巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的降解机理及其控制策略
改良毕赤酵母分泌表达外源蛋白能力的研究进展
象, 并对不 正 确 折 叠 构 象 蛋 白 进 行 严 格 筛 选 的 主
1
主要的内质网驻留蛋白及其折叠加 工外源蛋白的分子机制
内质网腔是将分泌表达蛋白折叠成天然构
要场 所
[11]
。 内 质 网 驻 留 蛋 白 包 括 3 类 :折 叠 酶 、 分
子伴侣和凝集素伴侣。几种主要 的 内 质 网 驻 留 蛋 白对多肽 /蛋 白 质 的 折 叠 加 工 分 子 机 制 如 图 1 所 示。
and facilitate the folding progress by consuming ATP ; Foldase PDI further accelerates the protein folding process by formation of correct disulfide bonds mediated in a cycle of Pdi and Ero1 ; Nascent glycoproteins are bound by calnexin and mediated to correct folding and processing of the N - glycans. Correctly folded and processed proteins are released to transport vesicles ,while failed folding leads to binding by the BiP complex and targeting to ERAD.
bip参与内质网功能的而共表达bip的同时再共表达辅分子伴侣能够更pdi基因pdi似乎与新合成的scfv在折叠过程的不同阶段相互作用推测bip主要辅助未折叠或部分折叠scfv转运和保持折叠状态而pdi通过它的二硫键催化或异构化活性促进scfv的折叠23共表达pdi可能对富含半胱氨酸外源蛋白的分泌表达有胱氨酸的美洲板口线虫necatoramericanus分泌性蛋白naasp1时发现共表达pdi可以有效提多拷贝菌株分泌表达该蛋白能力
巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的研究进展
达 系统 。具 有 比 哺乳 动 物 细 胞 易 于 进 行 遗 传 操 这 主要 归功 于毕赤 酵母 具有 的其 他 表达 系 统不 可
比拟 的优点 : 具有 目前 最强 , 调控 机 理最 严 格 的启 动子一 醇 氧化 酶 A X O 1基 因启 动子 , 格 调 控外 严
缺乏转 录后 加工 修饰 的缺 陷 , 弥补 酿 酒 酵 母 缺 乏
系统 的 起 源 、 物 学特 性 、 合 蛋 白的 表 达 以及 影 响 蛋 白表 达 量 的 因 素 。 生 融
关 键 词 毕 赤 酵 母 ; 物 学特 性 ; 白表 达 生 蛋
中图分类号 T 96 Q 2 文献标识码 A 文 章 编 号 10 7 2 ( 07 0 0 7 0 0 5- 0 1 20 )6— 0 2— 5
Ad a c n t e Re e r h o r i n Pr t i pr s i n o c i so v n e i h s a c f Fo e g o e n Ex e so fPi h a pa t r
L G i g ON Jn ,DU L - i i n x
物 的转 录后调 控 机 制 , 如蛋 白 酶加 工 、 叠 、 硫 折 二
ti a e ,t e a v nc n oi i h s p p r h d a ei rgn,b oo i a h r ce itc ,f so r ti x r s in o he s se an hea s cae il gc lc a a trsi s u in p oe n e p e so ft y tm d t s o itd
密 度发 酵 , 源 蛋 白表 达 量 高 ; 在 过 氧 化 物 酶 外 存
工 , 赤酵母 表 达 系 统 在 国 内外 已经 引 起 了高 毕 度重视, 20 到 0 5年 止 , 经有 5 0 多种 蛋 白在 该 已 0 系统 中进行 了表 达 。
外源蛋白在巴氏毕赤酵母中高效表达的策略
第22卷 第3期 吉首大学学报(自然科学版)Vol.22 No.3 2001年9月J ournal of J ishou University(Natural Science Edi ti on)Sept.2001文章编号:1007-2985(2001)03-0040-05外源蛋白在巴氏毕赤酵母中高效表达的策略聂东宋,梁宋平,李 敏(湖南师范大学生命科学院,湖南长沙 410081)摘 要:高效表达外源蛋白,在理论和实践上特别是在生物制药中具有重要意义,巴氏毕赤酵母(Pichia pastoris)是表达外源蛋白最理想的真核表达系统之一.影响外源蛋白在P.pas toris中表达的因素很多,主要包括外源基因自身的特性、载体、宿主细胞几个方面,了解和灵活运用它们的联系,有助于获得外源基因在P.pastoris中的高效表达.关键词:巴氏毕赤酵母;外源蛋白;高效表达中图分类号:Q75 文献标识码:A巴氏毕赤酵母(P.pastoris)是一种单细胞真核生物,基因工程菌近年来已被广泛用于商业化生产外源蛋白.与其它表达系统比较,该系统具有以下优点:(1)高表达.该表达系统利用醇氧化酶基因启动子很强,细胞生长速度快,所以该表达系统表达的外源蛋白产量很高,如破伤风毒素蛋白的产量高达12g/L[1],其它表达系统一般为毫克级.(2)高稳定.由于该表达系统的表达载体不是以自主复制的质粒形式存在,而是整合到酵母染色体上,所以构建的菌株十分稳定.(3)高分泌.P.pastoris中一些分泌信号和先导序列如a-因子的分子生物特性已研究得十分清楚,加之它身体的生物学特性,其分泌表达可达10g/L,这在已知的分泌表达系统中是十分罕见的.虽然已有许多蛋白在P.pastoris中实现了高效表达,但仍有一些蛋白表达量相对较低,如 -cryptogein表达量级为1~5mg/L[2],AFP在摇瓶中表达时最高水平不超过5mg/L[3],有些甚至不能表达,如HIV表面糖蛋白[4].此外,酵母表达系统的局限性还在于分泌表达产物的不均一性,如信号肽加工不完全,表达产物内部降解等现象[5] 其次,当利用该系统的载体将外源基因通过双交换整合到宿主体中AOX1基因位置时,AOX1基因被破坏,这样使细胞利用甲醇能力大大降低.从而大大延长了细胞培养发酵时间.这种外源蛋白表达的差异,一方面是由于外源基因本身的特性而引起的,另一方面,表达条件也对表达量起了极其重要的作用.笔者综述了影响甲醇酵母中外源基因高效表达的各种因素,并阐述了优化外源蛋白在P.pastoris中高效表达的策略.1 外源基因本身的特性对表达的影响1 1外源基因的A+T组成外源基因本身的4种核苷酸的组成对基因的表达起重要作用.许多高A+T含量的基因通常会由于提前终止而不能有效转录,共有序列ATTATTTTATAAA就是一个转录提前终止信号 Caro1A Scorer[6]在表达人免疫缺损病毒(HI V)包膜糖蛋白gp120时,这个信号造成了gp120的转录提前终止.提前终止被认为是一种具有种族特异性的现象,如在P.pastoris中不能表达的HIVE NV蛋白在酿酒酵母中表达良好.[4]因此,可以通过调整高A+T含量区的核苷酸的组成来避免提前终止的发生,使其A+T含量在30%~50%收稿日期:2001-08-05基金项目:国家自然科学基金资助项目(39670392)作者简介:聂东宋(1967-),男,湖南省衡阳县人,湖南师范大学硕士研究生,主要从事基因结构与功能研究.范围内,CareJJ [1]用这种方法使破伤风毒素C 片段得到高效表达.1 2密码子的选择在不改变氨基酸组成的前提下,通过修饰密码子序列也可以提高表达水平.目前公认的观点是:通过优化基因的密码子序列,可以适应tRNA 的同工受体及宿主的反义密码子摇摆位置处被修饰的核苷酸的丰度,同时也有利于翻译的二级结构的形成.在酵母中表达较高的基因往往是采用酵母本身所偏爱的密码子,研究也表明在所有61个密码子中有25个是酵母所偏爱的[7].赵翔[8]通过对Pichia pastoris 的28个蛋白编码基因的同义密码子的使用情况的分析,确定了P.pastoris 的19个高表达优先密码子.这些结果与已知的Saccharomyles Cervisiae 及Kluyveromyles lactis 的密码子基本相似,但在谷氨酸的密码选择上截然相反.谷氨酸以GAG 为高表达优越密码而不是以S.cerevisiae 和ctis 所偏爱的GAA 为优越密码.