中温α-淀粉酶的酶学性质研究

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α-淀粉酶(中温)使用方法及作用

α-淀粉酶(中温)使用方法及作用

α淀粉酶(中温)使用要领及效率之阳早格格创做导读:α淀粉酶(中温)是采与劣良菌株枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)经液体深层收酵、粗制而成的下效死物制剂,广大应用于啤酒等死产中.产品个性淀粉酶为火解酶类,能正在较下温度下随机火解淀粉、糖本及其落解物里面的α1.4葡萄糖苷键,爆收可溶性糊粗战少量矮散糖,使得胶状淀粉溶液的粘度赶快下落,过分火解可爆收少量葡萄糖战麦芽糖.酶活力单位的定义1mL液体酶,于60℃、pH=6.0条件下,1h液化1g可溶性淀粉所需的酶量,即为1个酶活力单位,以u/mL表示.效率条件温度: PH值:最适温度范畴:70℃~75℃;最适pH范畴:5.0~6.0;灵验温度范畴:60℃~85℃. 灵验pH范畴:5.0~7.0.效率成果使淀粉液化更真足,醪液分层更明隐,色度矮,收缩糊化战过滤时间,普及设备战本料利用率;可真止无麦芽糊化支配,以普及辅料比率,进而落矮啤酒死产成本,革新啤酒本量,普及经济效率.规格及尺度淀粉酶为浅褐色液机制剂,酶活力≥3,000u/mL,果收酵本料、周期等果素的效率,颜色会稍有好别,但是没有会效率使用成果.本产品切合国家尺度GB8275《食品增加剂α淀粉酶制剂》.本产品切合食品仄安国家尺度GB2760《食品仄安国家尺度食品增加剂使用尺度》战GB25594《食品仄安国家尺度食品工业用酶制剂》的相闭确定.使用量正在啤酒酿制历程中,使用辅料时,推荐加量为辅料搞沉的0.04~0.08%(即每吨辅料加进0.4~0.8L),与α淀粉酶(耐下温)拆配使用效验更好;然而,由于糖化本料组成及工艺参数的好别,本品的最好增加量应通过正在糖化车间中举止分歧增加量的考查去决定.如果工艺中需安排料液的pH,请正在安排完毕后再加进酶液.使用仄安酶制剂是蛋黑量,吸进灰尘或者悬浮微粒大概会爆收过敏效率,引导人们爆收过敏反应.如果万古间交触某些酶,大概会刺激皮肤、眼睛战粘膜;飞溅战热烈搅动大概制成可吸进的粉尘.修议脱戴具备呵护效率的衣服、脚套战眼睛或者脸部呵护物.储藏淀粉酶属死物活性物量,应置于矮温、搞燥处保存,预防阳光曲射及少久与中界交触.本产品本启拆正在15℃以下矮温阳凉搞燥环境,保量期12个月。

淀粉酶酶学性质的研究

淀粉酶酶学性质的研究

生物化学学号:淀粉酶酶学性质的研究学生姓名:####指导教师:#####所在院系:生命科学学院所学专业:#######学号:######### 大学中国·哈尔滨2011 年12 月摘要:酶是酶是一种生物催化剂,它具有催化剂属性,同是也具有一些无机催化剂所不具有的特性。

催化特定化学反应的蛋白质、RNA或其复合体。

是生物催化剂,能通过降低反应的活化能加快反应速度,但不改变反应的平衡点。

本实验通过利用淀粉酶水解还原糖,还原糖能使3,5-二硝基水杨酸还原,生成棕色的3-氨基-5硝基水杨酸。

淀粉酶活力与还原糖的量成正比,用比色法测定淀粉酶作用于淀粉后生成的还原糖的量,以单位质量样品在一定时间内生成还原糖的量表示酶活力。

酶的活性又同时受到温度、PH、激活剂抑制剂等的影响。

关键词:淀粉酶活力温度 PH 激活剂和抑制剂前言:淀粉酶是水解淀粉和糖原的酶类总称,通常通过淀粉酶催化水解织物上的淀粉浆料,由于淀粉酶的高效性及专一性,酶退浆的退浆率高,退浆快,污染少,产品比酸法、碱法更柔软,且不损伤纤维。

淀粉酶的种类很多,根据织物不同,设备组合不同,工艺流程也不同,目前所用的退浆方法有浸渍法、堆置法、卷染法、连续洗等,由于淀粉酶退浆机械作用小,水的用量少,可以在低温条件下达到退浆效果,具有鲜明的环保特色。

此酶以Ca2+为必需因子并作为稳定因子和激活因子,也有部分淀粉酶为非Ca2+依赖型。

淀粉酶既作用于直链淀粉,亦作用于支链淀粉,无差别地随机切断糖链内部的α-1,4-链。

因此,其特征是引起底物溶液粘度的急剧下降和碘反应的消失,最终产物在分解直链淀粉时以葡萄糖为主,此外,还有少量麦芽三糖及麦芽糖,其中真菌a-淀粉酶水解淀粉的终产物主要以麦芽糖为主且不含大分子极限糊精,在烘焙业和麦芽糖制造业具有广泛的应用。

另一方面在分解支链淀粉时,除麦芽糖、葡萄糖、麦芽三糖外,还生成分支部分具有α-1,6-键的α-极限糊精(又称α-糊精)。

淀粉酶酶学性质的研究

淀粉酶酶学性质的研究

淀粉酶酶学性质的研究摘要淀粉酶可将淀粉水解为麦芽糖和少量葡萄糖,它们遇碘呈现不同的颜色,根据这个性质对淀粉酶进行不同条件下的研究。

通过在不同条件下对酶的性质进行研究发现萌发小麦种子中淀粉酶的最适温度在40℃,随着温度的升高或降低都会对酶活性产生影响;萌发的小麦种子的淀粉酶最适pH在5.6左右,低于或高于最适pH酶的活性逐渐降低;研究还发现Cl¯是淀粉酶的激活剂而Cu²+则对淀粉酶有抑制作用。

关键词:淀粉酶 .不同条件性质淀粉是植物最主要的储藏多糖,也是人和动物的重要食物和发酵工业的基本原料。

淀粉经淀粉酶水解后生成葡萄糖和麦芽糖等小分子物质而被机体利用。

通过对小麦种子中淀粉酶酶学性质的研究可以用于农业研究用于食品¸工业原料等,还可以提高小麦的应用范围和利用率。

⒈材料与方法⒈⒈实验材料萌发的小麦种子⒈⒉实验设计称取2g萌发3天的小麦种子,置于研钵中,加入少量2ml蒸馏水,研磨匀浆。

将匀浆倒入刻度试管中,定容至25ml。

提取液在室温下放置提取15-20min,每隔数分钟搅动一次,使其充分提取。

然后在4000r/min转速下离心10min,将上清液倒入一个干净的试管中,即为淀粉酶粗酶液。

⒈⒊实验方法与结果⒈⒊⒈温度对淀粉酶活性的影响取8支试管,编号,按下表操作,并记录观察到的颜色。

管号 A a B b C c D d缓冲液(pH5.6)/ml 1.0 — 1.0 — 1.0 — 1.0 —淀粉溶液/ml 2.5 — 2.5 — 2.5 — 2.5 —淀粉酶提取液/ml — 1.0 — 1.0 — 1.0 — 1.0预保温/10min 4℃室温40℃沸水浴混合A→a B→b C→c D→d酶促反应(10min)4℃室温40℃沸水浴碘液各加3滴(滴管应先冷却至室温)显色浅蓝色无色无色蓝色低温时酶的活性低,但没有失活,随着温度升高,酶的活性越来越高,后来又降低当温度到达很高时酶失活。

五、α-淀粉酶酶学性质测定I2010(精)

五、α-淀粉酶酶学性质测定I2010(精)

