九龙江水大肠杆菌群测定的实验报告1

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(2023)微生物实验报告水中细菌总数和大肠菌群的检测(一)

(2023)微生物实验报告水中细菌总数和大肠菌群的检测(一)

(2023)微生物实验报告水中细菌总数和大肠菌群的检测(一)水中微生物实验报告实验概述•实验名称:水中微生物总数和大肠菌群的检测•实验时间:2023年•实验地点:实验室实验目的•检测水中微生物总数和大肠菌群的存在情况•评估水质卫生状况,指导水资源管理和人群健康实验方法1.采集不同来源的水样。

2.将水样制成不同浓度的稀释液。

3.取一定量的水样稀释液注入培养皿中。

4.加入适当培养基,进行菌落计数和形态特征观察。

5.通过酶促法检测大肠杆菌。

实验结果•来源于自来水厂的水样中,微生物总数为100CFU/mL,大肠菌群未检测到。

•来源于河流的水样中,微生物总数为1000CFU/mL,大肠菌群为20CFU/100mL。

•来源于地下水的水样中,微生物总数为10CFU/mL,大肠菌群未检测到。

结论•来源于自来水厂的水样水质较好,不存在大肠菌群的污染。

•来源于河流的水样水质较差,大肠菌群的检出说明存在污染,需进行水质治理。

•来源于地下水的水样水质较好,不存在大肠菌群的污染。

实验意义•检测水中微生物总数和大肠菌群的存在情况,有利于保障人类健康和水资源的可持续利用。

•提供科学依据和技术支持,指导水资源管理和水质卫生监测。

实验注意事项•实验过程需严格遵守无菌操作规范,防止样本污染。

•实验前需对实验设备、培养基等进行消毒处理,确保实验环境洁净。

•实验结束后,需妥善处理实验产生的废液、废料等。

实验展望•未来可进一步开展对水中其他微生物种类的检测,深入了解水生态系统的生物多样性。

•结合近年来人类活动和气候变化的影响,对水质卫生进行长期监测,及时掌握水质变化趋势。

•根据实验结果,制定针对性的水资源管理和水质卫生治理措施。

结语该实验通过检测水中微生物总数和大肠菌群,评估了水质的卫生状况。

实验结果表明,水质卫生状况与水源的来源密切相关。

希望通过类似的实验,加强对水质卫生状况的监测和管理,确保水资源的可持续利用,保障人们的用水安全和健康。

大肠杆菌检测实验报告

大肠杆菌检测实验报告

一、实验目的1. 掌握大肠杆菌检测的基本原理和方法;2. 学会使用国标法测定大肠杆菌样本的细菌总数;3. 提高微生物实验操作技能,为后续相关实验奠定基础。

二、实验原理大肠杆菌(Escherichia coli)是一种革兰氏阴性菌,广泛存在于人类和动物肠道中,属于条件致病菌。

本实验采用国标法测定大肠杆菌样本的细菌总数,主要利用大肠杆菌在LB培养基上生长繁殖的特性,通过计数菌落数来估算大肠杆菌的浓度。

三、实验器材1. 培养箱;2. 移液管(10只);3. 锥形瓶(250ml,12只);4. 大试管(5只);5. 试管架;6. 平皿(45个);7. 大烧杯(500ml,1个);8. 电子天平;9. 纱布;10. 脱脂棉;11. 灭菌锅;12. pH计或pH试纸;13. 电炉;14. 石棉网;15. 铁架台;16. 量筒(100ml,1个);17. 橡皮手套;18. 超净台。

四、实验药品1. 磷酸盐缓冲液;2. 蒸馏水;3. LB培养基;4. 琼脂;5. 5%NaOH;6. 5%HCl。

五、实验步骤1. 培养基制备(1)称取成品LB 3.1241g和琼脂1.8756g放入250ml的洁净锥形瓶中;(2)用量筒量取125ml的蒸馏水加入锥形瓶中,制成培养基;(3)用棉花堵住锥形瓶的瓶口,用牛皮纸包住瓶口,用橡皮筋扎牢;(4)将培养基放入灭菌锅中,在121摄氏度下灭菌20min;(5)灭菌后放入超净台中备用。

2. 样本处理(1)取适量样本(如食品、水等);(2)用无菌生理盐水进行梯度稀释;(3)取适量稀释液加入平皿中,制成平板;(4)将平板放入培养箱中,在37摄氏度下培养24h。

3. 菌落计数(1)观察平板,找出菌落数在30-300之间的平板;(2)用移液管吸取适量菌液,加入锥形瓶中;(3)在锥形瓶中加入适量的5%NaOH溶液,充分振荡;(4)将锥形瓶放入培养箱中,在37摄氏度下培养24h;(5)观察锥形瓶中的菌落生长情况,记录菌落数。

大肠菌群实验报告

大肠菌群实验报告

大肠菌群实验报告篇一:大肠杆菌检测实验报告国标法测定大肠杆菌样本的细菌总数实验目的实验原理:国标法操作的原理实验器材:培养箱,10只移液管,1只250ml锥形瓶,5只大试管,试管架,4个平皿,500ml大烧杯1个,电子天平,纱布,脱脂棉,灭菌锅,PH计或PH试纸,100ml量筒,橡皮手套,超净台实验药品:磷酸盐缓冲液,蒸馏水,LB培养基,琼脂,5%NaOH,5%HCl 实验步骤:一:10只移液管,1只250ml锥形瓶,5只大试管,4个平皿,500ml大烧杯1个,100ml量筒进行洗涤,然后一起放入高压蒸汽灭菌锅中在121摄氏度条件下灭菌20min。

灭完菌后烘干,完成后放入超净台中。

用酒精擦拭超净台,紫外消毒30min二:1:用电子天平称取成品LB 3.1241g和琼脂1.8756g放入250ml的洁净锥形瓶中。

2:用量筒量取125ml的蒸馏水加入该锥形瓶中,制成培养基。

3:用棉花堵住该锥形瓶的瓶口,用牛皮纸包住瓶口,用橡皮筋扎牢,再将培养基放入灭菌锅中在121摄氏度之下灭菌20min。

4:灭完菌后放入超净台中备用。

三:1:取1只无菌250ml锥形瓶,用量筒向其中加入49ml PBS 2:将1ml样品加入到该锥形瓶中,摇匀制成1:50的细菌溶液。

3:取4只试管,编号1—44:用无菌移液管分别向4只试管中加入9ml的PBS5:用1ml无菌移液管从样品中移取1ml菌液加入到1中.震荡试管使菌液均匀。

6:用1ml无菌移液管从1号试管中移取1ml的细菌溶液加入2号试管中,摇匀7:用另一只1ml无菌移液管从2号试管中移取1ml细菌溶液,加入3中,摇匀......以此类推直至4只试管中均加入了细菌溶液。

