注入 • 4、抽血时负压过大血标本中混有泡沫 • 5、静脉穿刺处消毒液未干即开始采血 • 6、标本在混匀过程中动作过猛 • 7、血标本采集后未及时送检，放冰箱受冻
• 患者发热期间越早越好，从正在发冷、 发热时，或发热前半小时为宜
采血量
• 不低于16—20ml，先将8—10ml注 入蓝色的需氧血培养瓶中，再将剩 下的注入红色厌氧血培养瓶中
血培养采血部位
2019护士资格证考试试题及答案：标本采集
2019护士资格证考试试题及答案：标本采集魏老师第十四节标本采集一、A11、留24小时尿标本时加入甲醛的作用是A、固定尿中有机成分B、防止尿液中的激素被氧化C、防止尿液被污染变质D、保持尿液中的化学成分E、防止尿液改变颜色2、做真菌培养时，取分泌物的部位是A、双侧腭弓B、咽部C、扁桃体D、溃疡面E、舌面3、留取血吸虫孵化检查的粪便标本应A、于进试验饮食3～5天后留取B、留全部粪便及时送检C、将便盆加热后留取全部粪便D、用竹签取脓血黏液粪便置培养管内E、取少量异常粪便置蜡纸盒内送检4、采集血细菌培养标本时，血量宜为A、2mlB、4mlC、5mlD、7mlE、10ml5、护士经股静脉采血，其穿刺部位是A、股动脉内侧0.5cmB、股动脉外侧0.3cmC、股神经内侧0.3cmD、股神经外侧0.5cmE、股动脉与股神经之间6、做血气分析的血标本应放置于A、干燥试管中密封B、肝素抗凝注射器中密封C、无菌试管中密封D、枸橼酸钠试管中密封E、草酸钾抗凝试管中密封7、护士为亚急性细菌性心内膜炎患者采集血培养标本时，最适宜的采集时间应在A、发热前，抗生素应用前B、发热前，抗生素应用后C、发热时，抗生素应用后半小时D、发热后，抗生素应用1天后E、任何时间均可8、对17-羟类固醇检查的尿标本使用浓盐酸防腐剂的作用是A、防止尿中激素被氧化B、固定尿中有机成分C、保持尿液的化学成分不变D、避免尿液被污染变质E、防止尿液颜色改变9、不符合血培养标本采集原则的是A、标本容器外贴标签B、采集量一般为3mlC、在使用抗生素前采集D、采集时严格执行无菌操作E、血液注入标本瓶后轻轻摇匀10、留24h尿标本时加入甲醛的作用是A、固定尿中有机成分B、防止尿液中的激素被氧化C、防止尿液被污染变质D、保持尿液中的化学成分E、防止尿液改变颜色11、采血进行哪项检查时，需用抗凝管采血A、甘油三酯的测定B、肝功能检查C、血清酶测定D、尿素氮测定E、血钠测定12、防止血标本溶血，下列哪项是错误的A、选用干燥注射器和针头B、避免过度震荡血标本C、采血后带针头沿管壁将血液注入D、标本应及时送检E、需全血标本时，应采用抗凝管二、A21、患者男，70岁。
标本采集及注意事项课件
要点二
详细描述
新生儿和儿童由于体格发育尚未成熟，在进行血液标本采 集时需注意采血量和使用合适的采血方法，以避免对患儿 造成伤害。孕妇在进行标本采集时，应遵循安全、无创的 原则，尽量避免对胎儿造成影响。而老年人由于身体机能 下降，在进行标本采集时需注意其身体状况和药物使用情 况，以避免对检测结果产生影响。
采集方法不正确
总结词
采集方法不正确可能导致标本的质量下降或 无法满足实验要求。
详细描述
采集方法不正确的可能原因包括采集流程不 规范、采集部位不当或采集时患者状态不佳 。为解决此问题，应制定并遵守规范的采集 流程，确保采集部位的准确性和安全性；同 时，在采集前应对患者进行评估，确保其在 最佳状态下接受采集。
尽量选择在早晨空腹时采集标本 ，以避免饮食对标本的影响。
02