4.1 最适pH值的测定—α-淀粉酶
• 以下表内容测定最适pH值 pH值 指标
OD660 (测三次 平均值) 酶活 (U/g)
3.0 4.0 5.0 6.0 7.2 8.0
4.2 最适反应温度的测定—α-淀粉酶
• 以下表内容测定最适温度
温度 5 ℃ 指标
20 (冰 ℃( 箱) 室温) 30 ℃ 40 ℃ 50 ℃ 60 ℃ 70 ℃ 80 ℃
3.2 器材(每组)
15ml 大试管20支 5ml 移液管10支 1ml 移液管10支 10ml 移液管10支 200ml 烧杯2个 100ml 烧杯2个 玻棒 2支 双蒸水1瓶(50ml) 比色皿1套(4个)、玻璃皿1套、洗瓶1个 吸耳球 2个 记号笔2支 陶瓷盘1个 试管架2个
另外,酶对温度的稳定性与其存在形式有关。 有些酶的干燥制剂,虽加热到1000C,其活性并无 明显变化。但在1000C的溶液中却很快地完全失去 活性。 参考:α-淀粉酶最适温度55-700C;最适 pH4.5-7.0。
3.仪器试剂
3.1 试剂 3.1.1 1%α-淀粉酶液(双蒸水配制500ml,教师准备) 3.1.2 3.1.3 稀碘液
生物技术专业系统实验(四)
—酶(蛋白质)工程实验V
五、α-淀粉酶酶学性质测定I(最适pH值及最适度的测定)• 1.目的意义
• 3.仪器设备 • 5.实验报告
2.实验原理
4.实验方法 6.思考题
1.目的意义
• 影响酶促反应的因素有:底物浓度(S),pH,T,激活剂,抑制剂等。 酶促反应是在非常温和的条件下(常温、常压、中性pH)高效专一地 完成催化反应的过程。酶对温度和酸碱条件极其敏感,这些条件的变 化可导致酶活性下降甚至丧失。 • 通常情况下α-淀粉酶的最适作用pH一般在2到12之间变化。真菌和细 菌类α-淀粉酶的最适pH在酸性和中性范围内,如芽孢杆菌α-淀粉酶 的最适pH为3。碱性α-淀粉酶的最适pH在9到12之间。另外,温度和 钙离子对一些α-淀粉酶的最适pH会有一定的影响,能够改变其最适 作用范围pH。 • 不同微生物来源的α-淀粉酶的最适作用温度存在着较大差异,其中 最适作用温度低的只有25℃-30℃,而最高的能达到100℃-130℃。

