Test for in vitro cytoxicity(细胞毒性试验.无纺布生物相容生报告)
医疗器械生物学评价第五部分体外细胞毒性试验
医疗器械生物学评价第 5 局部:体外细胞毒性试验1范围GB/T 16886 的本局部阐述了评价医疗器械体外细胞毒性的试验方法。
这些方法规定了以下供试品以直接或通过集中的方式与培育细胞接触和进展孵育;a〕用器械的浸提液,和/或b〕与器械接触。
这些方法是用相应的生物参数测定哺乳动物细胞的体外生物学反响。
2标准性引用文件以下文件中的条款通过GB/T 16886 的本局部的引用而成为本局部的条款。
但凡注日期的引用文件,其随后全部的修改单〔不包括订正的内容〕或均不适用于本局部,然而,鼓舞依据本局部达成协议的各方争论是否可使用这些文件的最版本。
但凡不注日期的引用文件,其最版本适用于本局部。
GB/T 16886. 1 医疗器械生物学评价第1 局部:评价与试验〔GB/T 16886.1-2023,idt ISO 10993- 1:1997〕CB/ T 16886. 12-2023 医疗器械生物学评价第12 局部:样品制备和参照材料〔idt ISO 10993-12 :1996〕3术语与定义GB/ T 16886. 1/ ISO 1993-1 中确立的以及以下术语和定义适用于本局部。
3.13.2 阴性比照材料negative control material依据本局部试验时不产生细胞毒性反响的材料。
注:阴性比照的目的是验证背景反响,例如高密度聚乙烯1〕牙科材料的阴性比照物。
阳性比照材料 pos itive control material依据本局部试验时可重现细胞毒性反响的材料。
已作为合成聚合物的阴性比照材料,氧化陶瓷棒则用作注:阳性比照的白目的是验证相应试验系统的反响,例如用有机锡作稳定剂的聚氯乙烯的阳性比照,酚的稀释液用于浸提液的阳性比照。
2)已用作固体材料和浸提液1)高密度聚乙烯可从美国药典委员会〔Rockvillie, Maryland, USA〕和Hatano 争论所食品和药品安全中心〔Ochiai 729-5 ,Hanagawa.257-Japan〕获得。
细胞毒性的检测
细胞毒性的检测实验三、细胞毒性的检测一、实验材料及设备培养箱、雷杜RT-6100酶标仪、移液器(THERMO)、枪头、吸管、96孔板、盐水、PBS、1640培养液、离心管、血球计数板、CCK-8(日本同仁)二、实验步骤1、在96孔板中配置100微升的细胞悬液。
将培养板在培养箱中预培养24小时(37℃,5% CO2)(注:贴壁细胞最小的接种量为10000个/孔,细胞数目由血球计数板中计算得来,若计数时浓度太大,可以先稀释一定倍数取融合度为90%左右的细胞,吹打均匀,取样计数一般细胞接种后贴壁大约需要2~4小时,但是不同类型的细胞所需要的时间有差异,根据实验情况而定细胞悬液一定要混匀,培养基周围容易挥发,为减少误差,建议培养板的四周只加培养基,而不作为检测孔)。
2、向培养板加入10微升不同浓度的待测物质。
在培养箱中孵化一段时间。
(6、12、24、48,时间根据OD值来选择,OD值在1.0~2.0都可以,最好在1.0附近比较好,时间根据细胞周期来定,起码要一代以上的时间)3、向每孔加入10微升CCK-8溶液,加完后轻轻敲击培养板以帮助混匀。
【注:每孔培养基体积的10%加入CCK-8,注意不要在孔中形成气泡,他们会影响OD值得读数。
如果待测物质有氧化或者还原性的话,或者细胞培养时间较长使得培养基颜色或者pH发生变化的话,可以在加CCK-8之前更换新鲜培养基(除去培养基,并用培养基洗涤细胞俩次,然后加入新的培养基),去掉药物影响。
斜贴壁加CCK-8,不要插到培养基下,容易产生气泡,干扰读数,而且速度要快,减少试剂在移液器上的残留,加后要轻轻地振荡培养板使试剂和培养基充分混合,可以将CCK-8用培养基稀释一倍,混匀后每孔加20uL使用】4、将培养板在培养箱内孵育1~4小时。
(细胞不同形成的甲臜的量也不同,如果显色不够的话,可以继续培养,以确定最佳条件建议BEL-7402 2h,)。
5、用酶标仪测定在450nm处的吸光度。
采用体外染色体畸变试验检测锐钛型纳米二氧化钛的遗传毒性
收稿日期:2021-08-12;修订日期:2021-11-16作者信息:杜秀明,E-mail:**********。
*周庆云,E-mail:**********采用体外染色体畸变试验检测锐钛型纳米二氧化钛的遗传毒性杜秀明1,2,洪丽玲1,2,徐灵芝1,2,周庆云1,2,* (1.上海化工研究院有限公司,上海200062;2.上海化工院检测有限公司,上海200062)In vitro chromosome aberrationevaluation of anatase titaniumdioxide nanoparticlesDU Xiuming1,2,HONG Liling1,2,XU Lingzhi1,2,ZHOU Qingyun1,2,*(1.Testing Center,Shanghai Research Institute of Chemical IndustryCo.,Ltd.,Shanghai200062;2.Shanghai Institute of ChemicalIndustry Testing Co.,Ltd.,Shanghai200062,China)【摘要】目的:按《OECD化学品测试准则473:体外哺乳动物染色体畸变测试》的要求进行试验,检测锐钛型纳米二氧化钛诱发体外培养的哺乳动物细胞染色体畸变的能力,以评价其是否属于致突变物。
方法:试验组受试物终浓度分别设置为0.0078、0.0312、0.125、0.5和2mg/mL,同时设立溶剂对照组和阳性对照组。
试验分为有代谢活化系统短时处理组(+S9,4h)、无代谢活化系统短时处理组(-S9,4h)和无代谢活化系统连续处理组(-S9,24h)3种处理方式,将培养的中国仓鼠肺细胞(CHL)暴露于锐钛型纳米二氧化钛混悬液中,染毒相应时间后收获细胞,经低渗固定后,制片并染色。
每个浓度组选取300个分散良好的中期分裂相细胞进行染色体畸变分析。
两种体外细胞毒性检测方法的比较研究
两种体外细胞毒性检测方法的比较研究黄哲玮;孙皎;孟爱英【期刊名称】《生物医学工程学进展》【年(卷),期】2005(026)004【摘要】目的比较两种常用的细胞毒性检测方法在医疗器械生物学评价中的相关性.方法分别采用MTT比色法和细胞增殖度法,在37℃条件下,将五种医疗器械/生物材料的浸提液分别与小鼠成纤维细胞(L-929)接触2天和2,4,7天,比较材料对细胞的毒性影响.结果 5种不同的材料浸提液分别表现出不同程度的细胞毒性反应(0~2级).将MTT比色法与细胞增殖度法(2天)的实验数据进行相关性分析,显示两者之间具有良好的相关性(R=0.977).结论 MTT比色法由于其检测所需的细胞量相对较少,试验步骤相对简便、检测周期短,因此具有一定的优越性,是个值得推荐的细胞毒性检测方法.【总页数】3页(P205-207)【作者】黄哲玮;孙皎;孟爱英【作者单位】上海交通大学医学院附属第九人民医院/上海生物材料研究测试中心,上海,200023;上海交通大学医学院附属第九人民医院/上海生物材料研究测试中心,上海,200023;上海交通大学医学院附属第九人民医院/上海生物材料研究测试中心,上海,200023【正文语种】中文【中图分类】R3【相关文献】1.特异性细胞毒性T淋巴细胞体外检测方法的进展 [J], 王锦彤;卢贤瑜2.贻贝粘蛋白创面修复敷料体外细胞毒性的检测方法 [J], 刘茜;兰华林;顾铭;高敏;王召旭3.贻贝粘蛋白创面修复敷料体外细胞毒性的检测方法 [J], 刘茜;兰华林;顺铭;高敏;王召旭;4.两种不同细胞毒性检测方法的比较 [J], 田林奇;韩颖;魏聪;徐玉茵;周静;张娟丽;郭艳5.两种不同盖髓剂对人牙髓细胞毒性的体外研究 [J], 古丽努尔·阿吾提;古丽波斯坦·吐尔逊;阿尔孜古丽·吐尔逊;居来提·吐尔逊因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
USP87细胞毒性体外试验
