β-半乳糖苷酶活性测定方法
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β-半乳糖苷酶活性测定（β-galactosidase assays）
1、将过夜培养的菌液按1%接种量到新鲜培养基中培养，待OD600至0.6时取出，放置于冰上；（或可检测不同OD600时，菌的酶活性）
2、取50-100μl 菌液至1.5 ml 的离心管中，加370-420μl Z buffer；
3、加20 μl 氯仿和10 μl 0.1% SDS，振荡混匀，裂解细胞，放置于冰上30分钟；
4、向离心管中加入100 μl 浓度4 mg/ml 的ONPG，混匀后立即置于30℃反应30-60分钟；
5、待颜色变黄后，加入250 μl 1 M Na2CO3中止反应，准确记录变色反应的时间；
6、取200μl上清，测定420 nm 和550 nm 处的吸光度；
7、计算β-半乳糖苷酶酶活力：
Miller Units = 1,000×[(OD420－1.75×OD550)] / (t×V×OD600)，其中，OD420和OD550----显色后的反应液读数；
OD600----用于显色分析的培养液的细菌密度；
t ----显色反应时间(单位min)；
V ----用于显色分析的培养液体积(单位ml)。
Z buffer (总体积100 ml)：
Na2HPO4·12H2O 100mM 3.5814 g
NaH2PO4·H2O 40mM 0.624g
KCl 10mM 0.07455g
MgSO4·7H2O1mM 0.0246g
β-mercaptoethanol 5.4μl / ml 540μl
加水到总体积90 ml，待试剂溶解后调pH 至7.0，最后定容到100 ml，4℃储存。
Substrate solution(总体积10ml)----现用现配
Na2HPO4·12H2O 60mM 0.215 g
NaH2PO4·H2O 40mM 0.0624g
ONPG 4mg/ml 0.04g
终止液（100ml）：
Na2CO3 1M 10.6g。