实验七-动物骨髓细胞染色体的制备与观察.
细胞生物学实验报告
实验一细胞的形态观察及其大小测量【实验目的】1、通过对原核和真核各种形态细胞的光学显微镜观察，了解细胞的形态及其显微结构；2、学习显微测量的方法，对细胞的大小有一直观认识。
【实验用品】普通光学显微镜;目镜测微尺;镜台测微尺;载玻片;盖玻片等。
【实验材料】小白鼠肝细胞切片;鸡血红细胞;蚕豆叶片横切片;洋葱。
【实验内容和方法】(一)细胞形态观察l、动物细胞的观察（1）人肝细胞切片：在显微镜下仔细观察肝细胞的形态构造。
注意肝细胞之间的界限、细胞的形状、细胞核的形状和数量、核仁的形状和数量、细胞质的形态构造以及细胞质和细胞核染色的区别。
（2）鸡血细胞涂片的观察：注意观察血细胞的组成；红细胞、白细胞、血小板的形态特点。
2、植物细胞的观察（1）取蚕豆叶片横切片的观察：注意表皮细胞和叶肉细胞的基本结构。
（2）洋葱表皮细胞的形态观察：用镊子撕取洋葱表皮，滴一滴蒸馏水，盖上盖玻片。
在显微镜下观察的形态和结构。
（二）细胞的大小和测量1、测微尺的使用目镜测微尺是一块圆形玻片，中心刻有一尺，长5～10mm，分成50～100格。
每格的实际长度因不同物镜的放大率和不同镜筒长度而异。
镜台测微尺是在一块载玻片中央，用树胶封固一圆形的测微尺，长1mm或2mm，分成100格或200格，每格的实际长度0.01mm(10μm)。
当用目镜测微尺来测量细胞的大小时，必须先用镜台测微尺核实目镜测微尺每一格的长度。
方法如下：(1)卸下目镜的上透镜，将目镜测微尺刻度向下装在目镜的焦平面上，再旋上目镜的上透镜。
(2)将镜台测微尺刻度向上放在镜台上夹好，使测微尺分度位于视野中央。
调焦至能看清镜台测微尺的分度。
(3)小心移动镜台测微尺和转动目镜测微尺(如目镜测微尺分度模糊，可转动目镜上透镜进行调焦)，使两尺左边的一直线重合，然后由左向右找出两尺另一次重合的直线(如图所示)。
(4)记录两条重合线间目镜测微尺和镜台测微尺的格数。
按下式计算目镜测微尺每格等于多少μm：123测定目镜测微尺每格实长的图解 上尺：目镜测微尺；下尺：镜台测微尺镜台测微尺的格数目镜测微尺每格的微米数= —————————×10 目镜测微尺的格数例如，图中镜台测微尺1格=目镜测微尺6格，代入公式得：目镜测微尺每格=1／6×10μm=1.66μm(5)取下镜台测微尺，换上需要测量的玻片标本，用目镜测微尺测量标本。
实验七小鼠骨髓细胞染色体标本的制备
实验七小鼠骨髓细胞染色体标本的制备一、实验目的1. 学会小鼠骨髓细胞的采集和处理方法。
2. 掌握细胞较好的贴壁与生长条件，以保证细胞的好。
3. 学会最常用的Gimsa染色方法，使出现的幻觉具有明朗的色调，以便细胞的编号与统计。
二、实验原理骨髓细胞是一种多能性细胞，可分化为血液成分或骨骼系统的成分。
骨髓细胞被用于检测细胞遗传学异常，在染色体物质遗传及细胞迁移等方面具有潜在用处，并可为结构遗传学提供信息。
作为染色体标本制备的来源，一般选用小鼠骨髓细胞是最为经常采用的试验模型之一，常常作为各类染色体研究、映射和诊断的标本；其区别如来源易得、繁殖成本低、染色体数量较少，易于研究、成熟度高等因素显得优越。
三、实验步骤1. 实验前准备工作（1）保存干燥灭菌的小鼠骨髓细胞培养基，避免接触灰尘。
（2）检查各种器械的完整性，保证手段的杀菌处理。
（3）使用有缩小五倍功能的显微镜，以确保细胞图片清晰度与细胞形态的准确。
（4）打开红外线灯，以增强视觉效果并避免光损伤。
（5）按实验方案准备各种试剂和设备。
（6）实验室内准备50 mL恒温水浴和常规离心机。
2. 骨髓细胞的采集（1）设备：小鼠解剖刀片、50mL离心试管、海绵、抽管等。
（2）用70%酒精清洗瓶子的注射器，使用注射器收集小鼠间隔内的骨髓，放入存储试管中。
（3）轻轻摇动骨髓，使其中的细胞与上清液充分混合均匀。
3. 细胞的处理（1）细胞浓度的调整：从建立骨髓细胞培养物开始，骨髓细胞培养物可以在50mL培养基中存在。
使用试管取出足量细胞，可用比值0.2 mL的浓度悬液被移入12孔文化板中，吸入的细胞细胞数为2×106个左右。
（2）添加培养基到细胞培养物中，以充分覆盖细胞。
（3）将板加入约为35℃，5%二氧化碳环境下的恒温培养箱中，进行配队。
（4）半小时后使用显微镜检查细胞的附着，然后循环补充适量接种。
在24小时之前，每隔2小时更换于第一个。
4. Gimsa染色法（1）准备细胞标本：从培养基中取出涂片架，然后“组织培养板”模式的检测做法，将液体在上面包括涂片架移至吸满液体。
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告
实验目的：
本实验的目的是利用正常小鼠的骨髓细胞制备染色体标本，并通过显微镜观察染色体的形态和数量，并了解染色体的组成和结构。
实验原理：
染色体是细胞核中最大的有组织结构，由DNA和蛋白质组成。
染色体的数量和形态是每个物种独特的标志之一。
在有丝分裂过程中，染色体的形态和数量的变化可以反映出细胞的分裂状态。
为了制备染色体标本，需要通过细胞的裂解，释放和固定染色体，然后在显微镜下观察染色体的形态和数量。
实验步骤：
1. 取出小鼠的股骨，并在无菌条件下对其进行消毒。
2. 使用消毒的剪刀剪下股骨两端，将骨髓剪下，加入RPMI-1640培养液中，使髓液悬浮，然后用细胞培养器将其孵育2-3天，使骨髓细胞增殖。
3. 用离心机将骨髓细胞离心，去除培养液，用磷酸盐缓冲液进行细胞裂解。
4. 将制备好的染色体悬液滴在预先涂上盐酸聚赖氨酸溶液的载玻片上，让其固定，然后通过染色体芝士和琼脂糖溶液对细胞进行染色。
5. 用显微镜观察染色体标本，记录染色体的数量和形态，并观察细胞的分裂状态。
实验结果：
制备的染色体标本在显微镜下观察。
通过对标本的观察，我们可以看到染色体形态和数量的变化，以及细胞分裂状态的变化。
同时，我们可以从染色体上观察到细胞的遗传信息，包括基因序列和调控因子等。