中温α-淀粉酶的分子进化及酶学性质

中温α-淀粉酶的分子进化及酶学性质

DOI:10.13995/ki.11-1802/ts.026430引用格式:马银凤,申培立,王彩喆,等.中温α-淀粉酶的分子进化及酶学性质[J].食品与发酵工业,2021,47(11):14-18.MA Yinfeng,SHEN Peili,WANG Caizhe,et al.Molecular evolution and biochemical characterization of Bacillus amyloliquefa-ciens α-amylase[J].Food and Fermentation Industries,2021,47(11):14-18.中温α-淀粉酶的分子进化及酶学性质马银凤1,申培立2,王彩喆1,牛丹丹1,田康明1,王正祥1∗1(天津科技大学化工与材料学院,天津,300457)2(天津科技大学生物工程学院,天津,300457)摘㊀要㊀解淀粉芽胞杆菌α-淀粉酶(Bacillus amyloliquefaciens α-amylase ,BAA )是淀粉加工㊁织物退浆㊁食品等相关工业中最主要的中温型淀粉液化酶,但其工业应用属性一直未被深入研究㊂该研究基于酶分子进化原理,获得了催化属性显著改善的BAA 突变体E2M6㊂与BAA 相比,突变体E2M6的最适作用温度提高5ħ,最适作用pH 则未发生变化,突变体酶活性对Ca 2+㊁Mg 2+㊁Na +等金属离子的依赖性显著降低,其淀粉水解效率(κcat /K m )较BAA 提高了1.75倍,显示其具有更好的工业应用价值㊂关键词㊀解淀粉芽胞杆菌α-淀粉酶;分子进化;酶学性质;淀粉水解活性第一作者:硕士研究生(王正祥教授为通讯作者,E-mail:zxwang0519@)㊀㊀基金项目:国家重点研发计划政府间国际科技创新合作重点专项项目(2018YFE0100400);天津市高等学校创新团队建设规划项目(TD13-5009);国家自然科学基金项目(31601407)收稿日期:2020-12-10,改回日期:2020-12-21㊀㊀解淀粉芽胞杆菌α-淀粉酶(Bacillus amyloliquefa-ciens α-amylase,BAA)可以随机水解直链淀粉或支链淀粉分子中的α-1,4糖苷键,生成麦芽糊精和少量葡萄糖,是一种内切型液化酶,最适作用温度为55ħ㊁最适作用pH 为6~7,是一种典型的钙离子依赖型淀粉液化酶[1-2]㊂BAA 在淀粉液化㊁织物退浆和食品加工等工业中具有重要应用价值,是工业上产量最大㊁应用领域最广的中温型α-淀粉酶[3-4]㊂BAA 作为我国开发应用较早的工业酶制剂之一,早在19世纪60年代就开始了工业化生产,但发酵水平一直停滞在300~500U /mL,且酶制剂产品质量不稳定㊁货架期太短(3个月左右)㊂2009年前后,经过分子育种技术,在改善BAA 酶制剂质量和货架期的同时,BAA 发酵生产水平提高至1500U /mL 以上,由此确立了BAA 生产的世界领先地位[5]㊂但是,针对BAA 工业应用属性的研究,一直以来未有很大的突破㊂现有针对BAA 的分子进化研究,主要包括:LEE 等[6]对BAA 编码基因进行随机突变,发现233位的氨基酸残基与BAA 的酶学性能有关;CORNEL-IUS 等[7]通过易错PCR 与DNA 体外随机重排技术(DNA shuffling)对BAA 编码基因进行改造,得到水解活力提高8倍的突变体BAA29,比酶活性由15U /mg 提高至140U /mg;WU 等[8]通过易错PCR 对BAA 编码基因进行随机突变,得到Ca 2+依赖性降低的突变体Q264S;林碧瑜[9]发现BAA 第28位氨基酸由天冬氨酸突变为谷氨酸可以提高比酶活性,与野生型BAA 相比突变体的比酶活性提高了约30%㊂BAA 工业应用属性有待改善的主要方面:1)酶活性的钙离子依赖型,即如何降低其在实际工业应用中氯化钙或碳酸钙等钙盐的补加;2)如何适度提高其最适作用温度,有利于淀粉液化和加工工艺的实施㊂为此,本文在前期研究积累[9]的基础上,进一步对其特定氨基酸残基进行突变并解析酶学性质,研究结果对后续进一步提升BAA 的应用具有显著价值㊂1㊀材料与方法1.1㊀材料1.1.1㊀菌种与质粒含有BAA 突变体2M6表达质粒的Bacillus subti-lis 2M6-A1为本实验室前期构建与保藏;B.subtilis1A717为本实验室保藏,用于质粒构建;载体pHY-WZX 为本实验室前期构建[10],用于BAA 及其突变体的表达;Bacillus licheniformis Z902(Δamy )[11]为酶高效表达宿主细胞,由本实验室前期通过分子改造B.licheniformis CBBD302[12]获得㊂1.1.2㊀酶与试剂中温α-淀粉酶工业产品,江苏锐阳生物科技有限公司;Pyrobest DNA 聚合酶,Takara 公司;限制性内切酶Xba I㊁Sma I㊁T 4DNA 连接酶和DNA 分子量标准,上海生工生物工程股份有限公司;琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒和小量DNA产物纯化试剂盒,北京庄盟生物科技有限公司,其他试剂除特殊要求外均为国产分析纯㊂1.1.3㊀培养基LB培养基(g/L):酵母浸出物5,蛋白胨10,氯化钠10;固体培养基添加20g/L琼脂㊂必要时在培养基中添加终质量浓度为20μg/mL的硫酸卡那霉素㊂产酶鉴定培养基:在固体LB培养基的基础上,加入1%可溶性淀粉[13]㊂发酵培养基(g/L):CaCl20.3,(NH4)2SO43,棉籽粉20,α-乳糖20,KH2PO410,K2HPO420,pH7.2[13]㊂1.2㊀实验方法1.2.1㊀常规分子克隆操作质粒DNA的提取㊁酶切㊁转化子筛选等均按照实验室常规方法进行[14];枯草杆菌与地衣芽胞杆菌的遗传转化按照文献进行[15-16];DNA纯化按照试剂盒说明书进行㊂1.2.2㊀定点突变以突变体2M6编码基因为模板,按照文献方法进行定点突变[5]㊂具体步骤为:以baa-28a(5ᶄ-CGATAAATGTTCCGCATCATTCTG-3ᶄ)和baa-28b(5ᶄ-CAGAATGATGCGGAACATTTATCG-3ᶄ)为突变引物,引入突变位点D28E,与两端引物BAA-1(5ᶄ-TACTCTAGAGTAAATGGCACGCTGATGCAGTAT-3ᶄ)和BAA-2(5ᶄ-TTTCTGAACATAAATGGAGCAGG-3ᶄ)组合,通过PCR扩增获得上下游两段DNA片段;再以此两段DNA片段为模板,以BAA-1和BAA-2为引物,将上下游两段DNA片段融合为突变体E2M6全长基因㊂采用Sanger核苷酸序列测定法确认突变基因序列㊂1.2.3㊀突变体的表达、制备与纯化将突变体全长编码DNA片段纯化后经Xba I酶切,并克隆入表达载体pHY-WZX的Xba I/Sma I位点,转化入枯草杆菌1A717构建重组质粒pHY-E2M6,正确构建的质粒转化入地衣芽胞杆菌Z902中,获得产酶重组菌地衣芽胞杆菌Z-E2M6㊂将Z-E2M6接种入盛有50mL发酵培养基的250 mL摇瓶,37ħ㊁220r/min条件下培养120h;发酵结束后离心收集上清液,即为突变体粗酶液㊂酶液经饱和度为30%~40%的硫酸铵沉淀,再经凝胶层析柱Superdex-G75进一步纯化㊂纯化蛋白经SDS-PAGE 分析[17],蛋白质浓度用Bradford法测定[18]㊂1.2.4㊀酶活测定中温α-淀粉酶酶活力按照GB1886.174 2016‘食品安全国家标准食品添加剂食品工业用酶制剂“进行测定[19]㊂酶活性定义为:1mL液体酶在60ħ㊁pH6.0条件下,1h液化1g可溶性淀粉即为1个酶活力单位,以U/mL表示㊂1.2.5㊀酶学性质分析1.2.5.1㊀最适作用温度及热稳定性将酶样在不同温度(30~90ħ)下测定酶活力,最高酶活力值以100%计,计算其不同温度下的相对酶活力,确定最适作用温度㊂将酶样用pH6.0缓冲液进行适当稀释,在不同温度(50㊁55㊁60㊁65ħ)下保温1h,间隔10min取样,测定残余酶活力,未经热处理的酶活力值以100%计,计算处理后酶样的相对酶活力㊂1.2.5.2㊀最适作用pH及pH稳定性将酶样用不同pH(4~8)缓冲液进行稀释,并用对应pH缓冲液测定酶活力,最高酶活力值以100%计,计算其不同pH条件下的相对酶活力,确定最适作用pH㊂将酶样与不同pH值缓冲液以1ʒ10(体积比)混合,37ħ静置1h,测定酶样的残余酶活力值㊂未经处理的酶活力值以100%计,计算处理后酶样的相对酶活力㊂1.2.5.3㊀金属离子及化学试剂对酶活的力影响在反应体系中加入不同金属离子和化学试剂,终浓度为1mmol/L或5mmol/L,在酶的最适反应条件下测定样品酶活力,未经处理的酶活力值以100%计㊂1.2.5.4㊀酶动力学参数的测定将酶样用最适作用pH缓冲液适当稀释后,以不同质量浓度(0.4㊁1㊁2㊁4,10和20mg/mL)可溶性淀粉溶液为底物,在最适反应条件下按照实验室常规方法[9]进行测定,并以双倒数法(Lineweaver-Burk法)作图,计算酶的动力学参数㊂2㊀实验结果2.1㊀突变体的构建与制备以突变体2M6编码基因为模板,特异性引物序列介导BAA编码基因的定点突变,获得突变体E2M6全长编码基因㊂将此基因酶切后克隆入表达载体pHY-WZX中,获得了重组表达载体pHY-E2M6㊂进一步将此表达质粒转化入地衣芽胞杆菌Z902中,获得产酶重组菌地衣芽胞杆菌Z-E2M6㊂经摇瓶发酵制备酶液,并经硫酸铵沉淀和凝胶过滤色谱进行纯化,获得了纯化的BAA突变体E2M6,经SDS-PAGE电泳鉴定,呈现单一纯蛋白条带(图1),分子质量为58kDa,与理论大小相符㊂M-蛋白分子量标准;1-B.licheniformis Z902发酵酶液;2-E2M6粗酶液;3-纯化后的E2M6图1㊀纯化突变体E2M6的SDS-PAGE图谱Fig.1㊀The SDS-PAGE profile of mutant E2M62.2㊀突变体的酶学性质2.2.1㊀最适作用温度与最适作用pH由图2-a可知,突变体E2M6的最适作用温度为60ħ,60~70ħ之间维持较高活性,突变体的最适酶活较野生型BAA提高了至少5ħ;在30~60ħ温度范围内,突变体E2M6与BAA的变化趋势大致相同;当温度升至80ħ时,野生型BAA的酶活力明显下降(小于40%),突变体E2M6仍保留70%以上的酶活力;当反应温度升至90ħ时,突变体E2M6仍保留20%以上的酶活力,而BAA仅残余约10%的酶活a-温度;b-pH图2㊀突变体E2M6的最适作用温度与最适作用pH Fig.2㊀Optimum temperature and pH optimal of mutant E2M6力㊂可见,对BAA的突变拓宽了BAA的作用温度范围㊂在60ħ条件下,测定不同pH(4.0~8.0)条件下的酶活力,结果如图2-b所示㊂突变体E2M6与BAA的最适作用pH相同,都为pH6.0,且两者在不同pH条件下的酶活力大致相同,在pH5.0~7.0范围内皆具有较高活性㊂2.2.2㊀热稳定性与pH稳定性BAA突变体的热稳定性和pH稳定性如图3所示㊂突变体在50ħ下保温1h后,E2M6与BAA分别保留80%㊁60%以上的酶活力;55ħ保温1h后E2M6与BAA分别保留60%㊁40%以上酶活力;60ħ保温1h后E2M6与BAA分别保留50%㊁30%以上的酶活力;65ħ保温1h后E2M6与BAA分别保留40%㊁15%以上的酶活力(图3-a)㊂综上,E2M6热稳定性较BAA有所提升㊂突变体E2M6与BAA的pH稳定性趋势大致相同㊂当pH在6.0~9.0范围内,pH的升高对BAA及E2M6酶活力影响较小,相对酶活力保持在80%以上(图3-b)㊂a-热稳定性;b-pH稳定性图3㊀突变体E2M6的热稳定性与pH稳定性Fig.3㊀The thermostability and pH stability of the mutant E2M62.2.3㊀金属离子和化学试剂对酶活性的影响不同金属离子及化学试剂对突变体酶活性的影响结果如表1㊂与BAA相比,突变体E2M6酶活力对Ca2+㊁Mg2+㊁Na+等金属离子的依赖性降低;SDS对BAA及突变体E2M6酶活均有抑制作用,但与BAA相比E2M6对SDS更敏感㊂表1㊀不同金属离子和化学试剂对突变体E2M6的影响Table1㊀Effect of different metal ions and chemicals on E2M6金属离子或化学试剂(1mmol/L)相对酶活力/%E2M6BAA金属离子或化学试剂(5mmol/L)相对酶活力/%E2M6BAA对照100100对照100100Na+103ʃ2.9115ʃ2.7Na+101ʃ2.3144ʃ1.9K+104ʃ1.6100ʃ1.7K+97ʃ1.683ʃ2.3Li+103ʃ1.5126ʃ2.3Li+99ʃ2.5124ʃ1.3Ca2+115ʃ0.9122ʃ2.1Ca2+112ʃ0.1137ʃ3.2Mg2+104ʃ3.4104ʃ3.2Mg2+97ʃ1.9119ʃ1.5Zn2+102ʃ0.3101ʃ2.3Zn2+103ʃ3.5109ʃ1.6Mn2+99ʃ2.6101ʃ2.2Mn2+96ʃ2.3106ʃ1.3Co2+104ʃ1.4106ʃ2.4Co2+104ʃ4.9108ʃ3.2Fe3+102ʃ3.1104ʃ2.2Fe3+103ʃ1.4102ʃ1.3SDS54ʃ1.382ʃ2.5SDS35ʃ2.279ʃ1.6EDTA58ʃ0.556ʃ3.2EDTA51ʃ0.955ʃ4.3 2.2.4㊀突变体E2M6动力学特征测定突变体E2M6的比酶活力数据与动力学常数,结果汇总于表2㊂突变体E2M6比酶活力为185 U/mg,较BAA提高了约66%;突变体E2M6的底物亲和力较BAA显著提高,最大反应速度虽有所降低,但突变体E2M6的淀粉水解效率(κcat/K m)有所提升,较BAA提高了1.75倍㊂表2㊀突变体E2M6的酶促学动力学特征Table2㊀The kinetic parameters of the mutant E2M6中温α-淀粉酶比酶活力/(U㊃mg-1)动力学参数V max/[mg㊃(mL㊃min)-1]K m/(mg㊃mL-1)κcat/(min-1)κcat/K m[mL㊃(mg㊃min)-1]E2M6185ʃ2.310.0ʃ0.9 2.4ʃ0.219.1ʃ1.37.92 BAA111ʃ1.528.1ʃ2.811.0ʃ1.031.0ʃ2.1 2.883㊀结论通过研究,本文获得了BAA工业应用性能显著提升的突变体,其活力的钙离子依赖性显著降低,最适作用温度有所提高,更适合淀粉加工工业应用需求㊂参考文献[1]㊀范如意.基因工程技术改造地衣芽孢杆菌实现中温α-淀粉酶高效表达[D].无锡:江南大学,2014.FAN R Y.Heterologous expression ofα-amylase in Bacillus licheni-formis with genetic engineering modification[D].Wuxi:Jiangnan University,2014.[2]㊀姜锡瑞,段刚.酶制剂实用技术手册[M].北京:中国轻工业出版社,2002.JIANG X R,DUAN G.Practical technical manual of enzyme prepa-ration[M].Beijing:China Light Industry Press,2002.[3]㊀SIVARAMAKRISHNAN S,GANGADHARAN D,NAMPOOTHIRI KM,et al.α-Amylases from microbial sources-an overview on recent developments[J].Food Technology&Biotechnology,2006,44(2): 173-184.[4]㊀刘洋,沈微,石贵阳,等.中温α-淀粉酶的酶学性质研究[J].食品科学,2008,29(9):373-377.LIU Y,SHEN W,SHI G Y,et al.Enzymatic properties of mesophilic α-amylase from Bacillus amyloliquefaciens M23[J].Food Science, 2008,29(9):373-377.[5]㊀刘洋.中温α-淀粉酶编码基因剂量对其生产水平提高的重要作用[D].无锡:江南大学,2009.LIU Y.The important role ofα-amylase gene dosages on the increase of its production[D].Wuxi:Jiangnan University,2009. 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耐高温_淀粉酶的研究进展