确定采集时间后，准时到达，避 免延误。
选择合适的容器
根据采集的标本类型选择合适的容器，如尿液常规检查可使用清洁干燥的尿杯或 尿液收集器。
容器应足够清洁，避免污染标本。
正确的采集方法
根据采集的标本类型，采用正 确的采集方法。
如尿液常规检查，先清洗外阴 ，取中段尿，避免前段尿和后 段尿的干扰。
使用清洁容器收集尿液， 避免污染，记录尿液采集 时间。
注意事项
尿液采集前需清洗外阴部 ，避免月经期间采集尿液 ，尿液需及时送检。
粪便标本采集
标本类型
新鲜粪便、24小时粪便等 。
采集方法
使用干净容器采集粪便， 避免污染，记录粪便采集 时间。
注意事项
粪便采集前需告知患者避 免食用影响检测结果的食 物，如含有色素、纤维等 食物，粪便需及时送检。
总结词
除了上述问题外，标本采集过程中还可能遇到其他一些问题，如患者依从性差 、成本高等。
临床常用标本的采集PPT医学课件
24小时尿标本采集方法
• 在第一次留取尿液时应加防腐剂，使之与尿 液充分混合，防止尿变质，并将尿容器置于 阴凉处，盖上盖子；
• 根据检查要求不同，防腐剂种类亦不同；
常用的几种防腐剂及用法
名称
40%甲 醛
浓盐酸 甲苯
红头 无添加剂（血清） 生化、免疫
黄头
促凝剂+分离胶管 生化、免疫、肿瘤
蓝头
枸橼酸钠1:9抗凝管 凝血、D-二聚体
黑头
枸橼酸钠1:4抗凝管 血沉
绿头 肝素锂抗凝管
急诊生化、血流变、TNT
紫头
EDTA-K2抗凝管
血常规、血型、交叉配血、糖化血红蛋白
血培养
• 目的：预防败血症；确定致病细菌，确定抗生 素；监控抗生素的浓度和细菌杀死的情况；
用无菌棉签取中央部分或脓血、粘 液部分2-5g致培养瓶内，塞紧瓶盖。
潜血标本（OB）检查前3天禁食肉类、肝、血、含大 量绿叶素的食物或含铁剂药物，三 天后留取标本送检。
寄生虫或虫卵 虫卵：不同部位的异常粪便5-10g
标本
蛲虫 ：用透明胶带粘肛门周围
阿米巴：便器加热致人体体温
采集粪便标本的注意事项：
• 2.注射器采血顺序： 为避免血液在注射器中停留时间过长，造成血 液微小凝集，故采血顺序略有更改如下： 血培养瓶（厌氧优先） 凝血试管（蓝色） 其它有抗凝剂管（黑-绿-紫-灰） 无添加剂 管（红色，金黄色管）
注意事项
• 严禁在输液、输血的针头处抽取血标本，以免 影响检验结果。应在对侧肢体采取。
• 容器：一次性转运拭子 • 送检：2小时内送检； • 操作方法：
尿液标本采集
尿液标本采集规范
采集时机：宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。
清洁尿（中段尿、导尿、膀胱穿刺尿）：适用于细菌培养，应注意无菌操作。
采集方法：1）清洁中段尿
女性：采样前用肥皂水或0.1%的高锰酸钾溶液等清洗外阴，用手指分开阴唇，弃其前端段尿，不终止排尿，留取中段尿10-20ml于无菌容器内。
男性：采样前用肥皂水或0.05%-0.1%的碘伏溶液等清洗尿道口，擦干后上翻包皮，弃其前端段尿，不终止排尿，留取中段尿10-20ml于无菌容器内。
2）导管导尿：
直接导尿法：使用0.05%-0.1%的碘伏溶液等消毒剂消毒会阴局部，用导尿管经尿道插入膀胱，先弃其前段尿液约15ml，再留取中段尿液10-20ml于无菌容器内。
留置导尿管法：采集前先夹闭导尿管，采集时则松管弃其前段尿液，使用0.25%-0.5%的碘伏溶液等消毒剂消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺入导尿管（从采样口或靠近尿道的导尿管管壁）抽取10-20ml尿液于无菌容器内。
