浅谈血细胞分析仪计数血小板的影响因素及其质量控制

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血液分析仪血小板计数影响因素的探讨

血液分析仪血小板计数影响因素的探讨

血液分析仪血小板计数影响因素的探讨发表时间:2012-07-12T16:29:58.323Z 来源:《中外健康文摘》2012年第10期供稿作者:赵燕[导读] 血小板计数对血栓、出血性疾病和血小板减少性疾病的诊断与治疗有重要的参考价值。

赵燕(辽宁省锦州市传染病医院检验科辽宁锦州 121017)血小板计数对血栓、出血性疾病和血小板减少性疾病的诊断与治疗有重要的参考价值。

如今各医疗单位均采用自动化的血液分析仪进行血小板计数,其对于血小板数及形态正常的标本结果比较可靠,但对于血小板减少和/或红细胞形态异常者,所得结果误差甚大,这里对血液分析仪血小板计数的影响因素进行探讨。

1 检测前因素1.1抗凝剂影响近年来许多国家的仪器血液检查都已改用EDTA抗凝静脉血,它是一种钙螯合剂,常用的有二钠盐、二钾盐,钾盐溶解度大,与血混合后,抗凝效果较好,结果较可靠。

但如有红细胞碎片则易与血小板混淆,有时也可引起非特异性血小板凝集,导致血小板计数减少。

另外,抗凝剂(稀释液)一定要经常保持新鲜,随时配置,防止酸、碱及脏物污染,以致使血小板破坏,影响计数。

关于EDTA抗凝剂的使用,刘健等研究认为静脉血4ml分别加入EDTA-K2和EDTA-K3抗凝试管中各2ml,其检测结果均无显著性差异。

还有研究表明若将丁胺卡那霉素在抽血前或抽血后15min内以浓度为5mg/ml血加入,其血小板数在室温4h内可保持相对稳定,既可保持血细胞形态稳定又利于血小板准确计数。

1.2采血是否顺利直接影响到血小板计数结果静脉采血必须一针见血,顺利采到标本后与抗凝剂迅速混匀。

末梢血采集时要深扎2mm 左右,使血液自然流出,不要挤得太甚。

而且必须先采血小板,后采其它检验项目,避免由于血小板破碎致计数减少。

1.3取血后混匀程度影响计数结果汪兆亮等对末梢采血后不振荡立即检测和充分振荡混匀静置5min后检测结果进行分析,结果显示未振荡的计数值与充分振荡混匀静置5min后的计数值差别甚大,前者比后者平均低30×109/L左右。

血细胞分析仪计数血小板的影响因素及分析

血细胞分析仪计数血小板的影响因素及分析

血细胞分析仪计数血小板的影响因素及分析血细胞分析仪具有快速、方便、重复性好、工作效率高等优点。

目前在各级医院已广泛被应用,但其对血小板的准确性问题引起人们的广泛关注。

为此,现将对血小板计数的影响因素进行分析如下。

1采血因素采血是否顺利是造成血小板结果异常的一个重要因素。

由于抽血技术不熟练或反复穿刺血管而引起水肿,皮下出血,因组织损伤后组织因子混入血标本中产生肉眼看不到的凝集块,使血小板测定结果偏低。

这些情况标本应该重新采血后测定。

2抗凝试剂比例和种类抗凝剂的种类对检测结果影响较大,国际化标准化委员会(ICSH)推荐用EDTA—K抗凝对测定血小板结果基本稳定,而肝素或草酸盐可使血小板计数显著降低。

另外,血液和抗凝剂的比例也会影响检测结果。

血液比例过高,抗凝剂相对不足,血液出现微凝块的可能性增加,可能堵塞仪器;抗凝剂比例增高,血量少,血小板会肿胀、崩解、产生正常血小板的碎片而无法测得正确的结果。

3小细胞的干扰当红细胞平均体积(MCV)大于70fl时对血小板计数无影响,而MCV在70fl 以下时,仪器往往提示上限区域有干扰,MCV值越小,小细胞数量越多,血小板计数值就越高。

4放置时间标本放置时间过长,血小板易于吸附聚集、破坏,放置越长,破坏越多;误将红细胞碎片认为是血小板而计入,造成测定结果假性增高。

但在120min内完成测定时对结果影响不大,180min时PLT计数值与即测组比较有显著性差异(P<0.01)。

试剂质量、电流、疾病及药物等因素也能对血小板的计数造成一定程度的影响,因此,检验工作者在检测过程中应尽可能排除各种因素的干扰,才能使血小板计数结果准确可靠,为临床诊断治疗提供有参考意义的数据。

血细胞分析仪计数血小板的影响因素分析

血细胞分析仪计数血小板的影响因素分析

血细胞分析仪计数血小板的影响因素分析目的探讨血细胞分析仪计数血小板的影响因素。

方法使用抗凝全血充分混匀,取血小板检测结果异常血液标本100例,使用全自动血细胞分析仪进行血小板计数检测,采用显微镜进行手工计数;另外取血小板检测结果正常血液标本100例作为对照,使用显微镜手工计数,比较分析两种方法结果,做好详细记录。

结果血小板小于100×109/L血液标本80例,血小板大于300×109/L血液标本50例,血小板在100×109/L至300×109/L之间的血液标本70例。

结论血液标本放置时间过长、试剂质量、药物等因素均可对血细胞分析仪计数血小板精度产生影响,故需排除检测过程中干扰因素,为临床诊断及治疗提供有价值的、可靠的参考数据。

标签:血细胞;血小板;计数分析;影响因素引言血细胞分析仪具有使用方便、操作快捷、重复性较强、工作质量可靠、工作效率高等优势,同时血细胞分析仪还具有客观等优势,当前在我国的各个大中型医院的临床检验中均有着广泛的使用。

最近几年随着计算机技术迅猛发展,血细胞分析仪的工艺也呈现出多元化发展特征,一些先进的技术手段,如鞘流技术、散光检测技术、激光技术等,均与传统技术向融合,使得血细胞分析仪在临床中应用范围大大提升。