87 BIOLOGICAL REACTIVITY TESTS, IN VITROThe following tests are designed to determine the biological reactivity of mammalia n cell cultures followi ng con tact with the elastomeric plastics and other polymeric materials with direct or in direct patie nt con tact or of specific extracts prepared from the materials under test. It is essential that the tests be performed on the specified surface area. When the surface area of the specime n cannot be determ in ed, use 0.1 g of elastomer or 0.2 g of plastic or other material for every mL of extraction fluid. Exercise care in the preparation of the materials to preve nt con tam in ati on with microorga nisms and other foreign matter. Three tests are described (i.e., the Agar Diffusi on Test , the Direct Con tact Test and the Elution Test ).1 The decision as to which type of test or the number of tests to be performed to assess the potential biological response of a specific sample or extract depends upon the material, the final product, and its inten ded use. Other factors that may also affect the suitability of sample for a specific use are the polymeric composition; processing and cleaning procedures; con tact ing media; in ks; adhesives; absorptio n, adsorptio n, and permeability of preservatives; and con diti ons of storage. Evaluatio n of such factors should be made by appropriate additi onal specific tests before determining that a product made from a specific material is suitable for its in ten ded use. Materials that fail the in vitro tests are can didates for the in vivotests described in Biological Reactivity Tests, In Vivo 88 .USP R EFERENCE S TANDARDS 11 —USP High-Density Polyethylene RS.USP Positive Bioreaction RS.Cell Culture Preparation —Prepare multiple cultures of L-929 (ATCC cell lineCCL 1, NCTC clone 929; alternative cell lines obtained from a standard repository may be used with suitable validation) mammalian fibroblast cells inserum-suppleme nted minimum esse ntial medium hav ing a seedi ng den sity of about 10 5 cells per mL. Incubate the cultures at 37 1 一in a h±midifiedin cubator for NLT 24 h in a 5 1% c±b on dioxide atmosphere un til amono layer, with greater tha n 80% con flue nee, is obta in ed. Exam ine the prepared cultures un der a microscope to en sure uniform, n ear-c on flue ntmono layers. [NOTE ——The reproducibility of the In Vitro Biological Reactivity Tests depends upon obtaininguniform cell culture density. ]Extractio n Solvents —Sodium Chloride Injectio n (see mono graph —useSodium Chloride Injection containing 0.9% of NaCl). Alternatively, serum-free mammalia n cell culture media or serum-suppleme nted mammalia n cell culture media may be used. Serum suppleme ntati on is used whe n extracti on is done at 37 - for 24 h.Apparatus —Autoclave —Employ an autoclave capable of maintaining a temperature of 121±2 -, equipped with a thermometer, a pressure gauge, a vent cock, a rack adequate to accommodate the test containers above the water level, and a water cooling system that will allow for cooling of the test containers to about20 -, but not below 20 -, immediately following the heating cycle.Oven —Use an ove n, preferably a mecha ni cal con vect ion model, that will maintain operating temperatures in the range of 50 -刁0 within ±.In cubator —Use an in cubator capable of maintaining a temperature of 37 1土and a humidified atmosphere of 5 1% carbon dioxide in air.Extracti on Containers —Use only contain ers, such as ampuls or screw-cap culture test tubes, or their equivale nt, of Type I glass. If used, culture test tubes, or their equivale nt, are closed with a screw cap hav ing a