实验六动物染色体标本的制备与观察.
鱼类鳃细胞染色体标本的快速制备及观察
鱼类鳃细胞染色体标本的快速制备及观察
要进行鱼类鳃细胞染色体标本的快速制备及观察，可以按照以下步骤进行操作：
1. 选择合适的鱼类样本：选择合适的鱼类样本，确保鱼体健康且处于成熟状态。
2. 准备鱼体标本：将鱼类标本进行解剖，取得鳃片。
小心保持鳃片的完整性，避免扭曲或损伤。
3. 预处理鳃片：用PBS（磷酸盐缓冲盐溶液）或其他合适的缓冲液浸泡鳃片，以去除杂质和细胞间的粘附物质。
4. 染色体制备：将浸泡后的鳃片转移到含有半胱氨酸（Cysteine）和酶解液（例如10% 酵素溶液）的培养皿中，并用放大镜轻轻剪碎鳃片。
留在培养皿中15～30分钟，室温下酶解。
5. 停止酶解：添加冰冷的PBS或其他合适的缓冲液终止酶解作用，以停止细胞的消化。
6. 制备细胞悬液：用吸管和移液器将酶解后的鳃片过滤去除大颗粒物，获得细胞悬液。
7. 染色：将细胞悬液滴到清洁的载玻片上，利用染色方法（如吉姆萨染色、格尔染色等）给细胞染色。
8. 封片：在染色后的载玻片上加一滴透明封片剂，然后用盖玻片盖住。
9. 观察：将封好的玻片放到光学显微镜下，通过目镜或相机观察鱼类鳃细胞的染色体。
以上是鱼类鳃细胞染色体标本的快速制备及观察的步骤，具体操作时还需根据实验要求调整和优化步骤细节。
鱼类染色体制片与观察实验报告
鱼类染色体制片与观察实验报告引言染色体在生物学研究中起着重要的作用，对于理解遗传信息的传递和基因组结构至关重要。
本实验旨在采用细胞学技术，制作鱼类染色体制片，并观察染色体结构和数量的变化。
通过实验，我们希望进一步了解鱼类的细胞遗传学特征。
实验方法1. 实验材料准备：- 新鲜鱼悬浮液- 漂白液：含有3%的鳗鱼酸和0.9%的氯化钠溶液- 10%氯化锂溶液- 醋酸铬酸乙酯溶液- 各类显微镜标本玻片- 显微镜- 辅助工具：玻璃棒、塑料移液管等2. 实验步骤：- 步骤1：取适量鱼悬浮液放入离心管中，离心后将上清液倒掉；- 步骤2：向离心管中加入适量漂白液，并在4°C下放置1小时，使细胞解离；- 步骤3：去除漂白液，加入10%氯化锂溶液，温和摇动离心管，使细胞悬浮均匀；- 步骤4：去除锂溶液，加入醋酸铬酸乙酯溶液，摇动离心管，使细胞制片；- 步骤5：将制片取出，放入烘箱中，将其加热至80°C，使制片固定；- 步骤6：将制片放入显微镜标本玻片中，加入一滴甘油，并用显微镜观察染色体结构和数量的变化。
结果与讨论通过制片，并利用显微镜观察，我们可以得到鱼类染色体的结构和数量信息。
鱼类的染色体通常是线状的，并且数量较多。
我们可以通过观察染色体的形状、大小和着色情况，了解不同种类鱼类的染色体差异。
在本实验中，我们使用了漂白液和锂溶液来解离细胞和制备染色体制片。
漂白液可以去除细胞内的色素，提高显像效果。
锂溶液则是用来均匀分散细胞和保持形态的。
制片成功后，我们将制片放入标本玻片中，加入甘油来保持制片的透明度。
在显微镜下观察时，可以调整倍镜放大倍数，以获得更清晰的图像。
通过观察染色体的形态，我们可以进一步研究鱼类的遗传特征和进化关系。
不同物种间染色体的差异可以为物种分类和生物进化研究提供重要的线索。
结论本实验成功制备了鱼类染色体制片，并通过显微镜观察染色体的结构和数量的变化。
该实验方法为研究鱼类细胞遗传学特征提供了可行的技术手段。