但是需要注意的是血细胞分析仪测定血小板计数可能会出现一定误差,此问题是临床试验中常见问题之一。

为了进一步探讨血细胞分析仪计数血小板的影响因素,现取血小板检测结果异常血液标本100例,使用全自动血细胞分析仪进行血小板计数检测,采用显微镜进行手工计数;另外取血小板检测结果正常血液标本100例作为对照,使用显微镜手工计数,比较分析两种方法结果,且总结如下。

1. 材料与方法1.1仪器采用日本Sysmex公司生产的全自动血细胞分析仪。

1.2试剂仪器使用过程中的清洗液、稀释液以及溶血剂等均由原设备生产公司所提供。

显微镜计数使用的血小板稀释溶液按照我国临床检验操作规程中的方法及标准进行配置,并且放置于冰箱进行保存。

血小板计数质量控制

血小板计数质量控制

血小板计数质量控制血小板计数是临床常规检查项目之一,对于评估患者出血和凝血功能状况具有重要意义。

然而,由于血小板数量少、大小不规则等特点,其计数过程容易受到干扰,因此需要严格的质量控制措施来确保测试结果的准确性和可靠性。

本文将介绍血小板计数的质量控制方法,以期提高检验结果的准确性和临床应用价值。

一、实验室环境质量控制实验室环境的干净整洁对于血小板计数结果的准确性至关重要。

首先,实验室应具备良好的通风设施,保持空气流通,避免尘埃等污染物质进入实验室;其次,实验室操作台面和仪器仪表应保持清洁,定期消毒,以防交叉感染的发生;最后,实验室工作人员应做好个人防护,佩戴手套、口罩等防护用具,保证实验过程的洁净。

二、仪器设备质量控制血小板计数通常采用自动化血液分析仪进行,因此对仪器设备进行定期维护和校准是保证测试结果准确的关键。

操作人员应按照仪器说明书的要求,定期进行内部标定和外部质量控制检测,确保仪器的准确性和稳定性。

同时,定期对仪器进行检查和清洁,及时更换耗材和试剂,有效延长仪器的使用寿命。

三、标本采集与保存质量控制血小板计数的标本采集和保存也是影响结果准确性的关键环节。

在采集血液标本时,应注意选择适当的采血管和采血针,避免溶血和血栓的形成;同时,采血过程中要注意采血技术,避免空气污染和细菌感染。

采集血液标本后,应立即送至实验室进行处理,避免标本失真或凝块的产生。

对于需要保存的血样,应采用合适的保存方法和条件,确保样本质量完好,避免冰冻过程中的细胞破坏。

四、内部质量控制与外部比对内部质量控制是实验室对自身测试结果的监控和评价,通过每日运行质控品,跟踪仪器的运行性能和测试结果的稳定性。

同时,实验室还应定期参加外部质量评价和比对,与其他实验室共同参与同一标本的检测,以验证自身测试结果的准确性和可靠性。

在出现异常结果时,实验室需要及时处理,找出问题并采取纠正措施,确保后续检测结果的准确性。

在血小板计数质量控制方面,实验室人员需要高度重视,严格按照相关规范和标准操作,确保测试结果的准确性和可靠性。

三分群血细胞分析仪血小板计数结果影响因素分析

三分群血细胞分析仪血小板计数结果影响因素分析

三分群血细胞分析仪血小板计数结果影响因素分析目的对影响三分群血细胞分析仪血小板检测结果的相关因素进行分析,寻求解决假性异常结果的途径和方法,避免临床误诊。

方法随机选取门诊和住院患者100例,其中,末梢血50例,静脉血50例,均采用乙二胺四乙酸二钾(EDTA—K2)进行抗凝后30 min内上机检测,异常结果行手工计数和血涂片染色观察。

结果100例原始标本中共有异常结果11例,包括减低8例,增高3例;通过更换抗凝剂、手工计数、涂片染色观察,6例减低结果被纠正,2例为EDTA抗凝剂依赖引起的假性血小板减少症(EDTA—PTCP),3例属反应性增高。

结论当仪器出现与临床诊断严重不符的血小板异常结果时,应及时分析原因,通过更换抗凝剂种类、适当控制标本放置时间,同时辅以手工计数和血涂片染色观察可有效区分真性与假性计数结果异常,提高检测结果的准确性。

[Abstract] Objective To analyze the related influence factors of platelet count results of three—cluster blood cell analyzer,and seek ways and means of solving pseudo exception results,so as to avoid clinical misdiagnosis. Methods One hundred cases of out—patients and in—patients were chosen randomly,with 50 cases of peripheral blood and 50 cases of venous blood. All patients were made the test by the machine within 30 minutes after anticoagulant by ethylene diamine tetraacetic acid dipotassium (EDTA—K2). The abnormal results were counted by hand and observed by blood smear staining. Results In the original samples of 100 cases,there were 11 cases of abnormal results,including 8 cases of decreased and 3 cases of increased. Through the exchange of anticoagulant,manual count and observation of smear staining, 6 cases of decreased were corrected, 2 cases were pseudo—thrombocytopenia (EDTA—PTCP)caused by EDTA anticoagulant resistance,3 cases were increased reactivity. Conclusion When the equipments show that abnormal platelet results don′t comply with clinical diagnosis seriously,it is necessary to analyze the reasons in time. Through exchanging the types of anticoagulant,controlling storage time of samples appropriately and suppplemented by manual count and observation of blood smear staining,the true and false count abnormal results can be distinguished effectively,and the accuracy of test results can be improved.[Key words] Blood cell analyzer;Platelet count;Anticoagulant;Influence factor三分群血细胞分析仪以其准确、快速、经济适用广泛应用于各级医院,由于其采用电阻抗法进行血小板计数,加之血小板自身具有的易于黏附、聚集、变形和破坏[1]等特性,极易导致计数结果出现异常。