suitable elastomeric liner. The exposed surface of the elastomeric liner is completely protected with an inert solid disk 50 —5 m in thickness. A suitable disk can be fabricated from polytef.Preparati on of Apparatus ——Clea nse all glassware thoroughly with chromic acid clea nsing mixture an d, if n ecessary, with hot n itric acid followed by proIon ged rinsing with Sterile Water for Injectio n. Sterilize and dry by a suitable process for containers and devices used for extracti on, tran sfer, or adm ini strati on of test material. If ethyle ne oxide is used as the steriliz ing age nt, allow NLT 48 h for complete degass ing.Procedure —Preparati on of Sample for Extracts —Prepare as directed in the Procedure under Biological Reactivity Tests, In Vivo 88 .Preparati on of Extracts ——Prepare as directed for Preparati on of Extracts inBiological Reactivity Tests, In Vivo 88 using either Sodium Chloride Injection (0.9% NaCl) or serum-free mammalia n cell culture media asExtraction Solvents. [NOTE —If extraction is done at 37 U for 24 h in an incubator, use cell culture media supplemented by serum. The extraction conditions should not in any instance cause physical changes, such as fusion or melting of the material pieces, other than a slight adherence. ]Agar Diffusi on TestThis test is desig ned for elastomeric closures in a variety of shapes. The agar layer acts as a cushion to protect the cells from mechanical damage while allow ing the diffusi on of leachable chemicals from the polymeric specime ns. Extracts of materials that are to be tested are applied to a piece of filter paper. Sample Preparati on —Use extracts prepared as directed, or use porti ons of the test specime ns hav ing flat surfaces NLT 100 mm in surface area. Positive Control Preparation —Proceed as directed for Sample Preparation . Negative Con trol Preparatio n ——Proceed as directed for Sample Preparati on Procedure —Using 7 mL of cell suspe nsion prepared as directed un der CellCulture Preparati on , prepare the mono layers in plates hav ing a 60-mm diameter. Following incubation, aspirate the culture medium from the mono layers, and replace it withserum-suppleme nted culture medium con tai ning NMT 2% of agar. [NOTE—The quality of the agar must be adequate to support cell growth.The agar layer must be thin enough to permit diffusion of leached chemicals. ] Place the flat surfaces ofSample Preparati on, Negative Con trol Preparati on , and Positive Con trolPreparation or their extracts in an appropriate extracting medium, in duplicate cultures in con tact with the solidified agar surface. Use no more tha n threespecimens per prepared plate. Incubate all cultures for NLT 24 h at 37 1- ,±preferably in a humidified in cubator containing 5 1% of carbb n dioxide.Examine each culture around each Sample, Negative Control , and PositiveControl, under a microscope, using a suitable stain, if desired.In terpretati on of Results ——The biological reactivity (cellular dege nerati on and malformati on) is described and rated on a scale of 0 — (see Table 1). Measurethe responses of the cell cultures to the Sample Preparation , the NegativeControl Preparation , and the Positive Control Preparation . The cell culture test system is suitable if the observed resp on ses to the Negative Con trolPreparation is grade 0 (no reactivity) and to the Positive Control Preparation isat least grade 3 (moderate). The Sample meets the requireme nts of the test if the response to the Sample Preparation is not greater than grade 2 (mildly