结论：
本实验成功制备了小鼠骨髓细胞染色体标本。
观察染色体形态和数量的变化，可以从中了解细胞的遗传信息和分裂状态变化。
同时，该实验也展示了染色体的重要性和组成结构，加深了对细胞生物学的理解。
实验动物染色体标本的制备
5.吸走固定液，换入无水乙醇，蒸汽固定10-20分钟。 6.取出载玻片，缓缓倒去低渗液，用吸管将
固定液II(无水乙醇:冰醋酸=1:2)自载玻片 的一端缓慢滴下形成水幕，固定3-4次，直 立载玻片空气干燥。
Giemsa染色
改良苯酚品红染色
2020体标本的制备成败决定于取材， 若抽取的骨髓太少或太稀，细胞数目过少， 不易获得较多的中期分裂相。
2.低渗处理极为重要，低渗不够，则染 色体聚在一起，分散不好。太过，则造成细 胞破碎，染色体丢失。
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五、实验结果
取前肢1：找到关节所在。
四、实验步骤
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取前肢2：剪开肌肉，顺着关节外围剪开。
四、实验步骤
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四、实验步骤
注意，每组做2片 蒸汽固定法
3.在载玻片上滴1滴蒸馏水，然后滴加2滴第2步获得的骨髓细胞悬液。轻 轻晃动载玻片，使液体混匀，并在载玻片上铺展开。18-20℃下静置， 低渗处理20-30分钟。注意防止水分蒸发。
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人外周血淋巴细胞染色体（Giemse 染色）
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三、实验用品
• 试剂：0.65％生理盐水，甲醇—冰醋酸(3:1)固 定液, 蒸馏水，Giemsa染液。
• 器材：显微镜，离心机，搪瓷盘，剪刀，骨剪， 离心管，注射器，染色缸。
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告
通过制备动物骨髓细胞染色体标本，进一步了解细胞染色体的形态和结构，以及染色体在遗传学研究中的应用。
实验原理
动物骨髓细胞是一种快速分裂细胞，其中染色体数目和结构较为清晰，因此通常用于染色体分析和遗传学研究。
为了制备动物骨髓细胞染色体标本，需要经过细胞取样、细胞处理与固定、染色和镜检等几个步骤。
实验步骤
1. 取样：在实验动物体内取出一小段骨髓组织，置于离心管中，加入10ml生理盐水，轻轻摇晃，使细胞均匀分散。
2. 细胞处理和固定：取出适量的细胞液，加入等体积的去离子水后进行处理。
将细胞液滴于预先贴有载玻片上的正常细胞培养液中，使其渐渐均匀分散。
将玻片放置在室温下，使细胞贴附在玻片上并进行细胞固定。
细胞固定可用10%甲醛或70%乙醇，也可用50%醋酸处理。
3. 染色：将固定的细胞标本先置于1%琼脂糖中5～10分钟，用注射器吸取琼
脂糖，并把细胞标本冲洗干净，然后用生理盐水洗净。
若要染色，则滴上适量的霉素酚-吡啶溶液或可以染细胞核者，如吉姆萨红溶液或乙酰苯胺-三甲胺水溶液等，等颜色形成后即可洗净。
4. 镜检：放入顶匣，用显微镜观察染色后细胞形态和染色体。
如果需要拍照，则可利用显微摄影技术，对样本进行记录。
实验结果
通过实验可以观察到动物骨髓细胞染色体的形态、数量和结构，进一步了解染色体在遗传学研究中的应用。
同时，该实验对熟悉细胞培养和染色技术也有一定帮助。
实验结论
通过本次实验，我们可以获得动物骨髓细胞染色体标本，并学习了细胞处理、固定、染色和镜检等关键步骤。
实验结果可以为生物学研究提供相关实验基础。
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告实验目的：本次实验的目的是通过制备动物骨髓细胞染色体标本，加深对细胞遗传学和染色体结构的理解，同时掌握常规细胞检测技术。
实验原理：细胞核持有着生物体的遗传信息，而染色质可以分为染色体和非染色体两种，其中染色体是由DNA及其辅助蛋白组成的。
通过细胞分裂过程中，染色体会缩短、厚度增加、染色带可清晰分辨等特点来进行分类和编号。
利用这些特点可以制备出动物骨髓细胞染色体标本。
实验步骤：1. 首先准备动物骨髓细胞样品，可通过小鼠骨髓涂片或静脉血（受试者需要同意），将样品转移到已经预处理好的无菌平板上。
2. 在离心管中加入10ug/ml的柱前荧光素-ethidium bromide(PI)，再将细胞样品加入离心管中，轻轻摇晃片刻，稍微放置几分钟。
3. 用宽口的滴管取少许制片液，滴在已经处理好的载玻片上，尽量保证滴管斜着滴落制片液，避免气泡出现，将载玻片浸泡于制片液中。
4. 轻轻捞取离心管中的细胞样品，均匀地滴在制片液的中心处，然后放置在湿度大于80%，温度为37°C的恒温箱内1-2h。
5. 制片完成后，对载玻片进行显微镜检查，选择细胞密度适当、染色较清晰的染色体标本进行下一步操作。
6. 将载玻片放置在冷却的媒体溶液（0.075mol/L KCl及0.9%NaCl）中，冷冻10-20min。
7. 取出载玻片，使用正差相干显微镜观察着染色体的分布和形态，并进行拍照记录。
8. 得到的染色体标本可用于常规染色体学诊断。
实验结果：通过本次实验制备得到的动物骨髓细胞染色体标本，可以进行常规染色体学分析，观察细胞核中的染色体数目、形态和结构等特征，并可以用于细胞遗传学研究和临床诊断。
实验结论：本次实验通过制备动物骨髓细胞染色体标本，加深了对细胞遗传学和染色体结构的理解，同时掌握了常规细胞检测技术。
通过观察和分析染色体标本的形态和结构，可以进行细胞遗传学的研究与临床诊断。
实验小鼠骨髓染色体制备和观察
8.小鼠染色体观察： 低倍镜、高倍镜下寻找染色体分散的中
期分裂相.