耐高温_淀粉酶的研究进展

中兽医医药杂志 J TCVM 2007年第3期68 资 料耐高温α-淀粉酶的研究进展王 楠,马荣山(沈阳农业大学,辽宁沈阳 110161) 中图分类号:S853.1 文献标识码:B 文章编号:100026354(2007)0320068202 α-淀粉酶(α-a mylase)广泛地存在于动植物和微生物中,它是一种内切葡萄糖苷酶,是目前最重要的工业酶制剂之一[1]。

当今广泛使用的酶制剂始于1906年,人类发现了用于液化淀粉生产乙醇的细菌淀粉酶,首先应用于工业的α-淀粉酶来自于真菌。

由于一些细菌α-淀粉酶具有耐高温、耐酸、耐碱等特性,更符合工业生产中的某些极端条件,因此,目前在需高温的发酵等工业中使用最为广泛的是细菌α-淀粉酶,尤其是来自杆菌(如解淀粉芽孢杆菌和地衣芽孢杆菌)的耐高温α-淀粉酶已占据相当大的市场。

1 耐高温α-淀粉酶的种类耐高温α-淀粉酶按来源分为古菌α-淀粉酶和真菌α-淀粉酶;它们的最适作用温度在60℃以上。

一般古菌来源的α-淀粉酶较真菌能够耐受更高的温度。

许多古菌能够在各种极端的条件下生存,如高温、高渗、强酸、强碱等,维持它们生命活动的很多蛋白质也可适应其生存环境,因此,耐高温α-淀粉酶有很多来自古菌。

以下列出部分耐高温α-淀粉酶的性质(表1)。

表1 耐高温α-淀粉酶的种类 菌 种类别最适温度/℃最适pHB acillus subtilis真菌60~706.0B acillus lichenifor m is真菌905.5~7.0D esulfurococcus m ucosus古菌1005.5Pyrococcus furiosus古菌>1005.6Pyrococcus w oesei古菌1005.5Pyrococcus kodakaraensis K OD1古菌906.5Ther m ococcus aggregans古菌1006.5Ther m ococcus celer古菌906.0Ther m ococcus guaym agensis古菌100 5.52 耐高温α-淀粉酶的分子结构根据X-射线衍射等技术得知的或由基因序列推算出的耐高温α-淀粉酶的分子量大多在40-60k D之间,有的以单体形式存在,有的以二聚体存在。

中温a淀粉酶

中温a淀粉酶

中温a淀粉酶中温a淀粉酶简介|中温a淀粉酶cas|中温a淀粉酶价格|中温a淀粉酶厂家中温a淀粉酶是由枯草芽孢杆菌经液体深层发酵提炼而成,其产品为液体剂型,适用于生物制药、淀粉糖、酒精、啤酒、味精、发酵工业、纺织等。

*外观形态及主要技术性能指标液体:棕褐色液体、高浊度有少量沉淀固体:浅黄色粉状酶活力 U/ml ( g ) 2000最适宜温度: 70 ℃- 80 ℃最适宜 pH 值范围: 5.5 - 7.0 ,最适 pH 值: 6.0 - 6.4密度 g/ml ≦ 1.25产品标准 : QB 1805.1-93*酶活力定义及参考用量60 °C 、PH6.0条件下,1毫升酶液1小时液化可溶性淀粉1克成为糊精即为1个酶活力单位。