reactive). Repeat the procedure if the suitability of the system is not con firmed.Table 1. Reactivity Grades for Agar Diffusio n Test and Direct Con tact TestGrade Reactivity Descripti on of Reactivity Zone0 None No detectable zone around or un der specime nSome malformed or dege nerated cells un der1 Slight specime nZone limited to area un der specime n and lesstha n2 Mild 0.45 cm bey ond specime n3 Moderate Zone exte nds 0.45 to 1.0 cm bey ond specime n4 Severe Zone exte nds greater tha n 1.0 cm bey ondspecime nDirect Con tact TestThis test is desig ned for materials in a variety of shapes. The procedure allows for simulta neous extract ion and testi ng of leachable chemicals from the specime n with a serum-suppleme nted medium. The procedure is not appropriate for very low- or high-de nsity materials that could cause mecha ni cal damage to the cells.Sample Preparati on —Use porti ons of the test specime n hav ing flat surfaces2NLT 100 mm in surface area.Positive Control Preparation —Proceed as directed for Sample Preparation . Negative Con trol Preparatio n ——Proceed as directed for Sample Preparati on Procedure —Using 2 mL of cell suspe nsion prepared as directed un der Cell Culture Preparati on , prepare the mono layers in plates hav ing a 35-mm diameter. Following incubation, aspirate the culture medium from the cultures, and replace it with 0.8 mL of fresh culture medium. Place a single Sample Preparation , a Negative Control Preparation , and a Positive Control Preparation in each of duplicate cultures. Incubate all cultures for NLT 24 h at 37 ±1〕in a humidified in cubator containing 5 1% of carb on dioxide.Examine each culture around each Sample, Negative Control , and Positive Control Preparation , under a microscope, using a suitable stain, if desired.In terpretati on of Results —Proceed as directed for In terpretati on of Results under Agar Diffusion Test . The Sample meets the requirements of the test if the response to the Sample Preparation is not greater than grade 2 (mildly reactive). Repeat the procedure if the suitability of the system is not con firmed.Eluti on TestThis test is designed for the evaluation of extracts of polymeric materials. The procedure allows for extract ion of the specime ns at physiological or。
中国市售食品接触硅胶制品的细胞毒性评价
包 装 工 程第44卷 第19期 ·42·PACKAGING ENGINEERING 2023年10月收稿日期:2023-04-15中国市售食品接触硅胶制品的细胞毒性评价郭一凡,张京伟,范晓洁,王文娟,封棣*(北京工商大学 轻工科学技术学院,北京 100048)摘要:目的 为了研究不同细胞毒性测试方法之间的差别,本研究利用不同体外细胞毒性评价测试体系下的食品接触硅胶制品(Food Contact Silicone Products, FCSPs )的整体安全性进行研究。
方法 样品在体积分数为95%的乙醇中模拟迁移(70℃保持2 h )后,通过系统优化实验条件,发展了FCSPs 迁移液的细胞毒性评价方法。
利用HeLa (子宫颈癌细胞)-NRU 、HeLa-CCK-8(CellCountingKit-8,CCK-8)、HepG2(Human Hepatoblastoma )-NRU 、HepG2-CCK-8共4种测试体系对中国市售的19种FCSPs 进行了细胞毒性评价。
结果 样品在不同测试体系下的细胞毒性结果不同,其中65%的样品呈现中度毒性。
结论 FCSPs 的整体生物安全性亟须关注并深入研究。
本研究为食品接触材料的体外生物测定提供了研究思路和科学依据。
关键词:食品接触硅胶制品;模拟迁移;细胞毒性中图分类号:TB487;TS206.4 文献标识码:A 文章编号:1001-3563(2023)19-0042-08 DOI :10.19554/ki.1001-3563.2023.19.006Cytotoxicity Evaluation of Food Contact Silicone Products Marketed in ChinaGUO Yi-fan , ZHANG Jing-wei , FAN Xiao-jie , WANG Wen-juan , FENG Di *(School of Light Industry, Beijing Technology and Business University, Beijing 100048, China)ABSTRACT: The work aims to study the overall safety of food contact silicone products (FCSPs) by different in vitro cytotoxicity evaluation and test systems to study the difference of different in vitro cytotoxicity test methods. After the samples were simulated in 95% ethanol at 70 ℃ for 2 h, the cytotoxicity evaluation method of FCSPs migration was