实验6小鼠骨髓细胞染色体标本制备与观察
内容与方法
1、动物预处理：取材前 3~4小时，腹腔注射 0.01%的秋水仙素。
2、取材：处死小白鼠，剥取股 骨，暴露骨髓腔，用4~5ml KCl 冲洗骨髓腔获得骨髓细胞，定容 至6ml。
4、预固定：加1mlCarnoy 固定液混匀，配平，离心 1000rpm/8分钟。
3、低渗：37度恒温水浴30分钟 ➢在酒精灯火焰过火2~3次， ➢做记号，凉干，染色
作业与思考题
1、绘制一个你所观察到的小鼠骨髓细胞 染色体中期分裂相。
2、本实验中秋水仙素、低渗液、固定液 各起什么作用？
3、简述实验中应注意那些关键问题？
目的与要求
1、掌握脊椎动物骨髓细胞染色体标本制备的 方法；
2、了解小鼠骨髓细胞染色体的形态和数目。
实验原理
➢ 小鼠骨髓细胞始终保持较强的分裂活性，且细胞 数量较多。
➢ 秋水仙素，可以抑制细胞分裂时的纺锤体形成，使处于 增殖状态的细胞停止在中期。注射到动物活体内，可以 收集到较多的中期分裂相的骨髓细胞。
5、固定：弃上清，再加 Carnoy 固定液至6ml刻度， 悬浮，静置20分钟，离心 同上。
6、制片：去上清液,加少量固定液， 混匀，滴片，
7、染色：Giemsa染色10分钟
取材：椎脱臼处死小白鼠，剥取股骨。
小白鼠骨骼标本
收集细胞：
➢ 暴露骨髓腔，
➢ 反复冲洗骨髓腔获得 骨髓细胞，
➢ 收集到离心管中,
染色体标本制作和观察实验报告
【实验题目】染色体标本制作与观察【实验目的】1、掌握小鼠睾丸细胞染色体标本的基本制作过程和Giemsa染色法，了解各操作步骤的原理。
2、了解常用实验动物染色体的数目及特点。
3、认识不同生物染色体的特征，学会做染色体组型图。
【实验材料与用品】1.器材：显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、手术剪、解剖盘、胶头滴管、离心管、离心机、小烧杯、冰箱、酒精灯、小烧杯等2.材料：小鼠3. 试剂：蒸馏水、0.9%NaCl溶液、0.3%KCl溶液，固定液（甲醇：冰醋酸=3:1）、秋水仙素【实验原理】一、制作染色体标本的先决条件①细胞具有旺盛的分裂能力：选择活跃的组织，如胸腺、骨髓、睾丸、小肠；或施加药物使细胞分裂（PHA）②设法得到大量的分裂中期细胞：利用秋水仙素二、染色体染色体是基因的载体。
真核细胞染色体的数目和结构是重要的遗传特性之一。
制备染色体标本是细胞学最基本的技术之一，优良的染色体制片是进行染色体显带、组型分析、原位杂交等的先决条件。
染色体的制备在原则上可以从所有发生有丝分裂的组织和细胞悬浮液中得到。
最常用的途径是从骨髓细胞、血淋巴细胞、、和组织培养的细胞中制备染色体。
本实验采用的方法是从小鼠的睾丸细胞中获取。
染色体的形态结构在细胞增殖周期中是不断的运动变化的，一般在有丝分裂中期，染色体形态最典型、最易辨认和区分。
因此，制备染色体标本获取的是中期细胞。
染色体特征：数目、长度（绝对长度、相对长度）、着丝粒位置（M/SM/ST/T)、随体与次缢痕的数目大小和位置、带型分析描述染色体的四个参数：①相对长度=（每条染色体的长度）/（单倍常染色体之和+X染色体）*100，相对长度可以用来表示每条染色体的长度。
②臂指数=（长臂的长度）/(短臂的长度)，臂指数可以用来确定臂的长度。