姚斌等[9]在P.Pastoris 中表达植酸酶时,把在酵母中使用频率为0的精氨酸的密码子突变为使用频率较高的密码子时,表达水平提高了37倍.1 3mRNA5 非翻译区(5 -UTR)核苷酸的序列和长度5 -UTR 的核苷的序列和长度影响外源基因的表达.由于UTR 太长或太短都会造成核糖体40S 亚基识别障碍,因此,一个适当长度的5 -UTR 有助于mRNA 进行有效的翻译.Aox1基因5 -UTR 长为114nt 且富余A+ ,因此,为了获得最佳蛋白表达量,维持外源基因mRNA5 -UTR 尽可能与Aox1mRNA5 -UTR 相似是十分必须的,最好二者保持一致.Sreekrishna 等[10]通过调整人体血清白蛋白的(HSA)的mRNA5 非翻译区使之与醇氧化酶Aox1的非翻译区保持一致后,HSA 的表达量提高50倍以上,肠组织蛋白酶E (C TSE)的表达水平通过5 -UTR 的调整亦极大地增加[11].此外5 -UTR 应避免AUG 序列,以确保mRNA 从实际翻译起始位点开始翻译,起始密码AUG 周围不应形成二级结构,可通过密码子的替换来达到目的.2 外源蛋白在P.pastoris 中的高效表达策略2 1优化表达载体系统1)载体的选择.应用甲醇酵母表达异源蛋白时有多种载体可供选择,既有胞内表达载体(如pPIC3),又有分泌表达载体,如pPIC9,PHI L-D,PA0804,Pa0815,Ppsc3K 等.一般而言,对于非分泌蛋白采用胞内表达方式,而对于正常分泌蛋白则选择分泌型载体,这样更有利于表达产物的分离纯化.2)选择强启动子.P.pastoris 载体中最常用的启动子为Aox1启动子(Aox1promoter P Aox1),它的甲醇诱导性很强,因此,由它控制的外源基因通常能得到高效表达.也有人曾用P Aox2和P DAS 启动子,但二者的强度大大低于PAox1.如果带有外源基因的载体通过双交换整合起P.pastoris 的Aox1基因位置时,Aox1基因将被破坏.虽然Aox2和Aox1基因的序列同源性高达97%,但Aox1基因表达产物在正常细胞中仅占总酶量的5%.这样就使细胞利用甲醇的能力大大下降,从而使表达量下降且延长了细胞发酵时间(150~200h).为了克服这一缺点,戴秀玉[12]等通过分离选择恢复利用甲醇能力的自发突变体,从Aox1基因缺陷菌株中分离得到Mut +的自发突变体.他们对突变体的Aox2基因上游区域经PCR 护增产物测序,确定了该突变体在-255和-529两个位置的碱基发生了改变,而这两个位置为阻遏蛋白结合区域.该区域发生点突变后阻遏蛋白便不能很好地与之结合,通过去阻遏作用使得转录效率增强,从而提高表达量和缩短发酵时间.最近一种无需甲醇诱导而能组成性表达外源基因的毕赤酵母载体pGAPB 和pGAPB 已经构建成功,这些载体利用了三磷酸甘油醛脱氢酶(GAPDH)基因启动子P GAP ,在它的控制下B-1acz 基因表达率比甲醇诱导下的以P Aox1启动子的产量更高[13].由于该组成型启动子不需甲醇诱导,发酵工艺更为简单,而且产量更高,所以成为替代PAox1的最强有力的启动子.Doring 等[14]分别用pGAPZB 和pPICZB 来生产兔肾肽载运蛋白(rPE PTZ)和小人肠肽转运蛋白(hpEPTZ),前者表达的这两种蛋白的产量均比后者高4倍,看来在生产哺乳动物膜转运蛋白时pGAP 比PAox1更理想.3)信号肽的选择.分泌表达是一种理想的蛋白质生产方式,既可以减轻宿主细胞代谢负荷,又可减少宿主细胞蛋白酶对外源蛋白的降解.利用外源蛋白自身信号肽与酵母信号肽表达外源蛋白均有成功报道.用自身信号肽在P.pastoris 中表达成功的例子如人血清白蛋白和牛凝血酶等.但如果自身的信号肽序列效41第3期 聂东宋,等:外源蛋白在巴氏毕赤酵母中的高效表达42吉首大学学报(自然科学版)第22卷果不佳则可尝试用甲醇酵母的信号肽.这些信号肽主要有酸性磷酸酶基因PHO1的信号肽、蔗糖酶基因SUC2的信号肽、间质金属蛋白酶(MMP)的信号肽及转化酶(invertase)的信号肽等.其中a-因子信号肽使用最广,尤其对于小分子物质如抑肽酶、表皮生长因子、凝血固子X 等[10].杨晟[15]等采用a-因子信号肽比利用人血清白蛋白天然前导肽作为分泌信号肽可使重组人血清白蛋白表达量高出10%左右.另外如果外源基因产物不能分泌到体外,还可将产物连上一个定向肽(peroxisome targeting singal,P TS),使其定向运输到过氧化物酶体中,以免产物积累对宿主细胞造成毒害,同时产物自身的稳定性会大大增强.Water-ham[16]等利用定向肽在P.pastoris中成功地将P GAP启动下的 -半乳糖苷酶定向运输到过氧物酶体中.但用P.pastoris表达基因工程产物的另一问题是信号肽加工不完全,其表达的外源基因产物常比设计的多几个氨基酸残基,这可能是酵母自身调节机制对外源基因高表达的应答反应[5].Singh[17]等通过定向缺失诱变MF a1和干扰素基因连接处寡核苷酸导致了含有天然N端的成熟干扰素的正确释放,可以成为解决这一问题的好办法.2 2 增加外源基因整合拷贝数巴氏毕赤酵母载体在宿主染色体上大多数为单拷贝整合,但由于P Aox1在甲醇诱导下的强启动性以及整合后常常稳定,所以即使单拷贝也能获得较高的产量.如乙肝表面抗原在P.pastoris中单拷贝产率可达0 4g/L(酿酒酵因至少需50拷贝才能达到此水平)[18].但在另一些例子中,提高拷贝数可大大增加表达水平,如鼠表皮生长因子(E GF)、人肿瘤坏死因子(TNF)和破伤风毒素片段C[10].目前提高整合拷贝数的方法主要有:(1)通过不同的转化方法提高拷贝数.P.pastoris的转化方法有电激法、原生质体法、氯化锂法等,其中以原生质法转化使细胞群中产生多拷贝转化子频率相对较高.但若使用G418检测拷贝数,则配合电激法转化的效果更好[19].(2)在体外载体上多次插入目的基因片段.但这种多拷贝整合不太稳定且拷贝数有限.(3)将载体中目的基因两端连上来自宿主或其它非必需高重复的基因片段,通过同源重组而达到高拷贝整合的目的.由于rDNA在酵母基因组中有100~200个重复单元,所以这是一种提高拷贝的理想方式.该策略已在酿酒酵母[20]、乳酸克鲁维酵母[21](K lactis)中得到成功应用,可惜在P.pastoris中尚未见实验报道.目前要快速高效地筛选高拷贝的转化子,传统方法有SDS-PAGE、免疫印迹、southern blotting 等,但这些方法费时费力.通过PC R法检测拷贝数既方便又快捷,另外还可通过提高G418的浓度来筛选高拷贝转化子.但是个别情况下,拷贝数增加对产量也会产生负效应[22],这可能是由于分泌效率低的蛋白在过高表达的情况下会对分泌途径形成负反馈抑制,因此基因拷贝数对表达量的影响是无法预测的.高表达菌株的筛选应以表达蛋白量为唯一标准.Jeffrey[23]等建立了一种双筛选膜筛选方法:首先将菌转至醋酸纤维素膜上,再与硝酸纤维素膜叠放在酵母固体培养基上,经过一段时间培养后分泌蛋白就印在硝酸纤维素膜上,接着用此蛋白的抗体检测,即可挑出最高蛋白量对应的克隆.用这种方法,每套滤膜可筛选出100 ~1000个克隆,从而快速地从大量重组子中筛选出高表达克隆.2 3优化发酵条件1)通过提高菌株的生物量来提高外源蛋白表达量.采用不同的培养基配方和不同的发酵参数,通过提高细胞的绝对总数来提高外源蛋白的产量.影响P.pastoris生长的外界因素主要包括:(1)培养基组成.目前主要有MGY/mm、B MG/Bmm、B MGY/B mmy3种培养基可用于培养P.pastoris.但由于BMGY/Bmmy既含有磷酸缓冲液又含蛋白胨和酵母提取物,因而菌株生长更好,大大增加了生物量,使表达量也相应大大提高.如在表达mEGF时,在B mmy培养基中单拷贝转化子表达量为20 g/L,而在不含蛋白胨和酵母提取物的基本培养基中表达量少于1 g/L[24].蛋白胨和酵母提取物中几乎不含大分子蛋白质,只有分子量低于3000Da的小分子多肽,因此对于大分子外源蛋白的分离纯化不会造成不便.(2)诱导前菌体OD值.P. pastoris中蛋白表达分2个阶段:一是生长阶段,在含甘油的培养基中生长菌体,待OD600达到2~6时再离心收集菌体;二是诱导表达阶段,将收集的菌体转入含甲醇的培养基中诱导表达.理论上而言,OD600值越高,生物量越大,则总的表达量亦应该越高.但是OD600值越高培养基中氧和营养供给越受限制,而且外源蛋白的溶解性、稳定性、毒性都会对菌体产生影响.因此,高密度并不一定意味着高表达.鉴于发酵罐培养较之摇瓶培养在溶解量、pH值、通气量营养补给方面的优越性,有人建议在筛选高表达菌种时,经初筛后的菌株应立即用发酵罐进行发酵条件的研究,从而大大提高表达量.如在表达mEGF时,发酵罐较之摇瓶培养提高10倍,从48mg/L 到447mg/L;在表达破伤风肠毒素C 片段时,发酵罐也提高表达量10~20倍.2)防止目的蛋白降解.