9:取4只平皿,编号1—410:分别用4只无菌移液管从这4只试管中移取1ml的菌液置于4只平皿中,加入45—50摄氏度温度下的培养基,约15mm厚度。

缓慢旋转平皿使菌液与培养基混合均匀;待培养基冷凝后倒置。

大肠杆菌检测实验报告

大肠杆菌检测实验报告

大肠杆菌检测实验报告大肠杆菌检测实验报告引言:大肠杆菌是一种常见的细菌,存在于人体和动物的肠道中。

尽管大肠杆菌在正常情况下对人体无害,但某些菌株可能会引起严重的食物中毒。

因此,对食品和饮用水中的大肠杆菌进行检测至关重要。

本实验旨在通过不同的检测方法,了解大肠杆菌的存在和浓度。

材料与方法:1. 食品和饮用水样本:我们选择了市场上常见的食品和饮用水样本,包括蔬菜、水果、肉类和瓶装水。

2. 大肠杆菌培养基:我们使用了含有大肠杆菌特异性营养物质的培养基。

3. 培养皿和培养试管:用于培养大肠杆菌。

4. 显微镜和染色剂:用于观察和鉴定大肠杆菌。

实验步骤:1. 样本准备:我们将食品和饮用水样本分别取样,并放入培养皿或培养试管中。

2. 培养:将样本放入预先准备好的大肠杆菌培养基中,然后将培养皿或培养试管放入恒温培养箱中,以促进大肠杆菌的生长。

3. 观察:在培养一段时间后,我们使用显微镜观察培养皿或培养试管中的样本。

为了更好地观察大肠杆菌,我们使用染色剂对样本进行染色。

4. 记录:记录观察到的大肠杆菌数量和形态特征。

结果与讨论:通过对不同食品和饮用水样本进行大肠杆菌检测,我们观察到了以下结果:1. 蔬菜和水果样本中的大肠杆菌数量较高。

这可能是因为蔬菜和水果在生长和加工过程中接触到了土壤或污染的水源。

2. 肉类样本中的大肠杆菌数量较低。

这可能是因为肉类在加工过程中经过了高温处理,杀死了大部分的细菌。

3. 瓶装水样本中没有观察到大肠杆菌。

这是因为瓶装水在生产和包装过程中经过了严格的卫生控制。

通过本实验,我们可以得出结论:大肠杆菌在食品和饮用水中的存在是普遍的,但其浓度和数量因样本类型而异。

这提醒我们在选择和处理食品和饮用水时要格外注意卫生和安全。

结论:本实验通过采用大肠杆菌检测方法,对不同食品和饮用水样本进行了分析。

结果表明,大肠杆菌在食品和饮用水中存在普遍,但其浓度和数量因样本类型而异。

这对我们提醒了食品安全和卫生的重要性。

实验九 水中总大肠菌群的测定课件

实验九 水中总大肠菌群的测定课件

用漏斗分装培养基及摆斜面
培养基的分装: 一般制作斜面培养基时,每只15×150毫米的试管,约装3 ~4毫升(1/4~1/3试管高度),如制作深层培养基,每只20×220毫米 的试管约装12~15毫升。每只锥形瓶装入的培养基,一般以其容积的一 半为宜。
令包扎
1.培养皿:以旧报纸密密包紧,一般以6套做一包,待灭菌。 2.吸管:在距其粗头顶端约0.5cm处,塞一小段1.5cm长的棉花。棉 花要塞得松紧恰当(过紧,吹吸液体太费劲;过松,吹气时棉花会 下滑),然后分别将每支吸管尖端斜放在旧报纸条的的近左端,与 报纸约呈60º角,并将右端多余的报纸打一小结。 3 .三角玻扒:跟包扎吸管相似,将三角部分斜放在报纸条的近左端, 与报纸约呈45º角,并将右端多余的报纸打一小结。 4. 玻璃器皿、金属器械包扎完毕后置干燥箱160-170℃灭菌2h.
手提式高压蒸 汽灭菌锅
高压蒸汽自动 灭菌锅
五 操作步骤 1 水样的采取
(1)检测自来水 先将自来水龙头用火焰烧灼3min灭菌,再开放水龙头使水流5min后,
在火焰旁打开灭菌三角瓶塞,以其接取水样,迅速地进行分析。
(2)检测池水、河水或湖水 应取距水面10-15cm的深层水样,先将灭菌带玻璃塞的空瓶瓶口向下
每组:
三倍浓缩乳糖蛋白胨(5ml) 15管 普通浓度乳糖蛋白胨(10ml) 15管 伊红美兰培养基 150ml (5个平板) 三角瓶1个(装27mL蒸馏水灭菌)、 10ml吸管 2支、 1ml吸管2支包扎灭菌
表2 最可能数(MPN)表
(接种5份10mL
水样、 5份1mL水 样、 5份0.1mL水 样时,不同阳性 及阴 性情况下 100mL水样中细 菌数的最可能数 和95%可信限值)
实验九 水中总大肠菌群的测定

实验九水中总大肠菌群的测定报告

实验九水中总大肠菌群的测定报告

菌群数。
每组: 三倍浓缩乳糖蛋白胨(5 ml)15管 普通浓度乳糖蛋白胨(10 ml)15管 伊红美兰培养基 150 ml (5个平板) 三角瓶1个(装27mL蒸馏水灭菌)、 10ml吸管 2支、1ml吸管2支包扎灭菌
Байду номын сангаас
表2 最可能数(MPN)表
(接种5份10mL 水样、5份1mL水 样、5份0.1mL水 样时,不同阳性 及阴 性情况下 100mL水样中细 菌数的最可能数 和95%可信限值)
(2)水源水
在装有5ml 3倍浓度浓缩乳糖蛋白胨培养基的试管中加入10ml水样品;于各装有 10mL乳糖蛋白胨培养液的5个试管中(内有倒管),分别加入1mL水样;再于各 装有10mL乳糖蛋白胨培养液的5个试管中(内有倒管),分别加入1mL 1:10 稀释的水样。共计15管,三个稀释度。将各管充分混匀,置于37℃恒温箱内培养 48h。 (可以根据水的污染程度选择3个稀释度)
(3) 伊红美培养基:按照说明称取适量培养基,置于三角瓶中,加蒸馏
水溶解, 115℃高压灭菌15min,待冷却至45℃—50℃ ,倒平板待用。
培养基配制操作图示:
用漏斗分装培养基及摆斜面
培养基的分装:一般制作斜面培养基时,每只15×150毫米的试管,约装 3~4毫升(1/4~1/3试管高度),如制作深层培养基,每只20×220毫 米的试管约装12~15毫升。每只锥形瓶装入的培养基,一般以其容积的
实验九
水中总大肠菌群的测定
实验八 水中总大肠菌群的测定
一 实验器材 1 培养基
乳糖蛋白胨发酵管(内有倒置小套管)培养基、伊红美兰琼脂平板
2 溶液和试剂 革兰氏染色液
3 仪器和其他用品
高压湿热灭菌器、显微镜、载玻片、灭菌培养皿、灭菌吸管、试管、三角 瓶、接种环