标本运送：标本采集后应及时送检并接种，室温下保存时间不应超过2h（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存），如果不能及时送检或接种，应4℃冷藏，但保存时间也不应超过8h。
注意事项：不应从集尿袋中采集尿液。
尿液中不应加防腐剂或消毒剂。
多次采集或24小时尿不应用于尿液培养。
若尿液培养前患者曾使用抗菌药物，应反复多次送检。
不应对长期留置导尿管病人常规进行尿液培养。
2019年5月22日。
卓顶精文2019检验标本采集运输指南
封面前言医学检验的目的就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室依据。
为确保实验结果的及时、准确、可靠，就必须保证分析前标本的质量，这就要求广大医护工作者及就诊患者了解各类标本采集、运输等方面的知识和要求。
为此，医学检验科、护理部、感染管理科共同制订《检验标本采集运输指南》手册，供全院医务人员使用，以确保实验室分析前的标本质量，并真诚希望广大医务人员在使用本手册的过程中多提宝贵意见，以利于进一步的提高和完善。
宾阳县人民医院检验科、护理部、感染管理科2019年8月4日目录第一部分检验科各检测项目标本采集要求 (4)第二部分检验标本采集运输要求 (5)第三部分患者采血前的准备 (6)第四部分检验标本采集运输作业指导书 (6)一、静脉血液采集运输作业指导书 (6)二、末梢血采集运输作业指导书 (8)三、动脉血液采集运输作业指导书 (9)四、尿液标本采集运输作业指导书 (10)五、粪便标本采集运输作业指导书 (11)六、前列腺液采集运输作业指导书 (11)七、精液采集运输作业指导书 (12)八、脑脊液标本采集运输作业指导书 (13)九、浆膜腔积液（胸水）采集运输作业指导书 (14)十、浆膜腔积液（腹水）采集运输作业指导书 (15)十一、骨髓采集运输作业指导书 (16)十二、临床微生物标本采集运输作业指导书 (18)第五部分标本采集运输流程 (20)第六部分检验标本的接收、拒收标准及流程 (21)1.检验标本的接收标准: (21)2.不合格标本拒收标准: (21)3.检验标本接收流程: (22)4.不合格标本拒收流程: (23)第一部分检验科各检测项目标本采集要求项目容器规格（头盖颜色）标本量备注生化项目（肝功、肾普通管（红色）3-5ml功、电解质、心肌酶学、血脂、血糖、特定蛋白组合、超敏C反应蛋白、胰腺炎组合、血淀粉酶、结核抗体等）免疫项目（五项检普通管（红色）3-6ml查、乙肝六项、乙肝两对半（定量）、甲型、戊型肝炎病毒抗体检测、EB、肿瘤标志物、性激素六项、甲功五项、HCG、孕酮等）优生九项、产前筛查、免费三项、ANA谱、肥达氏反应等普通管（红色）4-6mlHBV-DNA 普通管（红色）2ml凝血四项、D2聚体柠檬酸钠9：1（蓝色）准确抽血至刻度（需混匀）血沉柠檬酸钠4：1（黑色） 1.6ml 准确抽血至刻度（需混匀）血液流变学肝素钠抗凝（绿色）>5ml 不能少于5ml（需混匀）血常规+血型、地贫基因检查EDTAK2抗凝（紫色）2-3ml （需混匀）地贫筛查、微量元素检测肝素钠抗凝（绿色）1-2ml （需混匀）HPV、CT、NG、UU、HSV专用管（加分泌物）血培养专用血培养瓶（蓝色、绿色为成人、黄色为儿童瓶）成人：>5ml；儿童：2-5ml 到微生物室领专用血培养瓶尿常规尿杯留取半杯到检验科一楼6号窗领尿杯至少15ml大便常规试管指头大小3-5克到检验科一楼6号窗领试管脑脊液、胸腹水常规+生化干净试管2-5ml 迅速送检第二部分检验标本采集运输要求1.标本采集要求1.1采集标本时所需要的与生物安全防护水平相适应的设备。