资料仅供参考,不当之处，请联系改正。
小鼠骨髓染色体 10 ×10
资料仅供参考,不当之处，请联系改正。
小鼠骨髓染色体 10 ×40
资料仅供参考,不当之处，请联系改正。
资料仅供参考,不当之处，请联系改正。
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➢ 数目观察：小鼠2倍体细胞染色
体，数目2n=40条。其中19对为常染 色体，一对为性染色体，染色体的核 型分为4组。雄性 XY, 雌性XX,Y染 色体最小。
➢形态特征观察：端着丝粒染色体
“U”“V”。
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五、注意事项
1．掌握好秋水仙素的浓度和处理时间； 2．离心前需要配平； 3. 小鼠骨髓要冲洗干净，以收集足够的骨髓细胞； 3．低渗处理是实验成败的关键，注意低渗时间； 4．固定液要现配现用，固定要充分； 5．载玻片要洁净并预冷，滴片要有一定的高度； 6. 细胞悬液不能太稀，要呈乳白色； 7. 烤片时温度不能太高。 8. 冲洗染液时水流要缓慢，以免细胞流失过多。
放出来。
资料仅供参考,不当之处，请联系改正。
秋水仙素处理：秋水仙素溶液可抑制纺锤体的形 成，使正在分裂的骨髓细胞停止在细胞分裂中期， 积累大量中期分裂相细胞。
低渗作用: 使细胞充分膨胀，减少染色体间的相互 缠绕和重叠。
预固定：终止低渗作用，使细胞离心时不易破裂 ，固定维持细胞形态结构。
高距离滴片：使细胞膜易于破裂，获得中期染色 体标本，在显微镜下观察染色体的结构和数量。
资料仅供参考,不当之处，请联系改正。
三、实验器材和试剂
• 1.器材 蜡盘、手术剪、小镊子、平皿、注射
小鼠骨髓细胞染色体制备与观察PPT
结果分析
实验过程中，细胞培养和染色环节是关键，需要 严格控制实验条件，以保证染色体制备的质量。
染色体观察需要经验丰富的实验员，以确保准确 识别染色体的数目和结构。
实验结果与预期相符，证明了实验方法的可靠性 和准确性。
结果讨论与展望
本实验为小鼠骨髓细胞染色体制备与观察提供了有益 的参考，但仍需进一步优化实验条件和操作步骤，以
04
其他必要的缓冲液和盐溶液
实验仪器
显微镜
01
02
细胞培养箱
离心机
03
04
染色设备（染色缸、染色架等）
恒温水浴锅
05
06
吸管和移液器等定量工具
02
CATALOGUE
实验步骤
小鼠骨髓细胞的采集
01
02
03
麻醉小鼠
使用麻醉剂将小鼠麻醉， 确保其在整个采集过程中 保持安静。
采集骨髓
使用注射器抽取小鼠的骨 髓，注意抽取时要避免混 入其他组织或血液。
染色体组型分析
将染色体制成中期片，进行染色体组型分析，可以观察到染色体的配对情况、 排列顺序等特征，有助于判断染色体的结构异常。
染色体畸变分析
染色体结构畸变
观察染色体的结构畸变，如染色体断裂、倒位、缺失等， 可以分析出细胞在分裂过程中可能遇到的异常情况。
染色体数目畸变
分析染色体数目畸变，如非整倍体、多倍体等现象，有助 于了解细胞分裂过程中的异常变化。
小鼠骨髓细胞染色 体制备与观察
目录
• 实验准备 • 实验步骤 • 实验结果 • 结论与讨论
01
CATALOGUE
实验准备
实验材料
小鼠骨髓细பைடு நூலகம்胞样本
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告(一)
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告(一)动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告实验目的•理解染色体的结构和组成；•学习动物细胞染色体制备方法；•掌握染色体标本制备过程中的一些技巧和注意事项。
实验材料•甲醛•乙醇•醋酸•碘酸钾•毛细管•盖玻片•热水浴实验步骤1.取得动物骨髓细胞标本。
2.将标本浸泡在0.075mol/L的KCl溶液中，通常需要处理2-4h，直到细胞浆干净透明。
3.在干净的载玻片上滴上适量的甲醛和醋酸，待载玻片中的溶液完全挥发后，将浸泡好的标本滴上甲醛和醋酸混合液中，50s即可。
此步是为了固定细胞形态和染色体结构。
4.取出标本，沥干余液后，用毛细管在载玻片中滴入5%碘酸钾，保持2～4min，越长接触时间越好，使染色体膨胀，使得内部染色体更为清晰。
5.取出标本，倒掉碘酸钾溶液，用尽量少的乙醇将载玻片上的染色体表面冲洗干净，加速染色染料的吸附。
6.用淡甲醛在载玻片上将染色体湿润一下，以防染色体干燥，分散染色质和染色体之间的间隙。
7.按一定比例加入染色液（醋酸-布洛克氏Ⅰ选择染色液），一般染色液需要加热干燥，才能使它稳定的存在在载片上，染色液的比例视情况而定。
