水稻基因组
论水稻全基因组测序技术在育种中的应用研究
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论水稻全基因组测序技术在育种中的应用研究第一章:引言水稻是世界上最重要的粮食作物之一,它的全基因组测序技术的应用研究有助于深入了解水稻的遗传基础和提高水稻的产量、品质等方面的育种。
第二章:水稻全基因组测序技术的发展在2002年,水稻的第一个基因组测序项目启动了,这个项目的目标是寻找全基因组序列的大多数部分。
之后,随着技术的不断进步,全基因组测序技术得到了广泛应用。
目前,水稻的全基因组测序技术已经进入了第三代测序时代。
第三章:水稻全基因组测序技术在育种中的应用3.1 遗传多样性的研究全基因组测序技术可以比较全面地揭示水稻中的遗传变异,这对于研究种质资源的多样性以及保护和利用这些资源具有重要意义。
例如,对水稻大豆囊性线虫病的研究表明,全基因组测序技术可以帮助研究人员准确地识别相关基因,从而寻找到水稻的抗性,这对于育种具有重要意义。
3.2 基因功能研究在水稻全基因组测序技术的帮助下,研究人员可以深入研究不同基因的功能,进而研究不同基因对水稻产量、品质等方面的影响。
这些研究可以有助于选育更有利的水稻品种。
3.3 基因图谱构建水稻全基因组测序技术可以产生可靠的基因图谱,为水稻的基因组学研究提供强有力的支持。
例如,在2010年,中国科学家们利用全基因组测序技术建立了水稻的高密度遗传图谱,这对于研究水稻的复杂遗传特性有很大的帮助,也为育种提供了有力支持。
3.4 规模化选择育种水稻全基因组测序技术可以帮助研究人员了解水稻的遗传基础,在此基础上,可以进行基因标记辅助选择和精细定位来实现预选优良基因型。
这在规模化的选择育种中特别有效,可以大大提高水稻的育种效率。
第四章:水稻全基因组测序技术在未来的应用展望水稻全基因组测序技术的发展势头强劲,随着新技术的不断涌现,它的应用前景也将变得更加广阔。
例如,随着单细胞测序和纳米孔测序等新技术的应用,可以预见,水稻全基因组测序技术的精度和速度将得到进一步提高,从而可以更好地适应不同的育种需求。
水稻功能基因组学
![水稻功能基因组学](https://img.taocdn.com/s3/m/680284d7534de518964bcf84b9d528ea80c72f5f.png)
水稻功能基因组学
《水稻功能基因组学》
1. 什么是水稻功能基因组学
水稻功能基因组学是一种研究水稻基因、调控元件以及它们之间关系的基因组学分析方法。
它也称为水稻结构基因组学、水稻基因组注释、水稻转录组分析、水稻基因组辅助比较、水稻DNA芯片分析等。
2. 水稻功能基因组学的基本技术
水稻功能基因组学的基本技术包括基因克隆、染色质基因克隆、染色质免疫沉淀、小RNA技术、cDNA克隆、DNA测序、转录组分析、甲基化分析和生物信息学分析等。
3. 水稻功能基因组学的应用
水稻功能基因组学通过对水稻基因、调控元件及它们之间调控网络的研究,可以解析水稻的遗传特性,深入了解水稻的生物学特性,可以为水稻的种质改良和育种提供有用信息。
此外,它还可以为水稻抗逆性、营养品质、穗发育特性的调控、除草剂抗性基因的挖掘等提供重要依据。
水稻基因组DNA提取,PCR,纯化分子生物学实验报告
![水稻基因组DNA提取,PCR,纯化分子生物学实验报告](https://img.taocdn.com/s3/m/ab183298a1116c175f0e7cd184254b35eefd1a86.png)
分子生物学实验报告实验内容:设计一个完整的实验,以水稻基因组为例,最终得到纯化的一个基因片段。
水稻基因组DNA提取以及基因片段的扩增、纯化和检测1.实验目的:1.1 熟练掌握实验室分子生物学相关的仪器的规范使用方法1.2 遵守实验室相关的实验规章制度,服从实验人员的管理1.3 熟练掌握实验室有关植物基因组DNA的简单提取方法以及检测方法1.4 了解琼脂糖凝胶电泳的原理,掌握胶体制备的方法以及电泳仪的操作方法1.5 掌握PCR技术的操作流程,熟练使用PCR仪并了解其工作原理及检测方法1.6 了解柱纯化的原理及使用方法2.实验原理1)水稻叶片基因组DNA提取水稻属于真核生物,其DNA以双链线性高分子形式存在于细胞核中,一般以染色质形式在。
由于植物组细胞破裂之后,DNA酶会水解DNA因此在提取过程总要加入EDTA螯合剂从而抑制DNA酶活性。
水稻叶片基因组DNA的提取主要是通过破碎组织和细胞从而通过对细胞内其他杂质的去处来达到基因组DNA的提纯。
提纯的产物通过1%的琼脂糖凝胶电泳进行检验。
本实验是通过CTAB法来进行提取的,它是一种阳离子表面活性剂,能溶解细胞膜和和核膜蛋白,使核蛋白解聚从而使DNA游离出来,已达到分离的目的。
2)特定基因片段的PCR扩增PCR(Polymerase Chain Reaction,聚合酶链反应)是一种选择性体外扩增DNA或RNA的方法。
它包括三个基本步骤: (1) 变性(Denature):目的双链DNA片段在95℃下解链;(2)退火(Anneal):两种寡核苷酸引物在适当温度(55℃左右)下与模板上的目的序列通过氢键配对;(3) 延伸(Extension):在TaqDNA 聚合酶合成DNA 的最适温度下,以目的DNA 为模板进行合成.由这三个基本步骤组成一轮循环,理论上每一轮循环将使目的DNA 扩增一倍,这些经合成产生的DNA 又可作为下一轮循环的模板,所以经30轮循环就可使DNA扩增上百倍。
水稻gg基因组
![水稻gg基因组](https://img.taocdn.com/s3/m/3f4d67d26aec0975f46527d3240c844769eaa006.png)
水稻gg基因组
水稻gg基因组是指来源于疣粒野生稻的基因组,该基因组在新种质利用方面具有重要意义。
据报道,中国科学院在野生稻基因组利用方面取得了重大进展,新种质被全国100多家单位利用,育成水稻新品种91个,累计推广种植面积2921.2万亩。
此外,研究团队还开发了一系列基于 Cas9-NG 的各种水稻基因组定点编辑工具,成功用于水稻单基因敲除、多基因敲除、单碱基编辑以及靶基因转录激活调控,这对于水稻基因功能解析和分子精准育种具有重要促进作用,将加速实现水稻缺陷型基因的修饰矫正,有利于缩短水稻育种进程和延长现有优良品种的应用周期。
总的来说,水稻gg基因组对于水稻育种和基因研究具有重要意义,有望推动水稻产业的发展。
水稻9311基因组
![水稻9311基因组](https://img.taocdn.com/s3/m/371ed329001ca300a6c30c22590102020740f23f.png)
水稻9311基因组摘要:1.水稻9311 基因组的概述2.水稻9311 基因组的研究意义3.水稻9311 基因组的研究进展4.水稻9311 基因组的应用前景正文:一、水稻9311 基因组的概述水稻9311 基因组是指水稻品种“9311”的基因组,是一种重要的粮食作物基因组。
