常用实验动物各种处死方法

常用实验动物各种处死方法

（一）大鼠和小鼠

１脊椎脱臼法：右手抓住尾巴将动物放在鼠笼盖或粗糙的表面上向后拉，用左手拇指和食指用力向下按住鼠头，使颈椎脱臼（脊髓与脑髓拉断），动物立即死亡。

２断头法：此法适用于鼠类小动物。用剪刀在颈部将鼠头剪断，并使颈部对准容器，以免血液四溅。由于脑脊髓离断且大量出血，动物立即死亡。

３击打法：此法适用于大鼠、家兔等。抓住动物尾部，提起，用力摔击头部，或用木捶用力捶其后脑部，动物痉挛后即处死。

４急性失血法：

常剪断动物的股动脉，放血致死。如果正在做手术性或解剖性实验，可剪断颈动脉，腹主动脉或剪破心脏放血。可采用摘眼球法，右手取一眼科弯镊，在鼠右或左侧眼球根部将眼球摘去，并将鼠倒置；头向下，大量失血而致死。

５化学药物致死法：在一密闭容器内，预先放有浸有全身麻醉作用的乙醚或氯仿的棉花，将动物投入容器内，使动物吸入麻醉药而致死。也可皮下注射士的宁（马钱子碱），注射量为小鼠０.７６～２.０ｍｇ／ｋｇ，大鼠为３.０～３.５ｍｇ／ｋｇ。

（二）狗、猫、兔、豚鼠

１空气栓塞法

此法适用于较大动物的处死。向动物静脉内注射注入一定量的空气使之发生空气栓塞，形成严重的血液循环障碍而死。兔、猫用此法处死需注入20～40ml空气，犬致死的空气剂量为80～150ml。一般注如入后动物能很快死亡。本法的优点是处死方法简单、迅速。缺点是由于动物死于急性循环衰竭，各脏器淤血十分明显。

２急性失血法

先使动物麻醉、暴露股三角区或腹腔，再切断股动脉或腹主动脉，迅速放血。放血时可用湿纱布擦，或用少量自来水冲洗切口，以保持其畅通，动物在３～５分钟内即可死亡。采用此法动物十分安静，对脏器无损害，但器官贫血比较明显。

小鼠等小动物可采用颈总动脉大量失血而致死的方法。犬等大型动物要先麻醉后放血，要使放血的切口保持通畅，一般在股三角区横切约lOcm的切口，切断股动、静脉，便大量失血而死。

３破坏延脑法

对家兔可用木捶用力捶其后脑部，损坏延脑，动物痉挛后死亡。

４化学药物致死法

（１）静脉注射10％氯化钾（ｋＣｌ）溶液，使动物心肌松弛，失去收缩能力，心脏发生急性扩大致心跳停止而死亡。成年兔由兔耳缘静脉注入10％氯化钾（ｋＣｌ）溶液5～10ml ／只，狗由狗前肢或后肢皮下静脉注入20～30ml／只，即可致死。

（２）静脉注射10％福尔马林溶液，使血液内蛋白凝固，动物由于全身血液循环严重障碍和缺氧而死。狗用２０ml／只，即可致死。

（３）皮下注射的士宁致死：用量为：豚鼠为3.0～4.4mg/kg，家兔为0.5～1.Omg/kg，犬为0/3～0.42mg/kg。猫１.０～２.０mg/kg，大白鼠３.０～３.５mg/kg，小白鼠０.７６～２.０mg/kg。

如果动物或其组织要送检，必须注明处死方法。

（三）蛙类

常用金属探针插入枕骨大孔,破坏脑脊髓的方法处死。将蛙用湿布包住，露出头部,左手执蛙，并用食指按压其头部前端，拇指按压背部，使头前俯；右手持探针由凹陷处垂直刺入，刺破皮肤即入枕骨大孔。这时将探针尖端转向头方，向前深入颅腔，然后向各方搅动，以捣

毁脑组织。再把探针由枕骨大孔刺入并转向尾方，刺入椎管，以破坏脊髓。脑和脊髓是否完全破坏,可检查动物四肢肌肉的紧张性是否完全消失。拔出探针后,用一小干棉球将针孔堵住,以防止出血。操作过程中要防止毒腺分泌物射入实验者眼内。如被射入时，则需立即用生理盐水冲洗眼睛。