各种标本采集检测与注意事项ppt课件
＊留尿过程中将盛尿容器置 阴凉处，并根据检验要求加 入防腐剂．
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二．尿标本采集法
名称
甲醛 浓盐酸
甲苯
常用防腐剂的作用及用法
作用
用法
固定尿中有机成 ２４小时尿中加
分，
４０％甲醛１ｍ
防腐
ｌ～２ｍｌ
防止尿中激素被 ２４小时尿液中
氧化，
加５ｍｌ～１０
防腐
ｍｌ
举例
爱迪计数
１７－羟类固醇 １７－酮类固醇
保持尿液的化学 成分不变
防腐
每１００ｍｌ尿 尿蛋白定量，尿
中加０．５％～ 糖定量
１％甲苯２ｍｌ， Ｋ．Ｎａ．Ｃｌ
应在第一次尿液 肌酐．肌酸的定
倒入后再加
量检查
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二．尿标本采集法
３．尿培养标本 取未污染的尿液做细菌
学检查 采集方法：导尿术和留
取中段尿法（嘱病人自 行排尿，弃去前段，用 试管夹夹住无菌试管， 接取中断尿约５ｍｌ， 盖紧塞子，贴标签，标 标签，及时送验）
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三．粪便标本采集
４．培养标本： 检查粪便中的致病菌 （１）．用物：粪便培养管或
无菌蜡纸盒，无菌棉签 （２）．操作步骤： 向病人解释目的，嘱病人排便
于盆中，用无菌棉签取带脓血 或黏液的粪便少许，置培养管 或无菌蜡纸盒中，立即送检． 如病人无便意时，用长棉签蘸 无菌生理盐水，由肛门插入约 ６ｃｍ～７ｃｍ，顺一方向轻 轻旋转并退出棉签，置于无菌 培养管中送验．
清洁玻璃瓶 （２）操作步骤： 核对无误，向病人解释目的，以取得
合作． 嘱病人将晨起第一次尿约１００ｍｌ
留于清洁玻璃瓶内，因晨尿浓度较高， 未受饮食影响，故检验较准确． ＊尿潴留或昏迷病人可通过导尿术留 取标本． ＊女病人在经期不宜留取尿标本
皮肤、软组织及伤口标本采集技术规范
皮肤、软组织及伤口标本采集技术规范【名词定义】采集患者创面、伤口及脓肿感染标本进行细菌培养及药物敏感试验。
【适应证】1.怀疑皮肤及软组织感染包括烧伤创面感染、手术后切口感染、急性蜂窝织炎、外伤感染、咬伤感染及压疮感染等时采样。
具体如下(1)皮肤或皮下脓肿受累部位出现红、肿、热、痛，需手术切开引流时。
(2)深部脓肿表现为局部疼痛和触痛并伴有全身症状,发热、乏力、食欲减退等。
(3)创伤或手术部位感染。
2.烧伤患者出现发热、创面恶化时，考虑采样。
3.烧伤的组织宜做定量培养，定量检验结果2105CFU/g则可预示有可能进展为创伤相关脓毒症。
【禁忌证】1.浅表伤口标本不能进行厌氧培养。
2.烧伤患者的早期创面无菌，烧伤后12小时勿采集标本，创面的拭子标本不能用于厌氧培养。
【目的】取皮肤、软组织标本进行细菌学检测，协助诊断皮肤、软组织及伤口感染。
【制度与依据】1.本规范理论部分主要依据：中华预防医学会医院感染控制分会发表于2018年第28卷第20期中华医院感染学杂志的《临床微生物标本采集和送检指南》。
