实验一、抗体的制备.
抗体制备方法
第1章 抗体制备技术抗体（antibody，Ab）是机体B淋巴细胞受到抗原刺激后所产生的特异性球蛋白，故亦称为免疫球蛋白。
机体初次接触抗原后，激发机体产生的特异性抗体亲和力低、持续时间短；而当同一抗原再次刺激机体后，则能产生高亲和力、高效价、持续时间长的抗体。
由于抗体能与相应的抗原发生特异性结合反应，因此特异性抗体是免疫学实验中常用的试剂，不仅对于抗原的分析鉴定和定量检测极为重要，而且广泛应用于临床疾病的诊断、治疗和预防中。
在免疫学检测中应用的主要抗体是多克隆抗体和单克隆抗体，多克隆抗体常用免疫动物的方法获得，而单克隆抗体则采用杂交瘤技术制备。
本章主要介绍这两种抗体的制备方法。
实验一 多克隆抗体的制备多克隆抗体（polyclonal antibody）是机体针对抗原的不同表位所产生的抗体混合物。
是用制备的纯化免疫原按照一定的免疫程序接种给所选择的动物，在含有多种抗原表位的抗原刺激下，该动物体内多个B细胞克隆被激活并产生针对这种抗原多种不同表位的抗体混合物。
含有这些特异性抗体的动物血清称为免疫血清或抗血清，而从免疫血清中纯化的免疫球蛋白则称为抗体。
一、抗体制备的流程优质免疫血清的产生，主要取决于抗原的纯度和免疫原性，动物的应答能力以及免疫程序（如免疫途径、抗原剂量、注射次数、时间间隔、有无佐剂等因素）。
因此制备高质量的抗体必须具备理想的免疫原、适宜的动物和切实可行的免疫方案。
（一）免疫动物的选择免疫用的动物主要为哺乳动物和禽类，常选择家兔、绵羊、豚鼠及小鼠等。
选择动物要依据抗体制备的条件而定。
1．抗原与动物的种系 抗原的来源与免疫动物之间种系关系越远，其抗原免疫原性越强，越易产生免疫应答；反之，种系关系越近，则抗原免疫原性越弱。
如用鸡球蛋白免疫亲缘关系较近的鸭或鹅，则免疫原性较差。
2．动物的个体状况 动物的年龄与健康状况可影响产生抗体的效价，年龄太小者易产生免疫耐受，而年老体衰者免疫应答能力低下，不易产生高效价的抗体。
实验一-抗体的制备及效价检测
实验一抗体的制备—动物的免疫一、实验目的了解免疫的原理，掌握免疫制备抗体的方法。
二、实验原理机体的特异性免疫反应是指机体受抗原物质刺激后产生体液免疫和细胞免疫的过程。
一种抗原能否引发抗体反应，一方面取决于抗原分子表面有无特异性的化学结构---抗原决定簇，另一方面取决于机体有无相应的免疫活性细胞。
当上述两个条件具备时，抗原进入机体经过一定的潜伏期，抗体效价逐步上升，达到高峰后，能维持一短暂的时期，以后又逐渐下降，但当第二次接触相同的抗原时，抗体的上升较前次为快，高峰时的效价也比前次为高。
抗体持续的时间也较长，此也称为再次反应。
佐剂的使用能够延长抗原在体内的存留时间，增加可溶性抗原的免疫性。
氢氧化铝可作为免疫佐剂加强免疫。
三、实验步骤1．动物的选择：选择2-3个月以上的小鼠。
免疫作好标号。
分笼饲养。
2. Al(OH)3的制备，4.84克AlCl3溶于50ml无菌蒸馏水充分溶解，2.4克氢氧化钠溶解在于50ml无菌蒸馏水充分溶解，混合充分反应后，得到约16mg/mL的氢氧化铝悬浊液。
分别倍比稀释得8mg/mL和4mg/mL的氢氧化铝悬浊液2．抗原和佐剂混合抗原吸附剂的制备：将20mg抗原（卵清蛋白）溶解在20mL 的生理盐水中，稀释为1 mg/ml，与Al(OH)3佐剂混合制成吸附混合物用于动物免疫。
取0.1mL抗原与0.1mL的Al(OH)3悬浊液混合吸附30min,得到含0.2mg/ml，0.4 mg/ml和0.8 mg/ml的Al(OH)3佐剂免疫混合物0.2ml用于腹腔注射免疫动物。
4．免疫方法：第一次免疫：A组：每只小鼠腹腔注射，0.2 ml（含0.2mg/ml Al(OH)3免疫混合物）。
B组：每只小鼠腹腔注射，0.2 ml（含0.4mg/ml Al(OH)3免疫混合物）C组：每只小鼠腹腔注射，0.2 ml（含0.8mg/ml Al(OH)3免疫混合物）第二次免疫：（第一次免疫后1周）A组：每只小鼠腹腔注射，0.2 ml（含0.2mg/ml Al(OH)3免疫混合物）。
抗体的制备方法与原理
抗体的制备方法与原理抗体是一种能够识别和结合特定抗原的蛋白质，广泛应用于医学诊断、治疗和研究领域。
抗体的制备方法包括动物免疫和体外选择性放大两种主要途径。
以下将详细介绍这两种方法及其原理。
一、动物免疫法制备抗体动物免疫法是制备多种特异性抗体的主要方法，常用的动物包括小鼠、兔子、大鼠等。
制备抗体的主要步骤如下：1.抗原选择：首先需要选择目标抗原，可以是蛋白质、多肽、糖蛋白、核酸等。
抗原应具有免疫原性，能在动物体内引起免疫反应。
2.免疫原免疫：将抗原与适当的佐剂混合后注射到动物体内，佐剂可以增强抗原的免疫原性，如完全弗氏佐剂、佐科克佐剂等。
注射的剂量和时间间隔需根据具体实验目的和动物种类进行优化。
3.收集血清和分离抗体：免疫一定时间后，收集动物的全血或血清，离心分离血清，其中包含了目标抗体。
4.抗体纯化：通常使用亲和层析、凝胶过滤层析等方法将血清或血浆中的抗体纯化出来。
亲和层析是最常用的抗体纯化方法，利用特定配体或抗原结合柱将目标抗体捕获，再洗脱得到纯抗体。
二、体外选择性放大法制备抗体体外选择性放大法是指通过技术手段进行人工放大和筛选特定抗体，主要包括以下步骤：1.生成抗体文库：将来自多个个体免疫系统的B细胞或血浆细胞收集起来，提取RNA或DNA，然后利用逆转录酶合成cDNA或文库，得到抗体基因的cDNA文库。
