低氧诱导因子-1调控肿瘤代谢的研究进展
最新-缺氧诱导因子研究进展 精品

缺氧诱导因子研究进展缺氧诱导因子研究进展【关键词】缺氧诱导因子;;肿瘤氧代谢的平衡对于机体的生理功能和代谢过程极其重要,机体对于低氧或者缺氧的条件具有适应能力。
缺氧诱导因子-,是细胞在基因转录水平协调缺氧变化的最主要的调节因子,广泛表达于哺乳动物各种组织细胞中,是一种介导哺乳动物细胞内低氧反应的核转录复合体,其表达调控与肿瘤发生发展和某些疾病的病理生理过程密切相关。
本文综述近年来有关激活机制、生物功能和与疾病关系等方面的研究进展。
1的分子结构是由结构同源的α亚基和相同的β亚基组成的异二聚体转录因子,目前已发现-1、-2、-3三个成员。
-1是一种随细胞内氧浓度变化而调节基因表达的转录激活因子,由氧调节亚单位-α和结构亚单位-β也称作组成。
两个单位都是基本螺旋一环一螺线-转录因子家族中的成员,并具有--结构域。
α亚单位的结构域包括一个独特的氧依赖降解结构域,这是正常氧分压下-1降解所必需的结构,两个反式激活结构域,,主要参与转录激活作用,一个末端活性域和末端活性域,并且和还有一部分重叠;β亚单位只包含一个和一个在α家族中还包括-2α和-3α。
-2α和-3α分别与-1β组成-2和-3,其中-2α,包含结构域、结构域、及入核信号[1],是-2活性的功能亚单位,受氧水平的调节。
-1α有很多变异体,它们的组成相似但是包含结构域的种类数量存在差异。
-3α发现了6个剪接变异体。
2-α的激活机制缺氧是激活的主要信号,但是一些金属离子,例如2+、2+、2+也能通过螯合作用激活,除此之外,的激活信号还包括一些生长因子、细胞因子等。
21-1α的降解在正常氧状态下,-1α的半衰期22-1α转录的激活现已知调控-1活性的信号途径主要为两条-3依赖的-蛋白稳定性调控和介导的-1反式激活功能调控[3]在-1α的转录激活中,起重要作用。
高度保守的结构域通过其富含亮氨酸的区域与共刺激分子300也称作的1结构相互作用达到激活作用。
酪氨酸激酶22是2基因的产物,具有促进肿瘤生成的作用,2基因的表达受-1调控。
肿瘤能量代谢的研究进展

肿瘤能量代谢的研究进展王润泽;李伟民;李建华;徐冶【摘要】细胞通过能量代谢维持生命,正常细胞通过线粒体氧化磷酸化产生ATP提供能量,而肿瘤细胞则表现出了不同的能量代谢方式.通过研究肿瘤代谢方式及特点,针对肿瘤能量代谢进行靶向治疗,为肿瘤治疗提供了新的途径.【期刊名称】《吉林医药学院学报》【年(卷),期】2017(038)003【总页数】4页(P223-226)【关键词】能量代谢;肿瘤;糖酵解【作者】王润泽;李伟民;李建华;徐冶【作者单位】吉林医药学院基础医学院,吉林吉林 132013;吉林医药学院基础医学院,吉林吉林 132013;吉林医药学院基础医学院,吉林吉林 132013;吉林医药学院基础医学院,吉林吉林 132013【正文语种】中文【中图分类】R730.2新陈代谢是机体生命活动的基本特征,包括物质代谢和能量代谢。
有机体在物质代谢过程中能量的释放、转换和利用过程称为能量代谢。
正常细胞的能量代谢方式是在有氧的情况下利用线粒体的氧化磷酸化功能,缺氧情况下进行糖酵解供能。
而肿瘤细胞即使在氧充足的情况下也进行糖酵解,并且产生大量的乳酸,即“Warburg效应”,这个理论是由德国的生化和生理学家Warburg提出来的[1]。
这种代谢方式效率十分低,但是在肿瘤细胞中普遍存在,糖酵解不仅为肿瘤提供ATP,还改变肿瘤周围环境,为肿瘤的转移和侵袭提供了有利条件[2]。
1.1 糖代谢哺乳动物细胞能量供给来源于糖、蛋白质和脂肪三大营养素的代谢,主要来自于糖代谢。
其中糖代谢可通过线粒体氧化磷酸化和糖酵解两种方式供应能量ATP[3]。
葡萄糖的有氧氧化为正常细胞的增殖提供能量,而恶性肿瘤细胞增殖所需要的能量主要是依靠细胞的糖酵解获得。
近年来发现糖酵解途径的增强普遍存在于恶性肿瘤细胞。
在肿瘤细胞中,随着葡萄糖摄入增加,通过糖酵解途径产生大量代谢中间产物,以满足肿瘤细胞增殖对能量的需求。
由于肿瘤快速生长的特性,肿瘤内部的细胞由于远离血管而总是处于缺氧的状态,糖酵解可以通过提高肿瘤对缺氧和缺血的耐受性,避免由氧化磷酸化抑制引起的细胞凋亡。
低氧诱导因子1α的结构、调控及其在肿瘤形成过程中的作用

成 、 细胞 生成 、 红 肿瘤 细 胞增 殖 、 谢 、 袭 和转 移等 方 面 的重要 作 用 , 代 侵 已使 它被 公认 为 是肿 瘤 生长 的促 进 因 子 , 其 而
C ia .l ia Me iie De at n S v n-e r S s m ,C ia Me ia U ie i, La nn rvn e h na g hn;2 i c dcn p r t ee yas yt ) hn dc nv r t Cn l me e l s y io ig Po ic,S e yn
[ y wo d ]H F — e T moie ei;Sr eu e Mo uain Ke r s I — t u r n s l ; g s t t r; d l o u t
【 要】 氧诱 导 因子 ( yo i_n uil fcosHI 是 细胞 氧 气 信 号 传 导通 路 的重 要介 质 , HI- o 是 目前 被 认 摘 低 h p xa id cbe atr, F) 而 Fl t 为 最重 要且 研究 得 最透 彻 的一 种 。 于肿瘤 细胞 的代谢 比正 常细 胞更 加 旺盛 , 由 其对 氧 气及 其他 营 养物 质 的需 求也 更
i c n iee h s mp r n d te mott oo g tde n .B c u e temea oim ft mo el emo evg r s o sd rd t emoti o a ta h s h ru h su id o e e a s h tb ls o t n u rc l a r io- sr O Sta oma el,i d ma d o r x g n a d oh rn t e t. h sh p xa i o eo eman fau e fs l u U h n r lc ls t e n sfrmoeo y e n t e ur n s T u y o i s n ft i e trso oi t — n i h d
低氧诱导因子-1在高住低训中表达的研究进展

K yw o d :h pxa—id cbefco e rs y i o n u il a tr一1 ih—l ig o —t iig u cin ;hs i n ;lw r nn ;fn t v a o
中图分类号 : 88 1 G0 .
文献标识码 : A
文章编号 : 0 0 5 (09 0 04 2 1 5— 26 20 )8— 02— 0
HL 是美 国学者莱文 ( ei ) 2 io L v e 在 0世纪 9 代初提 出 n 0年 的, 是在传统高原 训练基础上发展起来 的一种有效的提高运动
员耐力水平的科学方法。通常是指 运动员居住在 相当于 20 50 的一种新的科学方法 。其原理是让运 动员在高原或人 工低
胞生成素 ( P 及 一氧化氮合酶 ( O ) E O) N S 等靶基 因的转录而成 m左右高度 的缺氧环境中 , 而训练则在正常氧浓度环境下进行 以充分调动机体适应高度缺氧而挖掘本身 的机 中, 通过低氧应激 ,I 一 转 录激活机制诱 导葡萄糖转运载体 氧环境中居住 , HF 1 在平原或较低 的高度3 ̄l :t 练又可达到相当大的训练量 ( L T 的表达及葡 萄糖利用 率增 加 ,P GU ) E O表达增 多 , 而提 能潜力 ; 从 高血红蛋 白运输 氧的能力… 。H F一1自身活性调节是低氧应 和强度。这种方法还可以解决常用的传统高原训练中的不足 , I
答基 因表达调控 的中心环 节。低 氧训练在机体分子 水平 的结 果是导致 HF 1 I 一 亚基 m N R A上调增加 , 而作 为后 反应 的结 从
果, 使肌红蛋 白、 E F和糖酵解酶 mR A水平增加 , 肉线粒 VG N 肌 体和毛细血管 的密度增 加 , 利于运 动成绩 的提高 J 有 。本文 就低 氧诱导 因子 一1在高住低训 中的表达作一综述 , 旨在说明 低氧诱 导因子 一 1在高住低训 中的重要作用 , 从而为运动员利 用高住低训提高运动成绩提供理论参考依据。 1 低氧诱导 因子 一 l及高住低训
低氧诱导因子hif-1α 适应 能量代谢 文献解读

低氧诱导因子HIF-1α在人体内是一种重要的生物活性蛋白质,它在缺氧情况下对能量代谢起着至关重要的调控作用。
本文将围绕HIF-1α在能量代谢中的作用进行文献解读,以期全面了解该蛋白对人体功能的影响。
1. HIF-1α的基本介绍HIF-1α是一种由基因HIF1A编码的蛋白质,其编码基因位于人类染色体14q23.2-q24.1上,由该基因转录、翻译得到的蛋白质主要分布在细胞的细胞质内。
HIF-1α的主要功能是在细胞缺氧时,通过调节多种基因的表达,以适应低氧环境。
其中,其对能量代谢的调控作用备受研究者的关注。
2. HIF-1α与能量代谢研究表明,HIF-1α在细胞缺氧时能够促进糖酵解途径的进行,增加葡萄糖转化为丙酮酸和乳酸的速率,从而增加ATP的产生。
HIF-1α还可以抑制线粒体的功能,减少线粒体呼吸链的活性,从而减少氧化磷酸化的过程,进一步节约细胞内氧气的利用。
通过这些方式,HIF-1α能够在细胞缺氧时维持细胞内的能量供应,保障细胞正常的生理功能。
3. HIF-1α与疾病的关系近年来的研究发现,HIF-1α在多种疾病的发生发展中发挥着重要的作用。
在肿瘤的发生过程中,肿瘤组织由于生长速度快、造血不足等原因,常常处于低氧状态,HIF-1α的异常活化对肿瘤的代谢、侵袭和转移等过程起着重要的调节作用。
另外,在心脏缺血再灌注损伤、糖尿病等多种疾病中,HIF-1α的异常表达也与疾病的发生发展密切相关。
4. HIF-1α的研究进展目前,针对HIF-1α的研究已经取得了许多重要的进展。
通过基因工程技术,研究者可以对HIF-1α基因进行敲除或过表达,从而揭示了该基因在细胞能量代谢中的重要作用。
另外,一些研究还发现了HIF-1α的调控机制,比如HIF-1α的翻译后修饰、HIF-1α与其他蛋白的相互作用等,这为进一步揭示HIF-1α的功能机制打下了重要的基础。
5. 未来的研究方向虽然HIF-1α在能量代谢中的作用已经得到了一定程度的解析,但其在细胞生理和病理过程中的复杂调控机制仍有待进一步研究。
缺氧诱导因子-1在卵巢癌中的研究进展

为 H F1 、 I一o、 I一o, I- I一o H F2 H F3 H FB也 包 含 3条 次 级 链 , t t t 为
A N 1 A N 2和 A N 3 它 们 均 由不 同 的 基 因位 点 来 编 R T 、R T RT,
码 J 。
13 HI - 人 体 组 织 中 的 表 达 . F1在
活化区 ( —A 和 C末 端 活 化 区 ( .A [ 。研 究 表 明 N T D) 一 CT D)2 3 H F系统所 包含 的 o、 I t p两 个亚 单位 , 仅有 不 同 的基 因片 不
段, 而且具有不 同的空间结构 。H F Ia包含 3条 次级链 , 别 分
因产物的表达 , 维持肿瘤细胞 的能量代谢 、 对 血管生成 、 无氧
t gt fa a yi) a e o p m c 信号途径及 MA K( ioe ci t r— r r n P m ignat a dpo t ve
tnkns) e i e 途径都能增强 H F1的转 录活性 。常氧状态 下 , i a I.