水中大肠杆菌的检测实验报告

水中大肠杆菌的检测实验报告

1. 掌握水中大肠杆菌检测的基本原理和方法。

2. 了解水中大肠杆菌污染的严重性及预防措施。

3. 培养实验操作技能,提高对水质监测的认识。

二、实验原理大肠杆菌(Escherichia coli)是一种条件致病菌,广泛存在于人和动物的肠道中。

在水质监测中,大肠杆菌常作为粪便污染的指示菌。

本实验采用伊红美蓝培养基进行大肠杆菌的检测,通过观察菌落特征,确定水中大肠杆菌的存在。

三、实验材料1. 实验器材:无菌试管、移液器、培养箱、酒精灯、无菌棉签、试管架、培养皿、显微镜等。

2. 实验试剂:伊红美蓝培养基、无菌水、水样、氯化钠、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠等。

四、实验步骤1. 水样采集:采集待检测水样,用无菌容器盛装,避免污染。

2. 水样稀释:将水样进行适当的稀释,以便在培养基上形成单菌落。

3. 接种:取适量稀释后的水样,用无菌棉签均匀涂布于伊红美蓝培养基表面。

4. 培养:将接种后的培养基放入培养箱中,在37℃条件下培养24小时。

5. 观察:观察培养基上的菌落特征,如菌落大小、形状、颜色等,判断是否存在大肠杆菌。

6. 鉴定:对疑似大肠杆菌的菌落进行进一步的鉴定,如革兰氏染色、生化试验等。

五、实验结果与分析1. 菌落观察:在伊红美蓝培养基上,大肠杆菌菌落呈深紫色(黑色),边缘整齐,有金属光泽。

2. 鉴定结果:经革兰氏染色和生化试验,证实所观察到的菌落为大肠杆菌。

1. 大肠杆菌是水质监测中的重要指标,其存在表明水质可能受到粪便污染,存在健康风险。

2. 本实验采用伊红美蓝培养基进行大肠杆菌检测,操作简便,结果准确。

3. 在实际水质监测中,还需结合其他指标,如粪大肠菌群、耐热大肠菌群等,全面评估水质状况。

七、实验总结1. 本实验成功检测了水中大肠杆菌,掌握了水中大肠杆菌检测的基本原理和方法。

2. 通过实验,提高了对水质监测的认识,增强了环保意识。

3. 在今后的学习和工作中,将继续关注水质问题,为保护水资源、保障人民群众健康贡献力量。

微生物实验报告水中细菌总数和大肠菌群的检测(一)

微生物实验报告水中细菌总数和大肠菌群的检测(一)

微生物实验报告水中细菌总数和大肠菌群的检测(一)水是一种重要的自然资源,因此水的质量非常重要。

水的污染问题已经引起了越来越多的人关注。

而微生物是水中的主要污染物之一,尤其是细菌总数和大肠菌群,这些污染物对人体的影响是非常大的。

在这篇报告中,我们将介绍我们对这两种污染物的检测结果。

1. 实验材料我们使用了以下材料进行实验:- 水样:我们选择了来自自来水厂和自然水源(例如河流和湖泊)的样本。

- 培养基:我们使用了通用富营养基和多氯芬酸钠培养基进行实验。

2. 实验方法我们使用了以下步骤来检测水中的微生物:- 取样:我们使用无菌技术取样。

具体而言,我们先用消毒过的杯子收集水样,然后用无菌注射器将水转移到无菌容器中。

- 稀释:我们用无菌盘子将水样稀释至适当的浓度。

- 培养:我们将每个稀释后的水样盛放于培养基中,然后将培养皿放入孵化箱,控制温度在30℃,进行孵化48小时。

- 计数:我们使用显微镜和计数计数室对每个水样中的细菌进行计数。

3. 实验结果我们进行了3次独立的实验,每次实验都使用了来自不同水源的样本。

下面是我们的检测结果。

- 细菌总数我们使用通用富营养基在每个水样中进行了细菌总数的检测,并且使用了10-4和10-5的稀释度,数值末一位为CFU/mL。

下表列出了我们的实验结果。

水源细菌总数(CFU/mL)自来水厂8 × 104 5 × 104湖泊2 × 105 3 × 105河流5 × 105 6 × 105-大肠菌群我们使用多氯芬酸钠培养基进行了大肠菌群的检测,并且使用了10-4和10-5的稀释度,数值末一位为CFU/mL。

下表列出了我们的实验结果。

水源大肠菌群(CFU/mL)自来水厂不可检测不可检测湖泊1 × 103 1 × 103河流2 × 103 2 × 1034. 结论我们的实验结果表明,不同来源的水样中细菌总数和大肠菌群的数量有很大的不同。

大肠杆菌检测实验报告

大肠杆菌检测实验报告

大肠杆菌检测实验报告一、实验目的掌握大肠杆菌的检测方法,了解其在水质检验中的重要性。

二、实验原理1. 大肠杆菌大肠杆菌是一种常见的肠道杆菌,是一类嗜热性、厌氧性以及革兰阴性杆菌。

该菌种常常是肠道菌群的组成部分,同时也是水污染的重要指示菌之一。

(1)标准培养基法经过富营养培养基的生长,大肠杆菌会形成显性和隐性的群体。

这种检测方法适用于水质样本、地球样品以及饮用水。

(2)膜过滤法样品通过过滤器滤过后,将过滤后的膜放入培养基上培养。

这种方法既适合于生物质量较小的样品,也适用于分析浓度高的样品。

(3)MPN法通过使用3组不同浓度的小管,并观察哪个浓度的小管有生长曲线的所有格子都被满足,来计算菌落形成单位的浓度。

可以适用于样品浓度较低的环境。

三、实验操作1. 实验材料大肠杆菌标准菌株、优化阳性对照菌株、培养基、蒸馏水、实验器材、滤纸、吸管、离心机、洗涤液和细胞硬度试剂。

2. 实验步骤(1)制备纯菌液:将大肠杆菌基配合缓冲液跳接种到营养琼脂平板上,并在37℃的恒温培养箱中培养过夜。

将菌落划入脱色水中,通过洗涤和离心的方式,获得纯化的细胞菌悬液。

(2)制备样品:将需要检测的水样分别过滤,过滤膜使用巨孔滤纸。

滤膜被慢慢放在脱色水上U型板中间的孔里,然后浸泡(3)培养过程: 将U型板接入温度为37℃的有氧培养箱内,在24 - 48小时内观察细菌进行生长,并做出相应的计数和检测。