血细胞分析仪计数血小板的影响因素及其质量控制

血细胞分析仪计数血小板的影响因素及其质量控制

世界最新医学信息文摘 2017年 第17卷 第39期111投稿邮箱:zuixinyixue@·医学检验·血细胞分析仪计数血小板的影响因素及其质量控制田前进 (大同市新荣复康医院 检验科,山西 大同 037000)0 引言血小板的形成是由于骨髓巨核细胞的细胞质脱落而导致的,其属于所有血细胞中体积最小的细胞,没有细胞核,并且还能够维护人体的健康。

此外,血小板还具有极好的聚集、黏附功能,对于止血、伤口愈合、炎症反应、血栓形成等生理和病理的过程中起到一定的作用。

同时其还能够有效参与机体的自行止血、凝血的过程。

但是,由于血小板的自身容易遭到破坏,从而导致其在进行血细胞分析仪的诊断时,容易受到各种因素的干扰,如(服药、试剂质量、采血质量等),最终致使血红细胞仪分析诊断失败,因此,为使检测的准确性得到保障,在进行检测时一定要注意好质量的控制[2]。

我院选取了62例普通患者进行观察,以血细胞分析仪计数血小板的影响进行分析研究,详细报告如下。

1 资料与方法1.1 一般资料。

将2015年9月至2016年9月在我院接受治疗的普通患者62例作为本文的观察对象,有女性30例,男性32例,患者年龄最大为72岁,最小为40岁,平均年龄(53.15±3.18)岁。

1.2 方法。

1.2.1 检测方法:所有患者在入院后全部进行静脉采血2ml,放置于抗凝管中,而后送去检测。

首先,将叶酸铵与血液按照比例1:20进行稀释,然后,对于血液标本中的血小板计数采用SYSMEX 2000i 细胞分析仪进行检测,检测完成后,对血小板计数进行观察并记录。

血小板计数正常参考值为100-300×109/L。

1.2.2 影响因素:采用医院自制的调查问卷,其中包括患者的病情情况以及对于检测有可能产生影响的因素等。

该调查由主治医师执行,在患者住院期间进行,当场发放当场收回,从而使信息的及时性、有效性得以确保。

1.3 统计学处理。

探析血小板检测的影响因素

探析血小板检测的影响因素

探析血小板检测的影响因素【摘要】目的:探讨血细胞分析仪测定血小板(PLT)的影响因素,为临床提供准确可靠的检验数据。

方法:使用血细胞分析仪(迈瑞5380)对100例血小板数与直方图不符标本进行计数,对比分析。

结果:标本放置时间和反复混匀次数、采血时间等均可影响血细胞分析仪准确计数PLT。

结论:血细胞分析仪检测血小板的影响因素有很多,应结合血小板的直方图进行判断,必要时进行显微镜计数或重新采血。

【关键词】血小板;影响因素口腔外科施行拔牙术前首先要检测病人血常规特别是血小板是否正常,血小板的止血功能与血小板的粘附、聚集、释放、促凝、血块收缩等功能密切相关。

血小板(PLT)检测是牙齿治疗前最常用做的检查之一,其检测结果的可靠性至关重要。

血小板特别容易发生粘附、聚集和变性破坏,故常难以准确计数。

血细胞分析仪对血小板的检测结果往往不是很稳定。

使用血细胞分析仪检测血小板的影响因素很多,现讨论如下。

1 资料与方法1.1 资料选取100例血小板直方图异常的病人血液标本,其中有20位患者是刚抽完血立马检测的,20位患者是抽血放置时间超过6h的,另外20位患者标本混匀少于5次,另外20位患者的标本混匀超过20次,最后20位患者的标本是采血时耗时太长。

全部患者都进行血液的重新采集,用于检测。

1.2方法所有患者的标本都使用迈瑞5380型细胞分析仪,做进一步的检测,使用EDTA-K2作抗凝剂的真空采血管采集患者静脉血,放置5min-20min后缓慢的摇匀5-15次,对这些标本进行血小板检测。

1.3统计学分析数据的统计与分析使用spss15.0软件,采取t检验,数据使用正负平方差表示,P。

血细胞分析仪血小板检测异常的影响因素分析

血细胞分析仪血小板检测异常的影响因素分析

3.方法学缺陷
目前血液分析仪大多数是利用 电阻抗法进行计数,红细胞和血 小板的计数是在同一通道中进行, 它们之间仅以体积大小来区别, 因此,血小板的计数易受小红细 胞数量或红细胞碎片的影响:大 体积血小板导致血小板计数减少 (分析仪将大体积血小板误计入 红细胞而导致血小板假性减少)。
4.抗凝剂因素
血小板检测异常的 影响因素分析
杨小亮
在医学技术不断发展的今天,血液分析仪的灵敏度 和准确度也有了空前提高,血液分析仪的简便、快捷、 高效率、高重复性的特点使得血常规检查在临床诊断中 越来越发挥出极其重要的作用。但在实际操作中,血小 板检测结果的不稳定也是比较突出的一个问题。血小板 具有黏附、聚集、释放、收缩等特性,因此很容易受外 界因素的影响。
1.采血因素
老人、儿童、严重营养不 良及体质较差患者由于静脉 血管不明显常常发生采血困 难、出血不畅,易引起血小 板聚集;
2.标本放置时间过长
血常规标本宜在8小时内 检测。若放置较长时间,细 胞的溶解所产生的渗透压对 血小板具有破坏作用,血小 板的体积随时间的延长而发 生变化,血小板的数量随时 间的延长而降低。
ICSH推荐使用EDTA-K2抗凝, 工作中常用的是EDTA-K2的能抗 凝2ml全血的真空采血管,这就 要求采血尽量准确到2ml。采血 过多则抗凝剂相对不足导致标本 出现微凝块;采血不足、抗凝剂 比例相对偏高,导致血小板肿胀 破坏,产生碎片无法正确计数。
5.小红细胞增多或巨大
血小板增多的因素
当患者红细胞大小不均,尤 其是以体积<70fl的小红细胞 居多时,部分极小红细胞被计 入血小板数,引起血小板假性 增高;巨大血小板增多时,也在临床工作
中常遇到的,了解这些因素后,在操作中就可以 做到心中有数、有的放矢。遇到有问题的标本、 有问题的结果时,就要认真分析仔细研究,一定 要让最后发出的报告能够反映客观实际。这需要 我们在实际工作中不断学习、探索和总结。