外源蛋白的稳定性直接影响到基因表达的产量.几乎没有一种高表达蛋白是特别稳定的,宿主菌内蛋白酶水平决定着表达产物的降解速度.高密度培养酵母固然可以大大提高培养基上清中分泌外源蛋白的含量,但随着重组蛋白的分泌增加,其它一些细胞内物质如蛋白酶亦会分泌增多,在培养基中积累从而造成对重组蛋白的降解.此外酵母细胞膜上有一种KEX-2样蛋白水解酶,能专一性水解 -因子前体中羧基端的肽键,即连续的2个碱性氨基酸(如lysAry,lyslys,Arglys),从而使目的蛋白降解.为了提高外源蛋白在发酵液中的稳定性,免受蛋白酶降解,可采有以下几种方法:一是改造P.pastoris 表达宿主菌株,缺失基因组中主要蛋白水解酶的基因,使目的基因稳定.或使用已有的蛋白酶缺陷菌株如SMD1168(his4pep4)、SMD1165(his4,prb1)和SMD1163(his4,pep4,prb1)亦可避免产物降解的发生[10].二是在培养液中补加一些富含氨基酸的组分和酪蛋白水解物、胃蛋白水解物,提供给酵母细胞蛋白酶过量的底物,以减少目的蛋白的降解.三是由于P.Pastoris 能忍耐较宽的pH 范围(pH 3.0~7.0),因此可调节溶液pH 值抑制蛋白水解酶活性,防止目的蛋白降解.四是降低甲醇诱导表达时的培养温度,Mei M 等[25]通过将诱导表达时的温度由30 降至25 ,半乳糖氧化酶表达量提高4倍.总之,P.pastoris 表达系统由于具有表达量高、本身遗传稳定、具翻译后加工能力、产物可分泌发酵、工艺成熟、分离纯化简单、蛋白质产物糖基化方式更接近高等生物等优点,已成为目前国内外倍受青睐的真核表达系统.目前用该系统表达的外源基因已上百种,很多医药制品如人血清白蛋白、人白介素-2、乙肝表面抗原、水蛭素等在该系统中都已成功表达,有些即将进入市场[26].但影响外源基因在P.pastoris 中表达的因素非常复杂,建立稳定的高效表达外源蛋白的表达体系并非易事.笔者着重探讨了与遗传因素及发酵方面有关的因素,这些策略的灵活运用将不同程度改善外源蛋白在P pastoris 中的表达水平.外源蛋白在P.pastoris 的高效表达是一个涉及多学科的问题,尚需其它研究领域的共同合作探讨.参考文献:[1] CLARE J J,RAYMENT F B,B ALLANTINE S P,et al.Hihg-level Expression of T etanus Toxin Fragment C in Pichia Pastoris StrainsContaining Multiple T andem Integration of the Gene[J].Bio/Technology,1991,(9):455-460.[2] MIC HAEL J D.Over Expressi on in Pichia Pastoris and Crystallization of an Elicitor Protein Secreted by the Phytopathogenic Fungus[J].Protein expression and Purification,1996,(8):254-261.[3] LOEVEN M C.Biosyn thetic Production of Type Fi sh Anti freeze Protein:Fermen tation by Pichia Pastris[J].Appl Microbiol Bi tech -nol,1997,(48):480-486.[4] CLARE J,SCORERC,BUC KHOLZ R E xpression of EGF and HIV Envelope Glycoprotein[J].Methods Mol Biol.,1988,(103):209-215.[5] 王洪海,高卜渝,陈佩丽,等.酵母表达基因工程产物不均一性分析及其对策[J].中国科学(B 辑),1994,24:1270-1274[6] CAROL A S.The Intra Cellular Production and Secretion of HIU -I Envelope Protein in the Methylotrophic Yeart Pastoris[J].Gene.,1993,(136):111-119.[7] PAUL M S.Codon Usage in Yeast:Cluster Analsis Clearly Differentiates Highly and Lowly E xpressed Genes[J],Nucleic Acids Re -search,1986,14(3):5125-5143.[8] 赵 翔,霍 兢,李育阳.毕赤酵母的密码子用法分析[J].生物工程学报,2000,16(3):308-311.[9] 姚 斌,张春义.高效表达具有生物学活性的植酸酶的毕赤酵母[J].中国科学(C 辑),1998,28(3):237-243.[10] SREEKRIS HNA K ,BARR K A,HOARD S A,et al.Strateg ies for Optimal Synthesis and Secretion of Heterologous Proteins in theMethy Lotrophic Yeant Pichin Psrtoris Gene[J].1997,190(1):55-62.[11] MAS AYU K Y.Secreton of Human In traceelular Aspartic Proteinase Cathepsin E Expressed in the Methylotrophic Yeast and Charac -terization of Produced Recombinant Cathepsin E[J].BBA,1994,1266:279-285.[12] 戴秀玉,王 恂,周 坚.毕赤氏酵母PAOX 2突变化序列分析[J].微生物学报,1999,39(6):559-561.[13] GREGG J M ,MADDE N K R,BARRINGER K J,et al.Functional Characterizati on of the Two Alcohol Oxidase Genes From the Yeast Pichia Pas toris[J].Mol Call Biol.,1989,9(3):1316-1323.43第3期 聂东宋,等:外源蛋白在巴氏毕赤酵母中的高效表达44吉首大学学报(自然科学版)第22卷[14] FRANK D,MAJAK,STEPHAN T,et e of the Glyceraldehyde-3-phosphate Dehydrogenase Promoter for Production ofFunctional Mam malian Membrane Transport Proteins in the Yeast Pichia Pas toris[J].Biochem Bio-phy Res Commun,1998,(250): 531-536.[15] 杨 晟,黄 鹤,章如安,等.重组人血清白蛋白在Pichia pastoris中分泌表达影响因素的研究[J].生物工程学报,2000,16(6):675-678.[16] WATERHAM H R,DIGAN M E,KOUTZ P J,et al.Isolation of the Pichia Pastoris Glyceraldehyde-3-p hosphate and Regulationand Use of Its Promoter[J].Gene,1997,186(1):37-44.[17] HITZEMAN R A,FRANK E H,HOWARDL,et al.Expression of a Human Gene for Interferon in Yeast[J].Nature,1981,(293):717-720.[18] MUROOK Y,IMANAKA T.Recombinant Microbes for lndus trial Agricultural Application[M].New York:Marcek dekker Inc.,1994.[19] SC ORER C A,C LARE J J,MC COMBIE W R,et al.Rapid Selection Using G418of High Copy Nu mber Transformants of PichiaPastoris for High-level Foreign Gene Expression[J].Bio/Technology,1994,12(2):181-184.