用 u/ml 表示。

一般按每克淀粉用4-10个单位计算。

中温a淀粉酶特性1 、作用方式:能水解淀粉、可溶性糊精及低聚糖中的 a - 1 , 4 葡萄糖苷键。

酶作用后可使糊化淀粉的粘度迅速下降,水解生成糊精及少量葡萄糖和麦芽糖等。

2 、热稳定性:本产品最适作用温度在 60 ~ 75 ℃之间。

随着温度的升高,其反应速度加快,但失活也快,温度低可以适当延长反应时间。

3 、pH 稳定性: pH 值 6.0 - 7.0 较稳定,最适作用 pH 值 6.0 - 6.4 ,pH5.0 以下失活严重。

4 、与淀粉浓度关系:淀粉和淀粉的水解产物糊精浓度的增加对酶活力的稳定性有很大的提高作用,即浓度增加酶活力的稳定性增加。

5 、钙离子浓度对酶活力的影响:钙离子对酶活力的稳定性有提高作用,没有钙离子酶活力完全消失。

钙离子的浓度应在 150~250mg/kg 。

6 、 pH 稳定性与钙离子的关系:钙的存在酶活力的 pH 值范围增大;不含钙离子的淀粉酶 pH 值作用范围小。

中温a淀粉酶应用范围及使用方法1 、啤酒行业使用大米、玉米为原料时,先磨粉通过 40 目以上筛孔,在糊化锅中调浆后加淀粉酶,加酶量在 6U/g 左右,在 70 ℃- 80 ℃液化 30 分钟左右。

α-淀粉酶的应用及研究进展

α-淀粉酶的应用及研究进展

α-淀粉酶的应用及研究进展作者:冯健飞来源:《现代农业科技》2010年第17期摘要介绍了α-淀粉酶的工业应用,包括面包焙烤工业、淀粉液化与糖化、纤维脱浆、造纸工业、除垢剂制造、制药与临床化学分析等,并概括了了α-淀粉酶国内外应用与研究进展,以期为α-淀粉酶的进一步研究提供参考。

关键词α-淀粉酶;工业应用;研究进展中图分类号 Q556.2 文献标识码A文章编号 1007-5739(2010)17-0354-02α-淀粉酶分布十分广泛,遍及微生物至高等植物。

其国际酶学分类编号为EC.3.2.1.1,作用于淀粉时从淀粉分子的内部随机切开α-1,4糖苷键,生成糊精和还原糖,由于产物的末端残基碳原子构型为A构型,故称α-淀粉酶。

现在α-淀粉酶泛指能够从淀粉分子内部随机切开α-1,4糖苷键,起液化作用的一类酶。

α-淀粉酶是一种十分重要的酶制剂,大量应用于粮食加工、食品工业、酿造、发酵、纺织品工业和医药行业等,它占了整个酶制剂市场份额的25%左右。

目前,工业生产上都以微生物发酵法大规模生产α-淀粉酶[1-4]。

1α-淀粉酶的工业应用1.1面包焙烤工业作为保鲜剂酶应用在焙烤工业中生产各种高品质的产品已经有几百年的历史。

最近几十年,麦芽α-淀粉酶和微生物α-淀粉酶被广泛用于焙烤工业。

这些酶用于面包工业,使这些产品体积更大,颜色更好,颗粒更柔软。

至今,焙烤工业中的α-淀粉酶一直是从大麦麦芽和细菌、真菌叶提取的。

现代化连续焙烤过程中,在面粉中添加α-淀粉酶不仅可以增加发酵率、降低生面团黏度(改进产品的体积和质地),增加生面团中糖的含量,改良面包的口感、外皮颜色和焙烤质量,还可以延长焙烤食品的保鲜时间。

在储存过程中,面包颗粒变得干燥、坚硬、表皮不再清脆,导致面包的口感变差。

这些变化统称为变质。

每年仅仅由于面包变质而造成的损失超过1亿美元。

各种传统的添加剂被用于防止食品变质,以改善焙烤食品的质地和口味。

最近,人们开始关注酶作为防腐剂、保鲜剂在生面团改良方面的作用,如支链淀粉酶和α-淀粉酶配合可以有效的用于防腐。

六α淀粉酶酶学性质测定II改

六α淀粉酶酶学性质测定II改
六、α-淀粉酶酶学性质测定II
(米氏常数Km值的测定)
1.目的意义
由Leonor Michaelis和Maud Menten在1913年提 出的米氏方程(Michaelis-Menten Equation)是酶学 中表示整个反应中底物浓度和反应速度关系的、表示一个 酶促反应的起始速度V与底物浓度[S]关系的方程。
4.1 测定—取12支试管,分别标记,按照下表操作。
编号
1
2
3
4
5
6
7
8
9
底物浓度[S](mg·mL-1)
4
6
8
10
12
14
16
18
20
10mg/ml淀粉溶液(ml) 0.4
0.6
0.8
1.0
1.2
1.4
1.6
1.8
2.0
醋酸缓冲液(ml)
2.6
2.4
2.2
2.0
1.8
1.6
1.4
1.2
1.0
预热
V V max[S] Km [S]
1 Km 1 1
V V max
[S]
V max
用1/V 对1/[S]作图,即可得到一条直线,该直线 在Y轴的截距即为1/Vmax,在X轴上的截距即为 1/Km的绝对值,斜率为Km/Vmax。如图所示:
Km=-1/x
3.仪器设备
3.1 试剂
➢ 10mg/ml 可溶性淀粉 1500ml ➢ 0.005% 碘液 2000ml ➢ 0.25M 醋酸溶液 ➢ 0.4M pH6.0醋酸缓冲液
米氏方程形式如下所示:
V V max[S] Km [S]
• 其中,Vmax表示酶被底物饱和时的反应速度,Km值称 为米氏常数,是酶促反应速度V为最大酶促反应速度值一

α-淀粉酶产生菌的分离筛选及酶学性质研究

α-淀粉酶产生菌的分离筛选及酶学性质研究

安徽农业科学160r/vain摇床培养12h/’种子液以10%的接种量接种于产酶发酵培养基上,37℃、160r/min摇床培养24h后发酵液5000r/min离心10min,取上清液测酶活力。

选取酶活力较高的菌株作为试验菌种。

1.4.L3酶活力的测定一1。

仅一淀粉酶能将淀粉水解为长短不一的短链糊精和少量的还原糖,而使淀粉对碘呈蓝紫色的特异反应逐渐消失,可以用这种显色消失的速度来衡量酶的活力。

用YoungJ.Y00改良法:取5rIll0.5%可溶性淀粉溶液,在40℃水浴中预热10min,然后加入适当稀释的酶液0.5ml,反应5min后用5Illl0.1mol/LH2S04溶液终止反应。

取0.5m1反应液与5lIll工作碘液显色,在620nm波长处测光密度。

以0.5ml水代替0.5rIll反应液为空白,以不加酶液(加相同的水)的管为对照。

,酶活力单位定义为:在40℃、5vain内水解ln蟮淀粉(0.5%淀粉)的酶量为1个活力单位。

酶活力计算公式如下:酶活力(u/IIll)=(民一R)/RoX50XD式中,尺。

、R分别为对照、反应液的光密度;D为酶的稀释倍数,调整D使(R一尺)/民在0.2~0.7。

1.4.2酶学性质的研究。

1.4.2.1酶反应最适温度的确定。

设置40、60、80℃3个温度梯度,测定反应体系在不同温度下的酶活力,确定酶反应的最适温度。

1.4.2.2酶反应最适pH值的确定。

用不同的缓冲液设置pH值为4、6、lO3个梯度值,测定反应系在不同pH值下的酶活力,确定酶反应的最适pH值。

1.4.2.3ca2+对酶热稳定性的影响。

在100℃下调整酶液中Ca2+的不同浓度,测定不同时间F的酶活力,确定cd+对酶热稳定性的影响。

2结果与分析2.1Or"淀粉酶生产菌株的分离筛选2.1.1初筛结果。

采用碘熏法从淀粉筛选平板}=挑出lO株有明显淀粉水解圈(图1)的菌株。

图1菌种的水解圈Fig.1Hydrolyzedcircleofstrain2.1.2复筛结果。

α-淀粉酶温度稳定范围

α-淀粉酶温度稳定范围

淀粉酶属于水解酶的一种,是淀粉水解的生物催化剂。

按降解方式分为α—淀粉酶、β—淀粉酶、糖化酶、异淀粉酶和环糊精生成酶。

α—淀粉酶将淀粉长链分子水解成短链分子时,以无规则的方式切断淀粉大分子内部的α—1,4甙键而使淀粉生成糊精、低聚糖等,因产物的末端葡萄糖残基中C,碳原子为α—构形,故称为α—淀粉酶.大多α—淀粉酶(个别品种除外)不能切断α—1,6甙键,也不能切断分支点附近的α—1,4甙键.目前,α—淀粉酶在我国产量较大,广泛应用于食品、酿造、制药和纺织等领域.用α—淀粉酶水解淀粉时,要注意水解条件.影响α—淀粉酶活性的主要因素:pH值、温度和金属离子。

