人胚胎干细胞培养手册

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胚胎干细胞的培养

胚胎干细胞的培养

胚胎干细胞的体外培养胚胎干细胞(embryonic stem cell, ES cell)也称ES细胞,是一种存在于着床前早期胚胎中的具有全能性的细胞。

全能性即分化发育成三个胚层的组织细胞的能力。

胚胎干细胞能在体外进行培养传代,保持未分化二倍体状态以及其全能性,具有形成嵌合体动物(chimeric animal)的能力。

胚胎干细胞最早由Evans和Kaufman(1981)两人以及Martin(1981)分别从小鼠早期胚胎中分离培养成功并建立细胞系。

由于其具有全能性,故广泛用于胚胎发育及胚胎工程方面的研究。

例如在培养液中加入不同的分化因子,可定向诱导其分化发育成心肌细胞、淋巴细胞以及神经细胞,甚至可用它培养出器官;可用不同的外源性基因转染胚胎干细胞,或在胚胎干细胞水平上进行基因敲除或基因打靶,经体外筛选后建立带有目的基因的细胞系或将筛选后带有目的基因的胚胎干细胞注射到宿主着床前胚胎内,并移植到假孕母体子宫腔内使之发育成个体。

从而建立转基因动物、基因敲除动物和基因打靶动物,研究基因在分化发育过程中的表达与调控以及制备人类疾病动物模型等。

由于胚胎干细胞在体外培养过程中极易分化和失去正常二倍体核型,进而失去全能性和丧失形成嵌合体动物的能力,故需要特殊的培养条件。

目前, 由于小鼠胚胎干细胞体外培养技术最为成熟,本文将以此为例,较详细地介绍胚胎干细胞体外分离培养和鉴定等实验技术。

一、胚胎干细胞体外培养原理胚胎干细胞体外培养的原则是: 在促进胚胎干细胞增殖的同时,维持其未分化二倍体状态。

胚胎干细胞一旦分化即失去其全能性,失去二倍体正常核型的细胞则会大大降低形成嵌合体(chimera)的能力,特别是进入种系形成生殖细胞的能力。

目前体外培养胚胎干细胞的方法归纳起来有二大类:有饲养层培养法和无饲养层培养法。

有饲养层培养法主要应用小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)和SIM小鼠成纤维细胞耐硫代鸟嘌呤和耐乌苯苷亚系STO细胞作为饲养细胞;经丝裂霉素-C或γ-射线处理终止其分裂后制备成饲养单层(feeder layer),将胚胎干细胞种植在这样的单层上。

胚胎干细胞的培养与应用

胚胎干细胞的培养与应用

胚胎干细胞的培养与应用随着科学技术的不断进步,胚胎干细胞已经成为了当今医学研究的热门话题。

那么,什么是胚胎干细胞呢?胚胎干细胞是从受精卵发育而来的一类全能分化干细胞,具有极高的发展潜能和可塑性,能够不断分化为各种不同类型的细胞。

在医学上,胚胎干细胞被广泛应用于组织修复、疾病治疗等方面。

一、胚胎干细胞的培养1. 胚胎干细胞的提取胚胎干细胞的来源主要是人类受精卵和早期胚胎组织。

实际上,胚胎干细胞的提取违反了一些伦理原则,因为需要拆卸一个活生生的胚胎。

因此,在国际上,提取胚胎干细胞的过程和规范都有非常严格的要求。

2. 胚胎干细胞的培养和分化提取到的胚胎干细胞需要进行培养,以维持其生长和发育。

目前,利用培养基、小鼠胚胎等条件进行体外培养的方法比较常见。

培养基中含有不同浓度的各种细胞因子,可以促进胚胎干细胞不断分化为不同类型的细胞。

目前,科学家们已经成功培育出一些实验用的胚胎干细胞系,并利用这些细胞系进行了一些基础研究和实验。

二、胚胎干细胞的应用1. 组织修复胚胎干细胞具有不同类型的分化潜能,能够分化为各种类型的细胞,如心肌细胞、神经细胞、肝细胞等。

这些细胞可以重新修复和再生人体各种组织和器官,包括心脏、脑部、肝脏等。

因此,利用胚胎干细胞实现组织修复已成为医学领域的重要研究方向。

2. 疾病治疗利用胚胎干细胞进行疾病治疗是另一个重要的应用领域。

某些细胞如神经细胞等无法自我修复,其损伤导致的疾病无法治愈。

此时,胚胎干细胞通过分化成相应类型的细胞,能够重新修复并替代受损细胞,从而实现治疗。

例如,利用胚胎干细胞治疗糖尿病、帕金森病等疾病的研究已经有了一些初步进展。

三、胚胎干细胞研究面临的挑战和展望1. 伦理问题胚胎的提取和胚胎干细胞的研究一直是一个伦理和道德问题争议的焦点。

因此,正确认识和解决这些问题,将有助于推动胚胎干细胞研究的发展。

2. 法律法规目前,国际上对胚胎干细胞培育和应用的法律法规比较不一致,这也给胚胎干细胞研究和应用带来了一定的不确定性和局限性。

胚胎干细胞体外培养.