[20] LOPES T S,HAKKAART G,KOER TS B L,et al.Machanis ms of Hi gh-Copy-number Integration of p MIRY-Type Vectors Intothe Ribosomal DNA of Saccharomyces Cerevisiae[J].Gene,1991,105(1):83-90.[21] 唐南筠,霍 兢,李育阳.乳酸克鲁维酵母高拷贝整合载体的构建和应用[J].生物化学与生物物理学报,1996,28(5):540-545.[22] GREGG J M,TSCHOPP J F,S T ILLMAN C,et al.High-level Expression and Efficient Assembly of Hepatitis B Surface Antigen inthe Methy Lotrophic Yeast Pichia Pastoris[J].Bio/Technology,1987,(5):479-486.[23] MC GREW J T,LEISKE D,DELL B,et al.Expression of Trimeric CD40Ligand in Pichia Pastoris:Use of a Rapid Method to DetectHigh-level Expression Transformants[J].Gene,1997,(187):193-198.[24] C LARE J J,ROMANOS M A.Production of EGF in Yeast:High-level Secretion Using Pichia Pastoris Strains Containing MultipleGene Copies[J].Gene,1991,105:205-212.[25] MEI M,WHITTAKER,JAMESW,et al.Expression of Recombi nant Galactose Oxidase by Pichia Pastoris[J].Protein Expression andPurification,2000,20:105-111.[26] CREGG J M,UDEVICK T S,RASCHKE W C.Recent Advances in the Expression of Forei gn Genes in Pichia Pastoris[J].Bio/Technology,1993,11(8):905-910.Optimpzed Strategies to Hyperexpress HeterologousProtein in Pich ia PastorisNIE Dong-song,LI ANG Song-ping,LI Min(Life Science College,Hunan Normal Universi ty,Changsha410081,Hunan China)Abstract:It is very important to produce heterologous proteins both in theory and in practice,expecially for biopharma-ceutical.Pichia pastoris has become one of the best eucaryotic expression systems in recent years.The factors influenc-ing the high-level expression of heterologous protein in P.pastoris and the core strategies to hypere xpress heterologous proteins in P.pastoris were discussed in this paper.Key words:pichia pastoris;heterologous protein;high-level expression。
毕赤酵母中高效引导外源蛋白分泌的信号肽的研究
毕赤酵母中高效引导外源蛋白分泌的信号肽的探究毕赤酵母被广泛应用于外源蛋白的表达和分泌,但其分泌机制依旧存在瓶颈。
信号肽作为外源蛋白分泌的关键信号,可以增进蛋白的正确折叠和定位。
本探究合成了多个信号肽并测试了其诱导外源蛋白分泌的效果。
结果显示,其中一个信号肽在毕赤酵母中具有高效的引导外源蛋白分泌的作用,并可提高外源蛋白的表达量。
这一探究为毕赤酵母外源蛋白分泌的机制探究和工业应用提供了新思路。
关键词:毕赤酵母、信号肽、外源蛋白分泌、表达、折叠定位正文:引言毕赤酵母是一种广泛应用于外源蛋白表达和分泌的真菌,其工业用途广泛,包括生产酶、生物肥料、食品添加剂等。
外源蛋白的表达和分泌是毕赤酵母应用的基础,因此其分泌机制的探究具有重要的理论和应用价值。
信号肽被认为是蛋白在细胞内穿过细胞膜从而被分泌到细胞外所必需的关键信号。
近年来,通过信号肽的调控已经在多种真菌中实现了外源蛋白的高效表达和分泌。
因此,寻找高效的信号肽,探究其引导外源蛋白分泌的机制,具有重要的应用前景。
材料和方法合成了11种可能具有对毕赤酵母分泌效果的信号肽,并转化到毕赤酵母中。
以GFP作为模型蛋白,不同信号肽在GFP表达和分泌过程中的诱导效果进行比较。
同时,测定了其中一个信号肽对外源蛋白表达量和分泌量的影响,并通过Western blot分析外源蛋白的分泌效果和分泌途径分析来探究信号肽的作用机制。
结果在11种信号肽中,有一个信号肽(称为SgPEP1)能够显著增加GFP的分泌效率,同时提高了外源蛋白的表达量。
Western blot和分泌途径分析显示,SgPEP1作用于胞内和胞外蛋白的定位和折叠,增进蛋白正确地进入胞外。
谈论本探究中发现的SgPEP1信号肽在毕赤酵母外源蛋白表达和分泌中具有高效的引导作用,这为改善毕赤酵母的表达和分泌效率提供了新思路。
在信号肽的机理探究中,需要进一步探究其在外源蛋白折叠中的作用方向和机制,以便更好地控制蛋白的定向和拓扑。
毕赤酵母表达系统在外源蛋白表达中的研究及应用
写一篇毕赤酵母表达系统在外源蛋白表达中的研究及应用的报
告,800字
毕赤酵母表达系统是一种高效、灵活的工具,可用于外源蛋白表达研究和应用。
它是一种重要的生物工程技术,可以实现外来基因的大规模表达,分子量可达到200 KD 以上。
目前,毕
赤酵母表达系统已成功地用于各类重要蛋白质的表达,并发挥了重要作用。
毕赤酵母表达系统的优势在于它能够表达复杂的蛋白质,而且不受细胞因子的限制,能够有效提高蛋白表达的效率。
此外,该系统还具有良好的原核性、容易稳定表达、灵活的改造等特点。
因此,毕赤酵母表达系统被广泛应用于外源蛋白表达和重组蛋白的研究中。
例如,已成功利用该系统彻底破解人工合成水稻Hsp70基因编码蛋白的结构,它同时也是人类在蛋白研
究中的有力工具。
毕赤酵母表达系统在医学研究中也得到了很大的发展。
比如,可以用毕赤酵母表达系统来研究和表达病毒血管瘤病毒(HPV)-695E5蛋白,而这种蛋白可能会加速病毒复制和细胞侵入,因
此有助于治疗HPV相关的癌症。
利用毕赤酵母表达系统还可
以大规模表达多肽,如α-肌动蛋白及其相关蛋白,从而探索
肌钙蛋白的生物学功能。
总的来说,毕赤酵母表达系统是一种重要的生物工程技术,它能够实现外来基因的大规模表达,受益于它的灵活性和稳定性,可以成功用于外源蛋白表达及其相关研究与应用中,是一项具有重大意义的研究。
毕赤酵母表达外源蛋白糖基化研究进展
毕赤酵母表达外源蛋白糖基化研究进展杨婕【摘要】Pichia pastoris as the host for the expression of recombinant proteins, has not only the advantages of prokaryotic expression system such as inexpensive in culture, ease of genetical manipulation, high levelsof protein expression, but also has post-translational protein processing capabilities like other higher eukaryotes such as protein folding, formation of disulfide bond and glycosylation. Gly-cosylation is an important form of posttranslational modification in secreted proteins and affects the structure and function of these pro-teins. In this review, we discuss protein glycosylation and humanized glycosylation engineering in Pichia pastoris.%毕赤酵母作为表达外源蛋白的宿主,不仅具有原核生物表达系统的优点,如培养成本低、遗传操作简单、表达效率高等,还可以对表达的外源蛋白进行翻译后修饰加工,如蛋白质折叠、二硫键形成和糖基化等,因而有其独特的优势。