一般α—淀粉酶在pH值为5.5—8.0时活性较稳定,pH值小于4时,酶易失去活性.但有些α—淀粉酶是偏酸性或偏碱性的,如黑曲酶生产的α—淀粉酶最适合的pH值为4,在pH值为2.5、温度为40℃时,处理30min后仍有一定的活性,但在pH值为7、温度为55℃,处理15min,α—淀粉酶几乎失活。

而用米曲酶生产的α—淀粉酶则相反,在pH值为7、温度为55℃时,处理15min,酶活性无损失,但在pH 值为2.5时,酶的活性完全消失。

目前所用的α—淀粉酶主要有耐中温(60—70℃)和耐高温(90-95℃).根据酶反应动力学分析,温度每升高10℃,反应速度提高1—2倍,故耐高温。

α—淀粉酶具有反应速度快、效率高、成本低等优势.α—淀粉酶是一种金属酶,Ca2+使α—淀粉酶保持适当的构象,从而维持其最大的活性和稳定性.除Ca2+外,其它二价碱金属离子Ba2+、Mg2+等也有维持α—淀粉酶活性的作用.耐中温α—淀粉酶为适应生产工艺的高温条件,有时需添加Ca2+等稳定剂,但耐高温α—淀粉酶在Ca2+浓度很低时,稳定性就很好。

在实际使用时,不需添加Ca2+等稳定剂。

耐高温α淀粉酶研究进展

耐高温α淀粉酶研究进展

耐高温α 淀粉酶研究进展郑元木摘要: 耐高温α-淀粉酶是重要的工业用酶之一,本文简要综述了该酶结构、性质、作用机制、分离纯化方法及生产工艺流程和用途。

关键词:耐高温α-淀粉酶;作用机制;生产工艺;用途α-淀粉酶全称为α-1,4-葡聚糖水解酶(EC3.2.1.1),作用于淀粉时,可从分子内部切开α-1,4-糖苷键而生成糊精和还原糖,由于产物的末端葡萄糖残基C1碳原子为α-构型,故得名为α-淀粉酶[1]。

耐高温α-淀粉酶不同于中温α-淀粉酶和α-淀粉酶普通高温,具有优越的耐热性能、酶活力高和较宽的pH适应范围等特性,故在工业中得到广泛的应用。

1 结构、功能、作用机制比较不同来源的耐高温α-淀粉酶氨基酸序列发现,虽然有的氨基酸序列相似性不足30%,但它们的三级结构极为相似,这也表明三级结构是催化活性的关键因素[2]。

耐高温α-淀粉酶都是由三个结构域组成,即为结构域A、结构域B、结构域C。

地衣芽孢杆菌是生产耐高温α-淀粉酶最重要的菌种,以地衣芽孢杆菌耐高温α-淀粉酶为例(结构如图一)[3]。

结构域A为8个α-螺旋和8个β-折叠交替组成的α/β桶状结构,该结构较为刚性,维持酶的基本构象。

结构域B具有较大的柔性,推测它可能与底物特异性结合有关,主要由一个或几个β-折叠构成。

结构域C构成α-淀粉酶的碳端,由反平行β-折叠组成,它包含的氨基酸少,距离活性位点远,缺乏柔性,目前它的功能尚不清楚。

α-淀粉酶的催化活性口袋位于结构域A和B之间,在α/β桶状结构的底部。

此外,在结构域A和B之间还发现有一个或几个钙离子及其他金属离子结合位点,推测它可能与稳定酶的结构有关。

耐高温α-淀粉酶属于水解酶类,能随机水解淀粉、糖原及降解物内部的α-D-1,4糖苷键,使溶液的粘度迅速下降,产生可溶性糊精、低聚糖及少量麦芽糖、葡萄糖。

对于耐高温α-淀粉酶作用机制的研究,Nielsen JE[4]等提出了如图二模型。

该模型认为催化中心位于α/β桶状结构的底部,Glu261和Asp231是起催化作用的两个重要残基。

中高温α-淀粉酶热稳定性的研究进展

中高温α-淀粉酶热稳定性的研究进展

收稿日期:
2019

03

21
基金项目:扬州大学大学生学术科技创新项目(编号:
20180484)
作者简介:曹慧慧(
1999—),女,扬州大学环境科学与工程学院学生.
通讯作者:王进军(
1979—),男,副教授,硕士生导师,研究方向为微生物学.

工业、纸浆和造 纸 业 等 行 业 中 应 用 广 泛,耐 高 温 α- 淀
粉大
的耐热潜力仍有 待 探 究. 淀 粉 的 酶 转 化 工 业 包 括 三 个
步骤———糊化、液化与糖化
母菌以及放线菌等微生物 都 能 产 生 α—淀 粉 酶,其 中 能
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最适温度/℃
参考文献
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2]
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5]
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6]
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7]
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8,
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[
10]
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11]
2.
2 真菌 α- 淀粉酶
相较于细菌,真菌来源的 α- 淀 粉 酶 可 以 水 解 麦 芽
三糖,生成麦芽糖和 其 他 低 聚 寡 糖,因 此 广 泛 应 用 于 麦
A
文章编号:
1674

9944(
2019)


0244

03
稳定性酶,有待探寻和研究.细菌、真菌(丝状真菌)、酵
1 引言

α淀粉酶中温使用方法及作用

α淀粉酶中温使用方法及作用

α-淀粉酶中温使用方法及作用导读:α-淀粉酶中温是采用优良菌株枯草芽孢杆菌Bacillus subtilis经液体深层发酵、精制而成的高效生物制剂,广泛应用于啤酒等生产中;产品特性淀粉酶为水解酶类,能在较高温度下随机水解淀粉、糖原及其降解物内部的α葡萄糖苷键,产生可溶性糊精和少量低聚糖,使得胶状淀粉溶液的粘度迅速下降,过度水解可产生少量葡萄糖和麦芽糖;酶活力单位的定义1mL液体酶,于60℃、pH=条件下,1h液化1g可溶性淀粉所需的酶量,即为1个酶活力单位,以u/mL表示;作用条件温度: PH值:最适温度范围:70℃~75℃;最适pH范围:~;有效温度范围:60℃~85℃; 有效pH范围:~;作用功效使淀粉液化更彻底,醪液分层更明显,色度低,缩短糊化和过滤时间,提高设备和原料利用率;可实现无麦芽糊化操作,以提高辅料比例,从而降低啤酒生产成本,改善啤酒品质,提高经济效益;规格及标准淀粉酶为浅褐色液体制剂,酶活力≥3,000u/mL,因发酵原料、周期等因素的影响,颜色会稍有差异,但不会影响使用功效;本产品符合国家标准GB8275-2009食品添加剂α-淀粉酶制剂;本产品符合食品安全国家标准GB2760-2011食品安全国家标准食品添加剂使用标准和GB25594-2010食品安全国家标准食品工业用酶制剂的相关规定; 使用量在啤酒酿造过程中,使用辅料时,推荐加量为辅料干重的~%即每吨辅料加入~,与α-淀粉酶耐高温搭配使用效果更佳;然而,由于糖化原料组成及工艺参数的差异,本品的最佳添加量应通过在糖化车间中进行不同添加量的试验来确定;如果工艺中需调整料液的pH,请在调整完成后再加入酶液;使用安全酶制剂是蛋白质,吸入灰尘或悬浮微粒可能会产生过敏作用,导致人们产生过敏反应;如果长时间接触某些酶,可能会刺激皮肤、眼睛和粘膜;飞溅和强烈搅动可能造成可吸入的粉尘;建议穿戴具有保护作用的衣服、手套和眼睛或脸部保护物;储存淀粉酶属生物活性物质,应置于低温、干燥处保存,避免阳光直射及长期与外界接触;本产品原封装在15℃以下低温阴凉干燥环境,保质期12个月。