倒入液就要避免倒在载玻片的一端，因为在染色膏不干透之前，载玻片手触部分很难避免被染色液污染。
染色液沉淀或分层很难影响结果，但是影响颜色深浅和染色体的分辨率。
8.按要求在37℃烘箱中干燥10-30min，使染色液 become stable。
实验结果在制备完染色体标本之后，我们可以通过显微镜观察到染色体的形态和结构。
正常情况下，染色体应该呈现出双染色体的形态，其中一个来自母体，一个来自父体，形态上应该稳定，不应该有扭曲和过度拉伸的情况出现。
实验注意事项•在实验过程中，各种试剂的处理过程中需要注意安全，避免接触到有毒的制剂导致身体受到伤害。
•在标本制备的过程中，需要保证标本的完整性和清洁度，避免在处理过程中将标本破坏导致实验失败。
•在染色体标本的制备过程中，需要注意操作的细节和时间的把握，避免染色效果不佳或染色体损坏等问题的出现。
骨髓细胞染色体制备与观察课件
• •
8、弃上清液，仅留约0.2-0.3ml的细胞团与部分 上清液，吹均匀制成细胞悬浮液涂片观察。
注意：如果细胞分散的不好，可再按上述方法 再固定1-2次，使染色体进一步分散。 9、取预先冰冻的载玻片，滴2-3滴细胞悬浮液于 其上，立即吹气均匀打散、过火、置室温中自 然干燥。
骨髓细•
•
实验目的：掌握制备方法，计算分裂中期
染色体数目，观察端着丝点的形态特点．
实验原理：小鼠骨髓细胞中的造血干细胞
，具有高度的分裂能力，可得到较多的细胞中 期的分裂相．
骨髓细胞染色体制备与观察
•
– – –
实验用品：
材料：小白鼠（2n=42）． 用品：显微镜、冰箱、恒温箱、恒温水浴锅 、离心机、注射器、解剖剪、 镊子、移液器、载玻片、烧杯等。 药品：0.1%(W/V)秋水仙素、2%(W/V)柠檬酸 钠溶液、0.07M氯化钾溶液、 （或0.35%氯 化钾溶液）、蒸馏水、Giemsa原液，甲醇、 乙酸等。
骨髓细胞染色体制备与观察
实验步骤：
预处理 低渗 取股骨 固定 冲洗骨髓 离心 离心 滴片
染色
观察
骨髓细胞染色体制备与观察
1、取健康小白鼠（约65-90天龄），腹腔注射
0.1%秋水仙素溶液0.1ml，剂量为4ml/Kg动物体 重。 2、2-3小时后，用损伤脊椎法处死小白鼠，取出 股骨，把肌肉刮净，剪下，用2%柠蒙酸钠溶液 洗净血污及残渣。 3、剪去关节头，用3-5ml2%柠檬酸钠溶液冲洗股 骨断面至粉白色，制备了骨髓细胞悬浮液。
•
•
10、用Giemsa染液,染色15-20分钟，自来水冲
洗，空气干燥。
11、在低倍镜下观察中期分裂相细胞，计算染
色体的数目，以确定其细胞2n的染色体数目。
小鼠骨髓细胞染色体制备与观察
细胞培养：在适宜的条件下将细胞从体内分离出来进行体外培养 传代：将培养的细胞按照一定的比例进行分装使细胞能够继续生长
制备前的准备：选 择合适的细胞培养 并维持细胞生长。
细胞固定：使用固 定剂将细胞固定在 一定位置防止细胞 移动。
细胞染色：根据实 验需求选择合适的 染色剂进行染色。
观察与拍照：使用 显微镜观察染色后 的细胞并记录照片 。
小鼠骨髓细胞染色体 制备与观察
汇报人：
目录
添加目录标题
实验准备
染色体制备
观察和分析
实验结论
添加章节标题
实验准备
小鼠骨髓细胞
培养基
胰蛋白酶
秋水仙碱
实验仪器：显微镜、离心机、细胞培养皿、细胞 刮刀等
实验试剂：生理盐水、胰蛋白酶、甲醇、冰醋酸、 Giems染料等
准备实验器材：显微镜、染色剂、 细胞培养皿等
染色体测量：使用显微测微尺等工具测量染色体的长度、宽度、着丝粒位置等特征有助于分析染色体的形态和结 构。
染色体组型分析：根据染色体的数目、形态和结构特征进行染色体组型分析有助于了解小鼠骨髓细胞的遗传特征 和变异情况。
染色体核型分析：通过观察染色体的数目、形态和排列方式分析染色体的核型有助于了解小鼠骨髓细胞的染色体 异常和遗传疾病。
实验前要洗手戴手套避免手上的杂 菌污染细胞。
染色体制备过程中要控制好温度和 时间避免温度过高或时间过长导致 细胞死亡。
添加标题
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染色体制备过程中要保持细胞活性 避免细胞死亡。
染色体制备过程中要选择适当的染 色剂避免使用过多的染色剂导致细 胞死亡。
观察和分析
观察步骤：将制备好的小鼠骨髓细胞染色体放在显微镜下调整焦距观察染色体的形态和分布
小鼠骨髓细胞染色体标本制作与观察
小鼠骨髓细胞染色体标本制作与观察实验目的：掌握动物骨髓染色体标本制备基本过程，了解操作步骤的原理，观察小鼠染色体的形态特征和染色体数目实验原理：①小鼠骨髓细胞始终保持较强的分裂活性，且细胞数量较多。