感染性疾病的正确诊治需要以正确的病原学检测作为指导，而正确的病原学检测其前提是采集和送检合格标本。
因此，必须规范微生物标本的采集和运送，避免因标本的不合格，产生错误的病原学检测结果而误导临床治疗。
3.本规范操作部分主要依据：中华人民共和国国家卫生健康委员会2018年12月11日发布，2019年6月1日实施的《临床微生物学检验标本的采集和转运》，是中华人民共和国卫生行业标准，WS/T640—2018o本标准是按照GB/TL1—2009给出的规则起草；起草单位：北京大学人民医院、中日友好医院、安徽省立医院、首都医科大学附属北京友谊医院、北京医院、北京市垂杨柳医院。
【准备】1.用物准备：医嘱单、皮肤、软组织标本化验单或标本条形码、无菌治疗盘、75%酒精、棉签或棉球、无菌螺帽容器或棉拭子1〜2个、IOn I I注射器1〜2个、检查手套、手消液，需做厌氧菌检查者备厌氧血培养瓶1个，检查用物的有效期，物品处于备用状态。
基础护理-标本采集
采集的胸腔积液需要立即送检， 进行细胞计数、生化检测、细菌 培养和细胞学检查等，以协助诊
断和治疗。
关节液标本采集
关节液是关节内的润滑液，正常情况 下量较少，当出现异常增多时，可能 提示有关节炎症、感染或退行性病变 。
采集的关节液需要立即送检，进行细 胞计数、生化检测、细菌培养和免疫 学检查等，以协助诊断和治疗。
采集时间的记录
为确保可追溯性，应记录每个标本的采集时间，以便后续 分析。
采集量控制
标本量的影响
标本量不足或过多都会影响检验 结果的准确性。例如，血液样本 量不足可能导致某些指标无法检 测，而样本量过多则可能稀释样
本，导致结果偏低。
标准化采集量
为确保结果的准确性，应遵循标 准化采集量，避免误差。
特殊情况的处理
采集人员需配备必要的防护用品，如手套、口罩等，以保障自身安 全。
采集物品准备
1 2
选择合适的采集容器
根据采集目的和要求，选择合适的采集容器，如 真空采血管、培养瓶等。
检查采集物品的有效期和完好性
确保采集物品在有效期内且完好无损，避免因物 品问题影响采集结果。
3
准备必要的辅助工具
如止血带、消毒液、棉签等，以确保采集过程顺 利进行。
自主权。
02
常见标本采集技术
血液标本采集
静脉采血
从肘静脉或手背静脉采 集血液，常用作生化、
免疫等检测。
动脉采血
采集动脉血液，常用于 血气分析。
末梢采血
在手指或耳垂采集少量 血液，适用于快速血糖
检测。
骨髓穿刺
通过骨膜采集骨髓液， 用于诊断血液系统疾病
。
尿液标本采集
清洁中段尿
排尿前清洗外阴，取排尿中段 的尿液。
标本采集PPT课件
标本保存方法与期限
常温保存
适用于对温度要求不高的标本， 如部分免疫学检测标本。
冷藏保存
适用于需要低温保存的标本，如生 化检测标本、凝血功能检测标本等 。一般可保存24小时至数天不等。
冷冻保存
适用于需要长期保存的标本，如病 毒学检测标本、遗传学检测标本等 。可保存数月至数年不等。
行惩罚。
定期进行质量评估与改进
01
02
03
04
定期对标本采集质量进行评估 ，包括标本合格率、污染率、
误差率等指标。
对评估结果进行分析，找出问 题所在，制定改进措施并跟踪
实施效果。
鼓励标本采集人员提出改进意 见和建议，促进质量管理体系
的持续改进。
与其他医疗机构或实验室进行 交流合作，分享经验和教训，
在接收标本时，要仔细核对标本信息、容器完整性以及运输文件 等，确保无误。
登记记录
