临床微生物标本的正确采集与运送图文ppt课件
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临床微生物检验标本采集与运送PPT课件
5. 运送要求 要求：（1）采集后的血培养瓶应立即送往实验室，室温放置不要超过2小时。
（2）血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和冷冻。 说明：血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀灭，将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。
2020/7/16
PART
02
痰液标本采集
与运送
.
11
PART
02 痰液标本采集与运送
PART
01 血液标本采集与运送
（三）血培养标本采集和运送要求
4. 采集次数 要求：对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，推荐同时采集2~3套（不同部位）血培养标 本。（即双瓶双臂同时采集血培养标本）。 婴幼儿患者，推荐同时采集2次（不同部位）血培养标本。 说明：在采集血培养后的2-5天内，无需重复采集血培养。只有在怀疑感染性心内膜炎或 其它血管内感染（如导管相关性感染）时，才有必要间隔多次采集血培养。
√ 在分抗泌生物素。应用前采集痰标本; √ 标本采集后1～2h内必须立即进行实验室处理； √ 取标本前应摘去牙托，清洁口腔如刷牙和漱口; √ 深咳，采集标本过程中要有专业的医务人员指导; √ 对于细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天；不建议24小时内多次 采集，除非痰液外观性状改变； √ 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
PART
02 痰液标本采集与运送
（二）、采集方法
1. 自然咳痰法 以清晨第一口痰为好。用清水反复漱口后，用力咳出呼吸道深部的痰（或可 轻拍背部），直接置于无菌容器中（采集量≥1ml），尽快送检。痰量极少 或痰浓不易咳出者者可用45℃10%氯化钠液雾化吸入导痰。不能及时送检 的标本，室温保存≤2小时。要求采到肺深部的痰液，切勿混入唾液及鼻咽
（一）、痰液检测采集指征
（2）血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和冷冻。 说明：血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀灭，将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。
2020/7/16
PART
02
痰液标本采集
与运送
.
11
PART
02 痰液标本采集与运送
PART
01 血液标本采集与运送
（三）血培养标本采集和运送要求
4. 采集次数 要求：对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，推荐同时采集2~3套（不同部位）血培养标 本。（即双瓶双臂同时采集血培养标本）。 婴幼儿患者，推荐同时采集2次（不同部位）血培养标本。 说明：在采集血培养后的2-5天内，无需重复采集血培养。只有在怀疑感染性心内膜炎或 其它血管内感染（如导管相关性感染）时，才有必要间隔多次采集血培养。
√ 在分抗泌生物素。应用前采集痰标本; √ 标本采集后1～2h内必须立即进行实验室处理； √ 取标本前应摘去牙托，清洁口腔如刷牙和漱口; √ 深咳，采集标本过程中要有专业的医务人员指导; √ 对于细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天；不建议24小时内多次 采集，除非痰液外观性状改变； √ 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
PART
02 痰液标本采集与运送
（二）、采集方法
1. 自然咳痰法 以清晨第一口痰为好。用清水反复漱口后，用力咳出呼吸道深部的痰（或可 轻拍背部），直接置于无菌容器中（采集量≥1ml），尽快送检。痰量极少 或痰浓不易咳出者者可用45℃10%氯化钠液雾化吸入导痰。不能及时送检 的标本，室温保存≤2小时。要求采到肺深部的痰液，切勿混入唾液及鼻咽
（一）、痰液检测采集指征
微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件
管理流程不严密
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间，影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集，将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间，影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集，将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理
微生物标本的采集方法(共52张PPT)
室内面积＞30㎡设4角及中央5点均距墙壁1米
用2%碘酒从穿能刺点。向外除画圆非消无毒，法至消作毒区静域直脉径达穿5cm刺以上取，涂血擦穿，刺否皮肤则2遍，不待干应从留置导管内取血。
1、采样时间：消毒处理后4小时内进行采样