②小鼠骨髓细胞中的造血干细胞是生成各种血细胞和原始细胞，具有高度的分裂能力，本实验采用这一材料，通过前处理，低渗，固定，制片，染色等步骤制得染色体标本，可观察到许多处于分裂中期的染色体，可以进行染色体组型分析。
实验主要仪器试剂：材料：健康小鼠器具：注射器（1ml）剪刀镊子吸管10ml刻度的离心管离心机载玻片盖玻片显微镜滤纸擦镜纸纱布恒温水浴锅．药品：0.01%秋水仙素；0.075MKCl；固定液（甲醇：冰醋酸=3：1）；改良品红染色液实验主要方法步骤：秋水仙素处理- 颈椎脱臼处死- 取股骨- 冲洗收集骨髓-低渗处理- 预固定-离心去上清-固定-离心去上清-重悬-滴片-染色-观察1．预处理：实验前2.5-3h，按每克体重注射0.02ml，给小白鼠腹腔注射秋水仙素；2．取股骨：颈椎脱臼处死小鼠后，剔去肌肉组织，洗净；3．冲洗骨髓：剪去两端的骨头，注射器吸取0.075mol/L的37℃预热的KCl低渗液1ml，针头插入股骨一端，将骨髓冲出，调换一头再次用低渗液冲洗，如此反复冲洗两根股骨，冲洗液约3 ml收集到10ml 的离心管中；4 ．低渗：轻轻吸打混匀,标记后置于37℃水浴低渗处理15 min ；5．预固定：上述低渗处理好后，沿管壁加入1ml固定液，轻轻吸打混匀，室温预固定5 min ；6.离心：平衡好，1500 r/ min离心8min，弃上清；轻轻拨动试管悬浮细胞！7．固定：沿管壁加入5 ml固定液，用吸管轻轻吹匀（过猛容易导致细胞破裂），室温固定15 min ；8.离心：1500r/min 离心10 min ,去上清，再根据细胞量加入适量固定液（0.5-1ml），轻轻拨动悬浮细胞；9.滴片：用吸管吸取细胞悬液，高度30-40 cm，滴在-20℃预冷的载玻片上，吹气，在酒精灯火焰上微微加热，室温晾干；10. 染色：卡宝品红染色10min左右，自来水清洗，轻轻甩干，干燥后观察；11. 观察：低倍———高倍试验结果及讨论1.标本片质量评价（1）细胞密度合适、均匀；（2）背景干净，细胞核和染色体清晰；（3）有较多的分裂相；（4）染色体分散较好2.染色体形态特征观察3.染色体计数注意事项思考与讨论1、本实验中秋水仙素、低渗液、固定液各起什么作用？答：秋水仙素：破坏纺锤丝的形成，使细胞分裂停滞在中期, 使中期染色体停留在赤道面处，增加中期分裂相的比例低渗液：使细胞膨胀染色体铺展，同时可使黏附于染色体的核仁物质散开，以便能在一个平面上观察所有染色体形态。
实验报告骨髓细胞(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解骨髓细胞染色体制备的基本原理和操作步骤。
2. 掌握染色体制片技术，观察骨髓细胞染色体结构。
3. 熟悉显微镜的使用方法，提高观察细胞结构的能力。
二、实验原理骨髓细胞染色体制备是研究染色体结构、数量及异常的重要方法。
通过染色体制备，可以在显微镜下观察到细胞的染色体结构，从而分析细胞的遗传特性。
本实验采用小鼠骨髓细胞作为实验材料，通过秋水仙素处理使细胞分裂阻滞在中期，再进行低渗处理、固定、滴片、染色等步骤，制备染色体标本。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：小鼠骨髓细胞、秋水仙素、柠檬酸钠、固定液、染色液等。
2. 实验仪器：显微镜、离心机、载玻片、盖玻片、滴管、烧杯等。
四、实验步骤1. 实验前准备：将小鼠处死，取出骨髓组织，放入装有柠檬酸钠的小烧杯中，用剪刀剪碎，使骨髓细胞游离出来。
2. 低渗处理：将骨髓细胞悬浮液放入离心管中，离心后弃去上清液，加入适量固定液，再次离心，弃去上清液。
3. 染色：将固定后的细胞沉淀用染色液染色，室温放置10-15分钟。
4. 滴片：将染色后的细胞沉淀用滴管滴在载玻片上，盖上盖玻片，用显微镜观察。
五、实验结果与分析1. 观察到细胞呈圆形，细胞核较大，染色质清晰可见，染色体呈X形，可见有丝分裂中期细胞。
2. 观察到染色体数目与小鼠的正常染色体数目一致，染色体结构完整，无断裂、缺失、易位等异常。
六、实验讨论1. 秋水仙素处理：秋水仙素是一种细胞分裂抑制剂，能使细胞分裂阻滞在中期，有利于观察染色体结构。
2. 低渗处理：低渗处理可以使细胞膨胀，便于观察染色体结构。
3. 固定：固定可以使细胞和染色体保持原状，便于观察。
4. 染色：染色可以使染色体着色，便于观察。
七、实验总结本实验成功制备了小鼠骨髓细胞染色体标本，并观察到了染色体结构。
通过本实验，我们掌握了染色体制备的基本原理和操作步骤，提高了观察细胞结构的能力。
在今后的实验中，我们将进一步学习染色体分析技术，为遗传学研究提供有力支持。
实验七-动物骨髓细胞染色体的制备与观察.