血细胞分析仪进行血小板计数的影响因素分析

血细胞分析仪进行血小板计数的影响因素分析
检验医学与临床 21 0 2年 3月 第 9卷 第 5期
L b Me l , r h 2 1 , 19 No 5 a d C i Mac 0 2 Vo. , . n
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AF B镜 检 方 法 有 其 自身 特 有 的 优 势 : 为 试 验 方 法 , 术 相 对 作 技
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地 产 生 , 这 种 巨 大 血 小 板 主 要 分 布 于 红 细 胞 直 方 图 的 10 而 0 ~ 2 0儿 处 , 样 就 会 造 成 血 小 板 计 数 结 果 低 于实 际血 小 板 的数 5 这 量 的严 重 后 果 , 细 胞 平 均 容 积 就 会 高 出 实 际 容 积 口 。 此 外 , 红 ] 在 操 作 过 程 中需 要 不 断 对 全 血 标 本 进 行 混 匀处 理 , 有 的 测 定 所 操 作 都 必 须 在 2h内完 成 [ 。 8 ]
【 键 词】 血 细胞 分 析 仪 ; 血 小板 计 数 ; 影 响 因 素 关
D :0 3 6 / .sn 1 7 - 4 5 2 1 . 5 0 2 文 献 标 志 码 : 文 章 编 号 : 6 2 9 5 ( 0 2 0 — 6 70 OI 1 . 9 9 j is . 6 29 5 . 0 2 0 . 8 B 1 7 — 4 5 2 1 ) 50 3 —2
5 试 剂
其 形 态 立 即 发 生 变 化 , 外 膜 形 成 的微 小 管 游 离 端 向 外 伸 展 形 其 成 丝 状 伪 足 , 个 伪 足 相 互 缠 绕 , 成 血 小 板 可 逆 聚 集 体 , 体 数 形 其
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血细胞分析仪进行血小板计数偏差的影响因素分析

血细胞分析仪进行血小板计数偏差的影响因素分析

血细胞分析仪进行血小板计数偏差的影响因素分析目的: 探讨血细胞分析仪进行血小板计数偏差的影响因素分析。

方法: 回顾性分析我院2009年3月到2012年3月随机抽取的血常规标本500份的检验资料,分别采用血细胞分析仪和人工显微镜进行血小板计数。

结果: 410份正常血标本血小板计数,血细胞分析仪和人工显微镜计数的结果无显著差异(P>0.05)。

而90份脂血、溶血、小红细胞血、冷凝素、ETDA依赖性聚集标本、均可引起血小板不同程度的偏差(P 0.05)。

而90份脂血、溶血、小红细胞血、冷凝素、ETDA依赖性聚集标本、均可引起血小板不同程度的偏差(P 0.05)。

而90份脂血、溶血、ETDA依赖性聚集标本均可引起血小板不同程度的偏差(P <0.05)。

血细胞分析仪采用电阻抗法原理计数血小板时脂血、溶血高于目视显微镜法计数。

表明电阻抗法将红细胞碎片和脂血中与血小板大小相似的乳糜微粒等,很难避免白细胞碎片、小红细胞、红细胞碎片、乳糜微粒和蛋白聚集体等物质的干扰。

这些物质在血液分析仪计数时会被划分到血小板的各个区域里,从而干扰了血小板的计数,导致仪器出现了误差,导致血小板计数偏离。

冷凝集素在受冷后很快出现凝集,不但能凝集红细胞,而且能凝集有核细胞和血小板,造成假性血小板减少。

除此以外,选择不同的抗凝剂也可以引起血小板计数偏差,EDTA-K2可导致血小板假性减少,而使用柠檬酸钠抗凝能一定程度降低EDTA-K2對血小板计数的影响[3]。

另外,血标本放置时间太长,血小板易吸附在中性粒细胞及淋巴细胞膜周围,形成巨大血小板,使血小板计数偏低,所以全血标本需不断混匀,并且在2h内完成测定[4]。

还有实验室的环境因素,如温度的高低,湿度的控制以及采血过程是否顺利都会对测量的结果与真实结果的接近程度造成一定的影响。

所以,寻找血小板计数异常的因素,尽而减少分析异常,而得到准确结果,就必须对分析仪器进行监测、纠正系统误差、严把标本接收关,对治疗前后标本做好时间与用药的备注,及时与临床进行联系,确保结果真实可靠。

血小板测定过程中影响检测结果的因素

血小板测定过程中影响检测结果的因素

血小板测定过程中影响检测结果的因素【摘要】目的探讨血小板测定过程中影响检测结果的因素。

方法血细胞分析仪分析后,对其中MCV(平均红细胞体积)<70 fL、血小板测定结果偏低或偏高,测定值与直方图不符的100例标本进行目视显微镜计数重新采血计数。

结果全血的放置时间、环境温度、采血过程、抗凝管及抗凝剂的质量、小红细胞数量都是血小板计数的影响因素。

结论临床工作中应结合直方图进行判断,必要时进行显微镜计数或重新采血。

【关键词】影响因素;标准化;处理方法血小板检测是对血液中的血小板进行定量分析,用于诊断血小板异常所导致的疾病。

由于血小板稳定性较差,一些简单的因素都影响血小板的检测,现讨论如下。

1 材料与方法1. 1 仪器雅培3700血细胞分析仪,为美国雅培公司产品。

1. 2 试剂雅培配套试剂及质控液。

1. 3 标本100例门诊血小板检测结果异常患者1. 4 检测方法对100例全血标本用血细胞分析仪进行分析,测定值与显微镜计数结果进行比对,两种检测方法结果有差异。

2 误差原因分析2. 1 被采血者在采血前是否处于平静状态,采血操作是否标准化(穿刺不顺,组织液混入,混匀不及时等),这些都是引起血小板(PLT)聚集,导致计数结果偏低的因素。