水稻9311 基因组的研究有助于提高水稻的产量和品质,对解决全球粮食安全问题具有重要意义。
二、水稻9311 基因组的研究意义水稻9311 基因组的研究意义主要体现在以下几个方面:1.提高水稻产量:水稻9311 基因组的研究有助于揭示水稻生长发育的分子机制,从而为培育高产水稻品种提供理论依据。
2.提高水稻品质:通过对水稻9311 基因组的研究,可以找到影响水稻品质的关键基因,进而培育出优质水稻品种。
3.抗病性研究:水稻9311 基因组的研究有助于揭示水稻抗病性的遗传机制,为培育抗病性强的水稻品种提供理论支持。
三、水稻9311 基因组的研究进展目前,水稻9311 基因组的研究取得了显著进展:1.水稻9311 基因组测序完成:科学家已经完成了水稻9311 基因组的测序工作,揭示了水稻9311 基因组的基本结构和基因组成。
2.功能基因研究:通过对水稻9311 基因组中关键基因的功能研究,已经取得了一系列重要成果,包括产量、品质和抗病性等方面的关键基因。
3.转基因技术应用:基于水稻9311 基因组的研究成果,已经成功培育出一批具有高产、优质和抗病性等特点的转基因水稻品种。
四、水稻9311 基因组的应用前景水稻9311 基因组的研究成果在农业生产中具有广泛的应用前景:1.培育高产水稻品种:利用水稻9311 基因组的研究成果,可以筛选和培育出高产水稻品种,为解决全球粮食安全问题提供有力支持。
2.培育优质水稻品种:通过对水稻9311 基因组的研究,可以找到影响水稻品质的关键基因,进而培育出优质水稻品种,满足人们生活水平的提高。
3.抗病性强的水稻品种:利用水稻9311 基因组的研究成果,可以培育出抗病性强的水稻品种,减少农药使用,提高农业生产效益。
水稻分子育种技术的研究进展
![水稻分子育种技术的研究进展](https://img.taocdn.com/s3/m/b6b9d53c591b6bd97f192279168884868762b8d8.png)
水稻分子育种技术的研究进展水稻分子育种技术是目前水稻育种中最为先进的技术之一。
它是利用分子遗传学方法改良水稻品种、提高其产量、品质、抗病性和适应性的一种方法。
水稻作为世界上最主要的食物作物之一,其育种技术也十分重要。
本文将详细介绍水稻分子育种技术的研究进展。
一、水稻基因组测序技术的研究进展水稻基因组测序技术是分子育种技术的基础。
2002年,国际水稻基因组组织 (IRGSP) 完成了水稻品种日本晴的全基因组测序工作,标志着水稻分子育种技术进入了一个新的发展阶段。
在此基础上,人们可以更好地探索水稻基因组结构和功能,提高水稻育种效率。
目前,全球已有数百个水稻品种基因组序列被测序,这使得人们对水稻基因组结构和功能有了更深入的了解。
通过基因组测序技术,人们已经找到了许多与水稻产量、品质、抗逆性等相关的基因,这为水稻分子育种提供了新的思路和方法。
二、水稻分子标记辅助育种技术的研究进展水稻分子标记辅助育种技术是利用分子标记对水稻进行育种改良的一种方法。
分子标记是一种基于 DNA 序列变异的分析方法,可以高效、准确地检测不同基因型之间的差异。
水稻分子标记辅助育种技术可以快速筛选优良基因型,降低育种周期,提高育种效率,取得了显著的研究进展。
近年来,大量的水稻分子标记已经被研发出来,如 SSR 标记、SNP 标记、RAPD 标记等,其中 SSR 标记已被广泛用于水稻育种中。
此外,人们还利用分子标记技术进行分子标记辅助选择基因型、利用基因组学信息进行优良杂交组合的研究等方面取得了重要进展。
三、水稻分子育种在耐盐碱、抗旱、抗病方面的研究进展水稻在生长过程中,常面临各种逆境条件。
耐盐碱性、抗旱性和抗病性是影响水稻生产的关键因素。
水稻分子育种技术的另一个重要应用就是通过遗传改良提高水稻在各种不良环境下的耐受性和抗性。
在这方面,人们也已经取得了一些成果。
针对水稻耐盐碱性问题,人们已经鉴定了多个相关基因,并研究了分子机制。
基于水稻分子标记辅助育种技术,针对不同生境环境下的不同种杂交组合进行选育,选育出了多个耐盐碱性强、产量高的水稻品种,其中有数个已成功应用于生产。
水稻品种改良的基因技术方法
![水稻品种改良的基因技术方法](https://img.taocdn.com/s3/m/76190af59fc3d5bbfd0a79563c1ec5da50e2d601.png)
水稻品种改良的基因技术方法水稻是全球最重要的粮食作物之一,也是世界上最主要的主食。
为了满足全球不断增长的需求,必须提高水稻的产量和品质。
而基因技术是一种新兴的改良水稻品种的方法。
本文将详细介绍水稻品种改良的基因技术方法,包括基因克隆、基因组编辑和转基因技术等。
1. 基因克隆基因克隆是一种利用分子生物学手段将目标基因复制出来并插入到宿主细胞中的方法。
水稻的基因组已经被测序,因此基因克隆成为改良水稻品种的重要手段。
首先,需要从野生品种或其他品种中筛选出与所需性状相关的基因。
然后,利用PCR技术扩增目标基因的DNA序列,再将扩增出来的DNA片段插入到特殊载体中。
最后,将该载体引入水稻细胞中,DNA片段就能够在水稻细胞中表达出来,产生所需的性状。
2. 基因组编辑基因组编辑是一种通过直接编辑水稻基因组的方式改良水稻品种的方法。
与传统基因克隆方法不同,基因组编辑可以对水稻基因组进行精确的修改,从而实现对水稻性状的精确调节。
为了利用基因组编辑技术改良水稻品种,首先需要使用CRISPR/Cas9系统,这是一种先进的基因编辑工具。
CRISPR/Cas9系统利用一种特殊的酶Cas9和一个针对目标基因的RNA序列,直接切割水稻基因组中的目标位点。
然后,可以将所需基因的DNA片段插入到已经被编辑的位点中,从而实现所需性状的表达。
3. 转基因技术转基因技术是一种将外源基因引入水稻细胞中,从而改变水稻性状的方法。
转基因技术通常包括两个步骤:首先,需将目标基因插入到植物表达载体中,然后将该载体引入水稻细胞中。
转基因技术已被广泛应用于改良水稻的性状,例如提高产量、改进品质、增强抗病能力等。
然而,转基因技术也存在着负面影响。
由于外源基因的引入可能会破坏基因组的稳定性,导致水稻植株的生长和发育异常、易感病等问题。
因此,在进行转基因改良时需要进行充分的风险评估。
总结通过基因克隆、基因组编辑和转基因技术等方法,可以调节水稻的性状和提高其产量和品质。
水稻遗传学和功能基因组学研究
![水稻遗传学和功能基因组学研究](https://img.taocdn.com/s3/m/57adaf4c6d85ec3a87c24028915f804d2b16878c.png)
水稻遗传学和功能基因组学研究第一章水稻遗传学概述水稻是我国的主要粮食作物之一,具有重要的经济和社会意义。
研究水稻的遗传学是为了深入了解其遗传背景和基因组结构,以及为水稻的选育和改良提供科学支撑。