[实验目的]1. 通过青蛙或小白鼠骨髓细胞染色体的制备，初步掌握低渗法制备动物骨髓细胞染色体的方法。
2. 熟悉染色体的形态、种类及青蛙、小白鼠等动物染色体的数目或类别。
[实验原理]骨髓细胞是具有旺盛分裂能力的细胞，从这些分裂细胞中，可观察到处于分裂中期的染色体，能对一种动物染色体的形态特征、数目进行准确的观察和分析。
由于骨髓直接涂片观察到的分裂相少，效果差，因此要对骨髓细胞进行必要的处理。
这个处理方法称为低渗法，其基本要求首先是要获得较多的中期分裂相。
秋水仙素对分裂期纺锤丝的形成具有破坏作用，当动物被注射适量的秋水仙素后，处于分裂增殖中的骨髓细胞由于纺锤丝不能形成，中期染色体不能正常趋向两极，到达后期、末期，因而大量的细胞处于观察染色体形态最佳的分裂中期。
其次是要能够清楚的观察染色体的形态。
为了达到此目的，取出的骨髓细胞要经过低渗（kcl溶液）使细胞膨胀、染色体适当的分散。
固定（甲醇、冰醋酸）使染色体保持完好的形态。
染色（giemsa液）使染色体易分辨、观察。
制备优良的标本可获得满意的观察效果。
利用动物骨髓制作染色体观察标本取材容易，不需培养，不需无菌操作，比较简便，是生物学实验教学中常用的方法。
一般选用的动物有青蛙、蟾蜍、小白鼠、大白鼠等。
[实验用品]1. 动物：青蛙或小白鼠、大白鼠、蟾蜍，雌雄均可。
2. 试剂：﹪秋水仙素、l氯化钾 (kcl)、3:1甲醇、冰醋酸固定液、吉姆萨（giemsa）染液、香柏油或液体石蜡、二甲苯。
3. 器材：解剖盘、小镊子、剪刀、注射器（2ml、5ml各一支）、刻度离心管、玻璃吸管、预冷载玻片、染色缸、玻片盒、量筒（10ml、50ml、100ml各一支），恒温水浴箱，盘架天平（配备等大的小烧杯两个）、电吹风、显微镜、吸水纸、擦镜纸、酒精灯、火柴。
[实验内容与方法]一、试剂配制1. ﹪秋水仙素溶液：秋水仙素2mg，灭活生理盐水（蛙类﹪、哺乳类﹪的nacl）10ml溶解，避光保存。
实验7小鼠骨髓细胞染色体标本的制备和观察
实验7小鼠骨髓细胞染色体标本的制备和观察一、实验目的了解利用动物骨髓进行细胞染色体制片的一般方法，掌握细胞收集、低渗、滴片等技术手段。
观察和了解小鼠染色体的数目及形态特征。
利用显微照相技术对所得切片进行照相。
二、实验原理染色体上的基因决定了一个物种生长发育的全部信息。
因此通过染色体分析，可以了解某一物种最基本的遗传指标。
进行染色体标本的制备一般取自细胞分裂旺盛的组织，如骨髓、淋巴细胞以及通过人工培养的悬浮液。
如将秋水仙素注射到动物的腹腔内，经肠系膜吸收并可转运到骨髓，结果使正在分裂的细胞不能形成纺锤体，使得染色体停在中期状态，经过处理和制片后就可以清楚地观察到染色体。
这种制片方法是属于侵害性的，因此这种方法适用于动物来源丰富、动物个体较小的材料。
对于大型动物可以采取骨髓穿刺术获得红骨髓，在临床上用于一些血液疾病的研究分析。
对于一些珍稀的鸟类可采用羽髓来制片，方法基本一样。
人类的染色体分析可采用外周血培养的方法来获得大量的细胞材料。
三、实验用具及材料实验材料：体重20克左右的小鼠一只实验试剂：0.075mKCl低渗液、固定液（甲醇：醋酸＝3:1）、0.4%秋水仙素、改良苯酚品红溶液、二甲苯实验材料：恒温水浴槽、纱布、烧杯、离心管2支、刀片、镊子、解剖盘、解剖剪、镊子、注射器、离心机、镜头纸光学显微镜、带数码相机的光学显微镜四、实验步骤1腹腔注射秋水仙素溶液：在做实验前2~3小时，对实验用小鼠按0.1ml/20g小鼠的量对其进行0.4％的秋水仙素注射。
2取材：实验时，用断颈法迅速将小鼠处死，通过解剖取出股骨，用注射器吸取在37℃下保温的低渗液2毫升，将针头插入骨髓腔中冲洗骨髓，使冲洗液从股骨的另一端流出。
收集冲洗液到5ml刻度的离心管中。
3低渗：用吸管将冲洗液吹打几次，然后把离心管放在37℃恒温水浴槽内低渗20分钟。
4固定：之后取出并加1ml的固定液，吹打之后放入37℃恒温水浴槽内固定10分钟。
5离心：然后将1000rpm离心10分钟，弃去上清。
实验动物染色体标本的制备与观察
二、实验原理
1、染色体的中期阻断法
材料:具有高度分裂能力的细胞
植物细胞染色体制备:常规的压片法 动物细胞染色体制备:滴片法
2、几种试剂的Βιβλιοθήκη 用秋水仙素 柠檬酸钠 KCl溶液 固定剂 姬姆萨染液 姬姆萨 （ Giemsa ‘ s stain ；天青 - 伊红）
3、小白鼠染色体的特点：呈“U”型，全部 为端着丝粒染色体； 40条（19对常+1对性）
2如果在实验前不给小白鼠腹腔注射秋水仙素所制备的染色体制片会出现怎样的情3在该实验中常常会观察到一些大大小小的被染成紫色或兰色的近似圆形的结构是未被打散的细胞核吗
实验动物染色体标本的制备与观察
一、实验目的
初步掌握动物骨髓细胞染色体标本制备的 基本过程，了解操作步骤的原理；
了解一些哺乳动物染色体的数目和特点。
颈椎脱臼法
股骨
取骨髓细胞
滴片
图: 小白鼠染色体
拓展实验
1、实验前不给小白鼠腹腔注射秋水仙素 （每组2只）
2、注射秋水仙素后2h、 4h、 6h、 8h 后再进行试验
五、作业及思考题
1、制备的小白鼠染色体标本，分裂相是否 多，染色体分散程度如何？有什么不足处， 原因何在？
2、如果在实验前不给小白鼠腹腔注射秋水 仙素，所制备的染色体制片会出现怎样的情 况？
一些常见动物的染色体数目： 家兔：44 野兔：48 猪：38 黄牛：60 马：64 驴子：62 骡子：63 猩猩：48 金丝猴：44 猫：38 狗：78
三、实验材料与仪器
1、材料：小白鼠 2、试剂：
2%柠檬酸钠、0.1%秋水仙素（现用现 配）、Giemsa染液（pH6.8） 0.4%Kcl溶液
0.067mol/L的磷酸盐缓冲液（pH6.8） 1：10Giemsa磷酸盐缓冲液（pH6.8） 固定液：甲醇：冰醋酸（3：1） 3、器材和仪器：
7实验七 动物染色体标本的制备与观察.