胚胎干细胞体外培养.

胚胎干细胞体外培养.胚胎干细胞体外培养(一)胚胎干细胞的来源目前胚胎干细胞的主要来源有:①囊胚的ICM及受精卵发育至桑葚胚之前的早期胚胎细胞;②从胚胎生殖嵴及肠系膜中分离原始生殖细胞PGCs后培养建系的胚胎生殖细胞(embryonic germ cells,EG细胞),也具有ESCs的特性,可以分化为各种类型的成熟细胞;③体细胞核转移(somatic cell nuclear transplantation,SCNT)至去核卵母细胞后培育出来的全能细胞。

其中囊胚的ICM最为常用。

(二)胚胎干细胞的分离1.分离获取ESCs的时间:以既保证ESCs的全能性又要有足够的细胞数量为原则来确定ESCs分离获取的最佳时间。

以ICM为ESCs来源时:小鼠取3~5天囊胚;猪取9~10天囊胚;羊取7~8天囊胚;牛取6~7天桑葚胚或早期囊胚;人取7~10天囊胚。

以PGCs取ES 细胞时:小鼠取12.5天胎儿生殖嵴;大鼠可取10.5天尿囊、中胚层组织块、12.5天背肠系膜或13.5~14.5天生殖嵴;牛取29~35天胎儿生殖嵴;人取35~63天的生殖嵴。

2.分离获取ESCs的方法:从PGCs分离ESCs的方法常为机械剪切与消化相结合法,即把采取的胚胎组织充分剪碎,采用EDTA、EDTA/胰酶消化。

从囊胚分离ICM的方法主要有三种:(1)免疫外科学方法:体外培养的小鼠胚泡去除透明带后,经兔抗JCR小鼠脾脏细胞抗血清(抗H-26)作用30分钟,移至1∶6稀释的新鲜豚鼠血清中作用30分钟,Hank’s液冲洗,此时胚泡的滋养外胚层呈空泡状,用眼科手术刀挑去死了的滋养层细胞,留存ICM 细胞用于培养。

这种方法利用囊胚腔对抗体的不通透性,通过抗体、补体结合对细胞的毒性杀伤作用,去除滋养层细胞,保留ICM细胞进行培养。

(2)组织培养法:在小鼠受精2.5天后切除卵巢,给予外源激素,使胚胎继续发育,但延缓着床,4~6天后,由子宫冲取胚泡进行培养。

胚胎干细胞的分离培养技术(最全版)PTT文档

胚胎干细胞的分离培养技术(最全版)PTT文档
胚胎干细胞的分离培养技术
ES细胞的特点:
➢ES细胞具有胚胎细胞的特性,在形态上表现为
体积小、核大,核仁突出,培养时呈克隆状生 长;在功能上,ES细胞具有发育的全能性,即 具有分化为成年动物体内任何一种细胞类型的 能力。
➢ES细胞具有细胞系的特征,在饲养层上能维持
未分化状态并实现自我更新。因为可无限增殖, 也可冷冻保存。
ICM PGCs i在E1F(EEnw、eSSSt功hom细 细 细根itL能ae胞胞胞a据lep上n可具在i细dpg,rim用有哺ga胞lEcee于胚乳e的nSt t6b研胎动细a分8ltai究细物胞9o化s9nt细胞个具o特doce胞的体有ny点vsh癌特发发et建selo.变性生育a立pde机,发的更adn理在育全有frdo和形规能效lme新态律性g的as药上的,)培D. 物表研即u养ro的现究具体c筛为中有-系P选体极分iet。积有化ra小价为in 、值成bla核的年st大工动oc,具物ys核;体t (仁内red突任a出何nd,一b培种la养细ck时胞pi呈类gm克型e隆的nta状能tio生力n长。) in;jected with German Land-race PGCs
嵌合体动物制作方法: 1、集合(凝集)法:在卵裂阶段使2个以上的
胚胎发生粘着和结合。 2、注入法:在临近着床的胚泡期,用显微操作
方法将另一个体的细胞注入到囊胚腔中。
研究现状:
家畜的嵌合体不但已在个体间和品种间 取得成功(绵羊、牛等),而且在异种间 也得到了活的后代,如绵山羊人工嵌合体, 该技术对遗传学研究具有重要意义,塑造 特异性状的新奇物种,从而为动物园展示 了新的前景,嵌合体也被用来研究免疫学 系统的机理。
延迟小鼠囊胚中分离出来的多能性细胞,当 时称之为EK细胞。以后称之为胚胎干细胞。