③着丝粒指数=（断臂长度）/（染色体全长）*100，着丝粒指数可以决定着丝粒的相对位置。
④染色体臂数（NF），根据着丝粒的位置来确定。
三、操作原理小型动物的染色体制片最好最有效的材料就是骨髓组织（由于分裂活动旺盛，睾丸也可）利用睾丸细胞的制片技术虽然需要离心以及细致的操作，但基本程序并不复杂。
小白鼠染色体标本的制作染色与观察
小白鼠染色体标本的制作染色与观察染色体是生物体内的遗传物质DNA和蛋白质的组合体，通过对染色体的观察可以了解生物种群的遗传信息和进化变化。
染色体观察在遗传学、病理学等领域具有重要的应用价值。
本文将介绍小白鼠染色体标本的制作方法以及染色和观察的步骤。
1.小白鼠染色体标本的制作方法制作小白鼠染色体标本的过程主要包括取材、处理和固定等步骤。
（1）取材选择健康的小白鼠，尤其是发育期的小白鼠，取得其骨髓或肝脏等组织。
取材时要注意卫生和无菌操作，以保证样品的质量。
（2）处理将取得的骨髓或肝脏等组织放入离心管中，加入等体积的生理盐水悬浮液，并在其中加入适量的KCl溶液进行渗透，使细胞膜变得脆弱，易于裂解释放染色体。
（3）固定将处理后的细胞悬浮液滴到已经消毒的玻璃片上，然后迅速将玻璃片倾斜，让细胞悬浮液自然扩散开来。
待其固定后，用甲醛进行固定处理，固定时间一般为5-10分钟。
2.小白鼠染色体染色的步骤（1）裂解将固定的标本玻璃片在室温下迅速加热至约60℃的热板上，使染色体细胞裂解释放出染色体。
裂解时间一般为5-10分钟。
（2）染色将裂解后的细胞标本浸泡在浓度适当的染色液中，常用的染色液有乔治染色液、甲酸-吡啶染色液和乙酸酒精染色液等。
对于小白鼠染色体标本的染色，乔治染色液是较为常用的选择。
（3）洗涤染色后的标本需要进行洗涤步骤以去除多余的染色液和固定剂。
使用生理盐水或磷酸缓冲液进行反复洗涤，直到洗涤液清澈。
3.小白鼠染色体观察的步骤在染色体标本制作和染色之后，我们可以通过显微镜进行小白鼠染色体的观察，并对染色体进行测量和特征描述。
（1）显微镜观察将染色后的标本玻璃片固定在显微镜载玻片上，使用显微镜进行观察。
观察过程中可以选择不同倍数的镜头以获得更详细的图像。
（2）测量和特征描述通过观察染色体在显微镜下的形态和结构，我们可以测量染色体的长度、形状等参数，并对染色体的特征进行描述，如染色体数量、着丝点的位置等。
总结：小白鼠染色体标本的制作染色与观察是一项重要的生物实验技术，可以帮助我们了解生物的遗传特征和疾病的发生机制。
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告
动物骨髓细胞染色体标本的制备实验报告
实验目的：
本实验的目的是利用正常小鼠的骨髓细胞制备染色体标本，并通过显微镜观察染色体的形态和数量，并了解染色体的组成和结构。
实验原理：
染色体是细胞核中最大的有组织结构，由DNA和蛋白质组成。
染色体的数量和形态是每个物种独特的标志之一。
在有丝分裂过程中，染色体的形态和数量的变化可以反映出细胞的分裂状态。
为了制备染色体标本，需要通过细胞的裂解，释放和固定染色体，然后在显微镜下观察染色体的形态和数量。
实验步骤：
1. 取出小鼠的股骨，并在无菌条件下对其进行消毒。
2. 使用消毒的剪刀剪下股骨两端，将骨髓剪下，加入RPMI-1640培养液中，使髓液悬浮，然后用细胞培养器将其孵育2-3天，使骨髓细胞增殖。