动物染色体标本的制备与观察
一、实验目的 二、实验原理 三、实验步骤 四、作业
一、实验目的
1. 掌握动物骨髓细胞染色体标本制 备基本过程，了解各个操作步骤 的原理。 2. 了解常用实验动物染色体的数目 及特点。
二、实验原理
凡处于增殖状态的细胞，或者经过处理 进入分裂的细胞即可用于染色体分析。 在动物的各种组织中，骨髓是不断分裂 的组织之一，是细胞遗传学研究的好材 料。
进行染色体观察、分析，需要选择处于 分裂中期的细胞。给动物注射一定量的 秋水仙素即可使许多处于早期分裂相的 细胞停滞于中期。
三、实验步骤
1. 动物按30µg/g体重的剂量经腹腔注射 秋水仙素，7—8小时后杀死蛙，取后 肢股骨和胫骨，剥掉全部肌肉，剪去 股骨和胫骨两端。
2. ★ 用注射器将 6ml 1%柠檬酸钠溶液通过针头注 入骨髓腔，冲出骨髓细胞至小碟内，直至股骨变 为白色为止。摘掉针头，用注射器轻轻反复吸打， 使分散成单个细胞。 3. 将 骨 髓 细 胞 转 入 离 心 管 ， 以 1500r/min 离 心 8 min，弃上清。 4. ★在离心管中加入事先预热至30℃的0.4% KCL 溶液5ml，将沉淀轻轻吹散，置30℃水浴中低渗 30min。 5. 以 1500r/min 离心 8 min 。弃上清液，沿离心管 壁缓慢加入新配制的甲醇:冰醋酸(3:1)固定液5ml， 加固定液时注意不要冲动细胞团块。
6. 加完固定液后，立即用吸管将细胞轻轻吸打均匀, 静置固定10min， 1500r/min离心10 min ，弃 上清液。如此反复固定1次，离心10 min。 7. 固定的细胞经离心后，吸去上层固定液，视管底 细胞多寡加入1--2ml新配制的固定液，将细胞团 块轻轻吸打成悬液。 8. ★ 在干净、湿、冷的载玻片上滴 2--3 滴上层细 胞悬液，自然干燥（滴片）。 9. 将玻片标本插入吉姆萨染液中，染色5 min。 10. 用小烧杯盛蒸馏水略洗，再用吸水纸擦干玻片标 本底面和四周，显微镜观察和分析。
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实验七动物骨髓细胞染色体的制备与观察
[实验目的]
1. 通过青蛙或小白鼠骨髓细胞染色体的制备，初步掌握低渗法制备动物骨髓细胞染色体的方法。
2. 熟悉染色体的形态、种类及青蛙、小白鼠等动物染色体的数目或类别。
[实验原理]
骨髓细胞是具有旺盛分裂能力的细胞，从这些分裂细胞中，可观察到处于分裂中期的染色体，能对一种动物染色体的形态特征、数目进行准确的观察和分析。
由于骨髓直接涂片观察到的分裂相少，效果差，因此要对骨髓细胞进行必要的处理。
这个处理方法称为低渗法，其基本要求首先是要获得较多的中期分裂相。
秋水仙素对分裂期纺锤丝的形成具有破坏作用，当动物被注射适量的秋水仙素后，处于分裂增殖中的骨髓细胞由于纺锤丝不能形成，中期染色体不能正常趋向两极，到达后期、末期，因而大量的细胞处于观察染色体形态最佳的分裂中期。
其次是要能够清楚的观察染色体的形态。
为了达到此目的，取出的骨髓细胞要经过低渗（kcl溶液）使细胞膨胀、染色体适当的分散。
固定（甲醇、冰醋酸）使染色体保持完好的形态。
染色（giemsa液）使染色体易分辨、观察。
制备优良的标本可获得满意的观察效果。
利用动物骨髓制作染色体观察标本取材容易，不需培养，不需无菌操作，比较简便，是生物学实验教学中常用的方法。
一般选用的动物有青蛙、蟾蜍、小白鼠、大白鼠等。
[实验用品]
1. 动物：青蛙或小白鼠、大白鼠、蟾蜍，雌雄均可。
2. 试剂：﹪秋水仙素、l氯化钾(kcl)、3:1甲醇、冰醋酸固定液、吉姆萨（giemsa）染液、香柏油或液体石蜡、二甲苯。
3. 器材：解剖盘、小镊子、剪刀、注射器（2ml、5ml各一支）、刻度离心管、玻璃吸管、预冷载玻片、染色缸、玻片盒、量筒（10ml、50ml、100ml各一支），恒温水浴箱，盘架天平（配备等大的小烧杯两个）、电吹风、显微镜、吸水纸、擦镜纸、酒精灯、火柴。
[实验内容与方法]
一、试剂配制
1. ﹪秋水仙素溶液：秋水仙素2mg，灭活生理盐水（蛙类﹪、哺乳类﹪的nacl）10ml溶解，避光保存。
2. l kc1溶液：
原液：kcl 双蒸水100ml溶解。
使用液：原液1份，双蒸馏水19份混合，
3. 吉姆萨(giemsa)染液：
原液：吉姆萨染粉，甘油33ml，甲醇33ml，配制时先将giemsa粉置于研体中，加入少量甘油，研磨至无颗粒，再加入余下的甘油，拌匀后放入56℃温箱中保温2小时，然后取出加入甲醇，充分拌匀，滤纸过滤用棕色瓶密封，避光保存，一般要放置2周后才能使用。
使用液：原液1份，磷酸缓冲液9份稀释。