将接收的标本信息进行详细登记，包括接收时间、接收人员、标 本状态等。
异常处理
如发现标本有损坏、污染或信息不符等情况，要及时与送检方联 系并妥善处理。
06
质量控制与安全管
理
建立完善质量管理体系
制定标本采集、运输、保存等各 环节的标准操作程序（SOP）。
设立专门的质量管理部门，负责 监督、检查标本采集全过程。
定期对质量管理体系进行内部审 核和外部评审，确保其有效性。
加强人员培训与考核
对标本采集人员进行专业培训， 包括理论知识、操作技能、安全
防护等方面。
定期对标本采集人员进行考核， 评估其操作技能水平和理论知识
掌握程度。
建立奖惩机制，对表现优秀的标 本采集人员给予表彰和奖励，对 操作不规范或造成质量问题的进
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? 婴幼儿采血量不超过患者总 血量的1%
CLSI M47A-Principle and procedures for blood cultures
采集血量
? 成人患者，每套采集 20～ 30ml（病原菌的阳性培 养率与血量成正比）。
? 婴幼儿患者，采血量不超 过患者总血量的 1%
感染、定植难 以
区分
社区获得性肺炎
? IDSA/ATS实践指南认为：
? 美国感染协会 /美国胸科协会
--治疗前抽取血培养2-4套 --合格痰标本的培养、革兰染色 --疾病严重且条件具备的话应做肺炎 链球菌、嗜肺军团菌尿液抗原检测
血培养是 一切感染 判断的试金石
? 血培养阳性检出率偏低 ? 血培养污染问题 ? 厌氧菌血培养不受重视
? 不建议24h内多次采集，除非痰外观性状出现改变
v抗酸染色和 TB培养：连续三天的 晨痰
咳痰标本
? 对于考虑细菌性肺炎的患者，痰标本 每天送检1次，连续2-3天；不建议 24h内重复送检。
? 考虑分支杆菌感染者，应连续3天清 晨取痰送检
痰标本质量的评估
? 不合格标本
指唾液或唾液严重污染 的痰标本，含鳞状上皮 细胞多，而白细胞少
—选择有意义的标本种类（ 血液、无菌体液 ） —合格的标本（ 无菌操作、原始样本采集手册 ）
Garbage in = Garbage out
、
什么是有价值的标本
? 组织和无菌体液（血、骨髓、脑脊液、关节液、胸腹腔 穿刺液）标本进行细菌学检验，有很高的诊断价值，鼓 励多送检。
? 尿培养有助于尿路感染的诊断 ? 大便培养只能检出沙门和志贺菌；入院3天之后出现的
? 发热（≥38oC）或低温（≤36oC） ? 寒战 ? 白细胞增多（特别有“核左移”现象出
现） ? 血液病患者出现粒细胞减少（成熟的多
形核白细胞 <1000? 109/L）
血培养采集指征
? 皮肤粘膜出血 ? 血压降低 ? 昏迷 ? 多器官衰竭 ? 呼吸加快 ? 降钙素原升高（PCT） ? C反应蛋白升高（CRP）
采集时间
寒战或发热初期采集
超过发热峰值后，病 原菌的检出率会随 之降低。
黑色，细菌 红色，体温
chills
CLSI M47A-Principle and procedures for blood cultures
血培养采集套数
双侧双套！
100
同时从不同部位 采集2～3套 80 65
注意：
60
1“套”是指一次静脉穿刺 40
腹泻多为抗生素相关，不建议送大便常规培养， 如难辨梭
菌
? 口腔和肠内容物、直肠周围脓肿、褥疮、恶露、呕吐物 等诊断价值低，做细菌培养需与实验室联系
微生物学标本采集的一般原则
? 早期采集