H1一 由 S m na等 在 19 F1是 e ez 9 2年
作 “ s r eua r 。有 研 究 显 示 , F 1 Mat glt ” eR o HI一B在 任 何 状 态 下 均
研 究红细胞生成 素( P 基 因表达 时发现 的介导 哺乳 动物 E O)
表达 , H F1 而 I. 只在氧浓度低 于 6 %时才有 表达 , 氧浓 度大 于 3 %状态下 HI一o的半衰期为 1~ n 。因此 , 0 F1 t 2mi 氧对 H F1活性的调节 主要通 过 0 亚基 完 成。非缺 氧途 径介 导 I. . /
染色体 1q 1 4区和 12 42 — 2 q 1区。其 中 B亚基 为基 础表 达蛋 白, o亚基 为氧调节蛋 白, 而t 它包 括 2个转 录活性区 , . N 末端
低氧诱导因子-1的研究进展

HF1 I 是由 和 B两个亚基所组成的异二聚体, 一 其 和 B
亚基均 为 b L A ( H I S 即螺 旋环螺旋 ,a c exLo- ex  ̄ bs l— op H l— iH i i
2 H F1 . I 与促红细胞生成素( P ) 1 - E O
血液 的载氧 能力很 大程度上 取决 于血红 细胞 的数 量 和质
互独 立的反式激活结构域(A ,a8 tndm i) A ( T D tna l a : D N 氨 r co o n T 基酸 5 155和 T D C 氨基 酸 7686 。在这两个 T D之 3—7 ) A — ( 8 2) A
碱性 区域 和 H H区域介 导与 D A的结合 ,其 中 1 1 6号氨基 L N -6
体 F卜1 c 基因, 糖酵解酶 Ⅱ型( O ) t S血红素氧化酶( O 1基 N H 一) 因, 内皮索一 ( T 1基因, 1E 一 ) 环氧合酶( o ) c x 基因, 血栓素合酶 (X ) T S 基因、 肾上腺素能受体基因、 l o B肾上腺髓质素基因、 t 胰
Pf R T h S 转录因子家族的成员。 eA N/ t i A k m)
1 H F l . I—a亚基的结构特点 1 HF 1 基的分子 量约 为 10D 其 分子结 构从 N 端开 I一 亚 2k , ’ 始依 次排列着 三个结构域 : 碱性区域 、 L H H和 P S A 结构域 , 者 三 共同构成转 录 因子 D A结合 域 ( N -i i dm i,B ) N D A b d 异 oa D D 。 nn n
岛素样生长因子结合蛋 白 1I F P) 因 、 (G B 1 基 转铁蛋 白基 因、 尿激
低氧诱导因子-1在低氧性肺动脉高压中的研究进展

基金项目:辽宁省自然科学基金(2022 MS 325)通信作者:丁彦春,E mail:yanchunding@aliyun.com·综述·低氧诱导因子 1在低氧性肺动脉高压中的研究进展金鸿锦 卢义 丁彦春(大连医科大学附属第二医院,辽宁大连116021)【摘要】低氧性肺动脉高压(HPH)是由缺氧引起的肺动脉压力进行性升高的肺血管疾病。
低氧诱导因子 1(HIF 1)是维持细胞氧稳态的核心转录因子,可促进细胞糖代谢模式的转变、调节细胞膜表面离子通道活性、调节肺血管收缩及舒张因子活性等,在HPH的发生和发展中具有重要作用。
现对HIF 1及其下游信号分子在HPH发生和发展中的作用机制进行综述,有助于为HPH的治疗提供新的理论依据和治疗靶点。
【关键词】低氧性肺动脉高压;低氧诱导因子 1;低氧性肺血管重塑【DOI】10 16806/j.cnki.issn.1004 3934 2024 01 010HypoxiaInducibleFactor 1inHypoxicPulmonaryHypertensionJINHongjin,LUYi,DINGYanchun(TheSecondHospitalofDalianMedicalUniversity,Dalian116021,Liaoning,China)【Abstract】Hypoxicpulmonaryhypertension(HPH)isapulmonaryvasculardiseaseresultedfromprogressiveincreaseinpulmonaryarterialpressurecausedbyhypoxia.Hypoxiainduciblefactor 1(HIF 1)isacoretranscriptionfactorwhichmaintainscelloxygenhomeostasis,promotesthetransformationofglucosemetabolismpatterns,regulatestheactivityoftheionchannelonthemembranesurfaceandthepulmonaryvasoconstrictionandrelaxationfactors,whichplaysanimportantroleintheoccurrenceanddevelopmentofHPH.ThisreviewaimstoinvestigatethemechanismofHIF 1anditsdownstreamsignalingmoleculesintheoccurrenceanddevelopmentofHPH,whichwillprovidenewtheoreticalbasisandtherapeutictargetforthetreatmentofHPH.【Keywords】Hypoxicpulmonaryhypertension;Hypoxiainduciblefactor 1;Hypoxicpulmonaryvascularremodeling 低氧性肺动脉高压(hypoxicpulmonaryhypertension,HPH)是由缺氧引起的肺动脉压力进行性升高的肺血管疾病。
低氧诱导因子HIF-1
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低氧诱导因子HIF-1氧气是人体生命的第一要素,内环境氧浓度的平衡是机体进行正常有氧代谢的必要条件。
当暴露于厌氧或低氧环境中,机体会立即产生应激或耐氧适应性反应,如心率加快、头晕乏力、昏厥甚至窒息死亡等。
通常将“低氧”定义为环境供氧不足、氧利用障碍或耗氧量过大等因素引起的内环境氧平衡紊乱,其对机体的损伤是多方位的。
临床研究发现,低氧是多种急慢性疾病中常见的一个重要病理过程,既可以是诱因又可作为结果而进一步加剧病情恶化。
低氧诱导因子-1(Hypoxia-inducible factor-1,HIF-1)作为高度特异性的核转录因子,在细胞感知和适应内环境氧分压变化的过程中发挥着重要作用[1]。
活性HIF-1在结构上由α和β两个亚基组成,HIF-1α是关键调节和活性亚基,其稳定性和活性均受内环境氧浓度的调控。
在常氧条件下,HIF-1α的转录激活功能被氧依赖型羟化酶FIH-1抑制;另外,在脯氨酸羟化酶PHDs和肿瘤抑制因子pVHL等协同作用下经泛素-蛋白酶体途径降解;但当机体或细胞面对低氧刺激时,由于FIH-1和PHDs等氧依赖型酶的活性被抑制而导致胞内HIF-1α累积,HIF-1α转位入核与HIF-1β聚合形成异源二聚体,继而与下游靶基因的低氧反应元件(Hypoxia response element,HRE)结合并调控相关基因的转录表达,从而维持氧稳态,使细胞避免或适应低氧环境。
此外,HIF-1α基因的转录水平以及蛋白的活性和稳定性受到多种因素的调控,如反义转录因子aHIF-1α对HIF-1α基因的转录具有负调控作用[2];部分生长因子、炎症因子或某些癌基因也可通过PI3K/Akt和ERK1/2等信号通路参与调控HIF-1α蛋白的稳定性[3]。
大量研究表明,HIF-1α具有促进血管生成、调节内环境pH、诱导细胞自噬和程序性细胞死亡以及促进间充质干细胞的自我更新和分化等生理作用,且其往往在多种原发或继发性恶性肿瘤组织中的表达水平异常升高,已然成为多种疾病临床诊断、靶向治疗和预后评估的一个生物标识和潜在靶点[4-6]。
HIF-1α和TGF-β1在乳腺癌中作用的研究进展
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功能广泛的具有生物学活性的多肽类细胞因子,主要由 112
胞对低氧环境的适应能力,从而诱导细胞发生低氧反应,启
的二聚体,包括 TGF-β1 ~ TGF-β55 种异构体。 其中,TGF-
导表达并不断累积,通过调节下游基因的表达,进而增强细
动靶基因进行转录。 而 HIF-1β 分子是组成型,大小为 91 ~
态下上皮细胞失去上皮特性转化为间质细胞特点的一种生
mourprogression[ J] .Nat Rev Cancer,2002;2 (6) :54,442.