1◎、经日人常工记气录道：吸使引⑤用分后泌抽进物血行消前毒时应间累将积，标使签用超贴过1于000小血时培的应养加强瓶监测颈或更上换，建立标紫外签线消内毒使容用包登记括本，病每周人用7基5%本酒精信擦拭息灯管、并记录 其他使用中消采毒液血染菌时量：间≤1、00cf采u／m血l 部位。注意不要把标签贴在培养瓶条形码上，否则
无1、关采物样品时不间得段进：入在手消术毒室处，理洁后净，区操的作物前品进需行经采清样洁消毒处理方可进入
※ 抽血后未及时混匀血液凝固 不得检出致病性微生物
☂ Ⅰ类环境：洁净手术室Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、 Ⅳ级：
手术用房各种物体表面在每日术前和术后湿式擦拭清洁、消毒；
☂手术器械、穿刺针等：无菌生长 ☂血培养次数和采血时间 四、对可疑中心静脉导管相关血流感染 经支气管镜直接吸引 无痰可用3%---5%NaCI 5ml雾吸约5min导痰
※ 储存环境标本来源4℃冰箱----痰、尿液、粪便、活检组织、 气枪冲洗物、导尿管、心包积液、脓和伤口分泌物等
※ 室温（25℃）---血液培养、脑脊液、泌尿生殖道、眼、耳、 鼻、喉、血管导管尖、体液、厌氧菌培养标本。
美国的理念
1970年以前，美国的医院定期对空气和环境表面（如地面、墙壁、台
面）进行培养。到了1970年，CDC和美国医院协会（AHA）主张 停止对环境的常规培养，因为医院感染发生率与空气或环境表 面中总的微生物污染水平不相关。且环境表面或空气中微生物 含量的允许水平也没有有意义的标准。1970---1975年，美国有 25%的医院减少了这种常规的环境培养工作--------一个已经持续 的趋势。
用2%碘酒从穿能刺点。向外除画圆非消无毒，法至消作毒区静域直脉径达穿5cm刺以上取，涂血擦穿，刺否皮肤则2遍，不待干应从留置导管内取血。
1、采样时间：消毒处理后4小时内进行采样
1◎、经日人常工记气录道：吸使引⑤用分后泌抽进物血行消前毒时应间累将积，标使签用超贴过1于000小血时培的应养加强瓶监测颈或更上换，建立标紫外签线消内毒使容用包登记括本，病每周人用7基5%本酒精信擦拭息灯管、并记录 其他使用中消采毒液血染菌时量：间≤1、00cf采u／m血l 部位。注意不要把标签贴在培养瓶条形码上，否则
无1、关采物样品时不间得段进：入在手消术毒室处，理洁后净，区操的作物前品进需行经采清样洁消毒处理方可进入
※ 抽血后未及时混匀血液凝固 不得检出致病性微生物
☂ Ⅰ类环境：洁净手术室Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、 Ⅳ级：
手术用房各种物体表面在每日术前和术后湿式擦拭清洁、消毒；
☂手术器械、穿刺针等：无菌生长 ☂血培养次数和采血时间 四、对可疑中心静脉导管相关血流感染 经支气管镜直接吸引 无痰可用3%---5%NaCI 5ml雾吸约5min导痰
※ 储存环境标本来源4℃冰箱----痰、尿液、粪便、活检组织、 气枪冲洗物、导尿管、心包积液、脓和伤口分泌物等
※ 室温（25℃）---血液培养、脑脊液、泌尿生殖道、眼、耳、 鼻、喉、血管导管尖、体液、厌氧菌培养标本。
美国的理念
1970年以前，美国的医院定期对空气和环境表面（如地面、墙壁、台
面）进行培养。到了1970年，CDC和美国医院协会（AHA）主张 停止对环境的常规培养，因为医院感染发生率与空气或环境表 面中总的微生物污染水平不相关。且环境表面或空气中微生物 含量的允许水平也没有有意义的标准。1970---1975年，美国有 25%的医院减少了这种常规的环境培养工作--------一个已经持续 的趋势。
临床微生物标本采集及运送PPT课件
已接种的培养基放co培养箱35培养1824h55培养基的选择痰标本血巧伤口分泌物脓汁血mac淋球菌gc真菌培养血念显大便血macss院感普通营养琼脂霍乱培养血macssvib或tcbs56已经检测完的标本盖回塞子每天的标本统一放入注明当天日期的袋子里血液标本48冰库保存对亍超过保存期微生物所有的标本由生物安全员或指定人员对其进行高压灭菌后放入医用垃圾桶中再由环卫部门定期上门接收统一处理
，避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前，以晨起进食前为宜，取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量，降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检，实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内，半小时送检是可接受的，如 果送检时间超过 1 小时，则会影响结果。
注：某些细菌具有自溶酶，放置时间过长易自溶死亡，因此， 标本应立即送检，并且保温（禁止放冰箱，因脑膜炎双球 菌遇冷死亡）
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的，而尿道口有正常菌群寄生，标本的采集 必须无菌操作。
，避免碰到其它
组织
1. 用一压舌板压 住舌
2. 用无菌拭子在 后咽部、扁桃体 及发炎部位采集 标本
1.将一藻酸钙拭子经 鼻腔轻轻插入鼻咽 喉部
2. 缓慢转动拭子5秒 钟吸收分泌物
3. 取出拭子并床边 接种或将拭子放入 运送培养基
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前，以晨起进食前为宜，取样前数小时内不 得用消毒药物漱口或涂抹病灶部位。
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量，降低医疗 成本。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