用抗菌药物前 下次用药前
? 无菌观念
不污染标本
? 正确的采集方法
? 适量的标本
? 生物安全 不感染人、不污染环境
标本运送原则
? 运送时间
1小时，最长不超过2小时
? 延长运送
使用运送培养基
? 保证运送温度和储存温度
? 苛养菌的运送 及时、保温
上呼吸道标本-咽拭
运送培养基对于苛养菌的活 性保存优于无菌棉签。
运送培养基
无菌棉签
咳痰标本
? 痰是临床送检率最高的标本
? 中国耐药监测网2019 : 46.9% (血11.6%) ? 卫生部全国耐药监测网 2019: 45.5% （血7.2% ）
临床微生物标本的规范采集 输血标本采集及规范输血记录
输血科
临床微生物标本的规范采集
临汾市中心医院
刘荣华
病原体复杂化 多样化细菌、真菌、病毒、非典型病原体、寄
生虫等；
? 新病原体不断出现
奴卡，军团菌，，无乳链球菌，曲霉菌， 毛霉菌
? 老病卷土重来
布氏，结核，淋球菌
? 免疫缺陷人群不断增加
肺孢子菌肺炎?ranse
? 细菌耐药愈演愈烈
临床微生物室的核心任务
? 提供快速、准确的病原学诊断 ? 提供最接近真实的药敏结果，指导
临床合理使用抗菌药物 ? 细菌耐药性监测与分析，为临床抗
感染经验性治疗提供依据 ? 监测及预防医院感染的发生
关注微生物学标
本分析前的处理， 对准确性至关重
要
分离和鉴定真正的病原菌
? 标本的留取至关重要
l 血培养送检率低 l 采血时机不合适 l 药物对细菌培养的影响 l 采血量不足影响细菌生长
l 套数的影响
? 血培养瓶的保存与运送不当
? 没有及时送检及时上机检测
提高血培养阳性率，关键在临床！
“双抽四瓶”，每瓶8 医嘱单标示“左侧”、
24
怀疑分枝杆菌、真菌时： 再加一个右侧瓶子：
25
血培养采集指征
血培养污染
定义为在几次血培养中单个血培养下列细菌 阳性:
?凝固酶阴性葡萄球菌 ?棒状杆菌 ?微球菌 ?丙酸杆菌 ?芽孢杆菌
n 合格标本
WBC ≥25/LP 上皮细胞<10/LP
下呼吸道标本的采集
? 经气管插管吸引物（TTA） ? 经胸壁穿刺吸引物（TNA） ? 支气管肺泡灌洗液（BAL） ? 防污染保护性毛刷（PSB） ? 肺活检组织标本
我国痰培养的现状 方案
苛养菌检出率低 结果重复性差
标本送检率高
药敏结果与治疗反应 存在差距
? 痰培养阳性：感染？定植？污染 ？
?临床很难回答，微生物检验更难回答
? 痰菌构成比的不科学性
? 苛养菌比例低
咳痰标本
? 标本采集方法
? 病人先生理盐水漱口，去除表面的菌群 ? 教育病人深咳，收集从下呼吸道咳出的痰液
? 临床上约半数咳痰标本不合格！
痰培养送检次数
? 对于普通细菌性肺炎，痰标本每天送检 1次，连续 2~3d 。
尽可能短时间内采集 2～3套 20
此后的2～5天内不必重复采集 0 1
80
96
99
2
3
4
Blood nciple and procedures for blood cultures
采集血量
? 成人患者，8-10ml/瓶 （5<需氧<10，
? 5<厌氧<12）。
CLSI M47A-Principle and procedures for blood cultures
采血量与检出率
100
Yield Relative
80 60 40
% 20
0 5
15
25
35
45
55
ml
血培养物每增加一毫升，
成年人菌血症微生物的检出率增加 3％
但并非越多越好，血液与肉汤的最佳比例为 1：5－1：10