表达明显上调,可能通过使体内正性生长因子与负性生长因
iblefactor - 1
物学现象。 2002 年首次在乳腺癌外周血中研究发现 TGFβ1
重要的参考价值,有望在未来成为乳腺癌诊断及评估的一个重要指标。
关键词:HIF-1α;TGF-β1;EMT;乳腺癌
上皮间质转化在多种癌前病变中存在,可以通过影响上
皮细胞之间的黏附能力,导致其黏附能力下降,进而对于细
胞运动与迁移能力产生影响,同时也会使细胞形态在一定程
度上发生改变。 当前,全世界女性乳腺癌发病率、患病率及
by cellular O2 tension [ J] . Proc Natl Acad Sci USA, 1995, 92
[4] Wang GL,Semenza GL.Purification and characterization
of hypoxia-inducible factor 1[ J] . J Biol Chem,1995,270( 3) :
重要恶性肿瘤之一。 目前,乳腺癌的病因与发病机制并未十分明确。 大多研究报告,生物机体内肿瘤的形成及恶化转移与人体
HER2与HIF1α

HER2与HIF1α简介HER2(人类表皮生长因子受体2)和HIF1α(低氧诱导因子1α)是两个在癌症研究中引起广泛关注的蛋白质。
HER2是一种膜结合型受体酪氨酸激酶,在正常细胞中参与调控细胞增殖和存活。
然而,在某些类型的肿瘤中,HER2被异常激活,导致细胞过度增殖和转移。
HIF1α则是低氧条件下的关键转录因子,其活化可以促进肿瘤细胞适应缺氧环境并增加血管生成。
HER2与癌症HER2是乳腺癌中最常见的致病基因之一。
它被称为“癌症的驱动基因”,因为HER2过度表达可以刺激细胞增殖和生存信号通路的活化。
HER2阳性乳腺癌患者通常具有更高的肿瘤侵袭性和预后较差的风险。
因此,HER2成为抗癌治疗的重要靶点。
一种针对HER2过度表达的治疗策略是使用HER2抗体。
抗体可以结合HER2,在细胞表面形成抗原-抗体复合物,并抑制细胞增殖信号。
目前,临床上使用的HER2抗体药物包括Trastuzumab和Pertuzumab。
这些药物已被证明可以显著延长HER2阳性乳腺癌患者的生存期。
HIF1α与癌症缺氧是肿瘤发展过程中常见的一种情况。
缺氧条件下,肿瘤细胞会启动一系列的适应性机制来维持生存能力,并促进肿瘤的发展。
HIF1α作为低氧条件下的主要转录因子,被认为是促进肿瘤进展的关键因素之一。
HIF1α的活化与肿瘤细胞的增殖、转移和血管生成密切相关。
HIF1α可以通过促进乳酸产生来提供额外的能量供应,同时也可以刺激血管生成来增加肿瘤的血液供应。
此外,HIF1α还参与调节多种与肿瘤相关的基因表达,如VEGF(血管内皮生长因子)、Glut1(葡萄糖转运蛋白1)等。
针对HIF1α的抗癌治疗策略主要包括阻断其活化和抑制其功能。
研究人员正在开发针对HIF1α的小分子抑制剂和抗体药物,并取得了一定的进展。
HER2与HIF1α的相互作用近年来,研究表明HER2与HIF1α之间存在相互作用。
一方面,HER2可以通过激活信号通路影响HIF1α的表达和活化。
低氧诱导因子—1与恶性肿瘤的研究进展

含有 b L - S H HP 结构域 , A 其中 b H 结构属于真核生 的凋亡前成员 , HH 它的启动子中包含 HF1 I- 反应元件 。 I-t c ; 物转录因子超家族 , P S为 b L 而 A H H家族 的子类所 在慢性缺氧及强制表达 HFl 时均可使 N 表达
共有 。HFl及 HFI 通 过 自身 的 H H及 P S结 活跃 , I-e t I- ̄ L A 从而 启动 Bl c2诱导细胞 凋亡 的过程 -
节序列。在人类肿 瘤细胞 中, 可以发现这些基 因产 应 。 物大大增加, I 1 HF 在其中的功能可分为以下几种 : 2 - m]l F a在恶性肿瘤中的表达 -
m 等 利用 ⅧFI 单克隆抗体 检测了 HF ①促进糖酵解 : I I HF 可促使 1 种不 同的糖酵解酶 - 3 - n I - 类产生, 包括葡萄糖转运 子( I] )乳 酸脱氢酶及 1 在多 种肿 瘤 中的 表 达 , 现 9 % 的结 肠 癌 、 GX 3 、 T a 发 o 肺癌
低 氧诱 导 因子一 1与恶 性肿瘤 的研 究进展
插 菊缸 综述 王新克 审柱
( 天津压科大学病理教研室, 天津 3o7) oo o
摘要 : 肿素发 生、 发展是 一十克隆性 选择 的结果 , 癌基 因的盘 活变变直 押癌基 因的麦 活变 变, 导最 l -a的表达  ̄ l 和, 或其活性开高,后者介导细胞对低氧 的适 应性反应 , 包括刺 激新 生血 管形成和促进糖 酵解过程 , 曩垮 导最细胞在
醛缩酶 A等, 涉及该通路 的全过程。糖 酵解 的升高 及前列腺癌组织 中 HF1 I 表达升高, - 而在肿瘤附近 不仅可使 肿瘤 细胞 适 应 周 围不利 的环境 , 且 可 以 正常组织 中不能测及。乳腺癌中 , <1 而 有 / 3的原发肿
低氧诱导因子及其抑制剂研究进展

生物技术进展2019年㊀第9卷㊀第4期㊀332~340CurrentBiotechnology㊀ISSN2095 ̄2341进展评述Reviews㊀收稿日期:2019 ̄03 ̄18ꎻ接受日期:2019 ̄04 ̄24㊀作者简介:闫东科ꎬ助教ꎬ研究方向为生物化学与分子生物学ꎮE ̄mail:983069525@qq.comꎮ∗通信作者:闫东科与吕平为共同通信作者ꎮ吕平ꎬ教授ꎬ研究方向为生物技术ꎮE ̄mail:Bestman_0429@163.com低氧诱导因子及其抑制剂研究进展闫东科∗ꎬ㊀吕㊀平∗天津职业大学生物与环境工程学院食品生物技术系ꎬ天津300350摘㊀要:低氧(hypoxia)是生物体内常见的生理和病理现象ꎬ也是常见的实体肿瘤微环境ꎮ人和其他哺乳动物体内存在一系列应对缺氧胁迫的调节机制ꎬ而低氧诱导因子(hypoxia ̄induciblefactorsꎬHIFs)是这些调节机制中的关键调控因子ꎬ是一类参与细胞缺氧应答反应的转录因子家族ꎮ大量研究表明ꎬHIFs与生物体的生长㊁发育㊁血管生成㊁红细胞生成㊁细胞代谢和自噬以及肿瘤的发生㊁发展㊁转移侵袭㊁放化疗抗性和癌症患者的不良预后等密切相关ꎮ因此ꎬ进一步加强HIFs及其抑制剂的相关研究对于肿瘤的认识与治疗具有重要意义ꎮ从HIFs的蛋白质结构㊁稳定性调控㊁转录激活调控及其靶向抑制剂的研究进展等方面进行综述ꎬ以期为靶向HIFs的肿瘤治疗提供新线索ꎬ为新型HIFs抑制剂的研究与开发提供参考ꎮ关键词:低氧诱导因子ꎻ稳定性调控ꎻ转录活性ꎻ靶向抑制剂ꎻ肿瘤治疗DOI:10.19586/j.2095 ̄2341.2019.0027ProgressonHypoxia ̄inducibleFactoranditsInhibitorsYANDongke∗ꎬLYUPing∗DepartmentofFoodBiotechnologyꎬSchoolofBiologicalandEnvironmentalEngineeringꎬTianjinVocationalInstituteꎬTianjin300350ꎬChinaAbstract:Hypoxiaisacommonphysiologicalandpathologicalphenomenoninvivoandacommonmicroenvironmentofsolidtumors.Thereareaseriesofregulationmechanismsinhumansandothermammalstodealwithhypoxiastress.Andhypoxia ̄induciblefactors(HIFs)arethekeyregulatorsoftheseregulationmechanismsꎬandtheyareafamilyoftranscriptionfactorsinvolvedincellularhypoxiaresponse.ExtensivestudieshaveshownthatHIFsarecloselyrelatedtogrowthanddevelopmentoforganismsꎬangiogenesisꎬerythropoiesisꎬcellmetabolismandautophagyꎬandoccurrenceꎬdevelopmentꎬmetastasisandinvasionꎬradiochemotherapyresistanceoftumoraswellaspoorprognosisofcancerpatients.ThereforeꎬitisofgreatsignificancetofurtherstrengthentheresearchonHIFsandtheirinhibitorsfortheunderstandingandtreatmentoftumors.TheprogressofproteinstructureꎬstabilityregulationꎬtranscriptionalactivationregulationandtargetedinhibitorsofHIFswasreviewedꎬinordertoprovidenewinsightsinHIFstargetedtumortherapyandofferreferencesfortheresearchanddevelopmentofnewHIFsinhibitors.Keywords:HIFsꎻstabilityregulationꎻtranscriptionalactivityꎻtargetedinhibitorꎻtumortherapy㊀㊀低氧是生物体内常见的生理和病理现象ꎬ常发生于早期胚胎发育㊁肿瘤形成㊁急慢性血管疾病和慢性阻塞性肺病等ꎮ为了应对低氧胁迫ꎬ生物体内存在一系列调节机制ꎬ而在这些调节途径中ꎬHIFs是最主要的一类介导低氧适应性应答反应的转录因子家族ꎮHIFs调控的靶基因产物涉及红细胞生成㊁血管生成以及细胞的增殖㊁代谢和凋亡等多个方面ꎬ因而在人和哺乳动物的低氧适应生理性应答反应中发挥着重要作用ꎻ而HIFs在机体的低氧适应病理性应答反应中的作用更值得关注ꎬ如HIFs可调控肿瘤细胞的代谢重编程㊁抑制肿瘤细胞凋亡㊁诱导自噬促进肿瘤细胞存活ꎬ并与新生血管生成㊁上皮间质转化(epithelial ̄mesenchymaltransitionꎬEMT)㊁转移侵袭㊁放化疗抗性㊁pH稳态㊁自分泌㊁肿瘤干细胞(tumorstemcellꎬCSC)维持和肿瘤预后等密切相关ꎬ从而起到促进肿瘤发生发展的作用[1~4]ꎮ因此ꎬ加强HIFs生物学功能与特性及其. All Rights Reserved.作用调控机制的研究ꎬ是开发新型抗癌药物的关键ꎮ本文将从HIFs的蛋白质结构㊁稳定性调控㊁转录激活调控及其靶向抑制剂的研究进展等方面进行综述ꎬ以期为靶向HIFs的肿瘤治疗提供新线索ꎬ为新型HIFs抑制剂的研究与开发提供参考ꎮ1㊀HIFs蛋白质结构人和其他哺乳动物体内共存在3种HIFs家族成员ꎬ即HIF ̄1㊁HIF ̄2和HIF ̄3ꎬ三者均为由受氧气浓度调控的HIF ̄α亚基(HIF ̄1α㊁HIF ̄2α和HIF ̄3α)和组成型表达的HIF ̄1β亚基(又称芳香烃受体核转运蛋白ꎬarylhydrocarbonreceptornucleartranslocatorꎬARNT)组成的异源二聚体ꎮ3种HIF ̄α亚基(HIF ̄αs)和HIF ̄1β亚基的N端均含有碱性螺旋-环-螺旋(basichelix ̄loop ̄helixꎬbHLH)结构域㊁PAS(Per/ARNT/Sim) ̄A和PAS ̄B结构域(图1)ꎬ其中ꎬbHLH ̄PAS结构域介导HIFs的异源二聚化以及HIFs与靶基因增强子或启动子上的低氧应答元件(hypoxiaresponseele ̄mentꎬHREꎬ5ᶄ ̄A/GCGTG ̄3ᶄ)结合[5]ꎮHIF ̄1α和HIF ̄2α亚基的C端含有氧依赖的降解结构域(oxygen ̄dependentdegradationdomainꎬODD)和2个转录激活结构域N ̄TAD和C ̄TAD(N/C ̄terminalactivationdomain)ꎮHIF ̄3α亚基的C端含有ODD结构域和N ̄TAD结构域ꎬ但缺少C ̄TAD结构域(图1)ꎮODD结构域中的LAPYIXMD基序在HIF ̄αs与肿瘤抑制蛋白VHL(vonHippel ̄LindautumorsuppressorproteinꎬpVHL)的结合中起关键作用[6]ꎻN ̄TAD结构域在HIF ̄αs的靶基因调控特异性中起主导作用ꎻC ̄TAD结构域具有富集辅助因子p300/CBP形成转录激活复合物的作用[7]ꎮ此外ꎬHIF ̄1α和HIF ̄2α亚基的C端存在双向核定位信号(nuclearlocalizationsignalꎬNLS)ꎬ以确保二者定位于细胞核[8]ꎻHIF ̄3α亚基的C端存在2段功能上冗余的NLSꎬ且第一段NLS的核定位功能强于第二段[9]ꎮHIF ̄3α亚基由于选择性剪接㊁转录启动子不同和翻译起始密码子位点不同等原因ꎬ存在多种剪接变异体[10]ꎮ如人源HIF ̄3α(hHIF ̄3α)有8种剪接变异体[11]ꎬ其中全长的hHIF ̄3α1含有亮氨酸拉链(leucinezipperꎬLZIP)基序和存在LA ̄PYIXMD基序的ODD结构域(图1)ꎻ而hHIF ̄3α4剪接体仅含有bHLH ̄PAS结构域(图1)ꎬ且对HIF ̄1α和HIF ̄2α具有负调控作用[12]ꎮHIFs除了通过与靶基因上的HRE直接结合激活转录ꎬ还可通过干扰其他转录因子(如Myc㊁p53和Notch等)的活性间接影响基因表达[13]ꎮ如HIF ̄1和HIF ̄2竞争性地与Notch受体的胞内结构域(NotchintracellulardomainꎬNICD)相互作用ꎬ当HIF ̄2α与NICD相互作用时ꎬ将抑制Notch信号通路的活性ꎬ而低氧对胶质瘤干细胞(gliomastemcellsꎬGSC)的增殖和自我更新等的促进作用是通过激活Notch信号通路实现的ꎻ与此相反ꎬ当HIF ̄1α与NICD相互作用时ꎬ将活化Notch信号通路ꎬ增加低氧时Notch靶基因的表达ꎬ促进GSC的增殖[14]ꎮ2㊀HIFs的稳定性调控2.1㊀氧依赖稳定性调控机制HIFs作为细胞内氧动态平衡的感受器ꎬHIF ̄αs亚基的稳定性受到氧浓度的严格监控ꎬ氧浓度图1㊀HIF ̄αs㊁HIF ̄1β㊁hHIF ̄3α1和hHIF ̄3α4的结构Fig.1㊀StructuresofHIF ̄αsꎬHIF ̄1βꎬhHIF ̄3α1andhHIF ̄3α4.注:ID:抑制结构域(inhibitotydomain)ꎮ333闫东科ꎬ等:低氧诱导因子及其抑制剂研究进展. All Rights Reserved.的变化可引起HIF ̄αs亚基蛋白质水平的改变ꎬ这种氧依赖的稳定性调控机制以O2/PHDs/pVHL降解途径较为经典ꎮ常氧时ꎬ由pVHL㊁延伸蛋白ElonginB和ElonginC等组成的E3泛素连接酶复合物催化HIF ̄1/2α亚基中的Lys残基发生多聚泛素化修饰ꎬ而后由26S蛋白酶体降解ꎬ其中pVHL直接与HIF ̄1/2α亚基结合ꎮ在多聚泛素化修饰发生前ꎬHIF ̄1/2α亚基ODD结构域中特异的Pro残基[15] (如HIF ̄1α中的P402和P564残基ꎬHIF ̄2α中的P405和P531残基)被以O2㊁α ̄酮戊二酸为底物ꎬ以Fe2+㊁抗坏血酸盐为辅酶的脯氨酸羟化酶(prolylhydroxylasedomainproteinsꎬPHDs)羟基化ꎮ羟基化修饰作用促进HIF ̄1/2α亚基与pVHL的结合ꎮ该降解途径称为O2/PHDs/pVHL途径(图2)ꎮPHD是该途径的关键限速酶ꎬ在哺乳动物体内存在4种PHDꎬ即PHD1~4ꎬ其中PHD2主要负责调节HIF ̄1α的降解ꎬPHD1和PHD3主要负责调节HIF ̄2α的降解[16]ꎮDuan[6]在对脊椎动物中HIF ̄αs亚基的氨基酸序列同源性进行分析时发现ꎬhHIF ̄3α1中的P406/P492/L502残基和斑马鱼HIF ̄3α1中的P393/P493/L503残基均对应于hHIF ̄1α亚基中被PHD羟基化的氨基酸位点和与pVHL结合的氨基酸位点ꎮ上述氨基酸残基突变后可提高相应HIF ̄3α1蛋白的稳定性ꎮ推测全长HIF ̄3α亚基及包含有ODD结构域的HIF ̄3α剪接体也可经O2/PHDs/pVHL途径降解ꎮ图2㊀HIF ̄α亚基的O2/PHDs/pVHL降解途径Fig.2㊀DegradationpathwayofHIF ̄αbyO2/PHDs/pVHL.