1. 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，二、三级医院微生物标本 送 检率不应低于70%。
2. 尽量在抗菌药物使用前采集标本。
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检，实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内，半小时送检是可接受的，如 果送检时间超过 1 小时，则会影响结果。
注：某些细菌具有自溶酶，放置时间过长易自溶死亡，因此， 标本应立即送检，并且保温（禁止放冰箱，因脑膜炎双球 菌遇冷死亡）
标本采集
一般认为来自正常尿液是无菌的，而尿道口有正常菌群寄生，标本的采集 必须无菌操作。
临床常见微生物标本的采集和运送 PPT
咽拭子
其他
无菌体液
血液
脑脊液 关节腔积液
胸腹水 其他
微 （D生i物rty实、验D室um常p被、称D为an3gDe实ro验us室）
血液培养标本的采集
采血次数：对于成年患者，应该同时分别不同部位采集 2-3套血标本（一套为一瓶需氧一瓶厌氧），在不同部位 分离到同样菌种才能确定是病原菌。儿童由厌氧菌引起的 血流感染非常罕见，一般无需常规做厌氧培养。
引器至适宜负压(成人：40.0—53.3kPa；小儿：<40.0kPa)。
⑤将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，
检查管道是否通畅。
⑥折叠一次性吸痰管末端，插人口腔或鼻腔或人工气道至适宜深
度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管
注：除婴儿和活动性腹泻患者外不推荐用拭子做常规病原 检查
微生物标本存在问题
感谢您的聆听！
临床常见微生物标本的采集和运送
微生物培养标本采集送检的基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检 5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 6.送检标本应注明来源和检验目的
临床微生物标本的种类
带菌体液 痰
尿液 粪便
与吸引器分离(使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前 后需吸入高浓度氧气1—2min)。
⑦将痰液注入无菌容器(试管)内，如痰液黏稠可用一次性针筒向
吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲人无菌容器(试管)内。
而无色透明、有灰白片状物或黑色小点，有明显食物渣滓、 纸屑灰尘的为不合格标本。
其他
无菌体液
血液
脑脊液 关节腔积液
胸腹水 其他
微 （D生i物rty实、验D室um常p被、称D为an3gDe实ro验us室）
血液培养标本的采集
采血次数：对于成年患者，应该同时分别不同部位采集 2-3套血标本（一套为一瓶需氧一瓶厌氧），在不同部位 分离到同样菌种才能确定是病原菌。儿童由厌氧菌引起的 血流感染非常罕见，一般无需常规做厌氧培养。
引器至适宜负压(成人：40.0—53.3kPa；小儿：<40.0kPa)。
⑤将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，
检查管道是否通畅。
⑥折叠一次性吸痰管末端，插人口腔或鼻腔或人工气道至适宜深
度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管
注：除婴儿和活动性腹泻患者外不推荐用拭子做常规病原 检查
微生物标本存在问题
感谢您的聆听！
临床常见微生物标本的采集和运送
微生物培养标本采集送检的基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检 5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 6.送检标本应注明来源和检验目的
临床微生物标本的种类
带菌体液 痰
尿液 粪便
与吸引器分离(使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前 后需吸入高浓度氧气1—2min)。
⑦将痰液注入无菌容器(试管)内，如痰液黏稠可用一次性针筒向
吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲人无菌容器(试管)内。
而无色透明、有灰白片状物或黑色小点，有明显食物渣滓、 纸屑灰尘的为不合格标本。
微生物标本的正确采集运送及注意事项ppt课件
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
血培养采血时机
→ 采血时机 ←
0
30
细菌浓度
体温
60（min）
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
尿液标本的采集运送规范
1、肥皂水清洗外阴，留取中段尿 2、膀胱穿刺法 注意：不能直接从导管袋放出尿液，因尿液在袋中潴留
时间长，容易孳生细菌 标本立即送检，若不能及时送检应4℃保存，2h内
送检
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
有意义的痰标本： 1、合格痰标本培养优势菌中度以上生长（≥ +++） 2、合格痰标本有细菌少量生长，但与涂片镜检结果一
致（肺炎链球菌、流感嗜血杆菌、卡他莫拉菌 ） 3、多次培养到相同细菌；