以人皮肤成纤维细胞作为饲养层细胞培养人胚胎干细胞_杨俊林

以人皮肤成纤维细胞作为饲养层细胞培养人胚胎干细胞_杨俊林

·基础研究·以人皮肤成纤维细胞作为饲养层细胞培养人胚胎干细胞*杨俊林刘雄昊喻姣玲冯劢谭杨李卓吴奔高庭潘盛邬玲仟梁德生夏家辉(中南大学医学遗传学国家重点实验室湖南长沙410078)摘要目的:比较人皮肤成纤维细胞(human dermal fibroblasts,HDFs )与小鼠胚胎成纤维细胞(Mouse embryonic fibroblasts,MEFs)的增殖能力及研究人皮肤成纤维细胞作为饲养层支持人胚胎干细胞(human embryonic stem cells,hESCs )未分化生长的能力。

方法:利用组织贴壁法从人皮肤中分离出HDFs ,通过细胞形态的观察和生长曲线的绘制比较HDFs 与MEFs 的体外增殖能力。

将HDFs 作为饲养层细胞与hESCs 共培养,传代12代后,检测hESCs 碱性磷酸酶(AKP)、表面特异性标志及胚胎干细胞特异性转录因子。

结果:HDFs 可连续传代培养15代以上,10代以下的HDFs 增殖迅速,而MEFs 自第4代起,增殖能力就明显下降;hESCs 在HDFs 饲养层上可传代培养12代以上,克隆边界清晰,细胞排列紧密,碱性磷酸酶、表面标志物检测均呈阳性,表达了hESCs 特异性转录因子。

结论:HDFs 比MEFs 具有更强的增殖能力;HDFs 可作为培养hESCs 的饲养层细胞。

关键词:人胚胎干细胞;人皮肤成纤维细胞;饲养层细胞中图分类号:R329.2文献标识码:A 文章编号:1673-6273(2009)16-3001-05Culture of human embryonic cells by using human dermal fibroblasts asfeeder cells*YANG Jun-lin,LIU Xiong-hao,YU Jiao-ling,FENG Mai,TAN Yang,LI Zhuo,WU Ben,GAO Ting,PAN Sheng,WU Ling-qian,LIANG De-sheng,XIA Jia-hui(State Key Laboratory of Medical Genetics,Central South University,Changsha,410078,China )ABSTRACT Objective:To compare the proliferative potential of human dermal fibroblasts(HDFs)and mouse embryonic fibroblasts (MEFs),and to explore the feasibility for HDFs as feeder cells to support the growth of human embryonic cells (hESCs).Methods:HDFs were obtained from human skin by using the method of tissue-adherence.The proliferative capacities of HDFs and MEFs were compared by cell morphology and growth curve.HDFs were used as feeder cells to culture hESCs.After growing on HDFs for 12passages,the hESCs were tested for the expressions of alkaline phosphatase (AKP),the cell surface markers and cell-specific transcription factor of hESCs.Results:HDFs could be subcultured for more than 15passages,and retained strong proliferative potential before 10passages,while it decreased obviously in MEFs after subcultured for 4passages.The hESCs can passaged on HDFs feeder cells for 12passages with tightly packed cells and clear boundaries of clone,showing the positive results of alkaline phosphatase (AKP)and the cell surface markers and the expression of hESCs-specific transcription factor.Conclusion:HDFs showed a stronger proliferation ability than MEFs;HDFs can support the growth of hESCs.Key words:Human embryonic stem cells;Human dermal fibroblasts;Feeder cells Chinese Library Classification:R329.2Document code:A Article ID:1673-6273(2009)16-3001-05*基金项目:国家重点基础研究发展计划(2004CB518800),国家高技术研究发展计划(2007AA021002和2007AA021206)和国家自然科学基金(30700458和30971298)作者简介:杨俊林(1977-),男,博士研究生,主要研究方向:基因治疗与干细胞生物学,E-mail :yangjunlin@ 刘雄昊(1975-),男,博士,助理研究员,主要研究方向:基因治疗与干细胞生物学,E-mail :liuxionghao@ 杨俊林、刘雄昊为并列第一作者△通讯作者:梁德生,E-mail :liangdesheng@ (收稿日期:2009-07-06接受日期:2009-07-30)前言自1998年Thomson [1]等人建立第一株人胚胎干细胞(hu-man embryonic stem cells,hESCs )细胞系以来,hESCs 迅速成为人干细胞领域的研究热点。