水稻遗传学主要包括构建水稻基因库、遗传图谱的建立、分子标记的开发和利用、基因表达调控机制的研究、分子辅助育种等方面。
第二章水稻基因库的构建水稻基因库的构建是水稻遗传学研究的重要内容之一。
通过构建一个完整的水稻基因库,可以为后续的遗传和功能研究提供有力的支持。
目前,国内外的科研机构已经对水稻进行了全基因组测序,提供了大量的基因序列信息。
在这些基础上,还需要进一步进行基因的克隆、表达和功能鉴定等工作,以便更好地理解水稻遗传特征。
第三章水稻遗传图谱的建立水稻遗传图谱的建立是为了揭示水稻基因组的遗传特征,包括基因的定位、连锁分析和遗传距离等信息。
水稻遗传图谱可以帮助遗传家园掌握水稻基因组特征和遗传规律,并为水稻品种的选育和改良提供重要的遗传信息。
第四章分子标记的开发和利用分子标记是遗传学研究中非常重要的工具之一,它们可以被用来检测基因型、筛选有用的混合物和标记重要的遗传性状。
在水稻遗传学研究中,许多分子标记已被开发出来,如RAPD、AFLP 和SSR等。
分子标记的开发和利用可以极大地简化作物品种的选育和改良过程,提高作物的品质和产量。
第五章水稻基因表达调控机制的研究水稻基因表达调控机制的研究是为了揭示水稻基因表达的重要规律和调控机制,从而更好地了解水稻的生长发育和抗逆能力。
水稻基因表达调控机制的研究包括转录因子、mRNA稳定性、miRNA和siRNA等方面,这些研究可以为水稻繁育和控制病虫害等提供有益的参考和指导。
第六章分子辅助育种分子辅助育种是一种新型的选种技术,它可以通过分子标记辅助进行杂交育种和后代筛选。
利用分子辅助育种技术可以提高品种的抗病性、耐盐碱性、耐旱性和产量等。
与传统的育种方法相比,分子辅助育种可以大大缩短选种时间、提高选种效率和减小成本。
中国水稻功能基因组研究进展与展望_肖景华
![中国水稻功能基因组研究进展与展望_肖景华](https://img.taocdn.com/s3/m/5234b39cd0d233d4b14e69b1.png)
摘要
功能基因组研究是植物生命科学研究的核心领域之一. 从少数基因的克隆到重要农
关键词
功能基因组 全基因组 SNP 芯片 4D 基因组 水稻育种
艺性状的功能基因组解析, 我国水稻功能基因组研究实现了跨越式发展, 阐明了水稻育种 中的一些重大生物学问题 , 功能基因组的研究为水稻品种改良和育种技术变革奠定了基 础. 着眼未来, 我国科学家提出了继续推进“水稻2020”研究计划, 适时启动水稻4D基因组 的发展建议.
华中农业大学生命科学技术学院, 作物遗传改良国家重点实验室, 武汉 430070 * 联系人, E-mail: xiaojh@ 2015-04-14 收稿, 2015-05-04 接受, 2015-05-22 网络版发表 国家高技术研究发展计划(2012AA10A300)资助
引用格式 : 肖景华 , 吴昌银 , 袁猛 , 等 . 中国水稻功能基因组研究进展与展望 . 科学通报 , 2015, 60: 1711–1722 Xiao J H, Wu C Y, Yuan M, et al. The progress and perspective of rice functional genomics research in China (in Chinese). Chin Sci Bull, 2015, 60: 1711–1722, doi: 10.1360/N972015-00391
[2]
型突变体库、 核心种质资源和高密度的基因表达谱芯 片等功能基因组研究平台 , 发掘和克隆了一批控制 重要农艺性状的具有自主知识产权的功能基因 , 在 重要农艺性状形成的分子网络解析方面取得突破性 进展 , 为水稻基因组选择育种奠定了坚实基础 .1Biblioteka 水稻功能基因组研究的技术平台
水稻基因转录组学常用方法
![水稻基因转录组学常用方法](https://img.taocdn.com/s3/m/0f5f42edd4bbfd0a79563c1ec5da50e2524dd199.png)
水稻基因转录组学常用方法随着基因测序技术的不断发展和成熟,基因组学和转录组学成为研究生物学重要领域,并广泛应用于水稻基因功能和调控研究。
本文将介绍水稻基因转录组学常用方法。
一、RNA提取和纯化RNA提取和纯化是转录组学研究的第一步。
RNA提取方法包括酚-氯仿法、TRIzol法、RNeasy微柱技术等。
其中,酚-氯仿法是最常用的方法。
RNA提取后需进行纯化,可通过凝胶电泳、比色法、红外线光谱法等方法检测RNA质量和浓度。
二、RNA质量检测RNA质量对于后续研究非常重要,应选择高质量的RNA,以保证实验结果的可靠性。
常用的RNA质量检测方法包括凝胶电泳、比色法、Agilent2100、NanoDrop等。
其中,Agilent2100是目前最为常用的RNA质量检测仪器,可得到RNA的准确浓度和完整性信息。
RNA测序是转录组学研究的主要方法之一,可检测全转录本的表达情况和剪接形式。
RNA测序技术主要分为两类:第一种是基于Sanger测序技术的EST(表达序列标签)测序,其优点是数据准确性高,缺点是成本高、样品处理量小,适用于研究少量基因;第二种是基于高通量测序技术的RNA-seq测序,该技术可同时测定上千万条转录本,能检测到低表达转录本和新的剪接形式等优点。
常用的高通量测序技术包括Illumina公司的HiSeq和MiSeq,Ion Torrent公司的Ion Proton,Pacific Biosciences公司的PacBio RS和RSII 等。
四、数据处理和分析RNA测序获得的数据处理是转录组学研究的关键环节,包括质量控制、去除低质量序列、去除残余的引物、降低读长错误率等。
数据分析主要包括基因表达量差异分析、基因注释、GO富集分析、KEGG富集分析等。
五、实时荧光定量PCR实时荧光定量PCR是分析特定基因表达的实验技术之一,可定量分析RNA水平和PCR产物的数量。
该技术具有高灵敏度、高特异性和快速检测等优点。
水稻基因组DNA提取方法
![水稻基因组DNA提取方法](https://img.taocdn.com/s3/m/69d14afb102de2bd960588fe.png)
1.TPS DNA提取buffer成分使用浓1L体系添加量度100mM 12.114gTris-HCl(pH8.0)NaCl 1M 58.44gEDTA 10 mM 3.7224gTPS法抽DNA (96孔板大量提取)1.取4cm长的水稻叶片放在96孔取样板,加入两颗5mm钢珠,加400ulTPS,用力将皮盖盖紧(否则会交叉污染),组织破碎仪(70HZ ,60s~150s【根据叶片老嫩程度调节】),短暂离心后放65℃烘箱20min~40min,期间震荡混匀三次。