3. 用离心机将骨髓细胞离心，去除培养液，用磷酸盐缓冲液进行细胞裂解。
4. 将制备好的染色体悬液滴在预先涂上盐酸聚赖氨酸溶液的载玻片上，让其固定，然后通过染色体芝士和琼脂糖溶液对细胞进行染色。
5. 用显微镜观察染色体标本，记录染色体的数量和形态，并观察细胞的分裂状态。
实验结果：
制备的染色体标本在显微镜下观察。
通过对标本的观察，我们可以看到染色体形态和数量的变化，以及细胞分裂状态的变化。
同时，我们可以从染色体上观察到细胞的遗传信息，包括基因序列和调控因子等。
结论：
本实验成功制备了小鼠骨髓细胞染色体标本。
观察染色体形态和数量的变化，可以从中了解细胞的遗传信息和分裂状态变化。
同时，该实验也展示了染色体的重要性和组成结构，加深了对细胞生物学的理解。
实验动物染色体标本的制备
5.吸走固定液，换入无水乙醇，蒸汽固定10-20分钟。 6.取出载玻片，缓缓倒去低渗液，用吸管将
固定液II(无水乙醇:冰醋酸=1:2)自载玻片 的一端缓慢滴下形成水幕，固定3-4次，直 立载玻片空气干燥。
Giemsa染色
改良苯酚品红染色
2020体标本的制备成败决定于取材， 若抽取的骨髓太少或太稀，细胞数目过少， 不易获得较多的中期分裂相。
2.低渗处理极为重要，低渗不够，则染 色体聚在一起，分散不好。太过，则造成细 胞破碎，染色体丢失。
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五、实验结果
取前肢1：找到关节所在。
四、实验步骤
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取前肢2：剪开肌肉，顺着关节外围剪开。
四、实验步骤
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四、实验步骤
注意，每组做2片 蒸汽固定法
3.在载玻片上滴1滴蒸馏水，然后滴加2滴第2步获得的骨髓细胞悬液。轻 轻晃动载玻片，使液体混匀，并在载玻片上铺展开。18-20℃下静置， 低渗处理20-30分钟。注意防止水分蒸发。
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人外周血淋巴细胞染色体（Giemse 染色）
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三、实验用品
• 试剂：0.65％生理盐水，甲醇—冰醋酸(3:1)固 定液, 蒸馏水，Giemsa染液。
• 器材：显微镜，离心机，搪瓷盘，剪刀，骨剪， 离心管，注射器，染色缸。
果蝇唾液腺染色体标本的制备与观察
果蝇唾液腺染色体标本的制备与观察一.实验目的通过实验掌握果蝇唾腺染色体的制片方法，了解果蝇唾腺染色体的形态结构特点并练习解剖果蝇幼虫的技术。
二.实验原理唾腺染色体是一类存在于双翅目昆虫的幼虫唾液腺内的巨大染色体。
果蝇的唾腺染色体是典型的巨大染色体，它的巨大性的成因是核内有丝分裂造成的。
由于其染色体DNA经过多次复制（可达210～215次），但并未发生细胞核分裂，同时唾腺细胞中的染色体总是处在配对状态即体细胞联会，重复复制后的染色体聚集在一起，所以在显微镜下看到唾腺染色体要比一般的染色体大得多，又称多线染色体。