人胚胎干细胞分离培养与纯化

人胚胎干细胞分离培养与纯化

人胚胎干细胞
1.原代培养及纯化
复苏冷冻的胚胎,用G1.3、G2.3序贯培养法培养至囊胚。

将扩张囊胚移入链霉蛋白酶中,在光镜下观察,在透明带即将完全消化溶解之前移出,用DPBS或DMEM-F12液充分洗涤后种植到灭活的鼠胚胎成纤维细胞上。

种植后每隔12 h观察孵出囊胚的贴壁、增殖情况和分化倾向,种植后约36~48 h后换液,随后每天半量换液或根据培养孔内细胞代谢情况予以换液。

原代克隆生长10~14 d时进行初次传代,前5 代细胞采用机械法,即用拉细的玻璃毛细管将细胞团块刮出,再用1 ml注射器针头在体式显微镜下将克隆分散成适当团
块,重新接种到预先种有饲养层的培养皿中,每日换液。

待hES细胞生长稳定后换用0.05%dispase消化细胞,37℃作用3~5 min,吸管轻轻吹打成约含30--50个细胞的小团块,传代培养,每日换液。

2.原代培养及纯化
将hES细胞培养于60mm组织器官培养皿中。

培养皿事先用含有0.1%白明胶包被及加入1 x 106个经放射性照射的MF1鼠胚胎成纤维细胞。

hES细胞用Thomson细胞培养液于37℃、5%二氧化碳培养箱内进行培养至细胞克隆增大,未分化的干细胞克隆在7-10 d左右被轻轻切割成6-8小块,转移到三个培养皿中再进行培养。

人类胚胎干细胞基础培训教材

人类胚胎干细胞基础培训教材

人类胚胎干细胞基础技术高级培训班2010-12目录1. 绪论 (4)2. 饲养层细胞的制备 (5)2.1 从胎鼠获得小鼠胚胎成纤维细胞(MEF) (5)2.2 MEF的传代 (6)2.3 MEF的冻存 (6)2.4 MEF的失活 (7)3. 饲养层细胞的准备 (8)4. ES/iPS细胞的复苏 (10)5. ES/iPS细胞的传代 (11)6. ES/iPS细胞的冻存 (13)7. 人类胚胎干细胞的无滋养层培养 (14)7.1 人类胚胎干细胞条件培养基(CM)的收集 (14)7.2 无饲养层人胚胎干细胞系的培养及传代 (14)8. 拟胚体的形成 (15)9. 胚胎干细胞全能性的鉴定 (16)9.1碱性磷酸酶活性检测 (16)9.2干细胞表面marker的免疫染色检测 (17)9.3干性因子的去甲基化程度分析 (18)9.4干细胞内源基因的表达分析 (21)9.5端粒酶活性检测 (22)9.6核型检测 (23)9.7拟胚体形成 (23)9.8畸胎瘤形成实验 (23)10. 干细胞技术培训及服务一览表 (24)11. 附录 (25)1.绪论本操作手册将为您详细介绍人胚胎干细胞/iPS细胞培养的基础知识、技术细节及相关的产品信息。

目的是为了让您更好地培养您购买的细胞,请按照此手册进行培养操作直至获得可靠的冻存细胞。

上海斯丹赛生物技术有限公司专业提供各类胚胎干细胞/iPS细胞及成套产品服务,为您的干细胞研究提供一站式解决方案。

2.饲养层细胞的制备材料与仪器♦成纤维细胞完全培养基,货号EFM-01♦胰酶,货号M-005-1♦成纤维细胞冻存液(2x),货号EFFM-01♦基质胶(Matrigel matrix),BD Pharmingen,货号356235♦CF-1小鼠胚胎成纤维细胞(MEF),货号MEF-CF1-01♦T25透气培养瓶,NUNC,货号156367♦T75透气培养瓶,NUNC,货号156499♦ 2 ml移液管,NUNC,货号159617♦5ml移液管,NUNC,货号159625♦10 ml移液管,NUNC,货号159633♦15ml离心管,货号366036♦50ml离心管,货号373660♦冻存管,NUNC,货号377267♦Thermo-Fisher Finnpipette F3移液器和灭过菌的枪头♦生物安全柜,货号♦CO2培养箱,Thermo,HERA cell 150i♦电子计数器,millipore,货号PHCC00000♦电动移液器,Thermo Scientific Finnpipette C1,货号4580800♦低速离心机,Thermo Scientific CL10♦液氮罐,Thermofisher,货号CN509002.1从胎鼠获得小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)1. 拉断颈椎处死怀孕12-13天的CF-1小鼠,浸入70%的酒精中消毒。