2.配平后,4000rpm,30min;3.准备96孔浅孔板,并标号,加入200ul异丙醇.将离心后的上清取200ul转移到板中;4.-20℃沉淀3min(或4℃沉淀15min),4000rpm,30min(注意配平);5.倒掉异丙醇,加400ul(或者500ul)75%乙醇,4000rpm,15min;6.倒掉70%乙醇,倒扣离心,最好不要超过500rpm。
通风橱晾干2小时,加100-300ul水溶解。
PCR反应时取2~4ul做模板即可;CTAB DNA提取buffer成分使用浓度4L体系添加量CTAB 2% 80gTris-HCl(pH 8.0) 100mM 48.456gNaCl 1M 233.76gEDTA二钠盐20 mM 29.7792gCTAB 法抽DNA (单管少量提取)1.取5cm长的水稻叶片放在2ml的tube中, 放入液氮中用筷子捣碎后(或者放入1颗6mm钢珠,用组织破碎仪打碎),加750ulCTAB,放65℃烘箱30min~1h,期间震荡混匀三次。
2.用连续加样器加500ul氯仿,震荡混匀后,12,000rpm,10min3.准备新的2ml的Tube,加入500ul异丙醇,并编号,将离心后的上清吸取500ul转移到新的EP管中,检查盖子是否盖严,上下颠倒混匀;4.-20℃沉淀3min(或4℃沉淀15min),12,000rpm,10min;5.倒掉异丙醇,加750ul(或者1ml)75%乙醇,上下颠倒混匀,12,000rpm,5min;6.倒掉70%乙醇,通风橱晾干2小时,加200-500ul水溶解。
水稻(籼稻)全基因组框架序列研究简介
![水稻(籼稻)全基因组框架序列研究简介](https://img.taocdn.com/s3/m/e0e3951a10a6f524ccbf8509.png)
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丛丽娟等:水稻 (籼稻) 全基因组框架序列
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水稻全基因组R基因鉴定及候选RGA标记开发
![水稻全基因组R基因鉴定及候选RGA标记开发](https://img.taocdn.com/s3/m/d26ded916bec0975f465e231.png)
论文第50卷第11期 2005年6月水稻全基因组R基因鉴定及候选RGA标记开发汪旭升①吴为人①②*金谷雷②朱军①(①浙江大学农业与生物技术学院生物信息学研究所, 杭州 310029; ②福建农林大学作物科学学院, 福州 350002.*联系人, E-mail: wuwr@)摘要用45个已知功能的植物抗病(R)基因序列对粳稻全基因组序列进行搜索, 共找出2119个R基因同源序列或类似物(RGA), 表明RGA在水稻基因组中成簇存在, 呈非随机分布. 采用隐马尔柯夫模型(HMM), 将这些RGA按其功能域分成了21类. 将粳稻的RGA与籼稻的基因组序列进行比较, 共找到702个两亚种间等位的RGA, 并发现其中有671个(占95.6%)RGA的基因组序列(包括编码区和非编码区)在两亚种间存在长度差异(InDel), 表明水稻RGA在两亚种间存在很高的多态性. 通过在InDel两侧设计引物并进行e-PCR验证, 共开发出402个基于PCR的、表现为共显性的候选RGA标记. 这些候选标记在两亚种间的长度差异在1~742 bp之间, 平均为10.26 bp. 有关数据均可从我们的网站(/RGAs/index.html)上获得.关键词水稻抗病基因RGA多态性分子标记植物抗病(R)基因是决定寄主植物对病原菌专化性识别并激发抗病反应的基因, 与病原菌的无毒基因互补. 经典遗传学认为, 植物与病原菌间相互作用的遗传机制是“基因对基因”, 并提出了配体-受体模型来解释这一学说[1,2]. 自1992年以来, 利用图位克隆和转座子标签法, 已经在水稻、拟南芥、玉米、烟草、亚麻等植物中克隆了40多个R基因[3]. 研究发现, 这些R基因存在一些共同的结构. 根据其蛋白结构及在细胞中的位置, R基因大致可分为5类[4,5]: (ⅰ) NBS-LRR, 是含有核苷酸结合位点(NBS)和富亮氨酸重复(LRR)的胞内受体蛋白基因, 包括2个亚类: (1) TIR-NBS-LRR, 以拟南芥的RPP5基因、烟草的N基因及亚麻的L6和M基因为代表; (2) CC-NBS-LRR, 以拟南芥的RPS2和RPM1基因、番茄的I2基因及大麦的Mla1基因为代表. (ⅱ) 细胞间的苏氨酸/丝氨酸蛋白激酶(PK)基因, 包括番茄的Pto基因和大麦的Rpg1基因. (ⅲ) LRR-TM, 是N端存在一个胞外LRR, C端具有由疏水氨基酸组成的跨膜区的受体蛋白基因, 包括番茄抗叶霉病的基因Cf-2, Cf-4, Cf-5和Cf-9等. (ⅳ) PK-LRR-TM, 除含有LRR-TM结构外, 还具有PK结构, 包括水稻的Xa-21基因和拟南芥的FLS2基因. (ⅴ) SA-CC, 包括拟南芥的RPW8.2和RPW8.1基因. 此外, 还有玉米的Hm1及Hsl Pro-1和Asc等其他结构域的R基因.R基因是一个庞大的基因家族. 尽管已经克隆了40多个R基因, 但对R基因的了解还非常有限. 目前, 对拟南芥和水稻的基因组测序工作皆已基本完成. 水稻籼、粳2个亚种的基因组草图已经完成[6,7], 而且粳稻的1号、4号和10号3条染色体已经发布了精细图[8~10]. 这些成果为在整个基因组水平上研究R基因提供了契机. 利用拟南芥基因组的测序结果, Meyers等人[11]分析了NBS-LRR型R基因在拟南芥基因组中的分布. 对水稻基因组序列的初步分析显示, 水稻基因组中存在大量的R基因[6~7], 且往往成簇存在[12~14]. Monosi等人[15]发现在水稻中存在近500个NBS-LRR的基因, 但没有发现TIR的基因. Chelkowski等人[16]和Koczyk等人[17]利用18个已知的R基因分别对拟南芥和粳稻基因组序列进行分析, 发现拟南芥和水稻分别存在549和1744个R基因, 其中水稻的R基因中有597个属于NBS-LRR类型. 可以看出, 目前这些基于基因组序列的研究主要都集中在对NBS-LRR型R基因的分析上.分子标记是现代遗传学研究的有力工具. 自1980年首次提出分子标记的概念以来[18], 分子标记已广泛应用于遗传图谱构建、基因定位、基因克隆、基因组比较、遗传多样性分析、标记辅助育种等领域的研究[19~21]. 利用R基因类似物(RGA)作探针, 可以检测相应座位上的限制性片段长度多态性(RFLP), 从而开发成为RFLP标记, 常称为RGA标记. 由于RGA本身可能就是潜在的R基因, 而且R基因常常成簇分布于基因组中, 因此RGA标记对于R基因的克隆和标记辅助选择可能具有特别的应用价值. 