在分泌蛋白修饰中,糖基化是一种重要修饰方式,影响蛋白的结构与功能。
巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的降解机理及其控制策略
巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的降解机理及其控制策略1.巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的降解机理在外源蛋白的表达过程中,宿主菌毕赤酵母的胞内和胞外均有一定量的蛋白酶的表达,因此,不论是胞内表达亦或是分泌表达,大多数外源蛋白均面临着被降解的问题,这也是影响表达量的一个重要因素,同时,还增加了纯化目的蛋白的难度。
近年来,蛋白酶的研究是P.pastoris表达系统一个重点和热点。
越来越多的蛋白酶的遗传背景和生理生化性质得到深入的研究。
P.pastoris能根据细胞生长环境(碳源的改变以及细胞或细胞器的胁迫)来调整自身酶系,以合成与降解不同的蛋白和细胞器,液泡是蛋白质降解最主要的场所,另一降解场所是细胞基质蛋白酶体中。
但是,对于外源蛋白来说,其降解常在表达和分离纯化的第一步,主要是由培养基中胞外蛋白酶,细胞外膜结合蛋白酶(cell-bound proteases)和细胞自噬或裂解释放的胞内蛋白酶降解的。
胞内蛋白酶主要涉及降解蛋白质前体产生活性蛋白;切除转运出膜后的蛋白质信号肽;使调控蛋白失活;降解变异或不需要的蛋白质;提供营养,前体和能量。
胞外蛋白酶分泌较少,主要降解部分蛋白质提供氨基酸和多肽等营养。
根据蛋白酶的分泌和作用地点,P.pastoris的胞内蛋白酶可以分为三种类别,即液泡蛋白酶(vacuolar proteases),细胞基质蛋白酶体(the cytosolic proteosome)以及分泌途径的蛋白酶(proteases located along the secretory pathway)。
表1.2毕赤酵母液泡蛋白酶和分泌途径蛋白酶Table 1.2 Proteases of Pichia pastoris vacuole and secretory pathwayEnzyme Type Gene Zymogen formVacuole PrA Aspartic PEP4 YesPrB Serine PRB1 YesCpY Serine PRC1 YesCpS Metallo-( Zn2+) CPS1 UnknownApI Metallo-( Zn2+) LAP4 YesApCo Metallo-(Co2+) DAP2 NoDPAP-B Serine SEC11 UnknownSecretory pathway signal peptidase Kex2 protease Serine KEX2 Yes Kex1 carboxypeptidase Serine KEX1 NoDPAP-A Serine STE13 Unknown,predict noYeast as partyl protease ш Aspartic Y AP3 Unknown,predict yes酵母液泡位于基质中,一方面是维持胞内pH和盐离子平衡,储藏盐离子的功能;另一方面,由于液泡中含有大量的非特异性的水解酶,较宽底物范围的内生和异源蛋白酶,液泡是降解蛋白甚至细胞器的一个重要场所,大约80%的蛋白在液泡中降解。
毕赤酵母高效表达策略-1
1.基因的内在特性主要包括mRNA 5’端非翻译区(5’2 U TR)、基因的A +T 组成和密码子的使用频率3 个方面。
由于巴斯德毕赤酵母中乙醇氧化酶的表达量极高(占胞内可溶蛋白的30% 以上) 因此为了有高的蛋白表达量,维持外源基因mRNA 5’-U TR。
尽可能和AOXlmRNA 5’-U TR 相似是必需的, 最好是保持两者一致。
A + T 含量高的基因在巴斯德毕赤酵母中表达时偶尔会造成转录提前终止,这是因为A T 丰富区可能存在转录提前终止信号。
因此对A T 含量丰富的基因最好是重新设计序列, 使其A + T 含量在30%~55% 范围内。
巴斯德毕赤酵母也有特殊的密码子偏好趋向。
(赵翔,霍克克,李育阳. 毕赤酵母的密码子用法分析[J ] . 生物工程学报,2000 ,16(3) :308 - 311.)外源蛋白自身的理化特点也影响其表达和分泌。
外源蛋白的加工修饰都会影响蛋白的表达量。
2.选择强启动子启动子在转录水平上调控基因的表达最常用的启动子是AOXI 启动子。
PGAG(三磷酸甘油醛脱氢酶启动子) 是最近在巴斯德毕赤酵母中克隆到的一个组成型启动子,在它的控制下β- LabZ 基因表达率比甲醇诱导下的PAOX驱动的产量更高,由于该组成型启动子不需要甲醇诱导,发酵工艺应该更简单,同时其产量更高,所以成为代替PAOX1 最有潜力的启动子。
通过分离选择恢复利用甲醇能力的自发突变体, 从AOX1 基因缺陷菌株中分离M ut+ 的自发突变体,从中筛选提高表达量的突变体。
(戴秀玉, 王恂, 周坚1 毕赤氏酵母PAOX2 突变化序列分析〔J 〕1微生物学报, 1999, 39 (6) : 559~5611)3.增加外源基因整合拷贝数(1)Invitrogen 公司最新发展的质粒pPIC9K上带有G418 的抗性基因,可以通过转化子对G418抗性水平快速筛选高拷贝转化子(配合电激法转化的效果更好)。
(2)在体外载体上多次插入目的基因片段。
重组毕赤酵母生产外源蛋白的过程控制与生理分析的研究进展
重组毕赤酵母生产外源蛋白的过程控制与生理分析的研究进展高敏杰1,2,张许1,2,高鹏1,2,史仲平1,2,*【摘要】毕赤酵母是近年来应用广泛、极受青睐的一种外源蛋白表达系统。
除了构建高效、稳定的毕赤酵母生产菌株外,研究不同发酵控制条件下,细胞的生理和代谢状态变化,为毕赤酵母细胞提供最优的生长和环境条件并综合考虑发酵成本是成功实现外源蛋白规模化、商业化生产的保障。
本文从培养基组分、外界环境条件、细胞比生长速率、生长期甘油流加策略和诱导期甲醇流加策略等方面阐述了发酵过程对外源蛋白表达的影响,并进一步从细胞生理和代谢层面深入讨论了不同发酵过程控制条件的影响机制。
【期刊名称】食品工业科技【年(卷),期】2014(035)024【总页数】7【关键词】毕赤酵母,过程控制,代谢分析,蛋白分泌,压力应激【文献来源】https:///academic-journal-cn_science-technology-food-industry_thesis/020*********.html毕赤酵母(Pichia pastoris)表达系统是近年来应用非常广泛的一种外源蛋白表达宿主系统,与其他表达系统相比,具有外源基因遗传稳定,细胞生长速率快,产物表达效率高,不受内毒素和噬菌体影响,外源蛋白可以进行翻译后修饰,大多数产物可以分泌到胞外等许多优点。
至今已有1000多种外源蛋白在该表达系统中成功表达,重组蛋白产品涉及食品、饲料、医药等众多行业[1-3]。
毕赤酵母发酵过程通常分为三个阶段:甘油分批培养阶段、甘油流加阶段和甲醇诱导阶段,前两个阶段总称为细胞生长期,目的是为了得到高密度的酵母细胞,甲醇诱导阶段向发酵罐中流加甲醇培养基,诱导外源蛋白表达。
图1为一个典型的好氧发酵过程控制示意图,发酵过程中通过电极在线测量得到的实时甲醇浓度、溶氧浓度、pH和温度等,以及通过天平在线测量得到的实时甲醇流加量、甘油流加量,经多通道A/D-D/A转换卡传输到工业计算机上,与设定值进行比较,然后根据比较结果,对pH、温度以及甲醇和甘油的流加速率等进行调整。
影响外源蛋白在巴斯德毕赤酵母中表达和分泌的研究进展
影响外源蛋白在巴斯德毕赤酵母中表达和分泌的研究进展张丞斌;傅正伟
【期刊名称】《现代生物医学进展》
【年(卷),期】2008(008)007
【摘要】巴斯德毕赤酵母(Pichia pastoris)表达系统是基因工程研究中广泛使用的外源蛋白表达系统.但外源基因在该系统中表达时,由于受自身特性及环境等诸多因素的影响,在表达过程中出现表达量不够稳定或较低,甚至不表达的情况.本文对影响巴斯德毕赤酵母表达的各种可能因素进行了分析,并就如何提高外源基因在巴斯德毕赤酵母中表达量的问题进行了简要的综述.