2.构建抗体显示系统：将抗体基因文库插入适当的表达载体中，如噬菌体、酵母、哺乳动物细胞表达系统等。
3.筛选特异性抗体：利用高通量筛选技术，如细胞表面展示、比对深度测序等，可通过抗原结合的特异性来筛选出具有高亲和力的抗原结合片段或全长抗体。
4.抗体表达和纯化：通过选择后的抗体基因进行表达，再经过蛋白纯化和检验等步骤，最终得到目标抗体。
抗体制备的原理主要是基于免疫系统的免疫应答机制。
当机体受到抗原的刺激后，机体会产生一系列免疫应答，其中包括B细胞的活化和分化。
经过抗原的结合和识别，B细胞会分泌具有高亲和力的抗体。
抗体的制备实验报告
抗体的制备实验报告抗体的制备实验报告引言：抗体是生物学研究中不可或缺的工具，它能够识别和结合特定的抗原分子，从而发挥免疫应答的作用。
本实验旨在通过制备抗体的过程，了解抗体的结构和功能，并探讨其在生物医学领域中的应用。
实验材料与方法：1. 实验材料：- 抗原：选择合适的抗原，如蛋白质或多肽。
- 动物模型：选择适合的动物模型，如小鼠或兔子。
- 细胞培养基：提供细胞生长所需的营养物质和环境。
- 抗体检测试剂盒：用于检测抗体的产生和效力。
2. 实验方法：- 抗原注射：将抗原注射到动物体内，刺激其免疫系统产生抗体。
- 血清采集：采集动物的血清样本，含有抗体。
- 抗体纯化：利用蛋白质纯化技术，从血清中分离和纯化抗体。
- 抗体检测：使用抗体检测试剂盒，检测抗体的产生和效力。
结果与讨论：通过实验，我们成功制备了抗体，并进行了相关的检测。
在实验过程中，我们发现以下几个关键点：1. 抗原的选择：在制备抗体的过程中，选择合适的抗原至关重要。
抗原应具有较高的免疫原性，能够有效刺激免疫系统产生抗体。
同时，抗原的纯度和稳定性也需要考虑，以确保抗体的质量和效力。
2. 动物模型的选择：不同的动物模型对抗原的免疫反应有差异。
在实验中，我们选择了小鼠作为动物模型，因其免疫系统对抗原的应答较为敏感。
然而，不同的研究目的可能需要选择不同的动物模型，以获得更准确的实验结果。
3. 抗体的纯化：通过蛋白质纯化技术，我们成功地从血清中分离和纯化了抗体。
抗体的纯化可以去除其他血清成分的干扰，提高抗体的纯度和效力。
纯化后的抗体可用于进一步的实验研究或生物医学应用。
4. 抗体的检测：我们使用抗体检测试剂盒对制备的抗体进行了检测。
抗体检测可以评估抗体的产生和效力，并验证其对特定抗原的结合能力。
合格的抗体应具有较高的结合亲和力和特异性，以确保其在实验和临床应用中的可靠性。
结论：通过本实验，我们成功制备了抗体，并验证了其在生物医学研究中的重要性和应用潜力。
实验一多克隆抗体的制备(颗粒性抗原)
上海师范大学实验报告专业、年级生物科学班级姓名学号课程名称免疫学实验名称多克隆抗体的制备（颗粒性抗原）实验日期2011年9月至10月基本原理免疫动物是通过给待免疫的动物注射抗原，使其获得相应的抗体的过程。
抗原给予的方法不仅对免疫应答的起始有较大影响，而且决定着对新注射抗原的免疫吞噬和吞噬后加工处理的细胞类型，并影响对其发生免疫应答的外周淋巴器官。
材料(一)动物：健康雄性家兔2只(二)器材：剪刀、镊子、注射器(2ml、50ml)附针头(9号、6号)、称量瓶(10ml)、量筒、动物固定架、灭菌三角烧瓶(200ml)、手术器械一套、血管夹、黑丝线、塑料放血管等。
(三)试剂1.灭菌生理盐水；2.单克隆过夜培养的坂崎肠杆菌，用灭菌生理盐水洗涤后，反复冻融3~5次，-20℃保存；3.消毒酒精及碘酒。
免疫方法1.第一次免疫: 用1ml注射器吸取1ml已升温至室温的1×107/mL坂崎肠杆菌混悬液，每侧臀部皮下各注射0.5ml。
2.第二次免疫: 间隔14天后再用1ml注射器吸取1ml已升温至室温的1×107/mL坂崎肠杆菌混悬液，每侧臀部皮下各注射0.5ml。
3.间隔14天后，从耳静脉采血0.5～1.0ml，分离血清，以凝集反应试验测定免疫血清的抗体效价(即试血)。
效价至少应达到1∶16以上时才能放血。
4若效价未达到要求，可再次进行加强注射，隔14天后再试血。
放血颈动脉放血将兔仰卧，固定于兔台，剪去颈部的毛，切开皮肤，暴露颈动脉，插管，放血。
放血过程中要严格按无菌要求进行。
分离血清将三角烧瓶的血置37℃温箱1小时，再置4℃冰箱内3～4小时。
待血液凝固血块收缩后，用毛细滴管吸取血清。
于3000rpm离心15分钟，取上清加入防腐剂(0.01％硫柳汞或0.02％叠氮钠，最终浓度)，分装后置4℃冰箱中保存备用。
免疫学实验 实验一多抗制备
a.根据抗原性不同，分为完全抗原和不完全抗原。 b.根据化学性质分为蛋白质抗原、类脂抗原、多糖抗 原和核酸抗原。
c.根据物理性状分为颗粒性抗原和可溶性抗原。常见 的颗粒性抗原主要是细菌或动物细胞。
B淋巴细胞接受该抗原所产生的抗体。
• 多克隆抗体：由多种抗原决定簇刺激机体，相应地
就产生各种各样的单克隆抗体，这些单克隆抗体混杂 在一起就是多克隆抗体，机体内所产生的抗体就是多 原的制备与纯化 • 动物免疫 • 血清分离纯化与鉴定
1.抗原的制备与纯化
• 抗原：是一类能够诱导机体免疫应答并能与相应抗体 或T细胞受体发生特异反应的物质。具有免疫原性和 免疫反应性。
接种 37℃ 18-24h
洗下菌苔
（用含0.5%苯 酚的NS）
100℃ 45min
离心