de-veloped by systematically optimizing the experimental conditions. Four test systems including HeLa-NRU, HeLa-CCK-8, HepG2-NRU and HepG2-CCK-8 were used to evaluate the cytotoxicity of 19 FCSPs marketed in China. The samples showed different cytotoxicity results under different testing systems. Among them, 65% of the samples showed moderate cytotoxicity. The overall biological safety of FCSPs needs urgent attention and in-depth study. This study provides re-search ideas and scientific basis for the in vitro bioassay of food contact materials. KEY WORDS: food contact silicone products; simulated migration; cytotoxicity食品接触硅胶制品(Food Contact Silicone Products ,FCSPs )指各种适用于预期与食品接触或已接触食品的由硅橡胶制成的制品。
毒理学研究中的体外细胞毒性评价_刘涛
第26卷 第3期2014年3月V ol. 26, No. 3Mar., 2014生命科学Chinese Bulletin of Life Sciences文章编号:1004-0374(2014)03-0319-06DOI: 10.13376/j.cbls/2014047收稿日期:2013-07-11;修回日期:2013-08-11基金项目:北京市教委科技发展计划重点项目(KZ2012-11417041)*通信作者:E-mail: xiaohong@毒理学研究中的体外细胞毒性评价刘 涛1,郭 辰2,赵晓红2*(1 首都师范大学生命科学学院,北京 100048;2 北京联合大学功能食品研究院,北京 100191)摘 要: 体外细胞毒性评价作为传统动物模型毒性评价的替代方法正在得到越来越多的研究和应用,而其向高通量阶段的迈进则为新毒物和新药物的检测与目的物的筛选提供了更加快捷、高效的手段。
将对体外细胞毒性评价常用细胞类型、体外细胞毒性评价的指标,及其检测技术方法的研究现状、进展和存在问题进行阐述,希望能为相关的研究提供一定的参考。
关键词:毒理学;体外试验;细胞毒性评价;高通量筛选中图分类号:Q256;R99 文献标志码:AIn vitro cytotoxicity evaluation in toxicologyLIU Tao 1, GUO Chen 2, ZHAO Xiao-Hong 2*(1 School of Life Science, Capital Normal University, Beijing 100048, China; 2 Research Institute for Science and Technology of Functional Foods, Beijing Union University, Beijing 100191, China)Abstract: In vitro cytotoxicity evaluation, as an alternative of traditional toxicity evaluation using animal models, has been widely studied and applied. The development of cell-based high-throughput detecting and screening assays will provide fast and efficient means for detecting new toxic substances and drugs and screening target ingredients. The current research status, scientific progress, and existing problems of commonly used cell types, different test indexes and methods for in vitro cytotoxicity assessments are reviewed, which will provide some reference for related research.Key words: toxicology; in vitro assay; cytotoxicity evaluation; high-throughput screening毒性评价的传统方法主要是动物体内实验,通过解剖检查、称量重量、计算脏器指数、血液生化学检查及病理形态学检查等来发现受试物的器官毒性,即利用啮齿类动物和非啮齿类动物进行不同时间段的生物测定。
肺癌药物研发中的细胞毒性测试
肺癌药物研发中的细胞毒性测试肺癌是世界上最常见的癌症之一,也是付出最高代价的癌症之一。
随着医学科学的不断发展,越来越多的药物被研制出来用于治疗肺癌。
但是,肺癌药物研发中的细胞毒性测试是其中必不可少的一部分,因为它能影响到肺癌患者的健康和生命。
细胞毒性是指对生物细胞产生的毒性作用。
在药物研发中,细胞毒性测试的主要目的是评价化合物对人体细胞的毒性影响,确定有效药物剂量,并提前发现任何潜在不良反应。
通常情况下,肺癌药物研发中需要进行多种细胞毒性测试,以评估候选药物的安全性、疗效以及副作用。
这些测试通常可分为两类:离体细胞测试和体内测试。
离体细胞测试是一种基于细胞培养的测试方法。
这种测试通过将药物加入到细胞培养基中,然后观察细胞对药物的反应,以评估药物的毒性和治疗效果。
离体细胞测试通常是肺癌药物研发中的初步测试,因为它们可以提供相对较快的测试结果,而且可以避免对动物或人体进行药物测试的道德问题。
然而,离体细胞测试仍然存在一些局限性。
因为细胞生长的环境对药物反应的细节起着重要的作用,所以结果与人体内正常细胞的反应并不总是一致,也可能产生假阳性或假阴性的结果。
因此,体内测试被认为是肺癌药物研发中更可靠的测试方法。
通过在活体动物或人体中观察药物的反应,可以更真实地评估药物的毒性和效果。
然而,这些测试不仅更昂贵,还可能对动物或人体产生负面影响。
除了离体和体内测试外,还有一种测试方法被称为大规模筛选测试(HTS)。
HTS测试使用微型高通量系统在短时间内评估众多的化合物。
这些系统可以提供更精确的数据,但代价是这种测试需要昂贵的设备和大量的针对人体衍生细胞的化合物库。
总体而言,肺癌药物研发中的细胞毒性测试方法有其优、缺点。
要想更准确地评估药物的安全性和疗效,可能需要结合多种测试方法,根据科学和实际应用需求灵活选择。
在进行肺癌药物研发过程中,细胞毒性测试是必不可少的一部分。
经过细胞毒性测试的药物可以更好地保障病人的健康和生命。
细胞毒性检测技术在药物研发中的应用及其问题分析
细胞毒性检测技术在药物研发中的应用及其问题分析随着科技的不断发展,药物研发也在千姿百态的技术中不断提高。
其中,细胞毒性检测技术便是一种具有十分重要意义的方法。
它可以帮助研究人员评估药物对细胞的毒性,为药物研发提供重要帮助。
然而,这种技术也存在一些问题,需要我们去探究和解决。
一、细胞毒性检测技术在药物研发中的应用药物研发过程中,需要进行各种各样的实验,其中一项非常重要的任务是评估药物对细胞的毒性。
因为毒性是药物研发和生产中最关键的安全问题之一,如果不能充分、准确地评估毒性,那么药物可能会对人体产生不良影响,甚至会危及人体生命。
而随着技术的提高,研究人员已经能够使用一些先进的细胞毒性检测技术来评估药物的毒性。
细胞毒性检测技术主要是通过针对药物与细胞之间的相互作用来评估细胞的生存状况。
这些相互作用大多涉及药物与细胞膜或细胞内部组分的交互作用。