在PLT 直方图上提示有大颗粒存在,这样的结果有很大的误差。

必须重新采血进行了显微镜镜检。

2. 2 由于血小板(PLT)和红细胞(RBC)是在同一个检测系统中通过颗粒大小来加以鉴别的,大量小红细胞的存在可引起PLT上限区域的改变。

在平均红细胞容积(MCV)大于70fL时,仪器一般无PLT上限区域干扰报警,血细胞分析仪法与显微镜法相比,差异无显著性。

在MCV小于70fL时,仪器往往提示上限区域有干扰,红细胞直方图上显示有小红细胞存在,研究发现,MCV值越小,小红细胞数量越多,PLT数就越多,血小板计数值就越高,仪器法与镜检法相比差异越显著。

此种现象可用流式细胞技术或二维激光散射技术避免。

探讨血细胞分析仪计数血小板的影响因素

探讨血细胞分析仪计数血小板的影响因素

探讨血细胞分析仪计数血小板的影响因素摘要】目的:分析血细胞分析仪计数血小板的影响因素。

方法:收集96份干扰标本并分为三组:A组32份,位于血小板直方图上,且后峰翘起始处>25fl;B组32份,后峰翘起始处20~25fl;C组32例,后峰翘起始处<20fl。

对三组标本分别采用希森美康XS-500i分析仪与显微镜两种方法计数血小板,比较计数结果。

同时比较正常、异常血小板直方图上血小板聚集、大血小板、血细胞仪计数与显微镜计数情况。

结果:B、C两组的仪器法、显微镜法计数结果均存在显著差异(P<0.05);A组无差异(P>0.05)。

异常图形血小板聚集21例、大血小板9例、血细胞仪计数(80.36±29.74)×109/L;正常图形无血小板聚集与大血小板,血细胞仪计数(238.65±17.13)×109/L(P<0.05);两种图形的显微镜计数无差异(P>0.05)。

结论:应用血细胞分析仪计数血小板,受到血小板凝集、小红细胞数量和大血小板的影响。

针对血小板计数不符合直方图的标本,建议通过手工方法计数,或者重新采集标本,从而提高血小板计数的准确性。

【关键词】血细胞分析仪;血小板;计数;显微镜;影响因素【中图分类号】R446.11 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752(2018)24-0395-02Acupuncture for treatment of cervical bone hyperplasia clinical analysis of 58cases Gong Feng.Neijiang Hua Kang Hospital,Sichuan Neijiang 641100,China【Abstract】Objective To analyze the factors affecting platelet count by blood cell analyzer. Methods 96 samples were collected and divided into three groups: 32 in group A, on platelet histograms, and at the beginning of peak warping > 25fl, 32 in group B and 20~25fl at the beginning of the peak, 32 in group C, and at the beginningof "20fl". Three groups of specimens were counted by the two methods of XS-500i and the microscope. At the same time, platelet aggregation, platelet count, blood cellcount and microscope count were compared between normal and abnormal platelet histograms. Results There was a significant difference between the two groups of instruments in B and C (P<0.05), and there was no difference in A group (P>0.05). Abnormal pattern of platelet aggregation in 21 cases, large platelets in 9 cases, blood cytometer count (80.36±29.74)×109/L, normal pattern without platelet aggregationand large platelets, blood cytometer counting (238.65±17.13) × 109/L (P<0.05), and no difference (P > 0.05) in the two patterns. Conclusion Platelet count by blood cell analyzer is affected by platelet aggregation, small red blood cell count and large platelet count. In order to improve the accuracy of platelet count, it is suggested that a manual method of counting or collect the specimen by manual method is suggestedfor the specimen that does not conform to the histogram of the platelet count.血细胞分析仪提高了临床检验效率,在检测大量实验参数的基础上,还能保证检验结果的准确性。

血细胞分析仪测定血小板的影响因素分析

血细胞分析仪测定血小板的影响因素分析

血细胞分析仪测定血小板的影响因素分析目的:分析影响血细胞分析仪测定血小板的因素,为临床诊断提供有效参考依据。

方法:根据血小板计数原理和血小板直方图,将获取的标本分为A、B、C三组,对两种方法测定结果进行检验,同时比较直方图正常和异常两种情况下的血小板测定结果。

结果:血细胞分析仪与光学显微镜正常体积血小板计数结果比较差异并不显著,P>0.05;血细胞分析仪与光学显微镜异常体积血小板计数结果比较差异显著,P<0.05,其中血细胞分析仪测得大血小板和小血小板的计数结果偏低,小红细胞干扰的计数结果偏高。

结论:大血小板、小血小板聚集和小红细胞数量均会影响到血细胞分析仪测定血小板的计数结果。

标签:血细胞分析仪;血小板;直方图;影响因素血细胞分析仪是医院临床检查常用仪器,随着计算机技术的不断发展,相关技术也已从三分群过渡为五分群,从二维空间过渡为三维空间,其检测水平获得了大幅度提升,与传统显微镜计数法相比,该仪器具有操作简单、检测速度快、重复性好等优点,但是对于存在干扰的标本,也易受到多种影响因素的制约,其在测定血小板时就存在结果偏差的问题[1]。

现对影响血细胞分析仪测定血小板的因素进行分析,将相关研究结果报道如下。

1资料与方法1.1一般资料选用希森美康XT1800-i型全自动血细胞分析仪器和CX31光学显微镜对选取的标本进行测定,标本来自本院门诊患者,共100例,以EDTA-K2真空抗凝管采集静脉血液2.0ml,摇匀放置4h后检测,包括溶血素清洗液、稀释液等随机配套试剂[2]。

1.2方法仪器检测操作严格按照SOP文件进行,根据血小板计数原理,对获取的标本进行分组,将血小板总数300×109/L的标本列入C组。

正常情况下,血细胞分析仪的血小板计数域在2~20fl之间,当上域受到干扰时,计数将会超出该范围,其上限将在20~250fl之间漂移,具体值可由仪器自动进行甄别;根据血小板直方图并结核MCV、MPV等参数[3],血细胞分析仪筛选结果为:正常体积血小板52例,大血小板20例,小血小板(聚集)16例,小红细胞干扰12例,同时对这些标本进行显微镜计数。