4000rpm,10min
得到原液
稀释
109/ml应用液
2、免疫方法：
选择体重2-3kg的健康家兔，将已经稀 释好的抗原按下列剂量及程序做皮内或 静脉注射。第一天注射1ml，第8天注射 1ml，第15天注射2ml，末次注射后7天 颈动脉放血，测效价。
NS稀释至 2～5%
绵羊红细胞的制备流程图
摇动 1520min
周可
4℃
保
存
3
NS洗涤3 次 2000r/mi n
10min
取适量
100℃水浴 45min杀菌
无菌试验
液体培养或 斜面培养 37℃24h
细菌细胞抗原的制备流程图 O菌体抗原
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2.动物的选择
• 动物的选择常根据抗体的用途和量来决定，也 与抗原的性质有关。
单克隆抗体制备实验过程
单克隆抗体制备实验过程
抗体制备实验一般分为抗体克隆、筛选、纯化和表征四个步骤，其中
抗体克隆是抗体制备实验的前提步骤，克隆抗体是从雌配子小鼠体内得到
其对抗原的单克隆抗体，是抗体制备的关键步骤。
1. 合成抗原或者从天然资源中获取抗原：合成抗原包括多肽抗原
（如biotin-GSH等）和糖蛋白抗原（如活性细胞皮质激素等）；从天然
资源中获取抗原则包括病毒样本和免疫原，比如结核分枝杆菌的血清浆及
其他微生物。
2.接种抗原：根据抗原的不同，采用不同的接种方法，比如多肽抗原，可以采用皮下或肌肉注射的方法将抗原接种于雌配子小鼠身上，以致于小
鼠体内产生对抗原的抗体。
3.分离抗体：通过血液和胸腺组织中抗体的分离筛选，获取单克隆抗体。
4. 抗体克隆：从抗体分离所获得的抗体，经过细胞学的方法进行抗
体克隆。
克隆过程中，可以利用多肽抗原，利用细胞杂交的方法进行对单
克隆抗体的从cloned。
5.筛选单克隆抗体：利用免疫染色的方法进行抗体筛选和确认，以确
定抗体株。
6.抗体纯化：经过单克隆抗体筛选和确认后，可以利用离子交换柱等
方法进行抗体纯化，从而获得高纯度的抗体制剂。
抗体制备流程
抗体制备流程1. 引言抗体制备是生物医学研究领域中常用的实验技术之一。
通过制备特定的抗体，我们可以用于检测特定的蛋白质、细胞或其他分子，从而在研究中获得更加准确和可靠的结果。
本文将详细介绍抗体制备的流程，包括免疫原制备、动物免疫、抗体纯化等几个主要步骤。
2. 免疫原制备2.1 选择免疫原免疫原是指能够引起机体免疫系统产生抗体反应的物质。
在选择免疫原时，需要考虑以下几个因素：•目标蛋白质：免疫原应该是目标蛋白质或其片段，可以是纯化的蛋白质、合成的多肽或重组蛋白等。
•抗原性：免疫原应该具有足够的抗原性，能够激发免疫系统产生抗体反应。
•稳定性：免疫原应该具有足够的稳定性，可以在制备和储存过程中保持其完整性和活性。
2.2 免疫原制备制备免疫原的方法多种多样，常见的包括以下几种：1.纯化蛋白质：从细胞或组织中纯化目标蛋白质，获取单一纯度的免疫原。
2.合成多肽：根据目标蛋白质的氨基酸序列合成相应的多肽片段，作为免疫原使用。
3.重组蛋白：利用基因工程技术在表达系统中表达目标蛋白质的重组形式，作为免疫原。
3. 动物免疫3.1 动物选择选择合适的动物作为免疫宿主是成功制备抗体的重要因素。
常用的免疫动物包括小鼠、大鼠、兔子、鸡等。
选择免疫动物时需要考虑以下几点：•易于操作：动物应该易于操作和养护，能够适应实验室环境。
•免疫系统：动物的免疫系统应该对免疫原有良好的反应。
•抗原性：动物对免疫原应有较好的抗原性，能够产生高效的抗体反应。
3.2 免疫程序动物免疫的程序通常包括以下几个步骤：1.初次免疫：将制备好的免疫原与适当的佐剂混合，注射到动物体内。
注射的途径通常选择腹腔或皮下注射。
2.强化免疫：在初次免疫后，根据需要可以进行一定次数的强化免疫，以提高免疫效果。
3.血清采集：在免疫程度达到一定水平后，从动物体内采集血清，其中含有目标抗体。
4.抗体效价测定：通过合适的方法，测定血清中目标抗体的效价。
4. 抗体纯化4.1 抗体提取通过离心等方法，将血清中的抗体分离出来。
抗体的制备原理及其应用实验
抗体的制备原理及其应用实验1. 引言抗体是一类由人体或动物体内产生的免疫分子，具有识别并结合特定抗原的能力。
抗体的制备原理包括免疫原制备、免疫动物的选择、免疫方法、抗体纯化和鉴定等。
在实验室中，抗体的制备得以广泛应用于生物学、医学以及其他领域的研究和实验中。
2. 抗体制备的基本原理抗体制备的基本原理是通过免疫动物对抗原的免疫反应，使其体内产生特异性抗体。
具体步骤如下：•第一步：免疫原制备–收集目标抗原，如蛋白质或多肽片段。
–对抗原进行纯化和浓缩，确保纯度和活性。
•第二步：免疫动物的选择–选择合适的免疫动物，如小鼠、兔子或大鼠等。
–考虑动物的抗原相似性和体积适宜性。
•第三步：免疫方法–给免疫动物注射抗原，刺激其免疫系统产生抗体。
–定期采集免疫动物的血样，分离抗体。
•第四步：抗体纯化和鉴定–使用技术如亲和层析、离子交换层析等纯化抗体。
–使用免疫学方法验证抗体的特异性和活性。
3. 抗体应用实验抗体的制备在实验中具有广泛的应用价值，以下列举了一些常见的抗体应用实验：•酶联免疫吸附（ELISA）–抗体可用于ELISA实验，通过与特定抗原结合来检测其存在和浓度。
–ELISA广泛应用于血清学、药物检测、疾病诊断等方面。
•免疫组织化学（IHC）–抗体可用于IHC实验中，通过与组织中的抗原结合来检测其在组织中的位置和表达水平。