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
（2）真空采血先有氧、再厌氧 （3）轻轻混匀，防止凝固
经营者提供商品或者服务有欺诈行为 的，应 当按照 消费者 的要求 增加赔 偿其受 到的损 失，增 加赔偿 的金额 为消费 者购买 商品的 价款或 接受服 务的费 用
采血量：成人8-10ml 儿童3-5ml 婴幼儿1-2ml 及时送检：如不能及时送检常温保存、切忌冷藏 血液标本采集注意事项： 1、抗菌药使用之前采集 2、多部位采集提高阳性率 3、已使用抗菌药治疗患者应在下次使用抗生素治疗前采血 4、发热患者寒战或体温高峰到来之前采集 5、注意彻底消毒 6、常规血培养不宜从静脉或静脉留置装置中采集
微生物样本采集的标准化与规范化ppt课件
4）咽用压舌板压舌；用无菌拭子在后咽部、扁桃体 和其它感染部位采集标本；怀疑白喉可用无菌拭
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时，室温；拭子：≤1小时，室温， 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群，故采集尿液时 更应注意无菌操作，常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养，最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难，可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶， 标本量≥1毫升，条件≤2小时，室温，1次/ 天。
3）肛拭子：小心将拭子插入肛门，大约在括约肌之 上2-3厘米；轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本；
要在拭子上明显看到粪便，才能检测腹泻病原体 。拭子采集，≤2小时，室温，1次/天。除了长期
卧床、无便（如中毒性痢疾）患者及频繁腹泻患
者，不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序：
用75％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞（不能用含碘消 毒剂），作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体．然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次； 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次，每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面；如不做活检，用力以拭子抹 取褥疮基底部；将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时，室温，1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等，实用抗感染治疗学 ，北京： 人民卫生出版社，2004，24 ~33.
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时，室温；拭子：≤1小时，室温， 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群，故采集尿液时 更应注意无菌操作，常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养，最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难，可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶， 标本量≥1毫升，条件≤2小时，室温，1次/ 天。
3）肛拭子：小心将拭子插入肛门，大约在括约肌之 上2-3厘米；轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本；
要在拭子上明显看到粪便，才能检测腹泻病原体 。拭子采集，≤2小时，室温，1次/天。除了长期
卧床、无便（如中毒性痢疾）患者及频繁腹泻患
者，不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序：
用75％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞（不能用含碘消 毒剂），作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体．然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次； 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次，每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面；如不做活检，用力以拭子抹 取褥疮基底部；将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时，室温，1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等，实用抗感染治疗学 ，北京： 人民卫生出版社，2004，24 ~33.