四、实验结果与分析按照实验操作规程进行样品处理和培养后,确认样品中是否存在大肠杆菌。

如果在实验中产生的试样中出现了大肠杆菌生长,且其生长优于阳性对照;或者在某些水样中不能检测出大肠杆菌,说明该水质品质不满足相关规范的要求。

五、实验结论本实验通过不同的大肠杆菌检测方法,较为全面地了解了大肠杆菌的检测方法及其在水质检验中的重要性。

在实验的基础上,我们有理由相信,通过科学准确的操作,人们可以更好地保证饮用水的健全和安全。

大肠菌群的测定实验报告

大肠菌群的测定实验报告

大肠菌群的测定实验报告
《大肠菌群的测定实验报告》
实验目的:通过实验测定大肠菌群的数量,了解其在肠道中的分布情况,并探讨其与健康的关系。

实验方法:我们采集了一组健康人群的粪便样本,并使用培养基和平板计数法对大肠菌群进行测定。

首先,我们将粪便样本均匀涂抹在培养基上,然后将培养皿放入恒温箱中进行培养。

培养后,我们对培养皿上的菌落进行计数,并根据计数结果得出大肠菌群的数量。

实验结果:经过实验测定,我们发现健康人群的大肠菌群数量在正常范围内,平均值约为10^8 CFU/g。

同时,我们还发现不同个体之间的大肠菌群数量存在一定的差异,但总体上呈现出稳定的分布情况。

实验分析:大肠菌群在肠道中起着重要的作用,它能够帮助人体消化食物、产生维生素等。

同时,大肠菌群的数量与肠道健康密切相关,过多或过少都可能导致肠道问题。

因此,通过测定大肠菌群的数量,可以帮助我们了解肠道健康状况,及时采取相应的调节措施。

结论:通过本次实验测定,我们得出了健康人群大肠菌群数量的正常范围,并认识到了大肠菌群在肠道健康中的重要作用。

希望通过这一实验结果,能够为人们提供更多关于肠道健康的参考信息,促进人们更加关注和重视肠道健康。

水中大肠杆菌检测实验报告

水中大肠杆菌检测实验报告

水中大肠杆菌检测实验报告水中大肠杆菌检测实验报告水是人类生活中不可或缺的资源,但是水中的污染物对人体健康造成了严重的威胁。

其中,大肠杆菌是一种常见的水质污染指标,其存在表明水体可能受到粪便污染。

本实验旨在通过检测水样中的大肠杆菌含量,评估水质的安全性。

实验材料和方法:1. 实验材料:- 水样:从自然水源中采集的水样。

- 大肠杆菌检测试剂盒:包括培养基、试剂和培养皿等。

- 实验室设备:包括离心机、恒温培养箱等。

2. 实验方法:- 采集水样:在适当的采样点采集水样,保持样品的原始性。

- 准备培养基:按照检测试剂盒说明书的要求,准备好培养基。

- 培养大肠杆菌:将水样加入培养基中,经过适当的培养条件(如温度、时间等),使大肠杆菌得到生长。

- 检测大肠杆菌:根据检测试剂盒的指引,使用试剂对培养后的水样进行检测。

实验结果:经过实验,我们得到了水样中大肠杆菌的检测结果。

根据检测试剂盒的指示,如果水样中检测到大肠杆菌,说明水质存在潜在的健康风险;如果水样中未检测到大肠杆菌,说明水质相对安全。

讨论:本实验的目的是评估水质的安全性,通过检测大肠杆菌的存在与否来判断水样的卫生状况。

大肠杆菌是一类存在于动物和人类的肠道中的细菌,其存在于水中可能是由于粪便污染。

因此,水中大肠杆菌的检测是评估水质卫生状况的重要指标。

通过本实验,我们可以得出以下结论:1. 水样中未检测到大肠杆菌,说明水质相对安全,可以放心饮用或使用。

2. 水样中检测到大肠杆菌,说明水质存在潜在的健康风险,不宜直接饮用或使用。

然而,需要注意的是,本实验只是初步的水质评估方法之一,仅能提供关于大肠杆菌存在与否的信息,并不能全面评估水质的安全性。

在实际应用中,还需要综合考虑其他水质指标,如化学物质、重金属等的含量,以及水源的来源和处理情况等因素。

此外,本实验中使用的大肠杆菌检测试剂盒是一种常见的快速检测方法,其操作简单、结果迅速,适用于实验室和野外条件下的水质检测。

水中大肠杆菌的检测实验报告

水中大肠杆菌的检测实验报告

水中大肠杆菌的检测实验报告水中大肠杆菌的检测实验报告一、引言水是人类生活中不可或缺的重要资源,然而,水中可能存在着各种微生物,其中包括一些对人体健康具有潜在威胁的病原菌。

大肠杆菌是一种常见的肠道细菌,其存在于水中可能意味着水源受到了污染。

因此,本实验旨在通过对水样中大肠杆菌的检测,评估水质的安全性。

二、实验方法1. 样品采集:在实验室中,我们选择了不同来源的水样进行采集,包括自来水、河水和湖水。

每个样品分别采集三个重复样品,以保证实验的可靠性。

2. 细菌培养基准备:我们使用了大肠杆菌培养基,并按照说明书的要求进行了制备。

3. 细菌培养:将采集到的水样分别接种到培养基中,然后在恒温箱中培养24小时。

4. 结果观察:观察培养皿中是否有大肠杆菌的生长,若有,则说明水样中存在大肠杆菌。

三、实验结果经过24小时的培养,我们观察到了以下结果:1. 自来水样品:在自来水样品中,没有观察到任何细菌的生长,说明自来水的水质符合卫生标准。

2. 河水样品:在河水样品中,我们观察到了一些培养皿中有大肠杆菌的生长,说明河水可能存在污染风险。

3. 湖水样品:在湖水样品中,几乎所有的培养皿中都观察到了大肠杆菌的生长,这表明湖水的水质存在严重污染。

四、讨论与分析1. 自来水的安全性:根据实验结果,我们可以得出结论,自来水的水质是安全的,不会存在大肠杆菌的污染。

这可能是因为自来水经过了严格的处理和消毒,以确保水质的安全性。

2. 河水的污染风险:由于河水样品中观察到了一些大肠杆菌的生长,说明该河水存在一定的污染风险。

可能是由于附近的人类活动或者其他因素导致了河水的污染,因此需要采取相应的措施来保护河水的水质。

3. 湖水的严重污染:湖水样品中观察到了大肠杆菌的大量生长,这表明湖水的水质存在严重的污染。

湖水是人们常用的水源之一,如果湖水受到污染,将对周围的环境和人们的健康造成严重影响。

因此,我们需要加强对湖水的保护和治理,以确保水质的安全性。

实验报告大肠杆菌(3篇)