但是, 由于RGA标记是基于RFLP分析技术的, 操作上比较麻烦, 因此目前应用得并不多.第50卷第11期 2005年6月论文本研究利用已公布的籼稻和粳稻的基因组序列, 采用生物信息学的方法, 通过收集目前所有已知的R 基因序列, 对水稻基因组中RGA的数目、分布和类型进行了更为详尽的分析, 以期在全基因组水平上加深对水稻R基因的了解. 同时, 对RGA在水稻2个亚种间进行了遗传多态性(SNP和InDel)比较、引物设计和e-PCR验证, 为开发方便实用的基于PCR 技术的新型RGA标记奠定基础.1材料与方法(ⅰ) 基因组及蛋白质序列的来源. 从TIGR网站(/)和北京基因组学研究所网站(/)分别下载粳稻(Nipponbare)和籼稻(93-11)的基因组及蛋白质序列, 它们的更新时间皆为2004年4月. 所有数据的处理和分析皆在IBM P650的服务器上完成, 使用IBM AIX的Unix 操作系统.(ⅱ) 水稻RGA的搜索. 搜集已报道的45个R 基因, 然后用它们对粳稻蛋白质数据库进行BLASTP[22]搜索(参数E<+10−10, 最小长度为该基因的80%), 获得所有粳稻的RGA序列. 去除粳稻数据库中存在的克隆重复, 建立一个粳稻RGA蛋白数据库. 同时, 根据每个BLASTP搜索中匹配最好的结果, 得到这些粳稻RGA的核苷酸序列. 为了进一步验证得到的RGA, 我们进行候选RGA序列与TIGR发布的CDS序列进行比较, 去除不符的序列.(ⅲ) 水稻RGA的结构分类及其在染色体上的分布. 利用Hmmer程序[23]中的hmmsearch部分, 采用前面建立的功能域列表, 在新建立的数据库中搜索基因序列所包含的功能域. 利用pepcoil程序[24]分析序列中CC结构的可能性, 数值大于90%的认为具备该结构. 运用TM-HMMer[25]分析TM跨膜功能域. 依据功能域分布的情况, 对RGA进行分类, 分别统计各类RGA在不同染色体上的分布情况.(ⅳ) 2个亚种间RGA多态性的鉴定和开发. 将所有粳稻的RGA序列分别与籼稻基因组数据库进行TBLASTN[22]联配, 以确定籼稻中对应的等位基因. 为消除非等位联配, 在TBLASTN搜索中采用了严格的判别标准, 将E值设为1×10−20. 对初筛到的籼、粳稻RGA等位基因, 进一步用sim4程序[26]进行联配分析, 去除匹配率≤85%且2条序列同时间断200 bp以上的结果. 接着运用diffseq程序[27]分析SNP和InDel在RGA的基因组序列中的分布情况, 将存在InDel的作为候选的RGA标记. 以粳稻的基因组序列为模板, 在InDel位置的两侧各取100 bp的序列, 连接成一条200 bp长的模板序列, 然后利用ePrimer3程序1)在模板序列上设计引物. ePrimer3程序一般给出5对候选引物, 我们选取其中设计最合适的一对, 并要求正、反向引物分别位于InDel的左、右侧, 且扩增出的目标片段长度不大于1000 bp. 最后, 通过电子PCR(e- PCR)[28]进行验证. 对得到的水稻RGA标记进行命名,规则为以OSR开头, 后跟4个数字, 例如: OSR0255.上述步骤主要通过编写perl脚本程序来实现.2结果与分析2.1粳稻中RGA的数目、密度及其在染色体上的分布通过对粳稻蛋白质数据库的搜索, 共获得2119个RGA(表1). 它们在各染色体上的数量变化在113(3号染色体)~333个(1号染色体)之间, 平均为176个,以1, 2, 11号染色体最多. 单条染色体上RGA的平均密度变化在0.66~2.42或2.68~9.44 个/Mb之间. 无论是遗传图密度还是物理图密度, 都是以11号染色体最多, 3号染色体最少. 根据TIGR发布的拼接好的水稻基因组序列, 分析RGA在染色体上的分布情况,发现大部分RGA都以成簇形式存在(多数情况下每簇包含2~12个RGA), 如在1号染色体的AP003209克隆上发现有10个RGA.表1 粳稻中RGA在各染色体上的数量和密度染色体长度 RGA平均密度染色体/cM /MbRGA数目/cM−1 /Mb−12 157.9 39.9217 1.37 5.443 166.4 41.1110 0.66 2.684 129.6 38.2195 1.50 5.105 122.3 33.2134 1.09 4.046 126.3 31.7190 1.50 5.997 118.6 35.0125 1.05 3.578 121.2 27.6158 1.30 5.729 93.5 21.6133 1.42 6.1610 83.8 25.7113 1.35 4.4011 117.9 30.2285 2.42 9.4412 109.5 30.6126 1.15 4.12全基因组1528.8399.12119 1.395.31 2.2水稻RGA的结构分类通常将R基因分为5大类, 其中NBS-LRR是最1) /论 文第50卷 第11期 2005年6月多的一类[4,5]. 我们根据R 基因的结构与功能域, 将水稻RGA 进行了更细致的分类, 共分为21类(图1). 其中PK 类RGA(Pto , Fen , Lr10)数目最多, 占26.7% (566/2119). 第2大类是TM-LRR, 占总数的20.5% (435/2119). 需要指出的是, 在本研究中, 具有NBS 或LRR 功能域的RGA 被分成了9类, 即TM-LRR, PK-LRR, NBS-LRR, CC-NBS-LRR, CC-LRR, CC- NBS, PK-NBS-LRR, PK-NBS 和CC-PK-LRR, 因此每一类都不是最多的, 但若将它们皆计为NBS-LRR 类型, 则其数量占水稻RGA 的半数以上(1091/2119). 第1个被克隆的玉米抗圆斑病基因Hm1所代表的毒素还原酶类RGA 共发现了77个. 这类基因还与CC 结构相结合成为CC-Hm1类, 共发现3个该类型的成员. PK-NBS, CC-PK-LRR, TIR, Hs1和Pad4这几类RGA 在水稻中皆只存在一个成员, 对这些基因进行结构分析后显示, 其中大部分是假基因或没有功能的基因. Pan 等人[29]研究认为, 在双子叶和单子叶植物的分化过程中, NBS-LRR 分化成TIR-NBS-LRR 和CC-NBS-LRR 共2大类. 本研究显示, 水稻中不存在TIR-NBS-LRR 类的RGA, 这与甜菜相似[30], 但在拟南芥中已发现117个这类基因[19]. 本研究发现的水稻RGA 的有关数据可以从我们的网站(. cn/RGAs/index.html)获得.图1 水稻中RGA 的类型及其数量分布PK, 苏氨酸-丝氨酸蛋白激酶; TM, 跨膜蛋白; LRR, 富亮氨酸重复; CC, 卷曲螺旋结构; NBS, 核苷酸结合位点; Hm1, 玉米Hm1基因; CHORD, 富半胱氨酸-组氨酸结构域; TIR, 白细胞介素-1受体; Mlo,Asc, Hs1, Pad4分别代表各自基因的特有结构域2.3 RGA 在水稻亚种间的多态性通过用粳稻RGA 序列对籼稻基因组序列进行TBLASTN 联配, 在籼稻上找到1860个 R 基因的同源序列. 