根据这些相互作用的不同特点,研究人员可以使用不同的方法来评估药物的细胞毒性。
比如最常用的MTT细胞生存率检测、细胞膜联苯胺酯(FDA)染色及活细胞计数等方法。
这些方法都有其各自的适用范围和优缺点,但它们能够对药物的毒性进行快速、准确的评估,并为药物的研发提供重要的依据。
二、细胞毒性检测技术存在的问题尽管细胞毒性检测技术已经广泛应用于药物研发,但它仍然存在一些问题,这些问题可能会影响药物研发的结果和整个研发过程的安全性。
其中一些问题如下:1、细胞毒性检测技术的可重复性不高在药物研发过程中,不同的实验室由于设备和操作水平的不同,可能会导致实验结果存在差异。
而对于一个细胞毒性检测方法而言,通常需要在多个实验条件下检测不同的药物。
如果结果出现差异,那么就可能会根据错误的数据进行药物开发。
2、细胞毒性检测技术无法完全预测药物在人体内的毒性药物研发过程中,如果不能准确预测药物在人体内的毒性,那么就可能会对人体产生不良影响,甚至会危及人体生命。
而目前的细胞毒性检测技术只能在细胞水平上评估药物的毒性,而无法考虑到药物在人体内的代谢和排泄等因素。
药物毒性评价中的细胞毒性试验技术研究
药物毒性评价中的细胞毒性试验技术研究随着医药技术和药物研发的不断进步,药物毒性评价也变得越来越重要。
药物毒性评价是指确定药物是否会对人体产生不良作用的一项重要的评价工作。
其中细胞毒性试验技术是目前应用比较广泛的一种方法,本文将对其进行深入探讨。
Ⅰ. 细胞毒性试验技术简介细胞毒性试验技术是指以细胞为模型,通过赋予细胞某种物质刺激,观察细胞的形态、数量、代谢功能等方面的变化,以此来判断药物对细胞的毒性。
在药物毒性评价中,细胞毒性试验技术不仅可以对化学物质进行测试,并且也可以被用来检测各种药物,如抗癌药、抗生素、反病毒药和抗炎药等。
当前,人们较多采用细胞存活率作为细胞毒性的指标,常用的存活率检测方法有MTT法、CCK-8法、XTT法等。
这些方法的基本原理都是通过细胞内某些代谢酶的活性降低来获得细胞存活率信息。
细胞毒性试验技术具有快速、经济、可靠等特点,且能在药物研发早期进行并提供关键信息,使得其成为药物毒性评价中重要的手段之一。
Ⅱ. 细胞毒性试验技术的缺陷细胞毒性试验技术虽然在药物毒性评价中应用广泛,但也存在一定的缺陷。
首先,细胞毒性试验技术存在一些局限性。
细胞毒性试验技术在研究药物毒性时需要细胞样品,对于人体器官的毒性试验,只能通过小鼠或其他动物的细胞替代,在评价药物对人体的影响时,其数据参考价值受到一定的限制。
其次,细胞毒性试验技术也存在一定的误差。
细胞毒性试验技术评价结果可能会受到多种因素的影响,如细胞生长环境、样品浓度等,这些因素可能导致实验结果与药物的实际毒性存在差异。
最后,还需要注意细胞毒性试验技术中可能存在的静态度和单一性问题,即我们的测试条件很难完全模拟人体内分子的互动和动力学,如果我们只用细胞毒性试验技术来进行评价可能会给我们数据的精确度带来一定的误差。
Ⅲ. 细胞毒性试验技术的最新研究进展为了解决上述问题,近年来,学者们对细胞毒性试验技术进行了持续的研究和改进,如采用多维度生物信息分析技术,综合获取大小、形态、荧光、蛋白表达和单细胞遗传信息等来研究细胞毒性。
生物学评价之细胞毒性试验
生物学评价之细胞毒性试验1范围细胞毒性试验是利用细胞体外培养方法来评价医疗器械或其浸提液可滤出成分中急性细胞毒性的潜在性。
2 试验项目选择(推荐)根据GB/T16886.5-1997标准中有关细胞毒性试验的要求,现推荐下面任何一种细胞毒性试验方法评价医疗器械的细胞毒性,即琼脂覆盖法,分子滤过法,生长抑制法。
3 试验条件(1)细胞株可以使用已建立的细胞株,目前我国使用较多的是L-929(小鼠结缔组织成纤维细胞)和V-79(中国地鼠肺成纤维细胞)。
(2)培养基培养基及其血清浓度的含量应能适合所选择细胞株的生长,满足细胞生长的需要。
培养基内含抗生素的量应不引起细胞毒性,以免影响材料的评价,含血清和谷氨酰胺的培养基在2~8℃贮存不能超过一周,只含谷氨酰胺不含血清的培养基在2~8℃贮存不能超过一个月,培养基的pH值在7.2~7.4之间,所有培养用液都应是无菌的。
(3)样品的制备•试验样品的制备。
试验样品应选择材料本身或其浸提液进行。
试验材料应用最终产品。
制备材料浸提液的条件往往是夸大临床应用的条件来评价样品潜在的细胞毒性,但不能引起样品严重的变化(如溶解或其化学结构改变),浸提液应在制备后的24h内使用;固体材料应至少有一个平面使其利于在细胞层或琼脂层相接触,各种试验样品在试验时均应经无菌处理。
•阴性对照。
应是已知无细胞毒性的物质。
对于合成高分子材料,高密度聚乙烯较为适宜,牙科材料则可用氧化铝陶瓷作为阴性对照。
•阳性对照。
是已知的有一定细胞毒性的物质。
推荐含锡的聚氯乙烯作为固体材料或浸提液的阳性对照。
稀释苯酚亦可作为浸提液的阳性对照。
4 试验方法1)琼脂覆盖法•目的:本试验是为了评价医疗器械科浸提成分的急性细胞毒性。
•范围:本试验方法适用于固体(粉末,纤维状,金属),液体等试验材料。
•试验样品的制备。
试验样品:将试验样品制成100mm2的圆形,要求边缘光滑整齐。
液体材料用0.1mL的样品吸收在同面积的无菌滤纸片或纤维素上。
细胞毒性测试与药物毒性评价
细胞毒性测试与药物毒性评价药物研发是一个较为复杂和耗时的过程,其中药物毒性评价是不可或缺的环节。
药物毒性评价旨在评估某种药物对生物体的危害程度,确定药物的安全性和有效性,为药物注册和上市提供重要的依据。
而细胞毒性测试则是毒性评价中不可或缺的一环,本文将就细胞毒性测试和药物毒性评价进行探讨。
一、细胞毒性测试的概念和原理细胞毒性测试是一种原位代替动物试验的技术,可以在体外进行,能够评估化合物对细胞的危害程度,通过测定化合物对细胞形态、生长、代谢和生物学效应的影响来判断其毒性程度。
该方法不仅具有较高的可靠性和重现性,而且更加便捷快速。
目前已有多种细胞毒性测试方法被广泛应用,如细胞形态、细胞增殖、细胞色素释放、细胞凋亡等方法。
细胞毒性测试评估药物毒性是基于药物对细胞的影响,同时考虑药物的化学成分和生物学特性。
当药物通过管路进入细胞后,会对细胞的正常生理代谢过程产生一定的抑制作用,导致生物学效应发生改变,这种变化会被细胞毒性测试方法捕捉到,从而评估化合物的毒性程度。
二、细胞毒性测试的应用价值细胞毒性测试是一种快速、高效、准确的药物毒性评价方法。
这种测试方法可用于初步筛选毒性药物,评估药物对生物体的安全性,指导药物研发的方向,并在临床前期对药物的毒性进行评估。
同时可以保障大多数药物的有效性,这也是药物注册和上市的必要条件之一。
近年来,随着生物技术和分子生物学的发展,细胞毒性测试方法不断完善和发展,并且有望成为临床前药物评估的首选方法。
三、药物毒性评价方法药物毒性评价所采用的方法,是依据药物分子的物理化学性质和药效学特性,对药物对生物体的一系列反应进行评估。
经过技术的整合和综合评估之后,就得出药物对生物体的毒性程度。
药物毒性评价方法主要包括以下几种:(一)动物实验法:动物实验法是药物毒性评价中最常用的方法。
该方法可用于对药物进行全身毒性、局部毒性、慢性毒性等多方面的评价。
但该方法需耗费大量时间和资源,并具有伦理上的问题。
细胞毒实验实验报告南方医科大学
细胞毒实验实验报告南方医科大学细胞毒性实验是生物学评估和筛选测试之一,该测试使用体外组织细胞观察医疗器械对细胞生长,繁殖和形态的影响。
细胞毒性实验旨在评估医疗器械和材料的一般毒性。
测试包括在细胞培养基中提取设备,然后将提取液暴露于小鼠成纤维细胞(L929)。
在使用定性或定量方法评估细胞之前,允许细胞在提取液中生长指定的时间。
该测试是在所有与患者接触的医疗设备,原材料以及经过清洁验证或剩余制造的设备上执行的。
虽然可以通过多种不同的方法进行测量,但是通过使用重要染料(福尔马赞染料),蛋白酶生物标志物或通过测量ATP含量来评估细胞活力是确定细胞毒性的最常用方法。
常见的四唑盐包括INT,MTT,MTS和XTT。
通常在371C的补充了血清的哺乳动物细胞培养基(MEM)中提取设备材料。
提取后,将提取物与L929细胞(小鼠成纤维细胞)单层接触。
然后使细胞在提取液中生长指定的时间,然后使用定性或定量方法对细胞进行评估。
TCB7-5细胞毒性遗传毒性的检测及应用
(二)细胞中蛋白质含量测定