㊀㊀低氧时ꎬ细胞内琥珀酸㊁延胡索酸㊁活性氧(reactiveoxygenspeciesꎬROS)等的积累以及CoCl2㊁二甲基乙二酰基甘氨酸(dimethyloxalylg ̄lycineꎬDMOG)㊁铁离子螯合剂等化学物质均可抑制PHD的羟基化活性ꎬ从而阻断O2/PHDs/pVHL降解途径ꎬ使HIFs得以稳定ꎮ其中ꎬDMOG为α ̄酮戊二酸的结构类似物ꎬ是PHD的竞争性抑制剂[17]ꎻ而PHD的催化中心含有Fe2+ꎬ所以铁离子螯合剂也可抑制其活性ꎮ2.2㊀非氧依赖稳定性调控机制近年来的研究表明ꎬHIF ̄α亚基的稳定性除受上述经典氧依赖降解途径的调控外ꎬ还受到非氧依赖机制的调控ꎮHIF ̄αs亚基的非氧依赖稳定性调控机制以分子伴侣介导的自噬(chaperone ̄mediatedautoph ̄agyꎬCMA)使HIF ̄1α亚基在溶酶体中被降解为代表ꎮCMA是一种选择性自噬ꎬ负责降解胞质中近30%的因氧化损伤的可溶性蛋白质ꎬ这些蛋白质均含有KFERQ样五肽基序[18]ꎮ在CMA介导的溶酶体降解HIF ̄1α亚基的途径中ꎬ分子伴侣HSPA8/HSC70通过识别HIF ̄1α中的KFERQ样基序与其结合ꎬ在使HIF ̄1α亚基肽链伸展后将其转运至CMA受体-溶酶体相关膜蛋白2A(lysoso ̄mal ̄associatedmembraneprotein2AꎬLAMP2A)处ꎬ433生物技术进展CurrentBiotechnology. All Rights Reserved.LAMP2A介导HIF ̄1α亚基转位进入溶酶体腔ꎬ最终被溶酶体中的酸性蛋白酶系降解[19](图3)ꎮHIF ̄1α亚基的这种稳定性调控机制是非氧依赖的ꎬ其中组成型热休克蛋白70(heatshockcognate70ꎬHSC70)和LAMP2A是该机制中的核心组分ꎮ当利用质子泵抑制剂巴伐洛霉素抑制溶酶体膜上的质子泵V ̄ATPase或利用弱碱化合物氯喹中和溶酶体中的酸性环境时ꎬ均可升高HIF ̄1α亚基的活性和蛋白质水平ꎮ而当过表达促进溶酶体发生的转录因子TFEB或利用强心苷类化合物地高辛激活CMA以及血清饥饿或葡萄糖饥饿时ꎬ均导致HIF ̄1α亚基的活性和蛋白质水平降低[19] (图3)ꎮ图3㊀由CMA介导的溶酶体途径降解HIF ̄1αFig.3㊀DegradationofHIF ̄1αthroughlysosomalpathwaymediatedbyCMA.CHIP/STUB1(carboxyterminusofHsp70in ̄teractingprotein)是HIF ̄1α亚基与HSC70㊁LAMP2A结合所必需的ꎮSTUB1既具有分子伴侣结合活性又具有E3泛素连接酶活性ꎬ其N端含有3个三十四肽重复(tetratricopeptiderepeatꎬTPR)结构域ꎬC端含有U ̄box结构域ꎬTPR结构域通过与胞质中的分子伴侣(HSPA8和HSPA4)相互作用使STUB1起到辅助分子伴侣活性ꎬU ̄box结构域起到的是E3泛素连接酶活性ꎬ这2种活性均为HIF ̄1α和LAMP2A结合所必需的[20]ꎮ另外ꎬ在长期低氧情况下ꎬ热休克蛋白70(heatshockprotein70ꎬHSP70)也可通过招募STUB1选择性促进HIF ̄1α亚基被多聚泛素化修饰后由蛋白酶体降解ꎬ这说明STUB1在HIF ̄1α亚基的降解机制选择(CMA介导的溶酶体降解ꎬ多聚泛素化修饰后蛋白酶体降解)中起到关键作用ꎮ值得注意的是ꎬ虽然HSP70和HSC70在氨基酸序列上具有86%的相似性[21]ꎬ但二者与HIF ̄1α相互作用时的分子机制不同ꎬ事实上ꎬHIF ̄1α的N端与HSC70的C端结合ꎬ而HIF ̄1α的C端与HSP70的N端结合[19]ꎮHIF ̄1α亚基还受到其他非氧依赖机制的调控ꎮ如Adam等[22]在乳腺癌细胞系MCF ̄7中发现一种E3泛素连接酶SIAH1/2(seven ̄in ̄absentiahomolog1/2)以不受O2水平影响的方式通过降低自身底物PHD3的稳定性ꎬ维持HIF ̄1α亚基的水平ꎬ促进乳腺癌细胞的转移和侵袭ꎮ研究人员在人脑胶质瘤细胞系U251中也观察到ꎬ低氧时SI ̄AH1使PHD3稳定性下降ꎬHIF ̄1α不被降解ꎬ从而促进胶质瘤细胞的转移㊁侵袭[23]ꎮ此外ꎬ活化的蛋白激酶C1受体RACK1㊁精脒/精胺N1 ̄乙酰转移酶SSAT1㊁钙调磷酸酶(calcineurin)㊁低氧相关因子(hypoxia ̄associatedfactorꎬHAF)㊁分化型胚胎软骨发育基因SHARP1和HSP70/CHIP(carboxyterminusofHsp70interactingprotein)也以非氧依赖的方式调节HIF ̄1α亚基的蛋白酶体降解[19]ꎮ3㊀HIFs的转录激活调控HIFs作为转录因子调控人和哺乳动物体内数百种靶基因的表达ꎬ涉及红细胞生成㊁血管生成以及细胞的代谢㊁凋亡㊁迁移和自噬等众多生理过程ꎬ而这些生理过程与肿瘤的发生发展联系紧密ꎮ如自噬在肿瘤发展中具有维持癌变的作用ꎬ而HIF ̄1α可通过诱导BNIP3表达介导肿瘤细胞的自噬过程[7]ꎻHIF ̄1α还能激活多药耐药基因MDR1(multidrugresistancegene1)的表达ꎬMDR1编码一种跨膜P ̄糖蛋白(P ̄glycoproteinꎬPgp)ꎬ从而将化疗药物泵出肿瘤细胞ꎬ使肿瘤细胞具有化疗抗性ꎻHIF ̄2α可通过减少放疗产生的ROS促进肿瘤细胞存活ꎮHIF ̄αs亚基转录活性的调控常通过羟基化㊁磷酸化㊁去乙酰化修饰等来实现ꎬ这些修饰作用通过533闫东科ꎬ等:低氧诱导因子及其抑制剂研究进展. All Rights Reserved.影响HIF ̄αs亚基对p300/CBP的亲和力㊁与HIF ̄1β亚基的二聚化㊁与pVHL的相互作用ꎬ对HIFs的转录激活功能起到正向或负向的调控作用ꎮ3.1㊀羟基化HIF ̄1α和HIF ̄2α亚基的转录活性受到一种天冬氨酸羟化酶(又称HIF ̄1α抑制因子ꎬfactor ̄inhibitingHIF ̄1αꎬFIH ̄1)的调控ꎬFIH ̄1的催化功能与PHDs类似ꎬ是O2㊁α ̄酮戊二酸和Fe2+依赖的ꎮ常氧时ꎬFIH ̄1可分别羟基化hHIF ̄1α亚基C ̄TAD结构域中的Asn803残基和hHIF ̄2α亚基C ̄TAD结构域中的Asn851残基[7](图4A)ꎬ阻断HIF ̄1/2α与p300/CBP的结合ꎬ从而抑制HIF ̄1和HIF ̄2的转录激活功能ꎻ而HIF ̄3α亚基由于缺少C ̄TAD结构域ꎬFIH ̄1无法通过羟基化修饰调节其转录活性ꎮ缺氧或有CoCl2㊁DMOG㊁铁离子螯合剂等存在时ꎬFIH ̄1活性被抑制ꎬ未发生羟基化修饰的HIF ̄1/2α和HIF ̄1β亚基成功富集p300/CBPꎬ从而激活靶基因转录(图4B)ꎮ图4㊀HIF ̄1/2的转录激活调控Fig.4㊀RegulationoftranscriptionalactivationofHIF ̄1/2.3.2㊀磷酸化促分裂原活化蛋白激酶(mitogen ̄activatedproteinkinaseꎬMAPK)途径中的有丝分裂原蛋白激酶p42/p44对HIF ̄1α亚基Thr796残基和HIF ̄2α亚基Thr844残基的磷酸化可增强C ̄TAD结构域与CBP/p300的相互作用ꎬ使HIF ̄1和HIF ̄2的转录活性明显上调ꎮp42/p44还可通过磷酸化HIF ̄1α亚基S641和S643残基抑制HIF ̄1α与出核蛋白CRM1的相互作用ꎬ促进HIF ̄1α在细胞核中的积累[24]ꎬ从而提高HIF ̄1的蛋白质水平ꎮ而酪蛋白激酶1(caseinkinase1ꎬCK1)对HIF ̄1α亚基PAS ̄B结构域中的Ser247残基的磷酸化作用可抑制HIF ̄1α与HIF ̄1β亚基的结合ꎬ减少HIF ̄1α靶基因的表达[7]ꎮ3.3㊀去乙酰化目前ꎬNAD+依赖的组蛋白去乙酰化酶Sirtuins1(Sirt1)对HIF ̄1α亚基活性的调控尚无定论[25]ꎮ起初ꎬ研究发现Sirt1特异性对HIF ̄2α亚基起到去乙酰化作用ꎬ从而增强其转录活性ꎬ而对HIF ̄1α亚基没有作用ꎮ后来ꎬ有研究表明ꎬ常氧时ꎬSirt1通过去除HIF ̄1α亚基Lys674残基上的乙酰基阻碍其对p300的富集ꎬ从而抑制HIF ̄1α亚基的转录活性[26]ꎻ低氧时ꎬ细胞内氧化还原反应产生的NAD+减少ꎬSirt1去乙酰化酶活性降低ꎬ解除了对HIF ̄1α的抑制作用ꎬ而HIF ̄1α亚基Lys674残基上的乙酰化修饰由p300/CBP相关因子(p300/CBP ̄associatedfactorꎬPCAF)负责催化ꎬPCAF具有拮抗Sirt1去乙酰化酶活性的能力[27]ꎮ再后来研究发现ꎬ肝癌细胞系(hepatocellularcar ̄cinomaꎬHCC)中的Sirt1可促进HIF ̄1α亚基的积累并对其转录活性起到正向调控作用[28]ꎮ此外ꎬ低氧环境对Sirt1活性的影响也不明确ꎮ一种机制认为ꎬ低氧时ꎬ细胞内的NAD+减少ꎬ抑制了Sirt1的活性ꎻ另一种机制认为ꎬ低氧使Sirt1的表达以一种低氧诱导因子依赖性的方式上升ꎮ3.4㊀其他调控机制除上述3种修饰作用可调控HIF ̄αs亚基转录活性外ꎬ还有其他机制也可调控HIFs的转录活633生物技术进展CurrentBiotechnology. All Rights Reserved.