血液分析仪的影响因素与全程质量控制

血液分析仪的影响因素与全程质量控制

血液分析仪的影响因素与全程质量控制血液分析仪因其操作简单, 测定参数多, 工作效率高, 已被医院和疗养院广泛使用。

但血小板(PLT)分析计数结果波动较大, 重复性相对较差, 易受许多因素影响, 常出现结果误差,给临床诊断带来不便, 故搞好PLT计数质量控制十分必要。

现以瑞典产AC-920EO+血液分析仪为例, 将PLT计数全程质量控制, 提高结果准确性的方法和措施, 报道如下。

1 PLT分析计数前的质量控制PLT分析计数前的质量控制, 在搞好PLT计数全程质量控制中起到举足轻重的作用, 包括仪器的监管与校正, 合格标本的采集, 操作人员的素质培养与岗前培训, 科室之间的勾通与合作, 这是提高PLT计数检测质量的前提。

1.1 仪器工作环境对PLT计数的影响与质控1.1.1 电磁场的干扰 AC-920EO+血液分析仪是电阻抗法3分类仪器, 极易受静电干扰和不稳定电源的影响, 电磁场产生的静电脉冲信号影响PLT计数。

仪器要避免与电冰箱、离心机等大功率和噪音大的仪器接同一电源板, 要远离放射及理疗等电磁场干扰源。

电压不稳对PLT影响尤其明显, 仪器要有电源稳压器及良好的接地效果。

1.1.2 实验室环境的影响血液分析仪是一种精密度较高的仪器, 尘粉、潮湿、温度过高或过低都会影响计数结果。

空气中的尘粉可污染标本和试剂, 室温过低时稀释液会出现结晶, 使血小板计数结果偏高, 当室温低于15℃时, 稀释液应稍加热后再使用。

仪器实验室要有恒温、防潮、防尘等配套设置。

1.1.3 仪器内部环境的影响要使血液分析仪检测结果准确可靠, 必须具备: 准确的细胞稀释比例、充分和完全混匀的血样本、固定的测量孔径、固定的测量容器。

而仪器的测量小孔径,易受凝集在测量变换器上的蛋白质的影响, 这些蛋白质会使测量小孔直径缩小, 导致不能准确测量。

所以, 平时对仪器的保养维护要严格要求, 经常清洁测量变换器和测量小孔, 做好仪器的每天、每周、每月的清洁保养维护。

机采血小板的影响因素与全程质量控制

机采血小板的影响因素与全程质量控制

机采血小板的影响因素与全程质量控制机采血小板是一种重要的治疗手段,可以用于血液病、恶性肿瘤、输血过程中等许多情况。

然而,机采血小板的质量控制非常重要,因为其影响因素较多,会对患者的健康产生影响。

下面就来介绍一下机采血小板的影响因素与全程质量控制。

一、影响因素1. 供血者的状况供血者的状况是影响机采血小板质量的首要因素。

如果供血者身体状况不良,血小板质量就会差,这就需要通过严格的筛查,筛选掉有疾病的供血者。

同时,供血者的药物使用情况也要严格控制,防止药物对血小板产生影响。

2. 采集方式和采集时间采集方式和采集时间也会对机采血小板的质量产生影响。

为了避免机采血小板的过度激活,采集方式尽量采用闭式采集方式,同时采集时间要控制在30分钟以内。

3. 保存条件和时间机采血小板的保存条件和时间是影响机采血小板质量的重要因素。

在保存过程中,需要保持良好的温度和湿度,同时要避免震动和冷冻,以免血小板被破坏。

4. 生产环节生产环节也会对机采血小板的质量产生影响。

在生产过程中,需要严格遵守质量管理流程,包括采样、检验、制备、保存、检测等各个环节。

二、全程质量控制为了确保机采血小板的质量,需要开展全程质量控制。

全程质量控制包括以下几个方面。

1. 供血者筛查和检测在采集机采血小板时,需要对供血者进行严格筛查,避免携带病毒等传染病。

同时,还需要对供血者进行必要的检测,确保采集到的血小板质量良好。

2. 采集方式和采集时间控制为了避免机采血小板的过度激活,需要采用闭式采集方式,同时采集时间控制在30分钟以内。

这样可以有效提高机采血小板的质量。

3. 保存条件和时间控制机采血小板的保存条件和时间也是全程质量控制的重要环节。

在保存过程中,需要严格控制温度和湿度,并避免震动和冷冻。

保存时间也不能过长,以免影响血小板质量。

4. 生产环节流程可追溯在生产过程中,需要保证生产流程可追溯,包括采样、检验、制备、保存、检测等各个环节。

同时,需要按照标准操作流程进行生产,确保机采血小板的质量。

血细胞分析仪检测血小板影响因素影响策略

血细胞分析仪检测血小板影响因素影响策略

血细胞分析仪检测血小板影响因素影响策略本文从网络收集而来,上传到平台为了帮到更多的人,如果您需要使用本文档,请点击下载按钮下载本文档(有偿下载),另外祝您生活愉快,工作顺利,万事如意!在当前医疗技术的发展与促进作用之下,血细胞分析仪被广泛应用于基层医院的检验科室当中。