【总页数】3页(P1382-1384)
【作者】张丞斌;傅正伟
【作者单位】浙江工业大学生物与环境工程学院,浙江,杭州,310032;浙江工业大学生物与环境工程学院,浙江,杭州,310032
【正文语种】中文
【中图分类】Q78
【相关文献】
1.巴斯德毕赤酵母PEP4基因的剔除及对基因工程菌外源蛋白质表达的影响 [J], 杨扬;赵健;石军
2.巴斯德毕赤酵母PEP4基因的剔除及对基因工程菌外源蛋白质表达的影响 [J], 杨扬;赵健;石军
3.巴斯德毕赤酵母表达系统及其分泌型蛋白表达的研究进展 [J], 路蓉;安云庆
4.利用巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的研究进展 [J], 余祖华;王红宁
5.巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的研究进展 [J], 龙晶;杜立新
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影响外源基因在巴斯德毕赤酵母中的表达
影响外源基因在巴斯德毕赤酵母中的表达摘要要在一种宿主表达系统中成功表达外源蛋白并获得较高产量,必须要较为全面地了解影响其表达的诸多因素。
影响外源基因在巴氏毕赤酵母中表达的因素主要包括:外源基因的特性、表达框的染色体整合位点和方式、宿主菌的甲醇利用表型、基因剂量、分泌信号、产物稳定性和翻译后修饰等。
本文就这些因素进行分析,并提出一定的对策和建议。
酵母菌是单细胞真核生物,具有生长快、易于遗传操作、能对外源蛋白进行翻译后加工和修饰、不产生有毒产物等特点,被认为是表达外源蛋白的合适宿主。
几种工业酵母尤其是巴氏毕赤酵母(pichia pastoris, Pp),因具有旺盛的生长力以及其它一些独特的性质,已发展成为较成熟的蛋白生产的表达系统。
已有许多细菌、真菌和高等动植物的基因在Pp中成功表达(如破伤风毒素片段C,12g/L),但也有许多蛋白的表达量并不理想(如多瘤病毒大T抗原,0.5mg/L),甚至不能表达(如HIV表面糖蛋白)。
另外,酵母表达系统的局限性还在于分泌产物的不均一性,包括聚合体的存在、信号肽加工不完全以及内部降解等现象。
所有这些都提醒我们在Pp中表达外源蛋白时,应周密考虑影响其表达的各个因素。
1、外源基因特性外源基因在Pp中表达时,其自身就是影响表达水平的重要因素。
不同的培养基配方、发酵参数和饲养方案主要是通过提高细胞绝对总数而并非单个细胞产率来提高外源蛋白的产量。
Fahnestock等发现随着外源的蛛牵拉丝蛋白基因拷贝数的增加,其生产效率会相对有所降低。
另外,许多高A+T含量的基因常会由于提前终止而不能有效转录引;不合适的mRNA5'非翻译区的核苛酸序列和长度也可能会便基因的表达不尽如人意。
提前终止被认为是一种具有种属特异性的现象,譬如在Pp中不能表达的HIV ENV蛋白在啤酒酵母中却表达良好。
因此,可以通过调整高A+T含量区的核甘酸组成来避免提前终止的发生。
而Sreekrishna 等通过调整人血清白蛋白(human serum albumin,HSA)的mRNA5'非翻译区与醇氧化酶(alcohol oxidase 1,AOX1)的5'非翻译区相同后,HSA的表达量可以提高50倍以上。
毕赤酵母中外源蛋白表达量的提升策略
毕赤酵母中外源蛋白表达量的提升策略
茹扎·也里扎提;杨宇
【期刊名称】《生物技术通报》
【年(卷),期】2024(40)3
【摘要】利用异源重组表达系统表达外源蛋白是基因工程研究的重点。
巴斯德毕赤酵母(Pichia pastoris)是一种甲基营养型酵母,由于其易于遗传操作、高水平分泌外源蛋白、翻译后修饰等特点,已成为工业应用中蛋白质生产的重要菌株,常被用于酶制剂的生产。
然而,部分外源蛋白在毕赤酵母系统中的表达水平较低,仍有待提升的空间。
因此,进一步探索提升毕赤酵母中外源蛋白表达量的原理和方法,将对降低毕赤酵母表达系统工业化生产成本,提高经济效益,具有重要的意义。
本文主要从基因水平、转录水平、翻译水平、折叠分泌水平、抗逆水平、发酵工艺六个方面归纳总结了近年来毕赤酵母提高外源蛋白表达的优化策略的研究进展,旨在为提高外源蛋白在毕赤酵母表达系统中的表达水平提供有益参考。
【总页数】17页(P118-134)
【作者】茹扎·也里扎提;杨宇
【作者单位】北京理工大学生命学院
【正文语种】中文
【中图分类】TS2
【相关文献】
1.外源蛋白在毕赤酵母中的高效表达策略
2.巴斯德毕赤酵母高效表达外源蛋白的策略
3.巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的优化策略
4.基于提高蛋白在内质网中折叠效率的策略促进外源蛋白在毕赤酵母中表达水平的研究进展
5.毕赤酵母高效表达外源蛋白的分子水平策略
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巴斯德毕赤酵母表达系统研究进展
巴斯德毕赤酵母表达系统研究进展作者:方园园来源:《绿色大世界》2009年第12期摘要:经过近20年的不断开发和完善,巴斯德毕赤酵母(Pichia pastoris)已经成为目前最成功的真核表达系统之一,被广泛用于医药生产、饲料添加剂开发和科学研究。
介绍了毕赤酵母的生物学特性、常用菌株和表达载体的特点及其研究进展,并阐述了其在外源蛋白的表达方面具有的独特优势。
关键词:毕赤酵母;表达载体;外源蛋白中图分类号:Q78文献标识码:A文章编号:1005-569X(2009)12-0037-031 引言巴斯德毕赤酵母(P.pastoris)是一类在缺乏葡萄糖或甘油时,能利用甲醇做为唯一碳源和能源的酵母菌,具有旺盛的生命力,可以在廉价的非选择性培养基中生长,有较宽的生长pH适应范围(3.0~8.0),有较好的发酵基础,非常有利于实现高密度发酵培养,菌体密度可高达100g干细胞/L,它们生长的适宜温度一般为28~30℃,是常用的外源蛋白表达系统。
2 巴斯德毕赤酵母宿主菌株根据对甲醇利用的情况,P.pastoris可划分为三种表型:第一型,即Mut+型,此型毕赤酵母具有完整的AOX1和AOX2基因,在含甲醇的培养基中生长速率与野生型类似,称为甲醇利用正表型。
绝大多数毕赤酵母为Mut+表型,如GS115和SMD1168;第二型,即MutS型,此型毕赤酵母的AOX1基因部分敲除,被酿酒酵母ARG4基因所取代,AOX2虽然与AOX1有97 %的同源性,但在含甲醇的培养基内该型毕赤酵母生长缓慢,称为甲醇利用慢表型,如KM71(his4 arg4 aox1::ARG4);第三型,即Mut-型,此型毕赤酵母AOX1及AOX2基因均被敲除,细胞不能进行甲醇代谢,无法在甲醇中生长,为甲醇利用负表型,如MC100-3(his4 arg4 aox1::ARG4 aox2::Phis4)。
后两者表达外源蛋白有时优于野生株,且需甲醇较少,有时其表达量甚至高于Mut+型。
巴斯德毕赤酵母高效表达外源蛋白的策略
巴斯德毕赤酵母高效表达外源蛋白的策略
骆诗鸿
【期刊名称】《海峡药学》
【年(卷),期】2007(019)002
【摘要】巴氏毕赤酵母(Pichia pastoris)是表达外源蛋白最理想的真核表达系统之一.要在一种宿主表达系统中成功表达外源蛋白并获得较高产量,必须要较为全面地了解影响其表达的诸多因素.本文综述了应用该体系高效表达外源蛋白需考虑的策略.