经过人工分析后去除重复的或匹配不好(匹配序列长度<80 bp, 一致性<40%)及与TIGR 数据库中CDS 序列不符的同源序列, 得到861个同源序列. 进一步去除位于不同染色体的非等位基因, 最终获得了702个在籼、粳间等位的RGA. 用sim4程序对这702个RGA 序列进行分析, 发现有671个(占95.6%)在籼、粳间存在InDel 的现象, 说明在籼粳亚种间RGA 存在很高的长度多态性. 用ePrimer3程序在InDel 两侧设计PCR 引物, 并进行e-PCR 验证, 选出能够获得惟一预期扩增产物的引物对, 最终得到402个候选的水稻亚种间RGA 标记. 有269个多态的RGA 未能开发成候选标记, 其原因可能是: (ⅰ) 一些RGA 间的结构相似性, 使得引物的特异性不强, 不能得到惟一的扩增产物; (ⅱ) 我们将e-PCR 产物的长度限制在1000 bp 以内, 有些RGA 的扩增产物可能过大而不能入选; (ⅲ) 引物是依据粳稻Nipponbare 的基因组序列设计的, 有些在籼稻93-11上未能完全匹配. 这些候选RGA 标记的有关信息(包括标记的引物、序列、所在粳稻Nipponbare 的BAC 克隆和籼稻93-11的Scaffold 等)都在我们的网站(. cn/RGAs/index.html)上发布. 根据TIGR 发布的拼接好的水稻基因组序列, 对候选RGA 标记进行了物理定位. 结果显示, 跟全体RGA 的情况一致, 候选RGA 标记在基因组中的分布也是非随机的, 表现为“成簇”分布的现象(图2). 有些染色体区域(如1号染色体的长臂)出现大片的空缺.候选RGA 标记的等位基因间长度差异(LD)变化在1~742 bp 之间, 平均长度为10.15 bp, 呈指数分布, 大部分(68.16%)<5 bp; 24.88%落在5~30 bp 之间; 仅6.96%>30 bp(图3). 值得指出的是, 我们发现有14个RGA 在2个亚种间的长度差异超过1 kb, 其插入序列都具有独立完整的基因结构. 同源性分析显示, 这14个插入序列的基因功能与受体蛋白密切相关. 由于R 基因本身就是一类受体蛋白, 因此这种在R 基因中插入与受体蛋白相关的基因的现象是否隐含着某种重要的生物学机制, 是一个令人感兴趣的问题.3 讨论本研究通过序列同源性比较结合功能域位点分析, 共发现了2119个RGA, 说明水稻基因组中R 基因的数量是十分丰富的, 是一个非常庞大的基因家族. 当然, 在这些RGA 中, 除了包含R 基因外, 还可能包含没有功能的基因或假基因. 为了鉴定其中哪些是真正的R 基因, 我们把所有的RGA 同已发布的第50卷 第11期 2005年6月论 文图2 候选RGA 标记在水稻基因组上的分布横坐标是物理图位置, 纵坐标是每Mb 所含RGA 的个数. 两斜杠表示染色体终止的位置表示着丝粒的位置32127个水稻全长cDNA [31]进行BLAST 分析, 结果有1851个RGA 能够很好地与cDNA 匹配, 因而可以认为它们可能是真正的R 基因(当然不排除其中有些可能是可表达的假基因). 剩余的268个RGA 可能存在3种情况: (ⅰ) 是cDNA 数据库中未包括的基因, 因为水稻中报道有约5万个基因; (ⅱ) 是不表达的假基因; (ⅲ) 是特定病原菌诱导表达的基因. 随着水稻全长cDNA 数据库的不断充实和完善, 这部分RGA 的身份将得到进一步的鉴别. 将来的挑战是对水稻中所有R 基因的功能阐明. 利用生物信息学的方法在全基因组范围内获取RGA 的有关信息, 将大大促进对R 基因的功能研究.论 文第50卷 第11期 2005年6月图3 候选RGA 标记在2个亚种间的长度差异(LD)的频率分布其中LD >26的30个标记未标出传统的RGA 标记是一种RFLP 标记, 应用上不方便, 而且由于开发上成本较高, 所以数量上十分有限. 本研究利用水稻籼、粳亚种的基因组测序数据和生物信息学手段, 开发出了基于PCR 技术的候选RGA 标记, 这将使RGA 长度多态性成为一种实用的分子标记. 我们用相似的方法已成功开发出水稻内含子长度多态性(ILP)标记(结果未显示). 经实验分析, 发现水稻ILP 标记具有明显的亚种特异性. 据此推测, 本研究基于籼、粳亚种间序列比较而开发的候选RGA 标记也将具有较高的亚种特异性. 该特性可望使RGA 标记在水稻亚种间杂交育种和亚种间杂种优势利用方面具有重要的应用价值. 另外, 已知RGA 在水稻基因组中呈簇状非随机分布, 而本研究开发出来的候选RGA 标记在基因组上的分布对全体RGA 的分布具有很好的代表性(图3). 而且, RGA 标记本身就是候选的R 基因. 因此, 利用RGA 标记将有助于快速定位R 基因, 加快R 基因定位和图位克隆的进程.致谢 本工作为国家高技术研究发展计划(批准号: 2003AA207160, 2002AA234031)和福建省自然科学基金(批准号: B9910011)资助项目.参 考 文 献1Flor H H. 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水稻转录因子基因家族研究
![水稻转录因子基因家族研究](https://img.taocdn.com/s3/m/5cef38edd0f34693daef5ef7ba0d4a7302766c19.png)
水稻转录因子基因家族研究一、前言水稻是人类主食的重要来源之一,研究其相关的基因及生物过程具有重要的意义。
转录因子(Transcription Factor,简称TF)是一类能够调控基因表达的蛋白质,常见于生物体内。
水稻的转录因子基因家族的研究,不仅有助于深入了解水稻的表达调控机制,还可以为其改良和优化提供理论基础,开拓其种植和应用领域。
二、TF基因家族概述同一个家族内的TF基因通常在序列和功能上有着共性。
现有的研究表明,水稻的转录因子基因家族大约由57个家族组成,其中57个家族中,只有C2H2、AP2/EREBP、MYB、NAC、WRKY 和bHLH等基因家族有较为详细的研究报道。
1、C2H2家族C2H2家族是水稻中研究最详细的一类转录因子家族,它的成员包括了56个基因。
C2H2家族是DNA结合型的TF,在控制植物生长和发育方面有很重要的作用,特别是在植物下地茎、花和果实的发育中具有重要的功能。
与其他植物相比,水稻C2H2家族的基因具有更加多样化的功能,主要包括参与调控植物的生长发育、代谢调控及响应外界环境胁迫等多方面的功能。
2、AP2/EREBP家族AP2/EREBP家族是水稻转录因子家族中较为大的一类家族,包含了131个基因。