–IHC可用于病理学研究、癌症诊断等领域。
•免疫印迹（Western Blot）–抗体可用于Western Blot实验，通过与目标蛋白结合来检测其在细胞或组织中的表达水平。
–Western Blot广泛应用于蛋白质研究和疾病诊断等方面。
•流式细胞术–抗体可用于流式细胞术实验，通过与细胞表面或内部特定抗原结合来分析细胞的类型和数量。
–流式细胞术在免疫学、细胞生物学研究中得到广泛应用。
•免疫疗法–抗体可用于免疫疗法中，通过结合肿瘤细胞表面的抗原，识别和杀伤肿瘤细胞。
–免疫疗法是目前肿瘤治疗的重要方法之一。
抗体制备流程
抗体制备流程一、背景介绍抗体是免疫系统产生的一种蛋白质，具有高度的特异性和亲和力，广泛应用于生命科学领域。
抗体制备是指从动物血清或单克隆细胞中提取纯化抗体的过程。
本文将介绍抗体制备的详细流程。
二、材料准备1. 动物：常用小鼠、大鼠、兔子等；2. 抗原：根据实验需要选择适当的抗原；3. 组织破碎液：可以使用高渗盐溶液、甘油等；4. 纯化柱：可以使用蛋白A/G，蛋白L等；5. 色谱柱：可以使用离子交换柱、大小分离柱等。
三、抗原制备1. 合成或提取目标分子作为抗原；2. 重组表达目标分子作为抗原；3. 从组织或细胞中提取目标分子作为抗原。
四、动物免疫1. 免疫前处理：（1）对动物进行基础检查，确保健康状态良好；（2）按照实验需要确定免疫计划，如免疫次数、免疫间隔等；（3）根据实验需要选择适当的免疫方式，如皮下注射、腹腔注射等。
2. 免疫过程：（1）将抗原与佐剂混合后注射到动物体内；（2）在免疫后的一定时间内采集血清；（3）根据实验需要重复进行免疫。
五、抗体检测1. 间接ELISA法：将抗原固定于微孔板上，加入动物血清进行反应，然后加入辣根过氧化物酶标记的二抗进行检测。
2. Western blotting法：将蛋白质分离并转移至膜上，然后加入动物血清进行反应，最后加入辣根过氧化物酶标记的二抗进行检测。
3. 免疫组化法：将组织切片或细胞涂片固定并处理后，加入动物血清进行反应，最后加入辣根过氧化物酶标记的二抗进行检测。
六、抗体纯化1. 亲和层析法：利用特异性结合亲和剂纯化目标抗体，如蛋白A/G、蛋白L等；2. 离子交换层析法：利用抗体表面带电性质与离子交换树脂上的离子进行吸附和洗脱；3. 大小分离层析法：利用抗体的分子量差异与分子筛或凝胶过滤树脂进行分离。
七、抗体保存1. 冷冻保存：将纯化后的抗体溶液加入甘油后冷冻保存在-20℃或-80℃；2. 溶液保存：将纯化后的抗体溶液加入保护剂后在4℃下保存。
八、总结以上就是抗体制备的详细流程，其中包括了材料准备、抗原制备、动物免疫、抗体检测、抗体纯化和抗体保存等步骤。
抗体的制备与使用指南
抗体的制备与使用指南一、抗体的制备。
1. 免疫原的选择。
- 对于制备抗体，首先要确定合适的免疫原。
如果是针对蛋白质抗原，要保证其纯度尽可能高。
例如，从细胞裂解物中纯化目标蛋白，可以采用亲和层析等方法。
对于小分子半抗原（如药物分子等），通常需要将其与大分子载体蛋白（如牛血清白蛋白）偶联，以增强其免疫原性。
- 免疫原的剂量也很关键。
一般来说，初次免疫时，对于小鼠等小动物，蛋白质抗原的剂量可在10 - 100μg之间，具体剂量需要根据抗原的性质和动物的种类进行优化。
2. 动物的选择与免疫。
- 动物选择。
- 常用的动物有小鼠、大鼠、兔子等。
小鼠因为繁殖快、成本低，是实验室制备单克隆抗体时常用的动物。
兔子则常用于制备多克隆抗体，其血清中抗体产量相对较高。
- 免疫程序。
- 对于小鼠，初次免疫可采用皮下注射或腹腔注射的方式。
以皮下注射为例，可在小鼠背部多点注射免疫原。
初次免疫后，间隔2 - 4周进行加强免疫，加强免疫的剂量可以适当减少，一般为初次免疫剂量的1/2 - 1/3。
经过2 - 3次加强免疫后，可检测动物血清中的抗体效价。
3. 单克隆抗体的制备。
- 细胞融合。
- 在小鼠免疫后，取其脾脏细胞（其中含有产生抗体的B淋巴细胞），与骨髓瘤细胞（如SP2/0细胞系）在聚乙二醇（PEG）的作用下进行融合。
融合后的细胞具有两种细胞的特性，既能产生特异性抗体，又能在体外无限增殖。
- 筛选阳性克隆。
- 利用次黄嘌呤 - 鸟嘌呤磷酸核糖转移酶（HGPRT）缺陷型的骨髓瘤细胞和HAT （次黄嘌呤 - 氨基蝶呤 - 胸腺嘧啶核苷）选择培养基进行筛选。
在HAT培养基中，未融合的骨髓瘤细胞因为缺乏HGPRT酶而死亡，未融合的脾细胞在体外不能长期存活，只有融合成功的杂交瘤细胞能够生长。
然后通过ELISA等方法筛选出产生特异性抗体的阳性克隆。
- 克隆化培养。
- 对筛选出的阳性克隆进行克隆化培养，常用的方法有限稀释法和软琼脂平板法。
限稀释法是将细胞悬液进行连续稀释，使每个孔中理论上只含有一个细胞，然后培养这些细胞，形成单克隆的细胞集落，从而得到稳定分泌特异性抗体的单克隆细胞系。
抗体制备流程
抗体制备流程抗体制备是一种用来生成特定抗体的实验方法，用于检测、治疗和研究各种疾病。
以下是一种通用的抗体制备流程，包括抗原选择、免疫动物的选择与处理、抗体的制备和纯化等步骤。
首先，我们需要选择合适的抗原。
抗原是导致免疫反应的物质，通常是一种蛋白质。
抗体的选择性依赖于抗原的选择性，因此我们需要选择具有高选择性且易于纯化的抗原。
接下来，我们需要选择合适的免疫动物。