性ꎮ如哺乳动物Sirt家族(Sirt1~7)中的另一成员Sirt7通过分别与HIF ̄1α和HIF ̄2α亚基间的相互作用(这种相互作用被认为是直接的物理作用)ꎬ可在蛋白质水平上对二者起到非氧依赖的负调控作用[29]ꎮSirt7起到的这种使HIF ̄1α和HIF ̄2α降解的调控作用ꎬ具体机制尚不清楚ꎬ但这一过程不需要Sirt7发挥去乙酰化酶活性ꎬ也不需要O2/PHDs/pVHL降解途径中的Pro残基被羟基化修饰ꎬ同时也没有蛋白酶体和溶酶体的参与ꎮ抑癌基因p53对HIF ̄1α亚基活性也具有调控作用ꎬ主要取决于缺氧的程度和持续时间[30]ꎮ常氧时ꎬp53和HIF ̄1α的蛋白质水平较低ꎻ轻度缺氧时ꎬp53处于失活状态ꎬ而HIF ̄1α开始积累并保持在一定水平ꎬ同时激活抑癌基因p21的表达ꎬ从而引发短暂的细胞周期停滞和细胞低氧适应ꎻ中度缺氧时ꎬHIF ̄1α亚基的表达水平进一步升高ꎬ使p21持续表达引发细胞衰老ꎻ严重缺氧时ꎬp53开始逐渐积累并和HIF ̄1α竞争性地与p300结合ꎬ从而减弱HIF ̄1的转录活性ꎬ同时p53减轻抗凋亡基因(如miR ̄17 ̄92)对促凋亡基因(如BIM)的抑制作用ꎬ引发细胞凋亡ꎻ极端缺氧时ꎬp53导致HIF ̄1α经O2/PHDs/pVHL途径降解ꎬ同时促进细胞凋亡ꎮ此外ꎬCSC中的HIF ̄1α和HIF ̄2α亚基活性还受到磷脂酰肌醇3 ̄激酶信号途径(PI3K ̄AKT途径)的调节ꎮ该途径通过对HIF ̄1α亚基的正向调控激活CSC存活相关基因(如糖酵解酶类基因)ꎬ同时抑制抑癌基因p53的活性ꎬ从而促进CSC的存活ꎻ该途径还可通过激活HIF ̄2α亚基提高其下游CSC干性相关基因Oct ̄4㊁Sox ̄2等的表达水平ꎬ促进CSC的干性维持[31]ꎮ4㊀HIFs抑制剂目前ꎬ已将HIFs抑制剂作为靶向抗癌药物的重要研究内容ꎬ大多数HIFs抑制剂的靶向目标为HIF ̄1α和HIF ̄2αꎬ尚未开发出针对HIF ̄3α的特异性抑制剂[6]ꎮ4.1㊀影响HIF ̄αmRNA或HIF ̄α蛋白合成的抑制剂人工合成的反义寡脱氧核苷酸EZN ̄2968含有16个与hHIF ̄1αmRNA100%互补的核苷酸残基ꎬ其可以剂量依赖性方式下调hHIF ̄1α亚基的表达ꎬ且在浓度为5nmol/L时具有完全抑制活性ꎮEZN ̄2968与HIF ̄2αmRNA具有3个碱基对错配ꎬ故对HIF ̄2α亚基的抑制作用较弱ꎮ针对EZN ̄2968的Ⅰ期临床试验肿瘤活检结果表明ꎬEZN ̄2968降低了HIF ̄1α亚基和靶基因的mRNA水平[32]ꎮmicroRNAs(miRNAs)可通过与HIF ̄αmRNA的相互作用来调控HIF ̄α的合成ꎮ如miR ̄145[33]和miR ̄558[34]通过碱基互补配对原则分别与HIF ̄2αmRNA的3ᶄ端非编码区和5ᶄ端非编码区结合来抑制其转录翻译过程ꎮHutt等[35]在HCC细胞中发现组蛋白去乙酰化酶抑制剂(histonedeacetylasesinhibitorsꎬHDACis)伏立诺他能通过抑制HDAC9以一种eIF3G(真核翻译起始因子ꎬeukaryotictranslationinitiationfactor)依赖的翻译机制降低HIF ̄1α亚基的蛋白质水平ꎮ伏立诺他和另一种HDACis罗米地辛已被美国FDA批准用于治疗皮肤T细胞淋巴癌ꎮ喜树碱的半合成类似物拓扑替康(topotecanꎬTPT)是拓扑异构酶Ⅰ(topoisomeraseIꎬTopI)的抑制剂ꎬ可在翻译水平上抑制HIF ̄1α亚基的产生ꎬ喜树碱类药物可用于小细胞肺癌和卵巢癌等的临床治疗[36]ꎮ雌激素代谢物2 ̄甲氧基雌二醇(2 ̄Methoxyestradiolꎬ2ME2)可通过抑制HIF ̄1α和HIF ̄2α亚基的翻译合成过程以及二者的核易位过程来阻碍肿瘤生长和血管生成[37]ꎮ此外ꎬShukla等[38]发现HIF ̄1α通过上调胞苷三磷酸合成(cytidinetriphosphatesynthaseꎬCTPS1)和转酮醇酶(transketolaseꎬTKT)的表达介导胰腺癌细胞对吉西他滨的耐药性ꎬ而当利用地高辛抑制HIF ̄1α亚基的翻译过程后ꎬ胰腺癌细胞对吉西他滨的敏感性增强ꎮ4.2㊀影响HIF ̄α亚基稳定性或二聚化的抑制剂格尔德霉素(geldanamycinꎬGDM)及其合成衍生物17 ̄烯丙基氨基格尔德霉素(17 ̄allylamino ̄17 ̄demethoxygeldanamycinꎬ17 ̄AAG)可通过抑制热休克蛋白90(heat ̄shockprotein90ꎬHSP90)的活性使HIF ̄α亚基因无法正确折叠和定位ꎬ从而以不依赖pVHL的方式降解ꎮ另一种小分子HSP90抑制剂EC154相较于17 ̄AAG具有更强的733闫东科ꎬ等:低氧诱导因子及其抑制剂研究进展. All Rights Reserved.抑制HSP90活性的能力[39]ꎮHIF ̄αs和HIF ̄1β亚基中的PAS结构域参与了HIFs异源二聚体的组装ꎮ因此ꎬ靶向PAS结构域的小分子可影响HIF ̄αs与HIF ̄1β的二聚化ꎮ消毒灭菌剂吖啶黄素(acriflavine)通过结合至HIF ̄αs亚基PAS ̄B结构域和HIF ̄1β亚基PAS ̄A结构域相结合的界面处ꎬ破坏HIFs异源二聚体的稳定性[40]ꎮ环肽抑制剂(环 ̄CLLFVY)选择性作用于HIF ̄1α亚基PAS ̄B结构域ꎬ从而破坏HIF ̄1的二聚化过程ꎬ而对HIF ̄2的二聚化过程没有影响[41]ꎻ化合物PT2385选择性作用于HIF ̄2α亚基PAS ̄B结构域ꎬ而对HIF ̄1没有影响[42]ꎻ双环化合物OX3可结合至HIF ̄2α亚基PAS ̄B结构域的疏水口袋内ꎬ影响HIF ̄2的构象稳定和HRE序列结合活性ꎬ但对HIF ̄1几乎没有影响[5]ꎮ4.3㊀影响HIFs与DNA结合的抑制剂HIFs主要是通过与靶基因中的HRE序列结合发挥转录激活作用ꎮ利用染色质免疫共沉淀技术(ChIPassay)对人脑胶质瘤细胞系U251进行体外研究证实ꎬ棘霉素(echinomycin)可特异性抑制HIF ̄1与VEGF启动子区的HRE序列(5ᶄ ̄TACGTG ̄3ᶄ)结合ꎬ从而抑制缺氧诱导的VEGF的表达[43]ꎬ但棘霉素的临床试验效果欠佳ꎮ此外ꎬ靶向HRE序列的HIF ̄1抑制剂还有聚酰胺类化合物㊁多柔比星和柔红霉素[44]ꎮ4.4㊀影响HIFs转录复合物形成的抑制剂来自真菌黑毛菌属毛壳菌的毛壳菌素(chet ̄omin)可通过作用于p300CH1结构域中的锌结合位点使Zn2+外排ꎬ改变CH1结构域的构象ꎬ从而破坏p300与HIF ̄1α的相互作用[45]ꎮReece等[46]证实毛壳菌素以剂量依赖性方式使分泌型VEGF㊁乳酸脱氢酶A(lactatedehydrogenaseAꎬLDHA)和烯醇酶1(enolase1ꎬENO1)的表达下降ꎬ最终导致鼠前列腺癌异种移植细胞的生长受到明显抑制ꎮ硼替佐米的抗肿瘤活性是通过增强天冬氨酸羟化酶FIH与HIF ̄1α的结合ꎬ破坏HIF ̄1α对p300的富集作用[47]ꎮ此外ꎬ抗血小板凝集剂YC ̄1和噻唑烷酮化合物也都是通过破坏HIF ̄αs与p300间的相互作用ꎬ来抑制HIFs对靶基因的转录激活活性ꎬ而根据YC ̄1的结构设计合成出的化合物CJ ̄3k也可高效抑制HIF ̄1α的活性[48]ꎮ5㊀展望目前ꎬ大多数靶向特异性生长因子及其受体或通路的药物在应用于癌症治疗的临床试验后ꎬ最终会使癌症产生相应抗性ꎬ而实体肿瘤内部的异质性和克隆进化也可能使肿瘤获得相应抗性ꎮ相比较而言ꎬ因为HIFs参与了肿瘤细胞分化㊁肿瘤细胞代谢重编程㊁肿瘤血管生成并促进了肿瘤转移和治疗抗性ꎬ所以靶向肿瘤组织的缺氧表型被认为是治疗癌症的更为有效的方法ꎮ如前所述ꎬHIF ̄1α㊁HIF ̄2α和HIF ̄3α在蛋白质结构㊁稳定性调控和转录激活调控上均有相似之处ꎬ但三者在不同类型肿瘤的发生㊁发展中表现出功能关系上的复杂性ꎮ如Jiang等[49]发现HIF ̄1α和HIF ̄2α在宫颈癌细胞系CaSki的存活㊁凋亡和细胞周期中具有类似的作用ꎬ在单一抑制HIF ̄1α或HIF ̄2α的表达时ꎬ均可将CaSki的细胞周期阻断在G1期ꎮ再如ꎬ对膀胱癌T24细胞系的体外研究表明ꎬ长时间低氧情况下ꎬHAF表达水平升高并起到E3泛素连接酶的作用ꎬ同时激活NF ̄κB途径ꎬ使HIF ̄1α以非氧依赖的方式经多聚泛素化蛋白酶体途径降解ꎻ而此时HIF ̄2α的表达补偿性增加ꎬ从而使T24细胞加速恶化并有利于T24干细胞标志物的维持[50]ꎮ这表明HIF ̄1α和HIF ̄2α之间存在代偿性机制ꎮ另外ꎬ过表达HIF ̄1α亚基可减慢pVHL缺陷型肾细胞癌(renalcellcarcinomaꎬRCC)异种移植细胞的生长ꎬ而过表达HIF ̄2α亚基可促进RCC移植细胞的生长ꎮ这表明在一些肿瘤中ꎬHIF ̄1α和HIF ̄2α起相反作用[51]ꎮ因此ꎬ根据不同肿瘤研发出针对不同HIFs家族成员的特异性靶向抑制剂药物应是今后的一个主攻方向ꎮ同时ꎬ为了提高临床治疗效果ꎬHIFs抑制剂应与放疗㊁化疗和免疫治疗等联合应用于临床试验ꎮ参㊀考㊀文㊀献[1]㊀PinheiroCꎬMiranda ̄GoncalvesVꎬLongatto ̄FilhoAꎬetal..Themetabolicmicroenvironmentofmelanomas:PrognosticvalueofMCT1andMCT4[J].CellCycleꎬ2016ꎬ15(11):1462-1470.[2]㊀SerockiMꎬBartoszewskaSꎬJanaszak ̄JasieckaAꎬetal..miR ̄833生物技术进展CurrentBiotechnology. 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HIF-1在肿瘤治疗中的研究与应用

HIF-1在肿瘤治疗中的研究与应用肿瘤是一种常见的严重疾病,其发展和进展受到多种因素的影响。
近年来,人们对于调控肿瘤发展的分子机制进行了广泛的探讨和研究。
其中,一种被广泛关注的调节分子——低氧诱导因子-1 (HIF-1) 在肿瘤治疗中具有重要作用。
本文将介绍HIF-1在肿瘤治疗中的功能以及其在临床应用中的潜力。
一、HIF-1的功能机制低氧诱导因子-1 (HIF-1) 是一种在低氧环境下被激活的转录因子,它可以调节多个基因的表达从而对细胞功能产生影响。
HIF-1主要由两个亚单位组成:HIF-1α和HIF-β。
其中,HIF-β在正常情况下持续稳定表达,而HIF-1α则主要受到氧气水平的调节。
当细胞处于低氧状态时,HIF-1α蛋白得以稳定并转位到细胞核内结合HIF-β,从而形成活性的HIF-1转录复合物。
这个复合物可以与DNA结合并调节特定基因的转录水平。
HIF-1通过调节一系列重要的靶基因如血管生成相关因子、糖代谢相关基因和细胞凋亡调控基因等,影响肿瘤的生长、侵袭和治疗敏感性。
二、肿瘤发展中的HIF-1表达在正常情况下,HIF-1α蛋白会被迅速降解。
然而,在大多数肿瘤细胞中,HIF-1α经常出现稳定过度表达的情况。
这主要归因于两方面原因:一是由于缺氧导致HIF-1α稳定超常;另外则是由于许多促肿瘤信号通路对其有激活作用。
高水平的HIF-1α蛋白在许多类型的恶性肿瘤中都得到了证实,如乳腺癌、食管癌、卵巢癌等。
HIF-1α通常与恶性程度和预后不良紧密相关,并且与化放疗敏感性下降以及药物耐药性发展有关。
因此,对于HIF-1α在肿瘤细胞中的抑制或干预成为了一个重要的治疗策略。
三、HIF-1在肿瘤治疗中的研究进展1. HIF-1作为治疗靶点的探索由于其在肿瘤发展中的关键作用,HIF-1已成为许多科学家致力于开发的药物靶点。
目前已有一些药物被设计并测试,旨在通过抑制HIF-1α蛋白稳定性来干预肿瘤生长。
这类药物包括小分子抑制剂、表观遗传调控剂以及siRNA等。
缺氧诱导因子-1α与恶性肿瘤的研究进展(文献综述)
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用于结构基 因的调控 序列 , 促进 下游 基 因的转 录 , 血管 内 如 皮生长 因子 ( E F) 红 细胞 生成 素 ( P 、 氧化氮 活酶 VG 、 E O) 一
( O ) 糖 酵 解 酶 等 , 组 织 细 胞 对 缺 氧 产 生适 应 性 调 N S和 使
节 。
为重要的作用 。H F—l I a通 过调控 多种低 氧反 应基 因 的表 达, 广泛参与 哺乳动 物细胞 中缺 氧诱导 产生 的特异应答 , 介 导机体的整体和局部缺氧反应。
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HIF-1活性调控机制的研究进展
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HIF 1活性调控机制的研究进展周文婷1,2(1遵义师范学院,遵义563006;2哈尔滨体育学院,哈尔滨150001)摘要 低氧是癌症等多种疾病发生与发展的重要诱因,低氧诱导因子1则是低氧条件下最重要的转录调节因子,对其下游基因的转录与表达发挥关键作用,故阐明其活性的分子调节机制对探索新的抗癌方案,提高癌症诊疗水平有重要意义。
低氧诱导因子1的活性受多水平、多机制的共同调节。
本文从传统的氧依赖机制、蛋白水解依赖机制、最新的癌相关遗传因子及功能改变调节机制等角度出发,综述了迄今为止低氧诱导因子1活性调节研究领域的最新成果,以期为其更好应用于癌症诊疗提供参考。
关键词 基因表达;低氧诱导因子 1;调控;分子机制中图分类号 G804 众所周知,特定的O2水平是机体维持内稳态的前提条件,而低O2水平对癌症、局部缺血性心脏病、晚期动脉粥样硬化及慢性肺病等多种重大疾病的发生和发展至关重要[1]。
特别在癌症防治中,自50年代Thomlinson等首次在癌细胞周围发现散在的低氧细胞以来,低氧已成为癌细胞及其微环境的显著标志,并对癌细胞的生长、发育和代谢等生理进程发挥正向效应[2]。
目前已知,低氧诱导因子 1(hypoxia induciblefactor 1,HIF 1)是最重要的转录反应调节因子[3],可作用于低氧环境下的细胞与系统稳态反应[4],通过诱导其下游千余个基因的转录,提高肿瘤组织的氧适应性[5](血管新生),并辅助癌细胞对低氧微环境的适应[6](代谢重编程)及逃逸[5](癌细胞的侵袭和转移),从而被广泛认为是未来癌症治疗的潜在靶位,阐明其活性分子调控机制的意义不言自明[3~6]。
业已证实,HIF 1活性受多重基因及细胞水平调节,一系列信号通路及效应因子在其中发挥正向或负向调节作用。
本文综述了迄今为止上述领域的最新研究成果,旨在为更深入理解其作用机制提供参考,为未来的癌症防治提供新的思路。
一、HIF 1概述HIF 1是介导低氧适应性反应的核转录因子,于1991年由Semenza等(1991)发现,于1995年被成功分离和纯化(Wang等.1995)。
缺氧诱导因子-1在肿瘤学中的研究进展
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关键 词 : 肿瘤干细胞 ; 缺 氧诱 导 因子 一 l ; 文 献 综 述 中图分类号 — 7 3 9 9 ( 2 0 1 3 ) 0 5— 0 5 4 8— 0 4
境 的形成 , 这在人实体瘤 中表现的尤其明显 。肿瘤组织 的缺 氧在肿瘤形成 的病理 过程 中异常重 要 , 同肿瘤对 放 、 化疗 耐 受抵抗及恶 性进展 、 远处转移密切相关 ” J 。缺氧和缺氧诱导
因子( h y p o x i a i n d u c i b l e f a c t o r s ,H I F s ) 对 肿 瘤 生 物 学 的 影 响
是值得 主动探究 的新 领域 。
1 HI F - 1的 分 子 结 构 和 生 物 学 活 ・ 陛