完整 微生物标本的正确采集运送ppt课件
︕
极易由表皮葡萄球菌造成污染
标本采集步骤
血培养标本的运送要求和拒收标准
采血量
• 成年人采血量为10～20ml, 婴幼儿为1～2ml，儿童3～5ml
血液标本与培养基之比1:5 -1:10为宜
成人血液中含有的菌量 <=10cfu/ml 儿童血液中含有的菌量 100～1000cfu/ml
• 需氧瓶和厌氧瓶
– 对常规血培养，建议采需氧和厌氧的一套血培养瓶 – 当采血量不能满足推荐的血量时，需氧培养优先
先注入哪个瓶？
影响阳性标本检测的因素
绝对需氧菌
苛养菌？
生长因子X，V 维生素B6，K3
1.细菌
兼性厌氧菌 微需氧菌 绝对厌氧菌
影响阳性标本检测的因素
高？
２. 血中细菌的浓度
低？ - 成人：血中细菌1～30 CFU/ml - 儿童：血中细菌高于成人 （100～1000 CFU/ml或更高）
为何要多次采血？
• 血循环中的细菌有“暂时性”、“持 续性” • 一过性的菌血症，细菌仅在外周血中 持续数秒 • 共生菌、复数菌 • 提高检出率、减少漏检，判断病原
采血部位
• 多次采血时，应在不同部位进行 消 毒 剂 的 作 用 时 间 • 切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本
避免由插管或导管取标本
4. 标本的采集次数和采集量
采 血 量 与 检 出 率 的 关 系
每增加 1 毫升血 = 增加 3% 的敏感度 （由0.6%至4.7%)
每天1、2、或3次血培养对敏感度的影响
100% 95% 90% 85% 80% 75% 70% 1 2 3
96% 89%
99%
所以一般要求血培养一天做3次
血培养的阳性检出率低原因：
临床微生物标本采集和运送规范
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
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二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
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二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
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血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
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血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
临床微生物标本采集与运送
❖ 好微生物检验标本可提升试验室工作效率及病患照 料质量，降低医疗成本。
临床微生物标本采集与运送
第14页
样本搜集基础标准
1.及时采集微生物标本作病原学检验 2.在抗菌药品使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后马上送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂 6.送检标本应注明起源和检验目标
向外画圈消毒，至消毒区域直径达 5cm以上，待消毒液挥发干燥后（常 需30s以上）穿刺采血。
临床微生物标本采集与运送
第26页
（三）静脉穿刺和培养瓶接种
成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头 内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头 （假如行第二次穿刺或用头皮针取血时， 应换针头）
先注于厌氧瓶培养瓶，防止注入空气，然 后注入需氧瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
临床微生物标本采集与运送
第35页
表皮葡萄球菌临床意义
阳性套数
1 1 2 1 2 3
采集套数
1 2 2 3 3 3
临床意义 ％
0 2 60 0 75 100
污染可能 无法确认
％
％
97
3
95
3
3 37
100
0
0 25
0
0
采集1套无法判 断是病原菌还 是污染菌。
2－3套血培养，有利于污染判断。
Tokars, JI. Clin Infect Dis ; 39:333
第20页
对不能及时送检样本储存方法
储存环境
标本起源
4℃冰箱 35-37℃温箱
室温
尿液、粪便（含寄生虫检验）、 鼻腔、咽喉样本；霉菌培养标本
CSF（脑脊液），淋病检验样本，血液培养 瓶（或室温）
临床微生物标本采集与运送
第14页
样本搜集基础标准
1.及时采集微生物标本作病原学检验 2.在抗菌药品使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后马上送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂 6.送检标本应注明起源和检验目标
向外画圈消毒，至消毒区域直径达 5cm以上，待消毒液挥发干燥后（常 需30s以上）穿刺采血。
临床微生物标本采集与运送
第26页
（三）静脉穿刺和培养瓶接种
成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头 内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头 （假如行第二次穿刺或用头皮针取血时， 应换针头）
先注于厌氧瓶培养瓶，防止注入空气，然 后注入需氧瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
临床微生物标本采集与运送
第35页
表皮葡萄球菌临床意义
阳性套数
1 1 2 1 2 3
采集套数
1 2 2 3 3 3
临床意义 ％
0 2 60 0 75 100
污染可能 无法确认
％
％
97