常见的免疫动物包括小鼠、兔子和大鼠等。
选择免疫动物时，需要考虑抗原在动物体内的免疫原性、免疫系统的相似性以及免疫动物的体积等因素。
在选择好免疫动物后，我们需要对其进行处理。
通常情况下，我们会注射抗原到免疫动物体内，同时加入适当的免疫增强剂，以提高抗原的免疫原性。
接种后，我们需要在一定时间间隔内反复注射多次，以激发免疫反应。
在反复注射抗原后，我们需要等待一段时间，使得免疫系统产生足够多的抗体。
这个时间因免疫动物的类型和免疫原性而有所不同。
待免疫系统产生足够多的抗体后，我们需要将免疫动物进行牺牲，并从其体内获得免疫血清。
免疫血清是含有大量抗体的血液，在实验中可以用来检测和纯化抗体。
获得免疫血清后，我们需要对其进行抗体的制备和纯化。
首先，我们可以通过离心等方法去除血液中的红细胞等非细胞成分。
接下来，我们可以采用亲和层析和凝胶过滤等方法，将目标抗体从血液中纯化出来。
在纯化抗体后，我们可以对其进行鉴定和评估，以确保其质量和活性。
常用的鉴定方法包括酶联免疫吸附试验（ELISA）和Western blotting等。
最后，我们可以将纯化的抗体用于实验中。
抗体可以用于检测特定抗原的存在，也可以用于治疗疾病，比如单克隆抗体疗法。
总结起来，抗体制备流程包括抗原选择、免疫动物的选择与处理、抗体的制备和纯化等多个步骤。
这一流程需要耗费一定的时间和资源，但是通过这一流程我们可以获得高质量和高选择性的抗体，从而用于检测、治疗和研究各种疾病。
抗体制备流程
抗体制备流程抗体制备是生物学研究中常见的实验技术之一，也是一项复杂而精细的工作。
下面将介绍抗体制备的一般流程，以供参考。
1. 抗原制备。
首先，需要准备抗原。
抗原可以是蛋白质、多肽、细胞膜蛋白等。
通常情况下，我们会通过基因工程技术来表达和纯化抗原蛋白。
在这一步骤中，需要注意保持抗原的天然构象和活性。
2. 免疫动物的选择。
选择合适的免疫动物也是非常重要的。
常见的免疫动物包括小鼠、大鼠、兔子等。
在选择免疫动物时，需要考虑到免疫动物的体积、生理特征、抗原的种类等因素。
3. 免疫程序。
将制备好的抗原充分混合并与免疫动物进行免疫。
免疫的途径可以是皮下注射、腹腔注射等。
在免疫过程中，需要根据实验要求进行多次免疫，以提高抗体的效价。
4. 血清收集。
在完成免疫程序后，需要定期采集免疫动物的血清样本。
血清中含有免疫动物产生的抗体，可以用于后续的实验。
5. 抗体纯化。
从采集到的血清样本中，可以通过蛋白A/G亲和层析柱或其他纯化手段来纯化抗体。
纯化后的抗体可以用于酶联免疫吸附试验（ELISA）、免疫印迹（Western blot）等实验。
6. 抗体鉴定。
鉴定纯化后的抗体的效价和特异性也是必不可少的步骤。
常用的鉴定方法包括ELISA、Western blot、免疫组化等。
7. 抗体保存。
最后，需要将鉴定合格的抗体进行分装并保存。
在保存过程中，需要注意避免抗体的冻融循环，以保证抗体的稳定性和活性。
总结。
抗体制备是一项复杂的实验技术，需要研究人员具备扎实的实验技能和丰富的经验。
在实验过程中，需要严格控制各个步骤的条件和参数，以保证抗体的质量和稳定性。
希望本文介绍的抗体制备流程能对您有所帮助。
抗体的制备实验报告
一、实验目的本实验旨在了解抗体的制备原理和方法，掌握多克隆抗体制备过程，为后续的免疫学研究和应用提供实验基础。
二、实验原理抗体是机体免疫系统识别和清除抗原的重要物质。
抗体由B淋巴细胞分化而来的浆细胞产生，具有特异性结合抗原的能力。
根据抗体来源和特性，可分为单克隆抗体和多克隆抗体。
本实验主要制备多克隆抗体。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：（1）抗原：猪链球菌全菌抗原（2）免疫动物：成年家兔（3）佐剂：福氏佐剂（4）抗体检测试剂：酶联免疫吸附试验（ELISA）试剂盒2. 实验仪器：（1）恒温培养箱（2）低温高速离心机（3）酶标仪（4）微量移液器（5）恒温水浴锅四、实验方法1. 免疫动物的选择与处理选择健康的成年家兔4只，进行适应性饲养，适应新环境后，进行免疫。
2. 免疫抗原的制备将猪链球菌全菌抗原与福氏佐剂等比例混合，制备成抗原悬液。
3. 免疫注射将制备好的抗原悬液分别注入4只家兔的皮下，每组注射2ml。
注射后观察动物的反应，如有异常，及时处理。
4. 免疫程序免疫注射后，每隔7天进行一次加强免疫，共进行3次。
5. 抗体采集免疫注射结束后，于第28天采集家兔血液，分离血清。
6. 抗体检测采用ELISA方法检测血清中的抗体水平，以确定抗体产生情况。
五、实验结果与分析1. 免疫动物的反应免疫注射过程中，家兔出现不同程度的局部肿胀和红斑，但无严重反应。
2. 抗体检测ELISA结果显示，免疫后28天，家兔血清中抗体水平达到最高，表明抗体产生成功。
六、实验结论本实验成功制备了多克隆抗体，为后续的免疫学研究和应用提供了实验基础。
七、实验讨论1. 免疫动物的选择与处理选择健康的成年家兔作为免疫动物，确保实验结果的可靠性。
2. 免疫抗原的制备抗原的制备质量直接影响到抗体的产生。
本实验采用猪链球菌全菌抗原，确保抗原的有效性。
3. 免疫程序免疫程序的设置应根据抗原特性和动物个体差异进行调整，以获得最佳免疫效果。
4. 抗体检测ELISA方法具有灵敏度高、特异性强等优点，适用于抗体水平的检测。