跨膜蛋 白, 可受 缺氧诱导 , 同肿 瘤对化疗 抵抗相 关 。 目前 已确定 H I F 一 1 t的 目的基 因有 1 e 0 0余 种 , 其 中 4类基 因 的蛋 白产物与肿瘤关 系密 切。包括癌 干细胞 与干性 维持 相关 因 子、 血管新生相关因子 、 肿瘤侵袭 与转移相关 因子 、 凋亡 相关
表达时发现的介导哺乳动 物和人类 细胞低 氧反应 的核转 录
因子 。H I F 一 1系统 包括 e t、 8两个亚 单位 , 具 有不 同的基 因片 段, 二者在 哺乳动 物体 内广泛 存 在 , 具有 不 同 的空 间结构 。 二者 以异 二 聚 体 形 式 存 在 , 属于 B HL H . P A S ( b a s i c H e l i x — L o o p — H e l i x - P e r / A R N . r / A h R / s i m) 转 录 因 子 家 族 成 员。H I F 一 1 t 编码基 因定 位于 1 e 4号染色体 ( 1 4 q 2 1 - 2 4 ) , 由氨基 端 的转 录因子 D N A结合结 构域 ( D N A - b i n d i n g d o m a i n ,D B D) 、 羧基
缺氧诱导因子-1在肿瘤中的调节作用
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【关键词】缺氧诱导因子-1;转录;信号通路;翻译;肿瘤
Regulation of hypoxia-inducible factor_l in tumor SHU Hong—mei,ZHAO Cheng—ling。CHEN Yu—qing. Department of Respiratory Medicine,the F计st Af{iliated Hospital of Bengbu Medical College,Bengbu 233004.olina
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低氧诱导因子-1调控肿瘤代谢的研究进展摘要:低氧诱导因子-1(hypoxia-inducible factor 1,HIF-1)是一种对氧敏感的核转录因子,其表达与肿瘤的生长密切相关,尤其在调控肿瘤细胞能量代谢重编程中发挥着重要的作用,它通过激活编码葡萄糖转运体,糖酵解酶类以及丙酮酸脱氢酶激酶等基因,在低氧条件下实现由氧化磷酸化代谢方式向糖酵解方式的转变,维持了肿瘤细胞内氧化还原的稳态和能量供给。
因此,靶向HIF-1及其编码的与代谢相关的酶系将成为肿瘤治疗的新策略。
关键词:低氧诱导因子;代谢重编程;糖酵解;靶向治疗恶性肿瘤为了满足快速生长的需求,会发生代谢的重编程。
在常氧条件下,正常组织细胞摄取葡萄糖进入糖酵解途径生成丙酮酸,经过三羧酸循环由线粒体氧化磷酸化产生三磷酸腺苷(ATP)。
在缺氧条件下,丙酮酸在乳酸脱氢酶的作用下生成乳酸产生ATP。
而肿瘤细胞无论氧气是否充足都以生成乳酸的糖酵解代谢方式产生能量,这种特殊的代谢方式称为有氧糖酵解[1]。
随着肿瘤研究的不断深入,肿瘤细胞调控代谢重编程的重要信号通路及转录因子已初步阐明。
本文将重点对低氧诱导因子-1(HIF-1)调控肿瘤细胞代谢重编程的分子机制及靶向HIF-1治疗策略的研究进行综述。
1 HIF-1的调节机制转录因子HIF-1是由HIF-1α和HIF-1β两个亚基组成的异源二聚体蛋白[2]。
在常氧条件下,HIF-1α蛋白的第402位和第564位脯氨酸残基在羟基化酶的作用下发生羟基化,然后被泛素化降解,这个过程需要氧气、α-酮戊二酸和二价铁离子作为底物参与其中[3]。
在低氧条件下,羟基化酶的活性被抑制,HIF-1α蛋白迅速积累,并与HIF-1β形成二聚体结合于靶基因的低氧反应元件上,并招募共激活分子P300/CBP,激活靶基因的转录[4]。
研究发现HIF-1能调控1000多个靶基因,其中大多数基因都是促进肿瘤细胞存活,包括代谢重编程,血管新生和迁移等相关的基因[5]。
2 HIF-1在恶性肿瘤中的表达肿瘤细胞的快速生长,造成缺血缺氧的肿瘤微环境,在这种应激压力下,肿瘤细胞通过激活HIF-1α改变能量代谢模式。
许多研究已证实,在肝癌、乳腺癌、肺癌和前列腺癌等原发性肿瘤及其转移灶中HIF-1α蛋白处于较高的表达水平,而在相应的癌旁组织中几乎检测不到HIF-1α的表达[6]。
与细胞能量代谢相关的抑癌基因的突变也能上调HIF-1的表达。
研究报道,遗传性嗜铬细胞瘤中编码琥珀酸脱氢酶(SDH)的基因发生突变[7];平滑肌瘤和肾癌细胞中编码延胡索酸水合酶(FH)的基因发生突变[8];这些基因编码的酶类在三羧酸循环中起着关键性的作用。
基因突变使SDH和FH失去活性,导致代谢底物琥珀酸和延胡索酸大量堆积,与α-酮戊二酸竞争性结合羟基化酶的催化中心,HIF-1无法被羟基化修饰泛素化降解,从而提高HIF-1的蛋白量。
3 HIF-1在肿瘤细胞代谢重编程中的作用HIF-1信号通路在肿瘤细胞实现由氧化磷酸化到有氧糖酵解的代谢重编程中起着关键性的作用。
HIF-1能通过上调糖酵解酶系的表达量加速肿瘤细胞的糖酵解进程,激活HIF-1可提高葡萄糖转运体(GLUT)以及已糖激酶(HK)的表达,增强肿瘤细胞的糖摄取能力,从而增加胞内葡萄糖和6-磷酸-葡萄糖的含量。
6-磷酸-葡萄糖在HIF-1调控的其他糖酵解酶类如磷酸甘油酸酯激酶1(PGK1)、烯醇酶1(ENO1)和丙酮酸激酶2(PKM2)等作用下进一步代谢为丙酮酸[9],糖酵解的中间代谢产物则参与核苷酸和脂质的合成。
丙酮酸是细胞能量代谢网络的中枢分子,既能在丙酮酸脱氢酶(PDH)的作用下转变为乙酰辅酶A进入三羧酸循环,又能在乳酸脱氢酶(LDHA)的催化下转变为乳酸。
PDH的活性受到丙酮酸脱氢酶激酶1(PDK1)的调节,PDK能磷酸化PDH并使其失去活性,而PDK1和LDHA都是HIF-1的靶基因,受HIF-1的调控[10]。
低氧的肿瘤微环境可诱导肿瘤细胞中HIF-1高表达并激活PDK1,从而减少丙酮酸进入三羧酸循环,同时也抑制了呼吸链氧化磷酸化,因此提高HIF-1的表达量转变能量代谢方式是肿瘤细胞应对低氧应激压力的自我保护机制。
研究表明在HIF-1缺陷的小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)中,低氧条件无法激活PDK1,并且由于产生过量的氧自由基(ROS)导致细胞凋亡,但是如果在该细胞中导入外源性过表达的PDK1基因则可减少ROS的产生并抑制细胞凋亡[11]。
BNIP3是另一个受HIF-1调控参与细胞代谢的重要蛋白,它是低氧诱导线粒体发生自噬的重要信号分子。
自噬现象也是肿瘤细胞的一种自我保护机制,目的就是使能量代谢方式更偏向于糖酵解途径,从而减少氧化磷酸化过程中产生的ROS对细胞造成的损伤。
在低氧条件下,BNIP3表达升高,与Beclin-1竞争性结合Bcl-2,促使Beclin-1从Bcl-2/Beclin-1复合体中释放出来从而激活线粒体自噬[12]。
研究表明,在1%的氧气浓度下48小时内野生型的MEFs细胞中线粒体数量减少50%以上,这说明低氧激活线粒体自噬,但是在HIF-1缺陷的MEFs 细胞中却观察不到这种现象,取而代之的是由于ROS的过量产生引起细胞凋亡。
4 针对HIF-1的靶向治疗策略许多临床研究表明,HIF-1的表达量与肿瘤患者预后呈负相关,因此抑制HIF-l的表达水平成为一种新的恶性肿瘤的治疗途径。
目前针对HIF-1的靶向治疗策略主要分为三类:(1)抑制HIF-1的转录水平,(2)抑制HIF-1靶基因的表达,(3)促进HIF-1的蛋白降解。
文献报道,雷帕霉素靶蛋白(mTOR),磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)能调控HIF-1的转录水平,因此PI3K/mTOR的抑制剂雷帕霉素,替西罗莫司等可作为新型的肿瘤化疗制剂[13],抑制由HIF-1介导的糖酵解过程和肿瘤细胞的增殖。
第二类治疗策略是抑制由HIF-1调控的靶基因,如血管内皮生长因子,PDK1以及糖酵解相关的代谢酶类GLUT1,HK和LDHA等。
Fantin报道用shRNA干扰LDHA的表达能明显抑制肿瘤细胞的生长[14]。
第三类靶向HIF-1的治疗策略是促使肿瘤细胞中的HIF-1蛋白发生降解,这一类分子如组蛋白脱乙酰基酶的抑制剂[15]。
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