实践经验显示:血细胞分析仪作用于检验,具有操作简单,响应迅速、重复性好、以及数据精确度高在内的多方面确切优势[1-2]。

但受到自身检测原理的限制性影响,导致在临床对血细胞分析仪进行应用的过程当中,会受到大量内外部因素的影响。

特别是对血小板的检测而言,计数结果会受多种因素影响而出现偏差,成为了临床中反应较多的问题之一。

从这一角度上来说,如何明确血细胞分析仪在检测血小板过程当中的影响因素,落实相应的纠正与控制方法,这一问题备受医务工作者的关注与重视。

本文选取2014年1-3月,健康体检对象共计50例作为研究对象,应用血细胞分析仪对其血小板计数结果进行分析,具体总结如下。

1 资料与方法一般资料选取自2014年1-3月,健康体检对象共计50例作为研究对象。

对所有入选对象的一般资料进行回顾分析:男27例,女23例,年龄1~72岁,平均(±)岁。

方法使用希森美KX-21型全自动血细胞分析仪,对所有入选对象进行血小板计数检测工作。

由希森美公司提供溶血剂以及稀释液。

在空腹状态下,分别实施静脉抽血(血样剂量为 2 ml)以及末梢采血(血样剂量为120 μl),使用mg单位EDTA抗凝管储存分析。

分别实施仪器法以及手工法两种检测方案。

计数作业分别进行3次,取平均值作为最终计数结果。

观察指标对仪器法以及手工法下,不同时间状态下所对应的血小板计数情况进行观察对比,同时对静脉血以及末梢血下的血小板计数检测结果进行对比。

统计学处理采用SPSS 软件对所得数据进行统计分析,计量资料用均数±标准差(x±s)表示,比较采用t检验;P);静置8 h后,仪器法检出数据明显低于对照组,对比差异有统计学意(P)。

血液分析仪血小板计数的影响因素与全程质量控制

血液分析仪血小板计数的影响因素与全程质量控制

血液分析仪血小板计数的影响因素与全程质量控制
邓宗奎
【期刊名称】《检验医学与临床》
【年(卷),期】2009(006)019
【摘要】@@ 血液分析仪因其操作简单,测定参数多,工作效率高,已被医院和疗养院广泛使用.但血小板(PLT)分析计数结果波动较大,重复性相对较差,易受许多因素影响,常出现结果误差,给临床诊断带来不便,故搞好PLT计数质量控制十分必要.现以瑞典产AC-920EO+血液分析仪为例,将PLT计数全程质量控制,提高结果准确性的方法和措施,报道如下.
【总页数】1页(P1688-1688)
【作者】邓宗奎
【作者单位】广州军区桂林疗养院检验病理科,广西桂林,541003
【正文语种】中文
【中图分类】R446.1
【相关文献】
1.血液分析仪血小板计数影响因素的探讨 [J], 汪玄文
2.血液分析仪血小板计数质量控制应注意的几个问题 [J], 宁洁;张绍武
3.相差显微镜血小板计数法对血液分析仪测定"血小板计数减少"结果的复核作用[J], 巩惠芸;顾晓菁
4.人工血小板计数与血液分析仪血小板计数的比较 [J], 陈小芳
5.血液分析仪测定血小板计数的影响因素研究 [J], 杨健
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浅谈血细胞分析仪计数血小板的影响因素及其质量控制
血细胞分析仪的广泛使用使临床检验工作提高到了一个新的水平,不仅能检测更多的实验参数而且大大提高了检测结果的准确性。

但在计数过程中的影响因素也不容忽视,尤其是计数血小板时影响因素比较多,现将使用血细胞分析仪出现血小板假性减少和假性升高的原因及质量控制总结如下:
1 血小板计数假性升高因素
1.1 地线和电源:血细胞分析仪要求良好的接地效果,如果地线未接或接地不良,均可形成静电脉冲信号而影响血小板计数,其主要表现在血小板直方图的起点偏左,并形成小峰,这种情况一定要排除地线和电源的因素,再寻找其他原因。

1.2 试剂质量原因:血细胞分析仪在做血常规分析时,由于稀释液或溶血素过滤不严或被污染导致本底偏高时会引起血小板计数假性增多,故在每天开机做本底检测时发现本底偏高,应进行清洗使本底降至规定范围。

1.3 标本溶血:溶血对红细胞和血小板影响最大,因为红细胞破坏,其计数值减少,而破坏的红细胞形成大小不等的碎片,分析仪将其识别为血小板,使血小板升高,故血细胞分析前应避免溶血。

1.4 小细胞对血小板计数影响:赵勇等[1]报道用血细胞分析仪进行血小板计数时,其结果易受红细胞体积的影响,小细胞数量越多,红细胞体积越大,影响越大,即血小板直方图降波向右延伸范围越大,这与血小板间接计数中红细胞和血小板的形态学及其量的改变一致。

避免方法是注意观察红细胞直方图的起点及血小板降波是否达到基底,否则,应及时做血涂片观察或用显微镜进行直接计数。

1.5 药物影响:有些药物可以影响血小板的计数。

钱敏等[2]报道患者输用脂肪乳后影响血小板计数,认为脂肪乳剂中的脂肪乳颗粒直径和患者血小板相近,导致输入脂肪乳的患者血小板会假性增高,并建议患者输用脂肪乳后如需检测血小板最好在5~6h以后,如出现血小板过高时应随时和临床联系,最后经血片观察方可报出结果。

1.6 弥散性血管内凝血(DIC):DIC患者的血小板计数仪器法与手工法结果有很大差异,仪器法计数明显高于手工法,这是由于病人血管内溶血产生的红细胞碎片对仪器法计数血小板所造成的正向干扰引起的。

血小板直方图显示血小板低鉴别线相对度数超过规定值(PL),血小板体积分布宽度(PDW)超过正常值。

DIC
患者早期即有血管内溶血发生,而DIC诊断的重要指标是血小板计数,所以对临床怀疑DIC病人的血液标本应做手工法计数血小板,以免漏诊而延误治疗。

1.7 标本放置时间:血小板是体积较小的血细胞,易于黏附聚集和破坏,王新花等[3]认为标本放置时间越长,破坏越多;同时红细胞也不例外,血细胞分析仪计数血小板时,误将红细胞碎片以为是血小板而计入,造成测定结果假性增高,即时测定和1h测定有非常显著性差异,建议取标本后一定要在30 min内测定。

2 导致血小板假性减少因素
2.1 采血方面:采血是否顺利是造成血小板偏低的一个重要因素,静脉经过多次穿刺而引起的水肿及皮下充血时,因组织损伤后组织凝血因子易混入血标本中产生肉眼看不见的小凝块,使血小板测定值偏底,这种标本必须重新采血后测定。