实验报告大肠杆菌(3篇)

第1篇一、实验目的1. 了解大肠杆菌的形态特征和生理特性;2. 掌握大肠杆菌的培养和鉴定方法;3. 熟悉微生物实验室的基本操作技能。

二、实验原理大肠杆菌(Escherichia coli)是一种革兰氏阴性杆菌,广泛存在于人类和动物的肠道中。

它是研究细菌生理、遗传、代谢等领域的模式生物。

本实验通过观察大肠杆菌的形态特征,培养和鉴定大肠杆菌,了解其生理特性。

三、实验器材与试剂1. 器材:显微镜、培养箱、无菌操作台、接种环、试管、锥形瓶、吸管、酒精灯、培养皿、pH试纸等。

2. 试剂:LB培养基、无菌生理盐水、无菌水、革兰氏染色液、甲基红、吲哚、硫化氢试剂等。

四、实验步骤1. 大肠杆菌的形态特征观察(1)取一小段大肠杆菌菌落,置于载玻片上;(2)滴加适量生理盐水,用接种环轻轻搅拌;(3)将载玻片置于显微镜下观察,观察菌体的形态、大小、排列等特征。

2. 大肠杆菌的培养(1)将LB培养基倒入锥形瓶中,置于121℃高压蒸汽灭菌锅中灭菌20分钟;(2)待培养基冷却至50℃左右,加入适量的无菌生理盐水;(3)将灭菌后的锥形瓶放入无菌操作台,用无菌吸管取少量大肠杆菌菌落,接种于锥形瓶中的培养基中;(4)将锥形瓶放入培养箱中,37℃培养18小时。

3. 大肠杆菌的鉴定(1)将培养18小时的大肠杆菌菌液,用无菌生理盐水稀释至适当浓度;(2)取适量稀释液,滴加于革兰氏染色液;(3)观察菌体的革兰氏染色结果,判断菌体是否为革兰氏阴性;(4)取适量稀释液,滴加于甲基红试剂、吲哚试剂、硫化氢试剂,观察反应结果,判断菌体是否具有相应的生化特性。

五、实验结果与分析1. 大肠杆菌的形态特征观察在显微镜下观察,大肠杆菌呈短杆状,两端钝圆,大小约为0.5μm×1.0μm,排列呈链状。

2. 大肠杆菌的培养培养18小时后,菌液呈均匀浑浊状,说明大肠杆菌在LB培养基中生长良好。

3. 大肠杆菌的鉴定革兰氏染色结果:菌体呈红色,为革兰氏阴性。

大肠菌群检验实习报告

大肠菌群检验实习报告

实习报告一、实习背景和目的本次实习是在XXX实验室进行的大肠菌群检验,旨在学习并掌握大肠菌群的基本检验方法,了解其在水质、食品和环境监测中的应用,提高自己的实验技能和实际操作能力。

二、实习内容和过程1. 实验原理和操作方法的学习在实习开始前,指导老师详细讲解了了大肠菌群的定义、分类、特点以及检验原理和操作方法。

大肠菌群主要包括肠杆菌科中的埃希氏菌属、志贺氏菌属和弧菌属等,是评价水质、食品和环境污染的重要指标。

大肠菌群检验通常采用滤膜法、接种培养法和显微镜观察法等。

2. 实验材料的准备根据实验要求,准备了不同来源的水样、食品样品和环境样品,以及相应的实验试剂和仪器设备。

3. 实验操作(1)滤膜法:将水样或食品样品过滤,将滤膜贴在伊红美蓝培养基上,放入37℃恒温箱培养24小时。

(2)接种培养法:将样品进行梯度稀释,将稀释后的样品接种到乳糖胆盐培养基上,放入37℃恒温箱培养24小时。

(3)显微镜观察法:将样品进行涂片,用显微镜观察大肠菌群的数量和形态。

4. 实验结果和分析(1)滤膜法:经过24小时的培养,观察到伊红美蓝培养基上出现黑色或紫黑色的菌落,说明样品中含有大肠菌群。

(2)接种培养法:经过24小时的培养,观察到乳糖胆盐培养基上出现浑浊或沉淀,说明样品中含有大肠菌群。

(3)显微镜观察法:通过显微镜观察,发现样品中含有大量杆状细菌,形态与大肠杆菌相似,说明样品中含有大肠菌群。

5. 实验数据的处理和报告撰写根据实验结果,计算样品中大肠菌群的含量,并与其他标准进行比对,评价样品的卫生质量。

同时,将实验过程和结果整理成实习报告,包括实验目的、原理、操作步骤、结果和分析等内容。

三、实习收获和体会通过本次实习,我学习了大肠菌群检验的基本原理和操作方法,掌握了滤膜法、接种培养法和显微镜观察法等检验技巧。

实验过程中,我认真操作,仔细观察,对实验结果进行了分析和总结。

通过本次实习,我提高了自己的实验技能和实际操作能力,为今后的科研和工作打下了基础。

九龙江水大肠杆菌群测定的实验报告1

九龙江水大肠杆菌群测定的实验报告1

九龙江水大肠杆菌群的测定林淑丽(漳州师范学院10级生物系食品科学与工程 101304116)摘要:本文通过多管发酵法、革兰氏染色法两种不同的方法测定九龙江水大肠杆菌群数量。

初步掌握多管发酵法及革兰氏染色法。

了解大肠杆菌在饮水中的重要性和革兰氏染色原理在细菌分类鉴定的重要性。

关键词:多管发酵法大肠杆菌九龙江水革兰氏阴性无芽孢杆菌THE DETERMINATION OF COLIFORM BACTERIA WHICH IN THEJIULONG RIVERLin Shuli(10Food science and engineering in Biology department, Zhangzhou NormalUniversity 101304116)Abstract: this article through multiple tube fermentation and gram's staining method two different methods to determine the Kowloon river escherichiacoli group of quantity. Preliminary grasp tube fermentation and gram'sstaining method. Understand the importance of e. coli in drinking waterand gram stain principle in the importance of bacteria classificationand identification.Keywords: much tube fermentation; E. Coli; the water of Jiulong River;gram-negative; sporeless bacterium大肠杆菌(学名:Escherichia coli,通常简写为E. coli))是生活在温血动物(包括鸟类和哺乳动物)大肠中的重要细菌种类,对食物正常消化具有重要作用。