IPS技术手册

IPS技术手册

人类诱导性多能干细胞(iPS细胞)技术指导手册目录:1.前言 (1)2.人类胚胎成纤维细胞培养 (2)3.重编程载体构建 (3)4.病毒包装 (4)5.人类iPS细胞的诱导 (6)6.iPS细胞鉴定 (8)6.1碱性磷酸酶活性检测 (9)6.2干细胞表面marker的免疫染色检测 (9)6.3干性因子的去甲基化程度分析 (11)6.4干细胞内源基因的表达分析 (13)6.5端粒酶活性检测 (14)6.6核型检测 (15)6.7拟胚体形成 (15)6.8畸胎瘤形成实验 (15)7.干细胞技术培训及服务一览表 (15)8.附录 (16)1.前言iPS细胞最初从成纤维细胞重编程而来,因为它们准备和操作相对简单。

其他细胞类型,包括来自外胚层、中胚层和内胚层的细胞也可以用于产生iPS细胞(Eminili et al2008)。

2006年Yamanaka和Takahashi利用逆转录病毒系统在成鼠的成纤维细胞导入四个转录因子(Oct3/4,Sox2,c-Myc,和Klf4,Yamanaka因子),将其重编程为iPS细胞,它具有跟小鼠ES十分相似的特性,尤其重要的是,iPS细胞也能产生后代。

2007年,iPS技术在人类体细胞中得以应用,人类iPS 细胞的产生对退行性疾病的治疗产生巨大的影响(Takahashi et al;Yu et al,2007)。

由于iPS细胞具有和ES类似的功能,却绕开了胚胎干细胞研究一直面临的伦理和法律等诸多瓶颈,因此在医疗领域的应用前景非常广阔,成为干细胞研究的热点,《自然》和《科学》杂志分别将其评为2007年第一和第二大科学进展。

随后,iPS细胞的研究日新月异。

.近几年来,iPS研究方面取得的一系列的重大成果让我们欣喜不已,然而,这才刚刚开始,iPS细胞能真正用于临床惠及大众还面临着很多技术上的问题。

一方面iPS产生的方法有待改进;另一方面iPS细胞的定向分化手段需继续探索。

斯丹赛干细胞生物技术公司拥有成熟稳定的胚胎干细胞/iPS细胞技术平台,将竭力为全国各类进行干细胞/iPS研究的科研机构、高校、相关医疗机构和制药企业等提供高品质产品和优质的服务。

胚胎干细胞培养标准化操作规程(SOP)

胚胎干细胞培养标准化操作规程(SOP)

一、细胞多能性胚胎干细胞产生于小鼠胚泡1.表达绿色荧光蛋白(EGFP)的B5-ES细胞。

由Dr. Nagy的实验室制备。

2.D3-ATCC; CRL-1934. 我们得到时大约传了17代。

3.J1-由Dr. Jaenish的实验室友情提供。

我们得到时大约传了7-9代。

4.J1rtTA-rtTA表达J1细胞,由Dr. Jaenish的实验室友情提供。

5.表达黄色荧光蛋白的YC5-ES细胞,由Dr. Nagy的实验室提供。

二、一般培养——维持ES细胞处于未分化状态ES细胞培养用含有ESGRO(白血病抑制因子)的高糖培养基来阻止细胞的分化。

为细胞提供包被有0.1%明胶的平板作为粘附细胞的基质。

建议每2-3天从达到80%-90%融合的平板按1:8的比率传代细胞一次,细胞传代以后,在将细胞接种在0.1%明胶包被的培养皿之前,通过预先将细胞接种在没有经过包被的组织培养板2个小时,使分化细胞粘附,从而将分化和未分化细胞分开。

将细胞全程置于37℃,5%CO2,100%湿度条件下培养。

培养基ES:配制一20×不含DMEM,HS,ESGRO的溶液(该溶液也能用于EB培养基--见下文)。

分装在50ml FALCON管中,(稀释为2×,每管42ml),贮存在-20℃。

通过将21ml该溶液,HS 和ESGRO加入450mlDMEM中制备培养基,0.2μm滤膜过滤。

贮存于4℃。

注:一瓶DMEM 是500ml。

贮存液DMEM(高糖)马血清(HS)L-谷氨酰胺(200mM)MEM NEAA(10mM)HEPES(1M)β-巯基乙醇(55Mm)PESTESGRO复苏细胞细胞被冻存在10%二甲基亚砜(DMSO)中防止结晶的形成,结晶的形成会损害细胞。

然而,二甲基亚砜对细胞有毒性,快速的进行细胞复苏是很重要的。

步骤1.从液氮中取出一管细胞;2.将冻存管置于37℃水浴中2分钟(或放到管内溶液恰好完全溶解);3.将细胞转移到一15ml Falcon管中;4.加入5ml ES培养基(用培养基冲洗冻存管);5.离心3分钟;6.弃上清,用2ml ES培养基重悬细胞,至少吹打10次;7.接种在明胶包被(见下文)的6孔或6cm组织培养皿;8.孵育。