抗体的制备原理及其应用实验报告
抗体的制备原理及其应用实验报告1. 引言在免疫学领域，抗体是一种重要的生物学工具，它可以与特定的抗原结合，并在生物体内执行多种功能。
本实验旨在探究抗体的制备原理及其在实验中的应用。
2. 抗体的制备原理抗体的制备包括免疫原、免疫动物、免疫程序和抗体检测等几个重要步骤。
2.1 免疫原选择免疫原是用于刺激机体产生特异性抗体的物质。
免疫原的选择应考虑到其与目标抗原的免疫性、复杂性以及检测的需要。
2.2 免疫动物的选择在制备抗体中常用的免疫动物包括小鼠、兔子、鸡等。
选择合适的免疫动物应考虑物种特性、免疫机制和实验需要等因素。
2.3 免疫程序免疫程序一般包括免疫接种、免疫增强和免疫收获等步骤。
免疫接种时将免疫原注射到免疫动物体内，激发机体免疫反应。
免疫增强可通过多次免疫接种来增强抗体产生。
免疫收获则是从免疫动物体内采集抗体。
2.4 抗体检测抗体检测可通过免疫学方法如ELISA、免疫荧光等进行。
这些方法可以检测特定抗体的存在和浓度，并确定抗体的特异性。
3. 抗体的应用实验报告本实验利用抗体在实验中的应用，探究其在生物学研究中的价值。
3.1 实验目的本实验旨在利用抗体对目标抗原进行检测，了解抗体在免疫学研究中的应用。
3.2 实验材料与方法3.2.1 实验材料•抗原溶液：XXX•抗体溶液：XXX•免疫标记剂：XXX•检测缓冲液：XXX3.2.2 实验方法1.准备抗原溶液，并加入适量的抗原到每个实验孔中；2.加入抗体溶液，与抗原发生特异性结合反应；3.将免疫标记剂加入孔中，与已结合的抗原-抗体复合物发生反应；4.加入检测缓冲液，形成可检测的光信号；5.使用相应仪器读取光信号，并进行结果分析。
3.3 实验结果与分析我们观察到针对目标抗原的抗体能与抗原发生特异性结合，进而与免疫标记剂反应产生光信号。
通过读取光信号强度，我们可以确定抗体对目标抗原的检测能力。
3.4 实验结论本实验验证了抗体的制备原理，展示了其在生物学研究中的应用。
抗体制备介绍
抗体制备抗体制备是生物技术领域中的一个重要过程，它涉及多个步骤，目的是为了获取特定的抗体，这些抗体可以用于诊断、治疗以及科学研究。
以下是抗体制备的一般流程：1. 抗原的选择与制备抗原选择：根据需要制备的抗体类型，选择相应的抗原。
抗原通常是一种能引起免疫反应的分子，如蛋白质、多肽、多糖等。
抗原制备：如果抗原是蛋白质，可能需要通过重组DNA技术在细胞中表达并纯化。
如果抗原较小，可能需要通过化学方法合成。
2. 动物免疫宿主选择：通常选用小鼠、大鼠、兔子或者羊等动物作为宿主。
免疫程序：将抗原与佐剂混合后，通过注射的方式引入动物体内，以刺激免疫系统产生抗体。
通常需要多次免疫才能获得足够数量的抗体。
3. 采集和检测采集血液：免疫数周后，从动物体内采集血液。
分离血清：血液离心后，取上层的血清，其中含有抗体。
检测抗体：通过ELISA、Western blotting、免疫荧光等方法检测抗体的特异性和亲和力。
4. 抗体纯化沉淀法：如铵硫酸盐沉淀法。
色谱法：包括离子交换色谱、亲和色谱（利用蛋白A或蛋白G 亲和抗体Fc区）等。
5. 抗体标记（如需）酶标记：如与辣根过氧化物酶或碱性磷酸酶结合。
荧光标记：如FITC或PE标记。
同位素标记：用于放射免疫检测。
6. 单克隆抗体制备（如果需要）融合：将已免疫动物的脾细胞与恒温动物骨髓瘤细胞融合。
筛选：利用HAT培养基筛选出能够产生所需抗体的杂交瘤细胞。
克隆：将杂交瘤细胞进行单细胞克隆，确保抗体的一致性。
培养和扩大：将筛选出的杂交瘤细胞在体外培养或者在特定的动物体内扩大。
抗体采集和纯化：从培养基或动物的腹水中采集含有单克隆抗体的液体，并进行纯化。
7. 质量控制抗体活性：检测抗体的亲和力和特异性。
抗体纯度：通过SDSPAGE、HPLC等方法检测纯度。
抗体稳定性：进行长时间存储后，检测抗体的稳定性。
8.包装和保存包装：按照需求包装成不同规格。
保存：通常在低温条件下保存，例如20℃或者80℃，有时添加甘油或蛋白稳定剂。
抗体的制备实验报告
抗体的制备实验报告
《抗体的制备实验报告》
摘要：本实验旨在利用小鼠制备抗体，通过免疫原注射、淋巴细胞融合和细胞培养等步骤，成功制备出特异性抗体。
实验结果表明，所制备的抗体对目标抗原具有良好的特异性和亲和力，为进一步研究提供了可靠的工具。
引言：抗体作为一种重要的生物学工具，在医学、生物学和生物技术领域具有广泛的应用价值。
制备高质量的抗体对于科学研究和临床诊断具有重要意义。
本实验旨在通过小鼠制备特异性抗体，为后续研究提供可靠的实验材料。
材料和方法：本实验使用小鼠作为实验动物，选取特定的抗原作为免疫原，通过免疫原注射诱导小鼠产生特异性抗体。
随后采集小鼠的淋巴细胞，与骨髓瘤细胞进行融合，得到杂交瘤细胞。
最后，利用细胞培养技术，扩增和筛选出具有特异性的抗体产生杂交瘤细胞。
结果：经过免疫原注射后，小鼠产生了特异性抗体。
通过淋巴细胞和骨髓瘤细胞的融合，成功得到了杂交瘤细胞。
经过细胞培养和筛选，最终得到了具有良好特异性和亲和力的抗体产生杂交瘤细胞。
讨论：本实验成功制备出了特异性抗体，为后续的研究工作提供了可靠的实验材料。
制备抗体的关键在于免疫原的选择、免疫程序的设计以及杂交瘤细胞的筛选和培养。
本实验结果表明，所制备的抗体具有良好的特异性和亲和力，可用于后续的免疫学实验和生物技术应用中。