大肠菌群检测的实验报告

大肠菌群检测的实验报告

大肠菌群检测的实验报告大肠菌群检测实验报告一、实验目的本实验旨在通过检测样品中的大肠菌群数量,评估其卫生质量,为食品安全和人类健康提供重要依据。

二、实验原理大肠菌群是指一群革兰氏阴性、无芽孢、兼性厌氧的细菌,主要包括埃希氏菌属、柠檬酸杆菌属、肠球菌属等。

这些细菌可在25-37℃的环境下生长,且在伊红美蓝培养基上形成典型的大肠菌群菌落。

本实验采用MPN(最大可能数)方法进行大肠菌群的检测。

通过在不同浓度的样品中接种不同体积的培养基,并按照MPN表进行统计分析,以获得样品中大肠菌群的数量。

三、实验步骤1.样品处理:将样品按照10倍递增的方式进行稀释,以适应不同浓度的大肠菌群检测。

2.接种培养:分别取0.1mL、0.01mL、0.001mL的样品稀释液,接种于伊红美蓝培养基中,每个稀释度接种三管。

轻轻摇匀,倒置培养。

3.培养观察:将培养基放入37℃的培养箱中,培养24小时。

观察每个稀释度的培养管中是否有典型的大肠菌群菌落形成。

4.结果统计:根据MPN表,统计每个稀释度下形成菌落的管数,并计算大肠菌群的数量。

5.结果报告:根据实验数据,得出样品中大肠菌群的数量,并评估其卫生质量。

四、实验结果与分析经过24小时的培养观察,我们发现样品稀释度为10倍和100倍的培养管中形成了典型的大肠菌群菌落。

根据MPN表进行统计分析,得出样品中大肠菌群的数量为9.0×10²CFU/mL。

根据国家相关标准,该样品的大肠菌群数量超过了安全阈值(<10³CFU/mL),因此该样品的卫生质量不达标。

五、结论与建议通过本实验的检测和分析,我们得出样品中大肠菌群的数量超出了安全阈值,说明该样品的卫生质量不符合要求。

这可能是由于生产过程中的污染、储存条件不当或运输环节不卫生等原因导致的。

为了确保食品安全和人类健康,建议相关部门加强对食品生产和流通环节的监管力度,提高食品产业的卫生质量标准,并采取有效的措施确保食品的安全性。

检测大肠菌群实验报告

检测大肠菌群实验报告

检测大肠菌群实验报告大肠菌群实验报告引言:大肠菌群是人体肠道中的一类重要菌群,它们在维持肠道健康、参与营养吸收和免疫调节等方面发挥着重要作用。

为了解大肠菌群的组成和功能,我们进行了一项实验,通过检测大肠菌群的数量和多样性,探索其与人体健康的关系。

实验方法:我们从20名健康成年人的粪便样本中提取DNA,并利用16S rRNA基因测序技术对样本进行分析。

首先,我们通过PCR扩增16S rRNA基因片段,然后进行高通量测序。

接下来,我们对测序结果进行生物信息学分析,包括序列比对、物种注释和多样性分析。

实验结果:通过测序分析,我们获得了大肠菌群的组成和多样性信息。

结果显示,被检测样本中存在多种大肠菌群,包括埃希菌、肠球菌、梭菌等。

其中,埃希菌是最常见的大肠菌群之一,它在人体肠道中起到重要的消化和吸收功能。

此外,我们还发现不同个体的大肠菌群组成存在差异,这可能与个体的饮食、生活习惯等有关。

进一步分析显示,大肠菌群的多样性与人体健康密切相关。

我们发现,大肠菌群的多样性指数与肠道功能的稳定性呈正相关。

多样性较高的个体通常具有更好的肠道健康状况,包括较低的肠道炎症和更高的免疫功能。

这与之前的研究结果一致,进一步验证了大肠菌群对人体健康的重要性。

讨论:通过本次实验,我们深入了解了大肠菌群的组成和多样性,并发现其与人体健康之间的关系。

然而,我们仍需进一步研究大肠菌群的功能和调控机制,以更好地理解其在人体中的作用。

此外,我们还需要注意实验的局限性。

由于样本数量有限,我们的研究结果可能存在一定的偏差。

未来,我们将拓展样本规模,加强对不同人群的研究,以获得更全面、准确的结果。

结论:本次实验通过测序分析揭示了大肠菌群的组成和多样性,并验证了其与人体健康之间的紧密联系。

这一研究结果对于深入理解大肠菌群的功能和调控机制具有重要意义,为进一步探索肠道微生物与人体健康之间的关系提供了基础。

总结:大肠菌群是人体肠道中的重要菌群,其组成和多样性与人体健康密切相关。

实验九 水中大肠菌群数的测定

实验九 水中大肠菌群数的测定

实验九水中大肠菌群数的测定一、目的要求学习大肠菌群数的检测原理和方法。

二、实验材料1.样品:水样2. 培养基:乳糖胆盐发酵管(单料及双料),伊红美兰琼脂(EMB)平板,乳糖发酵管。

3. 其他:显微镜,酒精灯,无菌吸管(10m1、1m1),接种环,载玻片等三、基本原理水中的病原菌多数来源于病人和病畜的粪便。

由于病原菌的数量少,检测过程复杂,因此,直接测它们的存在是非常困难的专业化工作。

由于大肠菌群在粪便中数量大,在体外存活时间与肠道致病菌相近,且检验方法比较简便,因此一般采用测定大肠菌群或大肠杆菌的数量来作为水被粪便污染的标志。

如果水中大肠菌群的菌数超过一定的数量,则说明此水已被粪便污染,并有可能含有病原菌。

大肠菌群的定义是指一群好氧和兼性厌氧、革染氏阴性、无芽孢的杆状细菌,并能在乳糖培养基中,经37℃24~48h培养能产酸产气。

我国规定每升自来水中大肠菌群不得超过3个。

检测大肠菌群的方法有稀释培养法和膜滤法两种,其中稀释培养法是标准分析法,为我国大多数卫生单位和水厂所使用。

它包括初发酵试验、平板分离和复发酵试验三个部分。

四、方法与步骤1.采样:取100ml磨口带塞玻璃瓶,包扎后,干热灭菌备用。

取自来水样时,至少应先放水5min,以冲去龙头口所带的微生物,获得主流管中有代表性的水样。

取样时,用右手握瓶,左手启开瓶塞,用覆盖瓶口的纸托住瓶塞,收集样品后,连同覆盖纸一起将瓶口塞好,并用线绳在原处扎好。

注意手指不得触及瓶口内部。

在静水中取样时,先用右手揭去塞子,瓶口朝下浸入水下约30cm处,然后将瓶子反转过来,待水注满后,取出塞好瓶口。

如果水在流动,瓶口必须迎着水流,以免手上的细菌被水冲进瓶子。

2.水样放置过程中,内含的细菌数目和类型会发生变化,所以要求水样品应于6~10℃贮存,并不超过6h。

3.初发酵试验:吸取待检样品接种于乳糖胆盐发酵管内,10ml接种量采用双料发酵管,而lml及lml以下接种量采用单料管。

大肠菌群的测定实验报告

大肠菌群的测定实验报告

一、实验目的1. 了解大肠菌群在食品卫生检验中的意义。

2. 学习并掌握大肠菌群的检验原理和方法。

3. 通过实验,判断食品的卫生质量。

二、实验原理大肠菌群是指一群能在37℃经24小时发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。

该菌主要来源于人畜粪便,因此常作为粪便污染的指标来评价食品的卫生质量。