ECM及Matrigel使用手册

ECM及Matrigel使用手册

BD Bioscience Discovery Labware BD Biocoat TM产品使用指南BD Biocoat TM Matrigel TM 基质BD Biocoat TM细胞相关检测系统目录1BD Biocoat TM Matrigel TM 基质1.1 Matrigel基底膜基质胶 (1)1.2 高浓度HC Matrigel基底膜基质胶 (3)1.3 人来源细胞外基质 (4)1.4 Ⅲ型人重组胶原蛋白 (5)1.5 高浓度层粘连蛋白/巢蛋白混合物 (6)1.6 人胚胎干细胞专用的Matrigel基质 (7)2BD Biocoat TM细胞检测相关系统2.1 Biocoat肿瘤侵袭系统 (8)2.2 Biocoat血管生成系统:内皮细胞侵袭 (10)2.3 Biocoat血管生成系统:内皮细胞迁移 (12)2.4 Biocoat血管生成系统:内皮血管形成 (14)Caco-2检测系统 (15)2.5 BiocoatHTS附录:细胞培养系统快速使用指南 (17)Biocoat TM Matrigel TM常见问题 (17)1BD Biocoat TM Matrigel TM 基质1.1Matrigel基底膜基质胶BD产品货号:354230 354234 356230 356231 356234 356235 356237储存和运输:-20度储存,干冰运输。

操作指南BD采用专利技术,从富含胞外基质蛋白的EHS小鼠肿瘤中分离出BD Matrigel 基底膜基质,其主要成分由层粘连蛋白,Ⅳ型胶原,巢蛋白,硫酸肝素糖蛋白等组成,还包含生长因子和基质金属蛋白酶等。

BD Matrigel基底膜基质在室温条件下,聚合形成具有生物学活性的三维基质,模拟体内细胞基底膜的结构、组成、物理特性和功能,有利于体外细胞的培养和分化,以及对细胞形态、生化功能、迁移、侵染和基因表达的研究。

BD Matrigel 基底膜基质形成的三维培养基质,可促进上皮细胞、肝细胞、Sertoli细胞、黑色素瘤细胞、血管内皮细胞、甲状腺细胞及毛囊细胞等的贴壁与分化。

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人胚胎干细胞培养手册操作指南运输和保存:人胚胎干细胞(hESCs)和PMEFi被装在含90%FCS和10%二甲基亚砜的冻存管中,hESCs 4×105/管,可接种一个3.5cm培养皿(或六孔板的一个孔),PMEFi 4×106/管,可接种一块六孔板。

冻存管用干冰运输,收到后,hESCs投入液氮,PMEFi放入-80℃保存。

培养条件:温度:37±0.5℃CO2浓度:5.1±0.6%相对湿度:85-100%主要技术:1.细胞培养:当进行hESC培养时,总的培养原则必需遵守,所有的操作都应该在相应的细胞培养间和超净台内按无菌技术进行。