结论：本实验成功制备出特异性抗体，为科学研究和临床诊断提供了重要的实验工具。
制备高质量的抗体是生物学研究和应用的基础，本实验为抗体制备提供了一种可靠的方法和实验流程。
希望通过本实验的结果，能够为相关领域的
研究提供有益的参考和借鉴。
单克隆抗体制备实验报告
一、实验目的1. 了解单克隆抗体制备的基本原理和实验流程；2. 掌握单克隆抗体制备过程中各步骤的操作方法；3. 通过实验，获得特异性单克隆抗体。
二、实验原理单克隆抗体是由单个B细胞克隆产生的高度均一、仅针对某一特定抗原表位的抗体。
制备单克隆抗体的基本原理是杂交瘤技术，即将具有分泌特异性抗体能力的致敏B细胞和具有无限繁殖能力的骨髓瘤细胞融合，形成杂交瘤细胞，进而培养出单克隆细胞，最终获得单克隆抗体。
三、实验材料1. 实验动物：Balb/c小鼠；2. 细胞：SP2/0骨髓瘤细胞；3. 抗原：待筛选的抗原；4. 试剂：弗氏完全佐剂、弗氏不完全佐剂、氢氧化铝佐剂、细胞培养液、抗生素、无菌操作器具等。
四、实验步骤1. 动物免疫（1）首免：将抗原与弗氏完全佐剂混合，通过多点注射法注射给Balb/c小鼠，剂量为150-200g/只。
（2）加强免疫：在首免后2-3周，重复首免过程。
2. B细胞提取（1）无菌操作，处死小鼠，取脾脏，制成单细胞悬液。
（2）用细胞分离液分离B细胞。
（3）洗涤、计数，调整细胞浓度。
3. 细胞融合（1）将B细胞与SP2/0骨髓瘤细胞按一定比例混合，加入聚乙二醇（PEG）诱导细胞融合。
（2）将融合细胞在含有抗生素的细胞培养液中培养。
4. 杂交瘤细胞筛选（1）在培养液中加入抗原，筛选出能分泌特异性抗体的杂交瘤细胞。
（2）将筛选出的杂交瘤细胞进行克隆化培养，获得单克隆细胞。
5. 单克隆抗体制备（1）将单克隆细胞在培养液中扩大培养，收集上清液。
（2）对上清液进行抗体检测，鉴定抗体特异性。
（3）采用适当方法纯化抗体，如亲和层析、离子交换层析等。
五、实验结果1. 成功获得特异性单克隆抗体。
2. 抗体特异性经ELISA等方法验证，与待筛选抗原具有高度特异性。
3. 抗体亲和力良好，可用于后续实验。
六、实验总结本次实验成功制备了特异性单克隆抗体，掌握了单克隆抗体制备的基本原理和实验流程。
在实验过程中，应注意以下几点：1. 动物免疫时，抗原与佐剂的混合比例、注射剂量、注射次数等要严格控制。
抗体制备过程
抗体制备过程抗体是一种重要的生物分子，具有广泛的应用价值，尤其在医学和生物学研究领域。
抗体制备过程是制作抗体的关键步骤之一，本文将详细介绍抗体制备的过程。
抗体制备的过程可以分为以下几个步骤：抗原的选择、免疫动物的选择、免疫程序的设计、抗血清的制备和纯化。
第一步是选择抗原。
抗原是诱导机体产生抗体的物质，可以是蛋白质、多肽、多糖或化合物。
抗原的选择应根据研究目的和需要进行，通常选择与研究对象具有相关性的抗原。
第二步是选择免疫动物。
常用的免疫动物有小鼠、兔子、大鼠等。
选择合适的免疫动物要考虑到其灵敏度、免疫反应强度和体积等因素。
通常情况下，小鼠是最常用的免疫动物，因为其体积小、繁殖周期短且易于操作。
第三步是设计免疫程序。
免疫程序的设计要考虑到抗原的适宜剂量、免疫次数和免疫间隔时间。
在设计免疫程序时，需要注意免疫次数过多可能导致免疫动物免疫抑制，而免疫间隔时间过短则可能导致免疫反应不充分。
第四步是抗血清的制备。
免疫程序完成后，免疫动物的血液中会产生特异性抗体。
在抗血清制备过程中，需要采集免疫动物的血液，并对血液进行离心分离得到血清。
血清中包含了特异性抗体，可以用于后续实验和分析。
第五步是抗血清的纯化。
抗血清中除了包含特异性抗体外，还有其他非特异性成分，如血浆蛋白和其他血清成分。
因此，在使用抗血清之前，需要对其进行纯化。
常用的纯化方法有盐析法、胶体蛋白聚集法、亲和层析法等。
抗体制备过程的关键是合理设计和严格执行免疫程序。
只有充分考虑抗原选择、免疫动物选择、免疫程序设计以及抗血清的制备和纯化，才能获得高质量的抗体。
总结起来，抗体制备的过程包括抗原的选择、免疫动物的选择、免疫程序的设计、抗血清的制备和纯化。
这个过程需要合理选择抗原和免疫动物，并设计适当的免疫程序。
制备好的抗血清还需要进行纯化处理，以去除其他非特异性成分。
抗体制备过程的成功与否将对后续的实验和研究结果产生重要影响。
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永州职业技术学院
杨晓斌
目的 1、掌握抗体制备方法 2、理解福氏佐剂的作用 内容 1、伤寒沙门菌O抗体的制备； 2、抗人全血清的制备。
一、伤寒沙门菌O抗体的制备
（一）、实验原理： 用抗原刺激机体可以使机体产生抗体，根据抗体 产生的一般规律，视抗原的性质选择不同的途径 免疫动物，经初次、再次免疫的过程，使得动物 血清中产生足量的特异性抗体，继而分离血清并 纯化免疫球蛋白，得到免疫血清或抗体。 抗体的制备是利用动物，有目的地生产某种抗体， 通过这种方法得到的抗体是多克隆抗体，可用于 体外的抗原抗体反应。
（2） 伤寒沙门菌O抗原免疫方案 用于免疫动物的菌液浓度视种的不同而异， 伤寒沙门菌、志贺痢疾菌等道杆菌，免疫浓 度多为109个/ml左右。细菌性抗原的免疫方 案大致相同，见下表：
免疫日期（天） 1免疫途径 Nhomakorabea点皮内抗原 伤寒沙门菌O抗原
免疫剂量（ml） 1.0
6