小麦种子中α-淀粉酶酶学性质的研究

小麦种子中α-淀粉酶酶学性质的研究
Ke wo d d —a ls tmpea u e p v l e i hiio s a s r tn e y rs my a e e r t r H au n b t r b o b c a
本 实验 以萌发 种 子 为材 料 , 提取 得 到 了淀 粉 酶 , 利 用 O一淀粉 酶 和 1 t 3一淀粉 酶对 温 度 的差 异 , 离 出 分 了 一 粉酶 , 淀 然后 测定 了 仅一淀 粉酶 的活性 并 对 淀 粉 酶 的活性 影 响 因素 进 行 了讨 论 。不 同的 温 度 、 H p
Ab t a t Th my a e a t i sme s r d b s d o a u e nto h u nt y o lo e t r ug tr h d — sr c e a ls c i t i a u e a e n me s r me ft e q a i fmats h o h sa c e vy t
S ud n t z m o o y Ch r c e f仪 一Am y a e Fr m h a e d t y o he En y l g a a tr o l s o W e tS e s
W u Hu to L e W a g Yai aa Iru n l
化合物( 4 m处有最 大吸收峰) 其颜 色深 浅与麦芽糖浓 度成正 比, 50a , 利用分光 光度 法测定棕红 色的氨基化合 物吸 光 值, 从而得到产物麦芽糖 的量 , 来表示酶的活性 。定性的分析 了温度、 H值及 激活剂 和抑 制剂 对淀粉 酶活性 的影 响 。 p
由此可得到酶活性的最适宜的温度和 p H值 , 以及抑制剂的种类和用量。 关键词 淀 粉酶 温度 p H值 抑制剂 吸光度
v leo erd i rw mioc mp u d ytes e t p oo t t e u n t f l s a h w ea t — au f h e ds b o n a n o o n sb h p cr h tmer og t a tyo t et t o st ci t h o y, q i ma o h s h v

α-淀粉酶的研究及应用[文献综述]

α-淀粉酶的研究及应用[文献综述]

毕业论文文献综述生物工程α-淀粉酶的研究及应用淀粉酶是一种水解酶,是目前发酵工业上应用最广泛的一类酶。

淀粉酶一般作用于可溶性淀粉、直链淀粉、糖原等α-1,4-葡聚糖,水解α-1,4-糖苷键的酶。

根据作用的方式可分为α-淀粉酶(EC3.2.1.1.)与β-淀粉酶(EC3.2.1.2.)。

因α-淀粉酶作用于淀粉时从淀粉分子的内部随机切开α-1,4糖苷键,生成糊精和还原糖,而β-淀粉酶从非还原性末端逐次以麦芽糖为单位切断α-1,4-葡聚糖链生成分子量比较大的极限糊精,且α-淀粉酶分布更广泛,已是一种十分重要的酶制剂,α-淀粉酶大量应用于粮食加工、食品工业、酿造、发酵、和医药行业等,它占了整个酶制剂市场份额的25%左右[1]。

目前工业生产上都以微生物发酵法大规模生产α-淀粉酶。

但随着社会需求的增大,工业生产对α-淀粉酶的需求量也越来越大,急需寻找满足生产需要的具新型特征的酶制剂。

因此本文主要讨论以α-淀粉酶为代表的淀粉酶的研究及应用。

1 α-淀粉酶的研究1.1 α-淀粉酶分离纯化方法的研究高纯度α-淀粉酶是一种重要的水解淀粉类酶制剂,可用于研究酶反应机理和测定生化反应平衡常数等。

分离纯化α-淀粉酶的方法很多,一般都是依据酶分子的大小、形状、电荷性质、溶解度、稳定性、专一性结合位点等性质建立的。

要得到高纯度的α-淀粉酶,往往需要将各种方法联合使用。

盐析沉淀、凝胶过滤层析、离子交换层析、疏水作用层析、亲和层析和电泳等,是蛋白质分离纯化的主要方法。

用吸附树脂法、40%乙醇从α-淀粉酶发酵液中分离高活性α-淀粉酶,用离子交换法和透析法对初酶液进行脱盐处理,最后用DEAE-纤维素纯化α-淀粉酶,所得酶活力为60153U/g,酶活性回收率为66.04%[2]。

另通过乙醇沉淀、离子交换层析和凝胶过滤层析等方式,从白曲霉菌A. kawachii的米曲粗抽出液中,分离纯化到两个耐酸性α-淀粉酶比活性极高的组分。

用疏水吸附法和DEAE-cellulose(二乙氨基乙基-纤维素)柱层析法分离纯化α-淀粉酶,所得酶活力为110 000 U/g。

中温α—淀粉酶性质的研究

中温α—淀粉酶性质的研究

中温α—淀粉酶性质的研究
邬敏辰
【期刊名称】《天津微生物》
【年(卷),期】1996(000)001
【摘要】本文对B.S.796所产中温α-淀粉酶的最适反应温度、热稳定性,最适酶反应pH以及酶的pH稳定性等进行了系统的研究。

同时研究了钙离子对酶稳定性的作用。

为该酶在工业上的广泛应用提供了一定的理论基础。

【总页数】5页(P25-29)
【作者】邬敏辰
【作者单位】江苏锡山市启蒙生物高技术研究所
【正文语种】中文
【中图分类】TQ925.1
【相关文献】
1.中温型α-淀粉酶水解玉米淀粉生产麦芽糊精工艺研究 [J], 毕静
2.中温α-淀粉酶高产菌株的选育及其粗酶性质 [J], 李文秀;张旦旦;窦文芳;许泓瑜;许正宏;史劲松;陆震鸣
3.中温ɑ-淀粉酶水解玉米淀粉制备脂肪模拟物的研究 [J], 李卡;刘骞;孔保华;韩建

4.中温型α-淀粉酶水解山药淀粉制备麦芽糊精研究 [J], 曹允洁
5.中温淀粉酶改性玉米淀粉在纸板中的应用研究 [J], 尹兴;梁枫晴;陈志强;郝晓秀因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