此外,通过安装空气处理和过滤设备减少空气颗粒制造一个相对洁净的空间。

当接触和细胞有关的一切试剂和材料时,应该带手套(包括开冰箱门)。

工作间在使用前后要用70%的异丙醇彻底消毒。

2.培养液和材料所有的培养液和试剂在使用前都要用0.2µm的滤膜过滤;培养瓶和TC材料在拿进培养间之前都应该用70%异丙醇消毒。

3.细胞处理为了便于操作,最好不要同时处理两个以上的标本。

操作时,在室温和低CO2的时间不要太长。

所有的细胞离心:室温,500-600g,5分钟。

培养液准备:MEF和hESCs培养液在无菌条件下进行,完成后用0.2µm的滤膜过滤。

当准备hESCs培养液时,保持一致性很重要。

如有可能,尽量使用相同的试剂。

使用满足于附录提供的血清替代品尤为重要。

生长因子应该最后添加,需要强调的是bFGF进行重悬时需要蛋白载体,在少量培养液中不要试图重悬它。

MEF培养液:hESCs培养液:冷冻培养液:90%FCS+10%二甲基亚砜, 0.2µm的滤膜过滤,4℃保存。

明胶准备:用超纯水配制0.1%明胶溶液,加热确保明胶完全溶解,使用前高压或0.2µm 的滤膜过滤。

明胶包被:接种细胞前,用0.1%明胶溶液包被培养皿,37℃至少30分钟,分别用1.5或4ml包被35mm或10cm培养皿。

在接种MEF前吸除明胶溶液。

准备MEF:可靠的MEF对hESCs的生长和存活是非常重要的。

每管含4×106PMEFi,可接种一块六孔板。

在复苏/传代hESCs前一到二天接种PMEFi,MEFs超过12-14天不能再用作滋养层。

种植MEFs:37℃预温MEF培养液,吸10ml到15ml无菌离心管中。

从-80℃取出MEF冷冻管,立即沁入37℃水浴中,大约30-45秒,细胞有80%融化时取出,立即拿进超净台,70%异丙醇消毒。

把细胞加有培养液的离心管中,最好用1ml 培养液冲洗冻存管,也加到离心管中。

500-600g,离心5分钟。

离心同时,从培养皿中吸出明胶,离心后,小心弃去上清,用12ml(6个孔)培养液重悬细胞,充分混匀,每孔加入2ml。

标记MEF皿,37℃过夜,让MEF贴壁。

6小时后细胞贴壁,最好在接种24-48小时使用,不要使用超过4天的MEF. hES dells所得到的hES cells在10cm培养长满后,分装6瓶,密度4×105cells/ml —对于绝大多数冷冻管。

HUES-9为0.5ml,复苏时时间要比其系短一些。

建议每管复苏到一个35mm培养皿中,或6孔皿的一个孔。

复苏1.接种hES细胞:复苏前应确保MEF已经被准备好且状态良好,不要应用MEF状态不好或超过3天的皿,建议事先标记好所有的离心管和培养皿。

预温hES培养液到37℃,一个细胞系吸取10mlhES培养液到无菌的和标好的15ml离心管中,从液氮中取出hES冷冻管,立即将冷冻管的下半部浸入37℃水浴中,大约45~60秒,细胞80%融化时从水浴中取出,立即将冷冻管拿到超净台中,70%酒精消毒,轻轻移入10ml预温培养基中。

建议用1ml预温培养液洗冷冻管后一并移入15ml离心管500~600g,5min,离心时,从培养箱中取出MEFS,在超净台里吸出培养液(需要几个孔吸几个孔),立即加入1ml hES 培养液,小心不要碰到MEFS,将其放置在超净台内,离心完后,小心吸出培养液,不要碰触离下来的细胞团(如有必要不要吸出所有的培养液。

用1ml培养液轻轻重悬细胞团,将1ml hES 溶液轻轻滴加到预先加入1ml hES培养液的MEF上,和MEF一样尽管使其均匀分布在培养皿上,轻轻移入培养箱,37℃过夜,让hES接种到MEFS上。

hES细胞培养hES细胞培养是费力的,除了复苏/传代的之外,培养液应该每天被更换。

此外,复苏或传代之后经常出现生长滞后现象。

因此,每天观察细胞非常重要,必须保证提前两天准备MEF,因为传代的时间可能会超出你的预期。

请注意,我们已经观察到在这些HUES细胞系,染色体的改变包括12三体(在两个细胞系:hVES-3和4)和其它改变(HUES-1 2号染色体增加)。

这些染色体的异常与增殖特点和双链期短等有关。

由于染色体异常在hES细胞系中是普遍的,建议经常进行染色体分析。

Day1hES细胞复苏24h后,4倍光镜观察,能看到有一些碎屑,这是正常的,不用担心,这些碎屑是死细胞的混合物。

在这个早期阶段,不要指望看到一些细胞团,如果死细胞层完全覆盖孔皿,建议更换部分培养液。

Day2-4通常复苏48h后第一次全部换液,建议2ml/well,复苏后第二天细胞团可以看到,以后每天更换培养液。

Day4-7根据我们的经验,复苏后最早4天最晚10天(此时MEF太老了)需要传代。

传代前的天数通常依赖很多因素,包括被复苏细胞的状态,平均起来,培养接近长满大约需要7天时间,对于一个给定的细胞系如何操作,请和我们联系。

如果复苏的细胞不能重现附录中描述的景象也不要气馁,我们已经注意到在复苏时有些不一致,一些细胞系比另外一些更稳定,出现不协调、扁平的细胞团,也是不少见的,甚至在极个别情况下全出现单层细胞,此时不要放弃,HVES细胞系的细胞形态在传一到两代后得到改善是很常见的。

hES细胞传代复苏4~7天后,细胞接近融合,接近融合的细胞通常1∶3传代。

在细胞分化前进行传代是非常重要的,如果细胞团在接近融合前开始变得带褐色,需要提早1∶2传代。

同样,如果细胞密度太大传代时也需要调整(平均分配,彼此接触)。

1∶3传代传代之前,确保你有预先铺好MEF的3孔皿。

MEF贴壁24h,但不超过3天。

37℃预温hES培养液和0.05%胰酶,在超净台里,预先标记一个15ml离心管,从培养箱中取出MEF,在超净台里吸出三孔的培养液,然后立即回加1ml/孔hES培养液,小心不要碰触MEF,然后将其防在超净台里。