(一)原理 细胞中蛋白质含量可反映细胞生长、增殖的状况,从而 反映药物对细胞的毒性作用。测定时,先将细胞溶解释 放蛋白质,再加入游离状态的考马斯亮蓝G-250,在酸 性条件下考马斯亮蓝G-250呈红褐色,与蛋白质结合后 呈蓝色。在一定的浓度范围内蛋白质含量与颜色的深度 成正比,通过比色并与标准蛋白质比较可得出蛋白质浓 度,因而计算出细胞中蛋白质含量。
(2)材料
1. 人外周血淋巴细胞。 2. 培养液RPMI 1640粉1袋,溶于适量双蒸水中,加入 灭活的CS 100 ml(10%),用0.5% NaHCO3,调pH 至6.8~7.4,加入100 mg青霉素和链霉素(10万U), 双蒸水定容至l000 ml。用直径为0.22 µm的无菌滤膜 过滤,分装于无菌瓶中备用。 3. 2%肝素用无菌NaCl溶液(0.85%)配制,4℃冰箱中 保存备用。 4. 秋水仙素溶液用无菌NaCl溶液配制成浓度为500 µg/ml的溶液,4℃冰箱中保存备用。 5. 0.1%PHA。
(一)乳酸脱氢酶(LDH)漏出率的检测
(一)原理 乳酸脱氢酶(LDH)系胞质酶,正常情况 下不能透过细胞膜,但当细胞受到损伤时, 细胞膜通透性增强,LDH会从细胞质内漏 出,细胞质内LDH减少,培养液中LDH增 多,测定培养液中LDH活性或漏出率可以 反映药物的细胞毒性。 LDH在有辅酶I携带氢的情况下,催化乳酸 与丙酮酸之间的可逆反应。以乳酸为基质, 在pH10的条件下,经LDH作用后,测定生 成的丙酮酸量,从而推知LDH的活性。
(三)方法 1.绘制标准曲线按表1操作。 表1 标准曲线绘制的操作
置37℃水浴15 min后,各管加入0.4 mol/L NaOH。10 ml,混 匀,室温下放置5 min,以1号为空白,440 nm处比色。以 LDH为横坐标,以各管光密度值为纵坐标,绘成标准曲线。
MTT法评价医用高分子材料的细胞毒性
MTT法评价医用高分子材料的细胞毒性
王昕;施嬿萍;朱雪涛;贾彧飞
【期刊名称】《生物医学工程研究》
【年(卷),期】2003(022)001
【摘要】为研究医用高分子材料的细胞毒性,采用能快速评定细胞增殖率和细胞毒性的比色分析方法-MTT比色法,分别检测三类医用高分子材料的浸提液对小鼠成纤维细胞L929细胞相对增殖率的影响,评价其细胞毒性.参照美国药典的评价标准,三类医用高分子材料均呈现出高的细胞相对增殖率,其细胞毒性为1级,即无细胞毒性.
【总页数】2页(P46-47)
【作者】王昕;施嬿萍;朱雪涛;贾彧飞
【作者单位】国家药品监督管理局济南医疗器械质量监督检验中心,济南,250013;国家药品监督管理局济南医疗器械质量监督检验中心,济南,250013;国家药品监督管理局济南医疗器械质量监督检验中心,济南,250013;国家药品监督管理局济南医疗器械质量监督检验中心,济南,250013
【正文语种】中文
【中图分类】R318
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毒性物质检测技术的研究
毒性物质检测技术的研究毒性物质是指那些对人体或者其他生物有害的化学物质,这些物质可能会对人体内部的生命系统产生破坏性影响,造成危险的健康问题。
因此,检测毒性物质是必不可少的一项任务。
对毒性物质检测技术的研究,可以使人们更好地了解毒性物质的性质,衡量毒性物质对人类的危害,并且采取必要的措施保护健康。
目前,毒性物质的检测技术主要包括筛查型(screening)和确认型(confirmation)两种,前者是为了挑选样品中具有极高潜在毒性物质的特定分子,以及防止漏检。
后者则是为了确定毒性物质的具体种类和数量。
以下是一些常规的毒性物质检测技术:1. 生物测试生物测试是通过使用活体组织或者细胞来检验毒性物质的实验方法。
由于毒性物质会对细胞产生影响,所以生物测试是毒性物质检测中最常用的方法之一。
例如细胞培养毒性测试 (Cell Culture Toxicity Test) 通过将样品和细胞培养在一起,观测细胞的生长状态以及死亡情况来预测毒性物质的潜在危害。
不过,生物测试存在着缺陷,如时间和成本过多,不够准确,对动物产生伤害等。
尤其针对试验动物的使用,有些人反对使用动物进行实验。
如果发现有替代方式,就应该尽量避免使用动物试验。
2. 化学测试化学测试是在物理实验室中进行的检测方法,通过对样品进行分析来测定毒性物质的化学成分。
常见的化学测试包括气相色谱-质谱联用技术(Gas Chromatography-Mass Spectrometry) ,核磁共振(Nuclear Magnetic Resonance)等。
这些方法有着高精度和快速的特点,能够比较准确地鉴定毒性物质。
但是,这些方法的实施需要先进行样品的前处理,所以处理前需要对样品进行保护,同时处理过程中人员需要高度注意安全问题。
3. 生物传感器生物传感器是一种新型的检测技术。
传感器利用专门设计的生物体系或者受体来对化学物质进行感应,并将感应结果转换为可读的输出信息。
细胞毒实验
• 注: S自发 <0,做“0”处理
A
自然释放孔
B
(E:T=100:1)
C
(E:T=50:1)
D
(E:T=25:1)
E
最大释放孔
F
最大释放对照孔
G
培养基对照孔
SI=
1-3
100ul YAC-1 cells+ 100ul 10% 1640
100ul YAC-1 cells+ 100ul spleen Cells
2. 室温避光保存15min。
3. 取出,加入1mol/L柠檬酸, 30l /孔。酶标仪读数前保证没有气泡。
• 结果测定:
1. 结果测量:用酶标仪测定光密度值:OD570nm。记录结果。
2. 结果判定:
实验孔值-自然释放孔值
SI=
Max- S自发
×100%
• Max ( 靶细胞最大释放)=最大释放孔均值-最大释放对照孔均值 • S自发 (靶细胞自发释放) =自发释放孔均值-培养基对照孔均值
可健吉70090310季敏70090312李壮70090313细胞毒实验的分类原理性检测方法与应用2011年11月分类原理检测方法应用细胞毒检测技术主要根据原理不同进行区分分类细胞介导细胞毒实验补体依赖细胞毒实验肿瘤浸润性淋巴细胞til活性测定淋巴因子激活的杀伤细胞lak活性测定细胞毒性t淋巴细胞ctl活性测定抗体依赖性细胞介导细胞毒实验adcc2011年11月补体依赖的细胞毒实验补体台盼蓝染液抗原与抗体结合2011年11月抗体依赖性细胞介导细胞毒实验adcc
系统中主要的效应细胞,是与T、B细胞并列的第三类群淋巴细胞。
NK细胞可非特异直接杀伤靶细胞,这种天然杀伤活性既不需要预先由抗
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Test Report No: SHCPCH190504207·2 Date: Jul 09 2019Page 1 of 3 RAND: 6531919Client name: JunQi Nonwovens Enterprise Co.,Ltd Client address: 204 Huan Shi East Road JiangPu street CongHua GuangzhouSample name: 14gsm white nonwovens fabric Batch No./Date: 20190520 Manufacturer: JunQi Nonwovens Enterprise Co.,Ltd--------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------The above information and samples are provided and confirmed by the customer, and SGS is not responsible for confirming the accuracy, appropriateness and/or completeness of the information provided by the customer.SGS job No.: SHCPCH190504207 SGS reference No.: / Date of receipt: May 22 2019 