三.实验用品1.实验材料：普通果蝇的三龄幼虫、生理盐水2.实验器材和试剂：双筒解剖镜、显微镜、解剖针、改良苯酚品红溶液、HCI四.实验方法和步骤1. 幼虫的培养为了在解剖镜下便于操作，使用的幼虫应发育充分而且个体较大。
在实验中，人们通常采用两个措施控制幼虫的生长。
A.良好的培养基提供了果蝇生长发育的必需营养，因此在培养瓶内放置的亲本不易过多，否则将产生过多的卵而造成养分不足。
B.培养果蝇的环境温度应比正常培养时略低一些，一般可控制在16～20℃范围内，低温下生长的果蝇个体较大。
果蝇属于完全变态的昆虫，成虫交尾后将卵产在培养基内。
在适宜的温度下，卵发育为幼虫并经过一、二龄幼虫的发育后，三龄幼虫要爬到瓶壁上化蛹，为了能够在实验时获得较多的幼虫，可以分批将亲本放入培养瓶。
实验时从培养瓶的瓶壁上挑选那些发育良好的、个体较大的幼虫。
2. 剖取唾腺用解剖针从培养瓶内挑取1只三龄幼虫置于载片上，并滴加1滴生理盐水。
将载片放在载物台上，用解剖镜进行观察。
首先将幼虫的头尾分清，果蝇的头部有一黑点（口器），头部不断作伸缩状。
解剖时，双手各持一个解剖针，一支针先压在幼虫身体的前1/3处，另一支针压住果蝇头部并向前轻轻移动，即可将头部与身体拉开，仔细观察可看见一对透明做白的囊状体即为唾腺。
在唾腺前端各伸出一条细管在前面汇合成一总管。
染色体标本的制作及组型观察
姓名：XX 系年级：20XX级齐鲁医学班学号：20130023XXXX科目: 细胞生物学实验实验题目:动物染色体标本的制备与观察染色体标本的制备及组型观察【实验目的】1.掌握染色体标本制作的基本方法；2.认识不同生物的染色体的状态，学会做染色体组型图。
【制作染色体标本的意义】了解染色体的特征（形态、大小、数目）——绘制染色体组型图【染色体组型图的应用】①生物学方面：根据染色体特征鉴别生物及种类：兔44条；小鼠40条；大鼠42条；鸡78条；猫38条；狗78条；人46条；马64条②临床医学方面：主要用于遗传性疾病的诊断和研究：21三体综合症：是21对常染色体多一条，此种人“先天愚型”，或称“伸舌样白痴”卵巢退化症：45 XO，外貌表现为女性，卵巢发育不全或无，1.5米以下，不能生育。
睾丸退化症：47 XXY ，外貌为男性，比一般男性高，睾丸发育不全，有女性样乳房，智力低下或超常，不能生育，发声尖高。
因此，染色组型实验广泛应用于胎儿遗传性疾病早期诊断中（抽羊水做组型）【染色体标本制作的原理】选择活跃的组织：胸腺，骨髓，睾丸，小肠施加药物使细胞分裂：PHA设法得到大量的分裂中期细胞：秋水仙素1.PHA：促进细胞分裂，使淋巴细胞返幼，变成淋巴母细胞。
2.秋水仙素：破坏微管装配，使纺锤体不能形成，使大量细胞停在分裂中期。
3.空气干燥：使细胞与染色体展开。
4.低渗作用：水进入细胞内，细胞内容空间变大，染色体间的距离变大，易于染色体分散开。
5.固定：用Camoy’s solution,作用使蛋白变性，对染色体内的组蛋白讲，变形后硬度增加，保持了染色体的“即时形态”对细胞膜蛋白讲，变性使细胞膜硬度增强，形成屏障作用，防止了细胞内物质外溢和丢失。