11 16 19
静脉
静脉 静脉 静脉
（二）、试剂与器材 1、 抗原与免疫对象 细菌菌种（伤寒沙门菌O901）、混合人全血清、 健康家兔。 2、 试剂 生理盐水、甘油、防腐剂等。 3、 设备与器材 剪刀、镊子、注射器、研钵、试管等器材和冰箱、 离心机等仪器。
实验动物的捉拿和固定方法
1．小鼠 性情比较温顺，一般不会主动咬人，但由于体形较 小且胆小怕惊，因此捉拿动作需要轻缓。捉拿时先用右手 将鼠尾抓住并提起，将其旋转数周后放在实验台面（最好 有一定粗糙度，以便于鼠爪用力）上，在小鼠向前爬行时 用力向后拉尾，此时用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳和 头颈部皮肤，然后将鼠臵于左手心中，拉直后肢并用左手 无名指和小指压紧尾巴和后肢，右手即可作注射、灌胃等 实验操作。若进行解剖、手术、尾部采血或尾静脉注射时， 要将小鼠做一定形式固定。如作解剖、手术和心脏采血时， 一般将小鼠仰卧，用大头针或线绳将小鼠四肢固定在木板 上。作尾静脉注射或采血时，可将小鼠装入木制或有机玻 璃制作的小鼠固定盒内，亦可将小鼠直接 固 定在固定板 上
（3） 无佐剂的人血加强免疫：上述免疫一周后， 耳静脉注射人血清0.5ml左右以加强免疫，如此 重复一两次，并于最后一次注射一周后采血。 （4） 试血：采血方法同伤寒沙门菌菌O抗血清 制备。试血时，双扩试验效价达1：16以上即可 收集血清。如效价不高，可追加免疫。 （5） 抗血清采集：颈动脉放血（也可心脏采血） 获得的兔血，臵37oC促进血块收缩，并吸出血 清。
3．豚鼠 性情温顺好奇，怕惊吓。抓取时必须 准确迅速。打开鼠笼后，右手迅速扣住豚鼠的 背部，拇指和食指环握颈部，提起后左手托住 臀部。固定方法基本上同大鼠
4．家兔 不咬人，但脚爪尖利，应避免抓伤。抓取时右 手将两耳轻轻地握在手心内，抓住颈部的被毛与皮肤 将兔提起，左手托住其臀部，使兔的大部分重量放在 左手上。切勿采取单提双耳或抓握后肢等不正确的捉 拿方法。家兔的固定方法依实验需要而定。作耳静脉 注射、采血或耳血管观察时，可用兔盒固定。如作手 术解剖或测量血压，需将兔仰卧固定在手术台上，取 一根线绳将四肢固定在实验台的两侧；另一根线绳的 一端拴住兔的两只门牙,其另一端固定在实验台的铁 柱上
2．大鼠 牙齿尖利，捉拿时动作要稳、准，不使 其受到惊吓，否则极易被其咬伤手指。打开鼠 笼后，右手抓住大鼠尾巴的基部后拉，左手抓 住两耳及头颈部的皮肤，臵于左手中，右手即 可进行实验操作。若作尾静脉采血、注射、解 剖或手术时，事先需麻醉或处死，然后将大鼠 固定在固定板上。没经验的实验者，抓拿大鼠 时，可带棉线手套进行保护.
（1、2、3为错误方法，4、5为正确方法。）
（固定台固定兔的方法）
（三）、操作方法 1、伤寒沙门菌O抗血清的制备 （1） 伤寒沙门菌O抗血清的制备：用伤寒沙门菌， 密集划线接种于普通琼脂平板37度培养24~48h后， 用生理盐水将细菌菌苔洗于清洁、无菌的三角烧瓶 中，臵60度水浴或隔水煮沸1h以破坏细菌的鞭毛， 用滤纸过滤或离心4000r/min 10~20min 。确定无 菌后用生理盐水调菌液浓度至109个/ml，此为细菌 O抗原，臵4度保存备用。若制备鞭毛抗原，则可用 含有5%石炭酸（苯酚）的生理盐水洗下琼脂平上的 菌苔，37oC温育48h后作无菌试验，滤过后用生理 盐水配成一定浓度。
单克隆抗体 是一个B淋巴细胞克隆分泌的抗体，可以与单一 抗原决定簇结合的抗体，是应用细胞融合杂交瘤 技术免疫动物制备的。其特异性强、抗体产量高。 多克隆抗体 是将纯化后的抗原直接免疫动物后，从动物血中 所获得的免疫血清，是多个B淋巴细胞克隆所产 生的抗体混合物。其特异性低，会产生抗体的交 叉反应。
（1） 抗原－福氏完全佐剂： 取混合人全血清，用生理盐水作1：4稀释。将稀释血清 与完全佐剂1：1体积的比例混合，制成油包水状态。具 体方法如下： 研磨法：取完全佐剂臵无菌和研钵中，然后逐滴加入稀 释混合人血清，边加边研磨，直至滴一滴至水中不散开 为此，此即完全乳化的油包水状态。若系不完全佐剂， 则像加入人血清那样，按2~20mg/ml的量加入卡介苗。 （2） 抗原－福氏完全佐剂免疫动物： 取健康家兔，用剪刀剪去其双后足掌的毛，碘酒和酒精 消毒。每只足掌注射抗原－福氏完全佐剂0.5ml。
伤寒沙门菌O抗原
伤寒沙门菌O抗原 伤寒沙门菌O抗原 伤寒沙门菌O抗原
0.5
0.5 1.0 2.0
（3） 试血 末次免疫7天后即试血，耳静脉或心脏采血，分 离血清与伤寒沙门菌菌O抗原作试管凝集试验， 凝集效价（滴度）在1：600~3200之间时即可放 血，若效价较低可继续加强免疫。 2、放血 颈动脉放血（也可心脏采血），以最大限度的获 得血清。
二、抗人血清制备
1、福氏佐剂 福氏不完全佐剂： 称取羊毛脂5g，逐滴加入石蜡油20ml（羊毛脂： 石蜡油约为1：1~1：4），高压灭菌后4oC保存 备用。 福氏完全佐剂： 于不完全佐剂中加入2~20mg/ml卡介苗，研钵 中钵磨乳化后即成为完全佐剂，冰箱保存备用。
佐剂： 是指能够增强免疫应答或改变免疫应答类型的物质。 作用： 1、增加抗原的表面积，并改变抗原的活性基因构 型。 2、与抗原混合能延长抗原在局部组织的存留时间 减缓抗原的分解速度。 3、它可直接或间接激活免疫活性细胞并使之增生 增强免疫功能。 4、无毒无副作用。