【总页数】4页(P4-7)
【作者】骆诗鸿
【作者单位】厦门特宝生物工程股份有限公司,厦门,350005
【正文语种】中文
【中图分类】R92
【相关文献】
1.外源蛋白在毕赤酵母中的高效表达策略 [J], 孙玮遥;王向东;林剑
2.影响外源蛋白在巴斯德毕赤酵母中表达和分泌的研究进展 [J], 张丞斌;傅正伟
3.外源蛋白在巴氏毕赤酵母中高效表达的策略 [J], 聂东宋;梁宋平;李敏
4.巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的优化策略 [J], 樊英;李天保;杨秀生;王建华;滕达
5.人重组白蛋白基因在巴斯德毕赤酵母中的高效表达 [J], 崔蕴霞;明文玉;银巍;任哲;汪健;顾军
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外源蛋白在毕赤酵母中的高效表达策略
外源蛋白在毕赤酵母中的高效表达策略孙玮遥;王向东;林剑【摘要】毕赤酵母(Pichia pastoris)表达系统是目前应用最为广泛的蛋白表达系统之一,已成功表达了数百种外源蛋白.但不同外源蛋白的表达量差异较大,能够实现工业化生产的蛋白表达体系并不多,如何提高目的蛋白在该系统中的表达量有着重要的理论和现实意义.该文从发酵工艺方面对影响外源蛋白表达的各种因素做了具体阐述,主要包括培养基的选择与优化、发酵过程参数的控制、分泌型蛋白酶的降解抑制以及诱导型毕赤酵母的甲醇流加机制,旨在提高外源蛋白表达量.【期刊名称】《中国酿造》【年(卷),期】2016(035)009【总页数】5页(P11-15)【关键词】毕赤酵母表达系统;外源蛋白;发酵工艺;优化【作者】孙玮遥;王向东;林剑【作者单位】烟台大学生命科学学院,山东烟台264005;山东大学医学院,山东济南250100;烟台大学生命科学学院,山东烟台264005【正文语种】中文【中图分类】Q815以脱氧核糖核酸(deoxyribose nucleic acid,DNA)重组技术为代表的基因工程的飞速发展,为分子生物学领域的各项研究提供了契机。
蛋白质作为基因表达的产物,成为了一直以来的研究热点,从而也带动了蛋白质表达系统的快速发展。
毕赤酵母(Pichia pastoris)表达系统作为目前应用最为广泛的蛋白表达系统之一,已成功表达了包括激素、疫苗、细菌毒素以及各类药用制品在内的数百种外源蛋白。
虽然已有数百种外源蛋白在毕赤酵母中表达成功,但不同外源蛋白的表达量却差异巨大。
HASSLACHER M等[1]报道过的用毕赤酵母发酵生产胞内羟基腈裂解酶,表达量可达22 g/L,而WEISS S等[2]用毕赤酵母表达仓鼠阮病毒蛋白质PrPc 的表达量却不足0.1 mg/L。
因此,研究不同蛋白在毕赤酵母表达系统中的表达机制及发酵条件具有重要意义。
影响不同外源蛋白在毕赤酵母中表达的因素一方面来自于细胞水平的工程菌构建,即通过基因操作手段提高单个细胞的蛋白分泌量;另一方面,从宏观角度上通过优化发酵工艺来提高外源蛋白的表达量。
毕赤酵母表达研究进展
利用强效可调控启动子AOX,已高效表达了HBsAg、TNF、EGF、破伤风毒素C片段、基因1工程抗体等多种外源基因[11、12、13],证实该系统为高效、实用、简便,以提高表达量并保持产物生物学活性为突出特征的外源基因表达系统,而且非常适宜扩大为工业规模[14]11. 彭毅,杨希才,康良仪。
影响甲醇酵母外源蛋白表达的因素。
生物技术通报2000,4:33-3612. 11 3 Cregg JM . Tschopp JF Stillman C, et al .High-level expression and efficient assembly of hepatitis B surface antigen in the methylotrophic yeast pichia.pastoris Bio/Technology,1987,5:479-48513. Sreekrishma K , Nelles L ,Potenz R,et al .High-level expression ,purification ,and characterization of recombinant human tumor necrosis factor synthesized and characterization in the methylotrophic yeast pichia .pastoris ,Biochemistry ,1989,28:4117-412514. Siegel RS , Buckholz RG, Thill GP , et al .Production of epider growth factor in methylotrophic yeast cells, International Patent Application ,1990 ,Publication No:WO90/10697毕赤酵母是甲醇营养型酵母,可利用甲醇作为其唯一碳源。
巴斯德毕赤酵母(Pichia pastoris)表达系统综述
毕赤酵母启动子以及诱导物
启动子 诱导表达 AOX1,AOX2(甲醇氧化酶) 以甲醇诱导表达 GAP (3 一磷酸甘油醛脱氢酶) 葡萄糖组成型 表达(甘油或甲醇诱导产量只有2/3,1/3) FLD1(甲醛脱氢酶) 以甲基化胺为氮源 (葡萄 糖为碳源),甲醇为碳源 (硫酸铵为氮源)表达 PEX8(过氧化物酶体基质蛋白) 以葡萄糖、 甲醇诱导表达 YPT1(GTP酶) 以葡萄糖甲醇、甘露糖醇组 成型表达
外源蛋白在巴斯德毕赤酵母中的 表达种类
具有代表性的如下列一些外源蛋白质P.pastoris中已经获得高效产 生: (1)蛋白酶类,如人溶菌酶、人胃促胰酶、葡萄糖苷酶等; (2)激素类,如胰岛素前体、人绒毛膜促性腺激素、鲤鱼生长激 素等; (3)受体、抗体及单链抗体等生物活性蛋白; (4)抗原类,如乙型肝炎表面抗原、破伤风毒素片段C、登革热病 毒E蛋白等; (5)细胞因子类,如肿瘤坏死因子、表皮生长因子、血管生成抑制 因子等; (6)酶制剂类,如植酸酶等; (7)病毒蛋白类,如乙型脑炎病毒E蛋白、伪狂犬病病毒Ea株gE蛋 白等
毕赤酵母的优点
利用受甲醇诱导的醇氧化酶(AOX1)启动子,可严格 控制外源基因的表达
营养要求简单,生长快速,适合高密度大规模培养, 很少产生有毒物质,毒性比细菌小,用甲醇不易染菌, 可以减少污染。 外源蛋白基因遗传高稳定性,外源蛋白质具有一定程 度上的折叠加工和糖基化修饰,性质较原核表达的蛋 白质更加稳定,特别适合于表达真核生物基因和制备 有功能的蛋白质。
毕赤酵母发酵工艺对产量的影响
甲醇营养型毕赤酵母表达外源蛋白发酵一般有二个阶 段,即酵母细胞营养生长阶段和外源蛋白表达阶段。 酵母细胞生长阶段主要目的为达到一定的菌体量,另 一方面通过流加限制甘油来抑制甲醇代谢途径,并使 细胞从甘油相顺利向甲醇相过渡。 蛋白表达阶段由于毕赤酵母具有以甲酵作为唯一碳源 和能源的特性,且外源基因就插入在能够利用甲醇的 AOX基因中,当甘油用完时立刻补入甲醇诱导AOX基 因产生醇氧化酶来利用甲醇,同时启动表达外源基因 的AOX的启动子(PAOX)表达外源基因蛋白
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巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的降解机理及其控制策略1.巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的降解机理在外源蛋白的表达过程中,宿主菌毕赤酵母的胞内和胞外均有一定量的蛋白酶的表达,因此,不论是胞内表达亦或是分泌表达,大多数外源蛋白均面临着被降解的问题,这也是影响表达量的一个重要因素,同时,还增加了纯化目的蛋白的难度。
近年来,蛋白酶的研究是P.pastoris表达系统一个重点和热点。
越来越多的蛋白酶的遗传背景和生理生化性质得到深入的研究。
P.pastoris能根据细胞生长环境(碳源的改变以及细胞或细胞器的胁迫)来调整自身酶系,以合成与降解不同的蛋白和细胞器,液泡是蛋白质降解最主要的场所,另一降解场所是细胞基质蛋白酶体中。
但是,对于外源蛋白来说,其降解常在表达和分离纯化的第一步,主要是由培养基中胞外蛋白酶,细胞外膜结合蛋白酶(cell-bound proteases)和细胞自噬或裂解释放的胞内蛋白酶降解的。
胞内蛋白酶主要涉及降解蛋白质前体产生活性蛋白;切除转运出膜后的蛋白质信号肽;使调控蛋白失活;降解变异或不需要的蛋白质;提供营养,前体和能量。
胞外蛋白酶分泌较少,主要降解部分蛋白质提供氨基酸和多肽等营养。
根据蛋白酶的分泌和作用地点,P.pastoris的胞内蛋白酶可以分为三种类别,即液泡蛋白酶(vacuolar proteases),细胞基质蛋白酶体(the cytosolic proteosome)以及分泌途径的蛋白酶(proteases located along the secretory pathway)。