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1 2%。 1.7 酶学性质
1.7.1 分子量测定 用SDS.PAGE法测定酶的分子量,根据已知分子量
的标准蛋白在SDS—PAGE中的相对迁移率Rf,作Rglog Mr图,求得其分子量。
1.7.2 最适反应温度及热稳定性 在不同温度下按照标准方法测定酶活,以酶活最高
者为100%。将酶液在55、60、70"C,分别保温15、30、 45、60min,放置冰上迅速冷却至室温,按标准方法,测 残余酶相对活力,以未保温的酶液的酶活为100%。
凝胶过滤层析等纯化步骤后,最终酶的比活提高了29.96 倍,酶活回收率为20.06%。将酶蛋白样品进行SDS— PAGE凝胶电泳,表明为一条带,电泳结果见图1,以 上各步提纯结果列于表1。
Table 1
表1淀粉酶纯化总表 Summary of 0【-amylase purification
2.2 酶的基本性质
中温仪一淀粉酶的酶学性质研究
刘洋,沈微,石贵阳,王正祥· (江南大学工业生物技术教育部重点实验室,江苏无锡
214122)
摘要:通过盐析、DEAE.FF和Superdex.75,对Bacillus amyloliquefaciens M23产生的伍·淀粉酶进行了纯化, 得到电泳纯的a.淀粉酶,纯化倍数为29.6l,活力回收率为20.06%。用SDS-PAGE测得该酶的分子量为58kD。 该酶的最适反应温度为55℃,最适反应pH值为6.0。纯酶液在pH7.O~10.0缓冲液中室温放置24h,可保持80% 以上活力。55℃保温15min,基本丧失活力,添加10mmol/L的ca2+能显著提高酶的热稳定性。Ca2+、M92+和 C02+具有激活该酶活性的作用,EDTA抑制酶的活性。60℃,以可溶性淀粉为底物的Km,V一,分别为4.339/L、 1.199/L·rain。薄层层析结果表明该酶水解淀粉生成糊精和寡聚糖。 关键词:Bacillus amyloliquefaciens;a.淀粉酶;纯化;性质
Key words:Bacillus amyloliquefaciens;a-amylase;purification;characterization property
中图分类号:Q55
文献标识码:A
文章编号:1002.6630(2008)09-0373-05
a.淀粉酶(EC 3.2.1.1)以糖源或淀粉为底物,从分子 内部切开a.1.4糖苷键而使底物水解,产生糊精、寡糖、 麦芽糖、葡萄糖等产物。它是一种非常重要的工业用 酶,广泛应用于食品、纺织、造纸、洗涤、医药等
麦芽糖标准曲线的绘制:配置浓度为O、l、2、 3、4、5pmol/L的麦芽糖溶液,各取lml,60℃保温 5rain,加入lml DNS试剂,沸水浴5min,蒸馏水稀释 至l 0ml,测AⅢ。以麦芽糖浓度为横坐标、吸光度为 纵坐标绘制标准曲线。
酶活力测定在20ml试管中依次加入0.9ml 1%可溶性 淀粉溶液(NaH2P04.柠檬酸缓冲液pH6.0配置),60℃预 热5min,再加入0.1ml酶液,60℃保温5min后,加入 lml DNS试剂,沸水浴5rain,蒸馏水稀释至10ml,测 As40。与麦芽糖标准曲线对照得反应液麦芽糖浓度,计 算酶活力。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂 菌种B.amyloliquefaciens M23保存于中国高校工业
微生物资源和信息中一t),(http://cicim-cu.jiangnan.edu.cn), 菌种保藏编号CICIM B2125。摇瓶发酵培养基组成为: 1%胰蛋白胨,0.5%酵母膏,O.5%NaCl。250ml摇瓶 装50ml上述培养基,于37℃,250r/rain培养96h。
万方数据
100
霎∞80
髓40
蒌20


15
30
45
60
时间(alia)
1.蛋白质标准分子量;2.Superdex-75,3.DEAE.fast flow;4.盐析。
图1 纯化后的B.amylofiquefaciens M23 a-淀粉酶 SDS-PAGE电泳图片
Fig 1
SDS-PAGE pattern of purified a·amylase from B. amyloliquefaciens M23 a-amylase
标准分子量蛋白Pharmacia公司;其它试剂均为 国产分析纯。 1.2 仪器
AKTA.Explerl00、Superdex一75 DEAE·Fast Flow 美 国惠普公司。
收稿日期:2007.09.21 基金项目:新世纪优秀人才支撑计划项目(NCET.04.0497):国家“863”项目(2006AA020204) 作者简介:刘洋(1975.),男,博士研究生,研究方向为工业微生物。E-mail:liuyan91975726@126.tom ·通讯作者:王正祥(1964一),男,教授,博士,研究方向为工业微生物资源与育种,分子微生物学。
E-mail:zxwang@jiangnan.edu.cn
万方数据
374 2008.V01.29.No.09
食品科学
※,E物工程
1.3 a一淀粉酶的分离纯化 全部操作均在室温进行。发酵液6000r/rain离心
10min去菌体,所得上清液为粗酶液。粗酶液进行80% 饱和的硫酸铵盐析沉淀,8000r/min离心30min,沉淀经 去离子水透析,冻干后,用3ml柠檬酸一磷酸氢二钠(pH6. O)缓冲液溶解后,上DEAE.Fast Flow阴离子交换柱(16 mill×100mm),基础缓冲液为20mmol/L Tris.HCI(pH 8.6),用含O~lmol/L NaCl的基础缓冲液进行线形洗脱, 洗脱速度为2ml/min,收集合并酶活峰后,上预先经 20mmol/L Tris—HCl(pH6.5)缓冲液平衡好的Superdex-75层 析柱(26mm×600mml进行洗脱,洗脱速度2ml/min,收 集合并酶活峰,经去离子水透析,冻干,用于酶学性 质研究。 1.4 酶活力测定
工业【l-,】。在不同工业中,需要应用不同酶学性质的a. 淀粉酶。酒精工业需要高温酸性伍一淀粉酶:纺织、造 纸工业需要中温a.淀粉酶;洗涤工业需要碱性ot.淀粉 酶。产生a.淀粉酶的微生物种类很多,有细菌,真菌 来源,不同种属微生物所产生的0‘一淀粉酶性质也有所差 异问。相对于其他淀粉水解酶,来源于R amyloliquefaciens 的中温淀粉酶,一直未得到深入研究。本研究对曰. amyloliquefaciens M23 a一淀粉酶的进行了纯化和酶学性 质研究。
1.7.4 金属离子和化学试剂对酶活力影响 20mmol/L的不同金属离子、EDTA和SDS溶液分别
与l%淀粉溶液等体积混合,作为底物。各自加入淀粉 酶液,测定酶相对活力,以只含淀粉底物的正常条件 下测定酶液的活力为100%。
1.7.5 动力学常数测定 在不同底物(可溶性淀粉)浓度的反应体系中,
60℃反应5min,测定As40以计算酶反应的初速度,作 Lineweaver.Burk双倒数图。
Enzymatic Properties of Mesophilic伐一Amylase from Bacillus amyloliquefaciens M23
LIU Yang,SHEN Wei,SHI Gui·yang,WANG Zheng-xiang· (Key Laboratory ofIndustrial Biotechnology,Ministry ofEducation,Jiangnan University,Wuxi
214122,China)
Abstract:a-Amylase from B.amyloli自fuefacens M23 was purified to electrophoretie homogeneity.The molecular weight of
optimum the purified a-amylase is 58 kD.Its optimum pH value of is in the range from 5.5 to 6.5.andthe
1.7.3 酶的最适反应pH值及pH值稳定性
将酶液分别用pH3.0~6。0柠檬酸柠檬酸钠缓冲液, pH6.O~8.0磷酸氢二钠.柠檬酸,pH8.O~9.0 Tis.HCI缓 冲液,pH9.5~lO.5硼酸.氢氧化钠缓冲液稀释,按标 准方法测酶活力,以酶活最高者为100%。用相同的缓 冲液稀释,25℃保温24h后,测残余酶相对活力,以 未保温的酶液的酶活为100%。
1.7.6 酶水解产物的硅胶板薄层层析 参考文献【8】的方法,展开剂为正丁醇:乙酸:水=2:l:
1,上行展开两次。显色剂为49二苯胺和4ml苯胺溶于 200ml丙酮和20ml 85%磷酸的混合液。硅胶板浸泡显色剂 后,在烤箱中90℃烘10~15min可见层析结果。
2 结果与分析
2.1 酶的分离纯化 粗酶液经过盐析、DEAE—Fast Flow,Superdex.75
activity,while,Ca2+,Mn2+and C02+ions are activators.1(ⅢandV—ofa—amylase to soluble starch is 4.33 g/L and 1.19 g/L。
rain,respectively.The main hydrolysates to soluble starchቤተ መጻሕፍቲ ባይዱarg oligosaccharides and dextrin.
※生物工程
良品科学
2008,V01.29,No.09 373
-__●_●__●____●_■_■■■■■●■_■_____●___●●_●■●_■一I●■■_—●■●●●_●__-■__-●●-_-●●_●●■●-_●_■●-●●-■■_●-●_-●●■_■●_■■_■●_—____■●●___■_■_-■●■_●■■_■一
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