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3
3 37
100
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0 25
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采集1套无法判 断是病原菌还 是污染菌。
2－3套血培养，有利于污染判断。
Tokars, JI. Clin Infect Dis ; 39:333
第20页
对不能及时送检样本储存方法
储存环境
标本起源
4℃冰箱 35-37℃温箱
室温
尿液、粪便（含寄生虫检验）、 鼻腔、咽喉样本；霉菌培养标本
CSF（脑脊液），淋病检验样本，血液培养 瓶（或室温）
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疗后的2至5天内血液中的感染细菌不会马上消失。
2020/9/17
Dr.HU Bijie
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国家汽车 产业政 策的相 继出台 和落实 ，势必 对汽车 消费起 到了拉 动作用 ；而银 行汽车 消费信 贷的推 出和实 现，则 是汽车 消费市 场快速 成长和 发展不 可或缺 的重要 手段。
血培养的采血量
对于成年患者，每套血培养瓶推荐的采血 量为20至30ml
数小时 血培养瓶不得在采血接种后放入冰箱或冷
冻
国家汽车 产业政 策的相 继出台 和落实 ，势必 对汽车 消费起 到了拉 动作用 ；而银 行汽车 消费信 贷的推 出和实 现，则 是汽车 消费市 场快速 成长和 发展不 可或缺 的重要 手段。
添加剂（树脂、活性炭、抗凝剂）
和无添加剂的血培养瓶相比，拥有添加剂 的血培养瓶的阳性率更高
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国家汽车 产业政 策的相 继出台 和落实 ，势必 对汽车 消费起 到了拉 动作用 ；而银 行汽车 消费信 贷的推 出和实 现，则 是汽车 消费市 场快速 成长和 发展不 可或缺 的重要 手段。
血培养标本
采集与运送
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国家汽车 产业政 策的相 继出台 和落实 ，势必 对汽车 消费起 到了拉 动作用 ；而银 行汽车 消费信 贷的推 出和实 现，则 是汽车 消费市 场快速 成长和 发展不 可或缺 的重要 手段。
血培养的数量
❖ 研究结果
➢ 一套血培养的阳性率为65％
➢ 二套血培养的阳性率为80％
➢ 三套血培养的阳性率为96％
❖ CLSI(药敏试验标准）建议方针
➢ 对于每位需要血培养的患者需采取2至3套。
➢ 对于成年患者的血培养，只采单一的血培养是不允许的。 因为单一血培养的结果的临床意义很难解释。
➢ 采血培养后的2至5天内，不需要重复采血培养，因为治
对于婴幼儿患者，采血量不超过患者总血 量的1％
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血培养中需氧瓶与厌氧瓶的分配
对于常规的血培养，建议采取包括需氧和 厌氧的一套血培养瓶
关于血培养
怀疑有血液感染时，抽取血培养的次数应是
A 1次 B 至少2次 C 4次
D 越多越好
如果血培养标本不能及时运送，应暂存何种环境
A 4℃ B －18℃ C 室温
D 无所谓
败血症的血液细菌培养出现阳性结果最快时间是
A <24h B24～48h C48～72h D72～96h
败血症病人原始血标本中的细菌浓度可高达
A.发热开始时 B.寒战开始时 C.发热最高峰时 D.寒战结束时 E.预计寒战发热前
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国家汽车 产业政 策的相 继出台 和落实 ，势必 对汽车 消费起 到了拉 动作用 ；而银 行汽车 消费信 贷的推 出和实 现，则 是汽车 消费市 场快速 成长和 发展不 可或缺 的重要 手段。
CLSI指南：血培养的原则和流程
正确的微生物标本采集和运送，是 准确的病原学诊断的前提！
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基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本，不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 8.送检标本应注明来源和检验目的
含有添加剂的血培养瓶的阳性率更高，但 同时污染菌的生长也会更迅速
2020/9/17
Dr.HU Bijie
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A1～2/10ml，B1～2/ml，C10～20/ml，D>100/ml
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你认为对吗？ 为了提高病人血培养的阳性率，最 好的抽血时间是：
碘酊和洗必太的消毒效果大致相当 消毒次序 消毒皮肤范围
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标本的运送
血培养瓶在采血接种后必须马上送检 血培养瓶在采血接种后在室温中不得超过
常见问题
厌氧菌培养有价值吗？ 真菌培养需要另开单子吗？ 分枝杆菌培养有专门的培养瓶吗？ 骨髓培养能增加阳性率吗？ 开始治疗后，间隔多少长时间复查？
2020/9/17
Dr.HU Bijie
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临床微生物标本
正确采集与运送
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当采血量不能满足推荐的采血量时，首先 应进行需氧瓶的培养
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皮肤消毒与污染防治
碘酊、次氯酸和洗必泰的消毒效果要好于 碘酒