表1.2毕赤酵母液泡蛋白酶和分泌途径蛋白酶Table 1.2 Proteases of Pichia pastoris vacuole and secretory pathwayEnzyme Type Gene Zymogen formVacuole PrA Aspartic PEP4 YesPrB Serine PRB1 YesCpY Serine PRC1 YesCpS Metallo-( Zn2+) CPS1 UnknownApI Metallo-( Zn2+) LAP4 YesApCo Metallo-(Co2+) DAP2 NoDPAP-B Serine SEC11 UnknownSecretory pathway signal peptidase Kex2 protease Serine KEX2 Yes Kex1 carboxypeptidase Serine KEX1 NoDPAP-A Serine STE13 Unknown,predict noYeast as partyl protease ш Aspartic Y AP3 Unknown,predict yes酵母液泡位于基质中,一方面是维持胞内pH和盐离子平衡,储藏盐离子的功能;另一方面,由于液泡中含有大量的非特异性的水解酶,较宽底物范围的内生和异源蛋白酶,液泡是降解蛋白甚至细胞器的一个重要场所,大约80%的蛋白在液泡中降解。
在P.pastoris生长和表达外源蛋白过程中,由于碳源从葡萄糖或甘油到甲醇的改变,甲醇代谢酶系(AOX,FAD,DHAS等)和过氧化氢体逐步积累,同时,相应的蛋白酶也产生了。
由于细胞器胁迫的影响,过氧化氢体一部分在基质中自噬降解,大部分过氧化氢体转运到液泡中得到降解。
P.pastoris中位于与细胞膜结合的胞内蛋白酶类可分为蛋白质水解酶(内切酶)和多肽外切酶,由蛋白酶,羧肽酶,氨肽酶类组成。
所有的蛋白酶都是由其蛋白酶前体经过酶切活化而成,按照其作用活性位点又分为4类,丝氨酸类蛋白酶、金属蛋白酶、半胱氨酸类蛋白酶和天冬氨酸类蛋白酶。
丝氨酸类蛋白酶最适pH值比较高,又叫碱性蛋白酶,而天冬氨酸类蛋白酶需要低的pH范围,又叫酸性蛋白酶。
主要的液泡内蛋白酶有以下几种:蛋白酶A(proteinaseA,PrA),蛋白酶B(proteinase B,PrB),羧肽酶Y(carboxypeptidases Y,CpY),羧肽酶S(carboxypeptidases S,CpS),氨肽酶I (aminopeptidases I,ApI),氨肽酶Co (aminopeptidase Co,ApCo),二肽氨肽酶B(Dipeptidyl aminopeptidase B,DPAP-B)。
蛋白酶A,分子量约42kDa,是天冬氨酸类蛋白酶,由基因PEP4表达,其前体能自身催化而形成成熟的蛋白酶,并催化羧肽酶Y前体和蛋白酶B前体形成羧肽酶Y和蛋白酶B;蛋白酶B,分子量约32kDa,丝氨酸类蛋白酶,由基因PRB1表达,对基因PRB1克隆和测序发现是一个很大阅读框,编码一个最少69 kDa的前提,其前体有50%的自身催化成蛋白酶B,另一部分由蛋白酶A催化;蛋白酶A和蛋白酶B是液泡中最基本的蛋白酶,是其他蛋白质水解酶的激活剂。
羧肽酶Y,是丝氨酸类蛋白酶,由基因PRCl编码, 其生物合成,液泡内分拣和CPY的加工成熟目前研究很清楚。
PRCl基因编码的羧肽酶Y前体包含一个N-端信号肽,一个含90个氨基酸的前肽和一个含421个氨基酸的酶活区域。
羧肽酶Y前体经过高尔基体后切除糖链得到一个69kDa的中间体,然后在液泡中切除前肽形成61 kDa成熟的羧肽酶Y。
羧肽酶Y前体(67kDa)没有生物活性,必须在蛋白酶B作用下或蛋白酶A与蛋白酶B共同作用才能形成成熟的羧肽酶Y。
羧肽酶S,是一个由基因CPSI编码,依赖于金属离子的羧肽酶,分子量73~77kDa,其合成与膜和内质网相关。
氨肽酶I,由基因LAP4编码,是一个含有12个亚基分子量为640 kDa的金属多肽,氨肽酶Co是一个分子量为100kDa 的Co2+金属多肽,其机理目前不清楚。
二肽氨肽酶B,由基因DAP2 编码的膜接合液泡蛋白酶,在传递到液泡前没有蛋白酶活性。
酵母液泡中的各种蛋白酶量会随着发酵过程中营养条件的改变发生变化,如发酵过程中的饥饿胁迫、碳源改变、热和pH变化及有毒有害产物的形成等。
分泌到胞外的重组蛋白降解有可能是由于蛋白酶的过表达而部分分泌到胞外所致和高密度培养时细胞自溶造成膜破裂而释放出蛋白酶两种因素引起。
在Sinha的研究中发现当P. pastoris从甘油生长阶段转为以甲醇为碳源诱导表达阶段时,培养基中的各种蛋白酶量明显增加,远高于一直以甘油作为碳源的实验对照组。
基质蛋白酶体,又称蛋白体,多蛋白酶复合体,多催化功能蛋白酶,存在于真核细胞内,主要完成蛋白酶水解途径的中间过程,其中20S的蛋白酶体,位于所有真核生物的细胞核和细胞间质中,是一个分子量为700 kDa 圆柱形颗粒,由14个不同的亚基折叠缠绕而成。
26S蛋白酶体是一个巨型蛋白酶复合物,分子量高达1700 kDa,主要降解依赖ATP的泛醌类蛋白质,它是由2个19S 蛋白酶体连接到20S 蛋白酶体两端构成,它们主要负责短周期的蛋白质的分拣和快速降解,包括某些对细胞有害的蛋白质。
液泡和蛋白酶体降解的互作是调节细胞过程的一个重要方式,特别是对细胞胁迫的响应方面。
分泌途径的蛋白酶主要分布在高尔基体和细胞质膜上,其功能是去处去除蛋白酶前体上的多肽,主要的蛋白酶有信号肽(Signal peptidase),Kex2蛋白酶(Kex2 Endoproteas ),Kexl 羧肽酶(Kexl carboxypeptidase)二肽氨肽酶A(Dipeptidyl Aminopeptidase A,DPAP-A),酵母天冬酰胺蛋白酶III (Yeast Aspartyl Protease III,Yap3 Protease)。
信号肽是一个最少包含4个亚基的完整的膜蛋白。
Kex2蛋白酶,由基因KEX2编码,其功能是切除COOH-端的Lys-Arg or Arg-Arg 键残基。
Kexl 羧肽酶,由基因KEXl 编码,是一个特异性的丝氨酸类蛋白酶,二肽氨肽酶A,由基因STE13编码的膜蛋白,酵母天冬酰胺蛋白酶III,其功能是在Kex2蛋白酶的作用下,切除受体COOH-端α因子前体。
在发酵过程中,由于高密度细胞的影响以及部分细胞的裂解,液泡中的蛋白酶常释放到培养基中,导致目的蛋白的降解。
在发酵的过程中,随着外源蛋白在培养基中的浓度不断提高,蛋白水解酶浓度也随着升高,对外源蛋白产生降解作用。
因此,防止蛋白水解酶的水解作用,提高外源蛋白的稳定性,减少外源蛋白的损失,也就相对地提高了外源蛋白的产量。
2.巴斯德毕赤酵母表达外源蛋白的降解控制策略蛋白酶降解是酵母表达系统的共有一个缺陷,降解不仅能引起目的蛋白的产率下降,降解形成的片断还能造成分离纯化极大困难,特别是与目的蛋白分子量大小相差很小的降解产物,由于它们的理化性质接近,常规的分离方法很难将它们分离开来,导致产品收率大大下降,产品纯度低,蛋白的比活性降低。
几乎所有在酵母中表达的重组蛋白都或多或少地存在表达蛋白降解问题,只是程度不同而已。
而表达蛋白发生降解的不同程度往往是由于发酵培养条件和发酵控制方式不同所致。
尽管降解程度有所不同,但引起蛋白降解的直接原因是酵母细胞自身存在的各种蛋白酶。
蛋白质的降解常引起目的蛋白产率的减少,生物活性的降低,并在分离纯化过程中降解产物由于类似的物化或亲和性质而造成产物污染。
P. pastoris表达外源蛋白时的蛋白降解控制策略日益受到重视。
为避免蛋白酶的降解,不同的策略得到应用,如2使用蛋白酶缺陷菌株(protease deficient strains), 对蛋白质结构进行修饰(modification of the protein structure), 添加蛋白酶抑制剂(addition of protease inhibitors),改变培养基pH(changing the pH of the culture medium)以及添加在培养基中补加,如酪蛋白水解物(Casamino acids)、蛋白胨(yeast peptone)等一些富含氨基酸和多肽的组分。
归纳起来可以分为三种水平策略:培养水平(cultivation-level strategies),细胞水平( cellular-level strategies )和蛋白质水平策略(protein-level strategies)。
2.1 培养水平策略提高分泌蛋白的稳定性可通过改变培养基的pH来加以改善。
P. pastoris的pH适应范围比较广,可以在pH 2.8~7的范围内生长。
不同的蛋白酶有不同的最佳pH作用范围,选择适当的发酵pH可以不影响细胞的生长,但可降低蛋白酶活性,减少目的蛋白的降解。
P. pastoris 在pH 3.0条件下发酵重组水蛭素比pH 5.0下的降解少。