大肠菌群的存在反映了食品是否被粪便污染,同时也间接指出了食品是否有肠道致病菌污染的可能性。

食品中大肠菌群数以每100g检样内大肠菌群最近似数表示。

最近似数法是一种将样品多次稀释至无菌的计数方法。

将3个稀释梯度的检样稀释液接种于9支或15支试管培养基中,每个稀释度接种3支或5支。

经培养后,根据结果查阅MPN检索表,就可得到原样品中微生物的估计数量。

MPN测定方法尤其适用于带菌量极少、其他方法不能检测的食品,如水、乳制品及其他食品中大肠菌群的计数。

三、实验材料1. 样品:乳、肉、禽蛋制品、饮料、糕点、发酵调味品或其他食品。

2. 菌种:大肠埃希氏菌、产气肠杆菌。

3. 培养基及试剂:单料乳糖胆盐发酵管、双料乳糖胆盐发酵管、乳糖胆盐发酵管、伊红美蓝琼脂、革兰氏染色液、蛋白陈水、靛基质试剂、麦康凯(MA)。

4. 其他设备和材料:温室、高压湿热灭菌器、显微镜、载玻片、灭菌培养皿、灭菌吸管、试管、三角瓶、接种环。

四、实验方法1. 样品处理:取适量样品,加入适量生理盐水,充分振荡,制成均匀的悬液。

2. 稀释:将悬液进行系列稀释,分别取一定量的稀释液进行接种。

3. 接种:将稀释后的样品接种于乳糖胆盐发酵管中,置于37℃恒温培养箱中培养24小时。

4. 观察结果:观察发酵管中的气泡和颜色变化,判断是否存在大肠菌群。

5. 平板分离:将发酵管中的阳性菌液进行平板分离,观察菌落特征。

6. 鉴定:对分离得到的菌落进行革兰氏染色和生化实验,鉴定菌种。

五、实验结果与分析1. 样品处理:将样品制成均匀的悬液。

2. 稀释:将悬液进行系列稀释,分别取一定量的稀释液进行接种。

大肠菌群测定实验报告

大肠菌群测定实验报告

大肠菌群测定实验报告大肠菌群测定实验报告引言:大肠菌群是人体肠道中的一类重要菌群,对人体健康起着至关重要的作用。

本实验旨在通过测定大肠菌群的数量和种类,了解其在人体健康中的重要性,并探讨不同因素对大肠菌群的影响。

实验方法:1. 实验材料准备:收集参与实验者的粪便样本,标记编号。

2. 样本处理:将粪便样本均匀取样,并加入适量的生理盐水进行稀释。

3. 菌落计数:将稀释后的样本分别均匀涂布在含有营养物质的琼脂平板上,进行培养。

4. 菌落观察:观察培养后的琼脂平板上的菌落形态,记录不同形态的菌落数量。

5. 菌种鉴定:通过形态学特征和生化试验等方法,对菌落进行鉴定,确定大肠菌群的种类。

实验结果:经过菌落计数和菌种鉴定,我们得到了以下实验结果:1. 大肠菌群数量:参与实验者的大肠菌群数量在不同个体间有所差异,平均菌落计数为X CFU/g。

2. 大肠菌群种类:通过菌种鉴定,我们确定了参与实验者大肠菌群的主要种类,包括大肠埃希菌、肠球菌等。

讨论:1. 大肠菌群与人体健康:大肠菌群在人体健康中起着至关重要的作用。

它们参与食物消化、维持肠道黏膜屏障功能、合成维生素等多种生理过程。

因此,大肠菌群的数量和种类的稳定与人体健康密切相关。

2. 影响大肠菌群的因素:大肠菌群的数量和种类受到多种因素的影响,包括饮食习惯、生活环境、抗生素使用等。

不良的饮食习惯、环境污染以及滥用抗生素可能会导致大肠菌群失衡,从而引发肠道疾病。

3. 维护大肠菌群健康的方法:保持均衡的饮食,摄入足够的膳食纤维和益生菌,避免滥用抗生素,定期进行大肠菌群检测等,都是维护大肠菌群健康的重要方法。

结论:通过本次实验,我们了解到大肠菌群在人体健康中的重要性,并明确了影响大肠菌群的因素。

为了维护大肠菌群的健康,我们需要注意饮食习惯、生活环境以及合理使用抗生素等。

进一步研究大肠菌群与人体健康的关系,有助于预防和治疗肠道相关疾病,提高人体健康水平。

参考文献:1. Sekirov, I., Russell, S. L., Antunes, L. C., & Finlay, B. B. (2010). Gut microbiota in health and disease. Physiological reviews, 90(3), 859-904.2. Qin, J., Li, R., Raes, J., Arumugam, M., Burgdorf, K. S., Manichanh, C., ... & Wang, J. (2010). A human gut microbial gene catalogue established by metagenomic sequencing. Nature, 464(7285), 59-65.。

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九龙江水大肠杆菌
群的测定
林淑丽
(漳州师范学院10级生物系食品科学与工程 101304116)
摘要:本文通过多管发酵法、革兰氏染色法两种不同的方法测定九龙江水大肠杆菌群数量。

初步掌握多管发酵法及革兰氏染色法。

了解大肠杆菌在饮水中的重要性和革
兰氏染色原理在细菌分类鉴定的重要性。

关键词:多管发酵法大肠杆菌九龙江水革兰氏阴性无芽孢杆菌
THE DETERMINATION OF COLIFORM BACTERIA WHICH IN THE
JIULONG RIVER
Lin Shuli
(10Food science and engineering in Biology department, Zhangzhou Normal
University 101304116)
Abstract: this article through multiple tube fermentation and gram's staining method two different methods to determine the Kowloon river escherichia
coli group of quantity. Preliminary grasp tube fermentation and gram's
staining method. Understand the importance of e. coli in drinking water
and gram stain principle in the importance of bacteria classification
and identification.
Keywords: much tube fermentation; E. Coli; the water of Jiulong River;
gram-negative; sporeless bacterium
大肠杆菌(学名:Escherichia coli,通常简写为E. coli))是生活在温血动物(包括鸟类和哺乳动物)大肠中的重要细菌种类,对食物正常消化具有重要作用。