使用液不宜长期保存，一般现配现用。
4. 磷酸缓冲液：该液可先配成甲液和乙液，然后混合使用。
甲液：kh2po4蒸馏水100ml溶解。
乙液：na2hpo4·2h20 （或na2hpo4·12h20 ）加蒸馏水100ml溶解。
使用液：甲液，乙液混合，该使用液也不易久放，一般也是现配现用。
各种动物骨髓细胞染色体的制备方法基本都采用低渗法，现以青蛙为例，说明其制备的过程。
1. 取健康小鼠一只，按每10g体重由腹腔注入含量为% 的秋水仙素（此步在实验前12～24小时完成，哺乳动物在实验前2～4小时完成）。
2. 将青蛙处死，迅速取出后腿长骨，包括股骨和胫骨，为了获得较多的骨髓细胞，前肢亦可使用。
3. 用剪刀、镊子剥离肌肉及结缔组织，剪去两头的骨结，迅速用5ml注射器抽取l的kcl
溶液，从一头插入骨髓腔冲洗，冲洗液接入刻度离心管内，反复多次，直至骨髓腔变白。
此时不要让组织块掉进离心管，如掉入，一定要用镊子或吸管取出。
加低渗液至5ml或8ml刻度，放入37℃恒温水浴箱内低渗处理25分钟。
4. 低渗完毕，取出离心管，向离心管中加入1ml左右3﹕1甲醇、冰醋酸固定液进行预固定。
1～2分钟后，每两支离心管成对放在天平上配平，使两支管的重量相等，然后将这两支管对应的放入离心机内的孔中，以1 500r/min 离心5～8分钟。
5. 取出离心管，弃去上清液，再加固定液至6～8ml，用玻璃吸管沿离心管壁吹打，使沉淀的细胞团块在固定液中充分均匀，然后放入37℃水浴箱中固定15～20分钟。
6. 再取出离心管，配平后离心5～8分钟，转速同样为1 500r/min。
离心完毕，去掉上清液，再加入1ml左右的固定液，用吸管吹打，制成细胞悬液。
7. 取预冷湿玻片一张，用吸管吸取细胞悬液，从30cm左右的高度滴到载玻片上，再用口吹散滴液，置于酒精灯上微微火烤，最后放玻片架或玻片盒中晾干。
8. 将晾干的玻片放入吉姆萨应用液染色缸中，或将玻片平放于桌上，将染液滴在片上染色。
染色10分钟后，用蒸馏水或自来水小心冲去染液，电吹风吹干后镜检。
将制好的玻片置于显微镜下，首先观察标本的制备效果，检验操作过程是否正确。
一般来说，制得好的标本应是细胞多、颜色为紫红色。
此时间期细胞由于低渗和固定处理，细胞膜和质已被去掉，镜下看到的仅为膨胀后呈圆形的细胞核。
分裂期细胞染色体集中在一起，其外也无细胞膜包裹，染色体之间无重叠，易分辨，臂的长度适中。
但最重要的是分裂相要多。
分裂相的多少主要取决于秋水仙素的用量和时间。
秋水仙素还影响染色体的形态，如用量过大，常使染色体过于缩短，不利于观察。
青蛙体细胞的染色体数目(2n)为26条，性染色体机制为xx - xy，即雌性为xx，雄性为xy。
染色体的形态随青蛙种类不同略有差异，主要表现为亚中着丝粒染色体的序号和数目不同，如黑斑蛙的亚中着丝粒染色体为3、7、8、11、12等5对染色体，金线蛙为3、7、11、12等4对染色体，虎纹蛙为3、6两对染色体。
小白鼠的染色体数目（2n）为40条，但全部为端着丝粒染色体，大小区别不明显，较难分组编号。
图6-1 小鼠染色体核型
大白鼠的染色体（2n）为42条，家兔的染色体（2n）是44条。
观察染色体时，不需加盖玻片，镜下先用低倍镜调好焦距，找到无离散，无重叠，形态好，可记数的一个分裂相，然后转高倍镜或油镜观察、记数，观察完毕后也不需擦试玻片，这样的玻片可保存数月。
表6-1 几种动物染色体形态特征
动物名称染色体数染色体类型x染色体形态y染色体形态
青蛙26中央、亚中央着丝粒染色
体中央着丝粒染色
体，介于6～7号
中央着丝粒染色
体，介于8～9号
小白鼠40全部为近端着丝粒染色体大小介于5～6号大小介于19～20
号
大白鼠42中央、亚中央近端着丝粒
染色体近端着丝粒染色
体，介于4～5号
近端着丝粒染色
体，介于18～19号
家兔44中央、亚中央近端着丝粒
染色体亚中央着丝粒染色
体，介于5～6号
近端着丝粒染色
体，介于19～20号
[注意事项]
1. 腹腔注射秋水仙素溶液时，注意不要使针头损伤动物内脏。
2. 制片所用离心管、吸管等勿必洗涤干净，否则细胞会滞留于管壁收集不到细胞导致实验失败。
3. 离心时，离心管一定要先平衡，然后在离心机中对应放置。
4. 使用药品时要注意药名标签，注意使用正确浓度。
5. 观察计数染色体数目时，观察的分裂相一般要在10个以上，这样计数才比较准确。
[实验报告与思考题]
绘图
绘制一个你所观察到的动物骨髓细胞染色体分裂相。
思考题
1. 简述青蛙骨髓细胞染色体的制备过程。
2. 制片过程中为什么要进行低渗处理低渗的时间长短对染色体制片效果有何影响
3. 在取骨髓前为什么要给动物注射秋水仙素？。