该家族的基因主要参与植物的生长发育过程的调控,包括调控种子发芽、侧芽分化、根系发育、水分平衡、温度胁迫等多种生物学过程。
该家族的基因同时也参与了生物环境的适应性进化,具有一定的药用价值。
3、MYB家族水稻中的MYB基因家族是一类非常重要的转录因子基因家族,共计209个基因。
MYB家族的基因在植物的生长发育、生理代谢和逆境胁迫响应等方面有着重要的调控作用。
水稻 MYB基因家族也被证明在植物生长和发育过程中发挥着非常重要的角色,例如MYB基因可以参与水稻光周期响应,控制水稻营养器官的形成和维持等。
4、NAC家族NAC家族是一类重要的转录因子基因家族,涵盖了近100个不同的NAC基因。
水稻秆秆基因组研究
![水稻秆秆基因组研究](https://img.taocdn.com/s3/m/0cc03e401611cc7931b765ce050876323012745e.png)
水稻秆秆基因组研究水稻是世界上最重要的粮食作物之一,已经成为了全球饮食和农业发展的中心。
在许多国家,水稻的主要组成部分是稻米,但是稻米只是水稻的一部分,另一部分则是水稻的秆和根。
对于农民来说,水稻秆和根虽然没有稻米那么有价值,但是也不可或缺,因为它们可以作为动物饲料、生物质燃料和肥料等多种用途。
近年来,随着人们对水稻秆和根的关注度逐渐提高,越来越多的研究开始对水稻整株进行研究。
其中,水稻秆基因组的研究就显得尤为重要。
水稻秆基因组是指水稻秆中所有的基因组成,这些基因一起合作完成了水稻秆的各种功能,包括生长、发育、运输养分等。
对于水稻生产者来说,了解水稻秆基因组的研究意义重大,因为这有助于他们选择最适合的品种,并提高水稻的产量和质量。
同时,水稻秆基因组的研究也对生物学家们而言同等重要,因为它有助于认识植物的复杂组织结构和遗传学机制。
关于水稻秆基因组的研究,目前已经有了一些进展。
比如,来自中国农业大学的研究团队在2018年完成了水稻秆基因组的测序工作,他们利用高通量测序技术获取了701.5 Mb的基因组序列,总计纠错和去冗余后的有效序列达到了433.3 Mb,涵盖了97.35%的基因组范围。
这个研究让人们对水稻秆基因组的了解有了更加深入的认识。
除了测序之外,水稻秆基因组的研究还需要考虑以下几个方面。
首先,需要了解水稻秆基因组的有效元件,也就是能够发挥作用的基因,这些基因包括编码已知蛋白质的基因、具有相似功能的基因以及与水稻秆特性相关的基因。
通过对这些基因的检测和分析,可以进一步深化我们对水稻秆基因组的认识。
其次,需要评估水稻秆基因组的变异性,了解水稻不同品种或群体之间基因组的差异。
在不同的生态环境和生长条件下,种植的水稻品种也会有所不同。
通过对这些变异性的研究,有助于我们确定具有更适应性的水稻品种,从而提高水稻的产量和质量。
最后,需要探究水稻秆基因组的表达和调控。
水稻秆的生长和发育是由许多基因共同参与的,要了解水稻秆的表达和调控机制,必须要考虑到这些基因之间复杂的调控网络和相互作用。
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第四节基因组分析列举:水稻基因组分析本节将结合我们近年来的一些研究结果,重点对第一个被基因组测序的作物——水稻的基因组研究和分析结果进行介绍。
水稻是第一个被全基因组测序的作物。
亚洲栽培稻(Oryza sativa)共有2个亚种(籼稻和粳稻),其中一个粳稻品种“日本晴”分别通过全基因组鸟枪法(Goff et al, 2002)和逐步克隆方法(Sasaki et al, 2002; Feng et al, 2002; The Rice Chromosome 10 Sequencing Consortium, 2003; The Rice Genome Sequencing Project, 2005)测序,另一个籼稻品种“9311”通过全基因组鸟枪法测序(Yu et al, 2002; Yu et al, 2005)。
除了核基因组外,水稻的叶绿体基因组序列早在15年前就已测序完成(Hiratsuka et al, 1989),同时,其线粒体基因组最近也被测序完成(Notsu et al. 2002)。
在获得基因组序列后,一项艰巨的研究任务是如何从巨量的水稻基因组序列中挖掘出潜藏的遗传事件、进化机制等重要生物信息。
为此本文结合我们自身的一些研究工作,重点介绍了近年来在水稻基因组序列分析中获得的几项最新的研究结果。
1 现代的二倍体,古老的多倍体2004年水稻基因组研究的一个重要进展,是获得清晰的证据表明水稻基因组曾发生过全基因组倍增。
Paterson等( 2004)、Guyot 等(2004)和我们(Fan et al, 2004;Zhang et al, 2005a)的研究结果也一致表明,在禾本科作物分化前发生过一次全基因组倍增(whole-genome duplication)。
早在2002年,根据最初的水稻基因组草图序列,Goff等(Goff et al, 2002)利用同义替换率分布方法(K s-based age distribution)提出水稻基因组可能发生过一次全基因组倍增。
而在此之前,利用分子标记、DNA重复元件等方法对水稻部分染色体区段的研究,也提出水稻基因组的一些染色体间可能发生过片段倍增(block or segmental duplication)。
2003年两篇重要文章相继发表,对水稻基因组起源和倍增事件做出了初步分析和有益探索(Paterson et al, 2003; Vandepoele et al, 2003)。
随着水稻基因组序列数据的增加,特别是美国基因组研究院(TIGR)利用逐步克隆(clone by clone)测序的数据首次拼成12条水稻染色体序列,利用TIGR的数据和基因相似性矩阵方法(GHM, gene homology matrix),检测到大量染色体间的倍增片段,这些倍增片段几乎覆盖了水稻全基因组(图1,图中包括水稻第2号染色体与第4和6号染色体、第3号染色体与第7、10和12号染色体和第1与5号染色体间的间的倍增片段。
另外第8与9号染色体、第11与12号染色体间的倍增片段未列出)。
这是全基因组倍增的有力证据。
根据倍增片段上同源基因的分子进化分析,全基因组倍增大致发生在7000万年前,在禾本科作物分化前(Paterson et al, 2004)。
我们在2004年初利用TIGR的第一版水稻基因组数据(osa1, Version 1)和GHM方法就已发现了这一水稻基因组倍增的证据并投稿(论文摘要已递交上海-合肥举行的系统与进化研讨会,(Fan et al, 2004)。
但就在6月低-7月初,Paterson等(2004)和Guyot 等(2004)的文章相继发表。