下面的步骤要迅速以减少细胞没有hES培养液的时间。

从培养皿吸去hES培养液,用1×PBS轻轻洗孔皿,吸去PBS,加入0.3ml0.05%胰酶到孔皿中,盖上盖,在4倍光镜下观察细胞,hES细胞团周围的MEF开始回缩。

当MEF充分变圆及hES细胞团界限变得粗糙时,放回超净台,加2ml预温hES培养液到消化的细胞上,轻轻吹吸,洗皿底,直到MEF单细胞层完全分离(单细胞层很粘,可能仍有少量贴壁)。

把细胞悬液移入预先加入10ml培养液的离心管中,用1ml培养液洗孔皿,同样加到离心管中,此时,胰酶完全被抑制。

用加样器吹吸细胞悬液5~7次,分别将1ml悬液均匀滴加到孔皿中,不要晃动瓶皿,将孔皿轻轻放入37℃培养箱过夜,让hES接种。

传代hES细胞与其上代复苏细胞特征相似。

MEF原代培养鼠准备:性交后12.5天的孕鼠。

鼠胚收集:收集前,用明胶包被15cm组织培养皿,1.5~2胚胎/皿,每只鼠大约12胚胎(需6~8个培养皿)。

此外,准备盛有PBS×1的10cm培养皿3个/鼠。

37℃预温MEF培养液和0.05%胰酶。

处死孕鼠,从子宫中取出胚胎置于1×PBS。

在超净台显微镜下从胎膜中取出胚胎,解剖去其内脏(肠、肝、心脏等)。

把干净的胚胎移到一个干燥、无菌的10cm培养皿中。

用无菌手术剪刀切碎胚胎,加0.05%胰酶10ml/10~14胚胎,反复吹吸直到胚胎小块均匀散开,将溶液移至50ml离心管中,37℃孵育1min,吹吸溶解5~10次。

接种原代MEFS加入40ml预温的MEF培养液至溶液中,500~600×g. RT.10′.弃掉上清,加入30ml预温MEF培养液重悬沉淀,接种1.5~2个胚胎(5ml溶液)/15cm明胶包被培养皿,终体积为20ml,37℃孵育。

培养皿长满后,1∶3或1∶4传代到新的25cm组织培养皿上(不用明胶包被),37℃孵育,到细胞再次长满。

原代MEF冻存预温MEF培养液和0.05%胰酶,将冷冻培养液置于冰上,向50ml离心管中加20ml预温培养液(MEF)(3个皿一管),同时取出3个培养皿,弃掉培养液,1×PBS 5ml洗一次,加5ml胰酶/皿,让细胞回缩,将胰酶溶液吸到50ml 离心管中,用另外5ml胰酶洗三个皿一次,同样加到离心管中,最后用10ml预温MEF培养液再洗一次,加到离心管中,1000×g离心5分钟,弃上清,加9ml冷冻培养液重悬(1∶3冷冻)。

每个管中加入1ml(约3×106细胞),1℃/ 分冷冻(?包好-80℃过夜),液氮贮存。

MEF传代一瓶原代MEF4~7天将长满15cm培养皿,大约有10×106个细胞(6孔皿约3×106/6孔)。

预温MEF培养液,向50ml离心管中加入10ml/冷冻管,从液氮中取出冷冻管立即将其下半部浸入37℃水浴中,停留45~60秒,此时细胞约80%融化(少部分未融),迅速拿到超净台中,70%酒精消毒,将细胞轻轻移入预温培养液中,500~600×g离心,加5ml/管重悬细胞,将15ml预温MEF培养液加入15cm培养皿中,将5ml MEF溶液加到15cm培养皿中,均匀分配,标记(日期,第2代P2),37℃,孵育。

MEF处理MEF一旦长满,必须用丝裂霉素C或δ射线抑制其分裂。

丝裂霉素C抑制有丝分裂用MMC处理培养皿,吸出培养液15ml/皿,加到50ml离心管中,加入适量MMC使终浓度为10μg/ml,混合溶液,弃掉每个皿中剩余的5ml培养液,将离心管中含MMC的培养液回加到培养皿中,15ml/皿,37℃孵育3h。

预温MEF培养液和0.05%胰酶到37℃,向50ml离心管中加入20ml预温培养液(3皿/管)。

从孵箱中同时取出3个皿,弃去培养液,用1×PBS 5ml洗1次,加胰酶5ml/皿,让细胞漂起,吸到离心管中,用5ml胰酶洗三个皿,同样加到离心管中,最后用10ml新的预温的MEF培养液洗一次,加到离心管中,用计数板计数细胞密度,500~600×g离心(继续传代和冷冻)。

接种新处理的MEF如果需要用处理过的MEF,用预温的MEF培养液重悬细胞,如果接种6孔板调整细胞密度到4×106 cells/12ml(如是10cm培养皿则为4×106cells/10ml)。

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