技术上,大肠菌群被定义为一群能发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽胞杆菌,可利用乳糖在48小时内35℃之下产生气体的杆菌。

在水净化和污水处理领域,大肠杆菌很早就被选作水污染程度的指示性物种,标志着有多少人类粪便存在于水中,其测量标准为大肠菌群指数。

故以此作为粪便污染指标来评价食品的卫生质量,推断食品中有否污染肠道致病菌的可能。

大肠杆菌也常作为饮水和食物(或药物)的卫生学标准。

1 材料与方法
1.1试验菌株培养与培养基的制备
1.1.1 试验菌株
大肠杆菌
1.1.2培养基的配制与培养条件
本实验所用培养基采用乳糖胆盐蛋白胨培养基和伊红美蓝琼脂培基,培养温
度:37℃,培养时间:1-- 2天,常压空气下培养。

1.2操作步骤
1.2.1 多管发酵
1. 水样的采集:
用高温灭菌过的试剂瓶到九龙江取水,将瓶子连瓶盖一起伸到10-15 厘米的深处打
开瓶塞,等水满后盖上盖子后从水中取出。

运送水样时应避免玻璃瓶摇动,水样溢
出后又流回瓶中,从而增加污染。

2. 水样的稀释:
将灭菌的三根小试管标上1、2、3的记号,各装4.5ml的无菌。

充分振荡水样,从
中吸取0.5ml于1号试管中,,充分振荡既得1:10的稀释液。

同理配置2,3号试
管1:100,1:1000的稀释液。

3. 水源水的检查
(1) 初步发酵试验:有50ml三倍浓缩乳糖蛋白胨发酵瓶中,加入50ml水样(轻度污染水的
测定);在1支含有5ml三倍浓缩乳糖蛋白胨的大发酵管中,加入10ml水
样(轻、中度污染水的测定各一支)。

(2) 从原水样、1:10,1:100,1:1000的稀释液各吸取1ml于四支经过灭菌的
装有10ml普通浓度乳糖蛋白胨中。

(每吸取一次,吸头都要换一次)
(3) 将上述溶液混匀后,于36摄氏度培养24h,24h未产气的继续培养至48h。


录其稀释液的产气管数(如图表一),进行复发酵试验。

(4) 平板分离:经24h 培养后,将产酸产气及48h 产酸产气的发酵管(瓶),分别划线接
种于伊红美蓝琼脂平板上,再于37℃下培养18-24h,将符合下列特征的菌
落的一小部分,进行涂片,革兰氏染色,镜检。

(5)复发酵试验: 经涂片、染色、镜检,如为革兰氏阳性无芽孢杆菌,则挑取该菌落的另一部分,重新接种于普通浓度的乳糖胆盐蛋白胨发酵管中,每管可接种来
自同一初发酵管的同类型菌落1-3个,37℃培养24h,结果若产酸又产气,
即证实有大肠菌群存在。

证实有大肠菌群存在后,再根据初发酵试验的阳
性管(瓶)数查表,即得大肠菌群数。

1.2.2 革兰氏染色
1. 制片
(1)涂片:取干净载玻片一块,在载玻片中间加一滴蒸馏水,按无菌操作法取菌涂片,制成很薄的涂面,注意取菌不要太多。

(2)晾干:让涂片在酒精灯火焰上方文火烘干。

(3)固定:手执玻片一端,让菌膜朝上,通过火焰2-3次固定(以不烫手为宜)
注意:
①要用活跃生产期的幼培养物做革兰氏染色;
②涂片用的载玻片要洁净无油污迹,否则影响涂片。

③挑菌量应少些,涂片宜薄,过厚重叠的菌体则不易观察清楚。

2. 初染
(1)结晶紫色染色:将玻片置于干净的培养皿上,加适量(以盖满细菌涂面)的结晶紫染色液染色1-2分钟。

(2)水洗:倾去染色液,用水小心地冲洗。

3. 媒染
(1)用碘液冲去残水,并用碘液覆盖约1分钟。

(2)水洗:用水洗去碘液。

4.脱色
用滤纸吸去玻片上的残水,将玻片倾斜,在白色背景下,用滴管流加95%的乙醇脱色,直至流出的乙醇无紫色时,立即水洗。

革兰氏染色成败的关键是脱色时间,如脱色过度,革兰氏阳性细菌也可被脱色而被误认为是革兰氏阴性细菌。

而脱色时间过短,革兰氏阴性细菌则会被误认为是革兰氏阳性细菌。

脱色时间的长短还受涂片的厚薄、脱色时玻片晃动的程度等因素的影响。

脱色时间一般约20-30s。

5. 复染
(1)用番红复染约2分钟。

(2)水洗:用水洗去涂片上的番红染色液。

(3)晾干:将染好的涂片用吸水纸吸干。

6.镜检
镜检时先用低倍,再用高倍,最后用油镜观察,并判断菌体的革兰氏染色反应性。

被染成蓝紫色的是革兰氏阳性菌,被染成红色的是革兰氏阴性菌。

2 结果与分析
2.1 稀释液产气管数(表一)
2.2 大肠菌群检数
表1:大肠菌群检数表(严重污染水)
据大肠菌群检数表可知:每升水样中大肠杆菌群数为23000,故得九龙江水属于严重污染水。

2.2油镜下观察到的菌体
在显微镜下观察到的大肠杆菌的形态——杆形,红色。

3总结与讨论
(1)通过这次实验,我们学习了测定水源大肠杆菌的数量的两种方法,多管发酵法和革兰氏染色法。

并且初步掌握了其原理及操作方法。

(2)在多管发酵的初发酵中水样接种于发酵管内,24h 内小套管中有气泡形成,并且培养基浑浊,颜色改变,说明水中存在大肠杆菌,为阳性结果,但也有个别其他类型的细菌在此条件下也可能产气;此外产酸不产气的也不能完全说明是阴性结果,在量少的情况下,也可能延迟48h 后才产气,此时应视为可疑结果,因此,以上两种结果均需继续做平板发酵和复发酵试验,才能确定是否是大肠菌群。

48h 后仍不产气的为阴性结果。

(3)革兰氏染色操作包括涂片,固定,初染,媒染,脱色,复染。

实验过程中,我们进行革兰氏染色时,染色涂片太厚。

因此我们总结出在涂时注意取适量的菌体;
(4)实验过程中,我们进行革兰氏染色时,大肠杆菌体有点小,可能原因:1.平板培养时菌体过多菌体生长缓慢。

2.涂片太厚,菌体互相重叠。

制片时温度过高使得菌体轻度脱水收缩。

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