2.2 抗凝剂方面:因血细胞分析所用的抗凝管内是定量EDTA-K2水溶液,抽血量不准则破坏了血与抗凝剂的比例,抽血太少,水溶液稀释了血液致使全血细胞减少,因此血小板减少。

如果抽血太多,抗凝剂相对不足,血浆中出现微小凝集,致使血小板聚集而数量减少,故应按规定量抽血。

另一方面采血后没有及时摇匀抗凝管,或同一患者所做项目较多,同时采多管血致使抗凝管没有及时充分摇匀,而出现凝块。

较大凝块能发现,而较小凝块则不易发现,血细胞分析仪吸入的是血浆较多的血液,因此,血细胞全系减少,血小板也相应减少,相关参数也随之改变。

故在采血后应立即充分混匀抗凝管,用草酸盐抗凝可引起血小板聚集,并影响白细胞形态,不适于血小板计数和白细胞分类计数,肝素会引起白细胞聚集和血小板减少,加上肝素抗凝血如不及时使用,放置过久,仍可发生凝固,因此,肝素不能用于血细胞分析,肝素和草酸盐抗凝血的计数结果使血小板降低。

2.3 标本储存温度:血小板标本应室温保存,低温(4℃)保存血小板标本,低温可激活血小板,造成血小板冷凝集,可使血小板计数结果降低。

2.4 大血小板标本的影响:由于血小板的特点易于黏附,聚集,各种病理因素如肾脏移植,某些血液系统疾病可导致血小板体积偏大或增加血小板的聚集速度,血细胞分析器只识别颗粒大小而不区别颗粒的性质,血小板与红细胞计数在同一通道进行,致使这些体积偏大的血小板误认为小细胞而不被纳入血小板计数范围,使血小板计数结果偏低。

2.5 低血小板标本的测定:血细胞计数仪在某些特殊标本的处理上还存在部分缺陷,尤其是在低血小板标本计数时与手工有较大差异,随着血小板数量的减
少,仪器法和手工法差异逐渐增大,当血小板在20×109/L左右,仪器的准确度较差,血小板极低的样品(低于20×109/L)时仪器计数结果更不可靠,尽管仪器没有提示存在干扰血小板计数的因素,也应该以手工计数的结果为准。

2.6 输血的影响:大量输入血液制品时会引起血小板减少,这种情况导致的血小板减少一般在4~6 d后恢复正常;某些患者在输血后1周左右,突然发生全身性紫癜,血小板计数明显减少,这是因为患者对外源性血小板抗原产生同种免疫,再次输入相应的血小板后产生血小板特异性抗原—抗体复合物,使输入的血小板受到破坏,也使患者自身血小板破坏,结果计数明显降低。

2.7 药物的影响:长期应用某些药物,如地高辛、双氢克尿塞和甲基多巴青霉素等,可引起血小板减少,这些药物与血浆蛋白结合形成抗原,刺激机体产生抗血小板抗体,这种药源性血小板减少常在停药后15~20 d恢复正常。

2.8 其他因素影响:有文献报道,高脂血症可引起假性血小板减少;高镁血症、胆红素血症可使血小板计数结果减少。

临床上长用硫酸镁(MgSO4)来预防和控制产前子癜,因治疗的有效血镁浓度为1.0~3.0 mmol/L,故在MgSO4输液治疗过程中,血镁常超过引起仪器法测定血小板计数结果偏低的浓度(2.84 mmol/L)。

随着标本放置时间的延长,会导致血小板假性减少,此时应采末梢血,手工计数血小板。

3 加强血小板计数的质量控制
血小板计数的质量控制原则通过分析血小板影响因素,避免血小板的激活和破坏,避免杂物污染,应该注意整个实验的前、中、后各个环节的问题。

要想获得可靠的结果,必须抓住几个方面。

(1)分析前的质量控制:包括操作人员的岗前培训,仪器的鉴定校正,标本的采集以及质控物等,笔者认为血小板直方图异常多数情况是源于不合格的样本,临床提供合格的样本是整个检验过程中一个容易被忽视却非常重要的环节,必须认真对待,检验人员应经常与临床人员沟通,使临床人员了解检验对样本的要求,例如:①分析前的标本采集,抽血要畅,抗凝剂与血的比例要准,注入硅管内的血要反复颠倒混匀,以防凝集。

②尽量统一采血姿势。

③使用止血带的时间不超过1 min。

④取血应该在做其他检查和治疗之前进行。

⑤输液时需要做血常规应于输液对侧静脉取血。

通过检验与临床两方面的积极配合,从而达到血标本采集的规范化,才能获得科学可靠的检验结果。

(2)分析中的质量控制:要求检验人员严格规范技术操作,观察仪器运转中的每一个环节及工作状态,注意工作环境的干扰,注意病理因素对血液分析仪使用的影响,做好每天的室内控制,既能检测仪器的准确度,又能检测其精密度,确保检验准确性。

(3)分析后的质量控制:要求检验人员要有高度的责任心,发出报告前应有一个复核制度,尤其强调显微镜检查,认真审查结果并根据临床诊断、
直方图的变化和各项参数的相互关系进行必要的复检、镜检,确保无误后方能发出检验报告。

为了保证血小板计数的质量,我们制定了以下措施:①白血病、MDS、再障、肿瘤放化疗后血小板减低的病人,血小板数必须经过显微镜计数后才能报告。

②非血液病的标本,血小板直方图异常,血小板数目减低时,应要求临床重新取血进行复查后报告。

参考文献:
[1] 赵勇,耿素敏,侯振江.小红细胞对血液分析仪测定血小板的影响[J].上海医学检验杂志,1997,12(3):176.
[2] 钱敏,张杰,章明庆.病人输入脂肪乳后血小板计数准确性的探讨[J].临床检验杂志,2001,19(4):252.
[3] 王新花,高海英.末梢血标本放置时间对血小板测定结果的影响[J].临床检验杂志,1997,15(5):278.。

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