Testing period: May 22 2019 ~ Jun 25 2019Test(s) requested(selected test(s) as requested by applicant), test method(s), test result(s): Please refer to next pageCONCLUSION: Under the conditions of the study, the viability of the 100% extract of the test article was 96.8%,the cytotoxicity of test article was grade 0,which is non-cytotoxic.Unless otherwise stated, the results shown in this test report apply only to the sample(s) as received, and this document cannot be used for publicity without approval of the Company, not be allowed to copy testing report (except for copy of full text) without written approval.Signed for and on behalf ofSGS-CSTC Standards Technical Services (Shanghai) Co.,Ltd………………………Authorized Signature Angela YuTest Report No: SHCPCH190504207·2 Date: Jul 09 2019Page 2 of 3 RAND: 6531919Test typeTests for in vitro cytoxicity*Test method ISO10993-5:2009MATERIALSThe test article was identified and handled as follows: Test article: 14gsm white nonwovens fabric Storage Condition: Room temperature Test article preparation :According to ISO10993-12 principle for preparing test materials, The extract of the sample wasperformed in DMEM medium containing 10% FBS in 37℃ for 72h, the extraction ratio was 6 cm2/mL. The extracts were used immediately after extraction. cell line :mouse fibroblast cells L929 Medium :DMEM medium with 10% FBS,METHODS100μL of singe L929 cell suspension with DMEM was added to 96 wells in density of 1×105. Incubate the cultures at 37℃ in air with 5% carbon dioxide for 24h.Discard the culture medium from the cultures and add 100μL of different concentrations of the extract (25%,50%,75% and 100%) and the same aliquots of the blank, the negtive and positive controls in six replicates. Incubate the cultures in incubator at 37℃, 5% carbon dioxide for 24h.After an incubation period of 24h, the cytotoxic effect was examined with microscope. 50μL of1mg/mL MTT solution was added to each wells and incubated at 37℃ in air with 5% carbon dioxide for 2h. After incubation, remove the MTT solutions and 100μL of isopropanol was added to each well and the microtitre plate was shaked rapidly on a microtitre plate shaker for 20 min. The absorption of each wells were measured at 570nm with microtitre plater reader. Cell viablity of the test sample , negative control and positive control were calculated.RESULTSCytotoxicity test results of 14gsm white nonwovens fabric were shown in Table 1.1. Cytotoxic effect of the extract of the test sample on the morphology of L929 cells.GroupGrowth state Confluent Monolayer Shape of cellGrade scoreNegitive control Well (+) Normal ,no cell lysis and no reduction of cell growth 0 Liquid extract of the sampleWell(+)Normal ,no cell lysis and no reduction of cell growthTest Report No: SHCPCH190504207·2 Date: Jul 09 2019Page 3 of 3 RAND: 6531919Positive controlGrowth inhibition(-)More than 90%of cells are round or laysed ,cell layers arecompletely distroyed42. Cytotoxic effect of the extract of the test sample on L929 cells. Group ConcentrationCell viability Blank control- 100% the extract of the test article30% 100% 50%94.6% 70% 102.3% 100%96.80% Positive control(ZDEC)100%0.4%Remark: *The test was carried out by external laboratory assessed as competent.Sample Description: Sample in bagIn the territory of the People’s Republic of China, the test report shall only be used for client scientific research, teaching, internal quality control, product research and development, etc… and just for client internal reference.*** End of Report***。