后我们利用TIGR更新的数据(osa1, Version 2)对水稻染色体间倍增片段进行了更新,并以此为基础,利用同义替换率分布方法检测到另一次更古老的(单双子叶植物分化前)基因组倍增事件(Zhang et al, 2005)。
该研究的最新进展是中科院北京基因组研究所(华大)刚刚发表的水稻基因组精细图分析结果也同样证实了水稻基因组的倍增(Yu et al, 2005),同时,另外一个独立的课题组最近也获得了同样的结论(Wang et al, 2005)。
引自Zhang等(2005)图1 部分水稻基因组倍增片段全基因组倍增或整倍体化过程被认为是植物尤其是禾本科作物物种形成和进化过程中非常普遍和重要的事件,50%-70%的开花植物在进化过程中均经历了一次或多次染色体加倍过程(Wendel et al, 2000)。
基因组加倍后,再经历所谓的二倍体化过程(diploidization),进化成当代的二倍体物种。
大量的复制基因将在二倍体化过程中丢失。
整倍体化过程一般可通过同源加倍(autopolyploid)和异源加倍(allopolyploid)两种方式发生。
已测序完成的模式植物拟南芥,经全基因组序列分析发现,至少发生过3次全基因组自身复制(Bowers et al, 2003);玉米被认为在其与高粱分化后发生一次异源加倍过程,即起源于异源四倍体(allotetrapolyploid)。
利用同义替换率分布方法检测和最新序列数据库数据,Blanc和Wolfe(2004)在很多重要作物中均发现了全基因组倍增的证据。
水稻全基因组倍增片段是迄今为止发现的在动植物基因中最为清晰、完整的基因组倍增的遗迹。
拟南芥基因组在更近代的时候也发生过全基因组倍增,但它的倍增片段都比较短且凌乱(Bowers et al, 2003; Simillion et al, 2002)。
水稻之所以保存得这么完整可能与水稻基因组相对比较稳定有关(Llic et al, 2003)。
2 最小的核基因组:基因组在扩增还是在缩小?植物界基因组中DNA含量差异很大,它们的差异性与生物的复杂性程度并不完全相关,这种现象称为C值悖理。
如大麦(Hordeumvulgare)、水稻和拟南芥的生物复杂性比较相似,但大麦基因组分别为水稻和拟南芥基因组的11倍和35倍。
众多因素(机制)决定了基因组的膨胀和缩小(Bennetzen et al, 2002),早在19世纪30年代,基因复制就被认为是增长遗传物质的首要机制(Betran et al, 2002)。
在植物界中,基因数目的增加通常归因于基因复制、DNA片断或基因组复制。
基因组膨胀的最主要因素为基因组的倍增(Wendel et al, 2000; Grover et al, 2004)。
而转座因子的扩增则是另一个推动基因组增加的关键因素。
在禾本科内,已报道在最近的1千万年内大多数基因组的膨胀由LTR逆转座因子的扩增所导致(SanMiguel et al, 1996; Ma et al, 2004)。
很明显的,这一机制只能导致基因组膨胀(Bennetzen et al, 2000),而基因组只是这样一味地膨胀进化吗?并非如此。
后来发现了抵制这一膨胀的机制:异常重组(illegitimate recombination)和非同源性重组(unequal homologous recombination)可以减少LTR逆转座序列从而抵制基因组的膨胀(Vicient et al, 1999; Shirasu et al, 2000; Ma et al, 2004)。
最近已发现水稻和拟南芥基因组中的LTR逆转座序列的大量丢失(Ma et al, 2004; Devos et al, 2002)。
在最近的8百万年里,水稻基因组中至少有190Mb 的LTR逆转座序列被删除(Ma et al, 2004)。
利用非洲栽培稻进行的比较基因组学研究表明,亚洲栽培水稻的籼粳稻基因组大小均增加了2%和6%(Ma et al, 2004)。
但该研究的结论仅是根据约1Mb长度的基因组片段(水稻430Mb基因组的0.2%)得出。
根据non-LTR逆转座研究,Petrov 和他的同事得出非平衡性的少量删除和插入导致昆虫类的基因组缩小(Petrov et al, 2002)。
然而,在植物基因组中是否存在同样相似的机制作用于转座因子,或者其它机制导致非重复序列的丢失仍然没有明确的答案。
为了探索基因组大小改变的潜在进化机制,一种较理想的途径是比较基因组间大小差异很大的相近物种。
通过比较果蝇(165Mb)和其它两个基因组极大的相近物种Laupala crickets(1910Mb)和Podisma grasshoppers(18150 Mb),发现果蝇DNA的大量丢失(Petrov et al, 2002)。
最近,通过比较异源多倍体物种棉花(Gossypium hirsutum)不同基因组序列片断,探索了该物种基因组大小变化的进化机制(Grover et al, 2004)。
在有花植物中,全基因组倍增是普遍发生的现象,并且被认为在物种进化和分化中起着重要作用(Wendel et al, 2000)。
一旦染色体倍增过后,古老多倍体的基因组进化速率加快,在“二倍化”过程中伴随着大量的DNA序列的消失以及染色体重排现象(Sasaki et al, 2002)。
水稻基因组测序工作的完成(Sasaki et al,2002; The Rice Chromosome 10 Sequencing Consortium, 2003)为研究水稻基因组的进化史提供了一个前所未有的机会。
水稻基因组多倍体的起源已被证实(Paterson et al, 2004; Zhang et al, 2005; Paterson et al, 2003)。
多倍化事件估计发生在70百万年前,在禾本科分化之前(Paterson et al, 2004)。
这一结论是基于许多非重叠的倍增块几乎覆盖了整个基因组这一事实而得出。
该研究结果为研究水稻基因和基因组倍增后的二倍体化的进化机制提供了非常好的素材。
当一次复制事件发生,两对应的复制片断或染色体在初始阶段通常应具有同样的大小。
但经过长期的进化,其同源的复制片断的大小有可能存在差异。
由基因组复制产生的复制块(同源复制块)将经历一次“二倍体化”的剧烈进化过程,伴随着大量的DNA序列的丢失。
同源复制片断间存在的巨大长度差异为分析基因组膨胀或缩小进化机制提供了有效的途径。
在我们的研究中,从水稻全基因组倍增产生的同源复制片断(如来自第2,3,6,7和10号染色体),由于它们存在着巨大的差异性而被选择为研究对象,用于探索水稻经历多倍化后基因组大小的进化机制。
我们的研究表明,在最近70百万年里,水稻染色体以不均衡的模式(即染色体长度存在膨胀、平衡和减小3种情况)进化着,影响复制片断大小的差异主要由非重复序列的DNA丢失引起的,且LTR因子的扩增也起着重要作用(Guo et al, 2006)(图2)。