姓名：XX 系年级：20XX级齐鲁医学班学号：20130023XXXX科目: 细胞生物学实验实验题目:动物染色体标本的制备与观察【实验用品】1.实验器材：显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、手术剪、解剖盘、胶头滴管、离心管、离心机、小烧杯、冰箱、酒精灯、小烧杯2.实验药品：蒸馏水、0.9% NaCl溶液、0.3% KCl溶液，固定液（甲醇：冰醋酸=3:1）、秋水仙素3.实验材料：小鼠【实验步骤】1.取雄性小鼠，以每克体重4微克注射秋水仙素（约1mL），14-16h后，用断头法处死小鼠，取出睾丸用生理盐水（0.9% NaCl溶液）洗去血污，置于解剖盘中。
实验报告染色体的观察
实验报告染色体的观察实验报告：染色体的观察引言：染色体是生物体内的遗传物质DNA（脱氧核糖核酸）在细胞分裂时可见的结构。
通过观察染色体的形态和数量，我们可以了解到生物的遗传特征和进化过程。
本实验旨在通过显微镜观察染色体的结构和变化，从而加深对遗传学的理解。
实验材料和方法：1. 显微镜：用于放大染色体的细节。
2. 染色体样本：可从动植物细胞中提取，如血液、植物叶片等。
3. 染色剂：如吉姆萨染液，可使染色体更清晰可见。
4. 盖玻片和载玻片：用于制作染色体样本的载体。
5. 显微镜玻璃片：用于制作染色体样本的压片。
步骤一：制备染色体样本1. 从动物或植物细胞中提取染色体样本。
2. 将提取的样本放在载玻片上，加入适量的染色剂。
3. 用盖玻片轻轻覆盖样本，使其均匀分布在载玻片上。
4. 用显微镜玻璃片轻轻压平样本，使其更加透明。
步骤二：观察染色体1. 将制备好的染色体样本放置在显微镜下。
2. 调节显微镜的放大倍数，逐渐增加放大倍数，观察染色体的形态和结构。
3. 注意观察染色体的数量、大小、形状以及有无异常。
结果与讨论：通过实验观察，我们可以发现染色体在显微镜下呈现出一定的特征。
正常情况下，人类细胞中的染色体通常呈现出46条，即23对。
其中，前22对为常染色体，最后一对为性染色体（男性为XY，女性为XX）。
不同物种的染色体数量和形态也存在差异，这是由于物种间的遗传差异和进化过程的结果。
染色体的形态也是观察的重点之一。
正常染色体通常呈现出X形或I形，两臂长度基本相等。
然而，在某些情况下，染色体可能发生异常，如染色体缺失、染色体重复、染色体交换等。
这些异常情况可能导致遗传疾病的发生，因此对染色体的观察和分析对于遗传学的研究具有重要意义。
实验中使用的染色剂吉姆萨染液，可以使染色体更清晰可见。
这是因为染色剂能够与染色体上的DNA结合，从而增加其对光的吸收能力。
通过染色剂的使用，我们可以更清楚地观察染色体的结构和细节，进一步了解其遗传特征。
动物染色体标本的制备
动物染色体标本的制备
一、实验目的
1. 了解染色体标本制备的基本原理
2. 掌握滴片法制备染色体标本的一般步骤
二、实验原理
每一物种的细胞一般都具有一定数目、形状和大小的染色体，在秋水仙素的作用下可使分裂细胞阻断在中期，此时染色体形态最典型，然后通过低渗、固定、染色等步骤，便可在显微镜下呈现出其形态。
三、实验用品
器具：显微镜、培养皿、手术剪、镊子、冷冻载片、滴管
试剂：秋水仙素、生理盐水、甲醇、冰醋酸、低渗液、PH6.8磷酸缓冲液、Giemsa染色液
材料：蟾蜍
四、实验方法步骤
1. 前处理实验前3－4小时，按每克体重3ug剂量给蟾蜍的腹腔注射秋水仙素；
2. 取材打开蟾蜍腹腔，截取1－2cm长的一段小肠（以十二直肠为好），用见到剖开成片状，在生理盐水中洗净；
3. 低渗将洗净的小肠投入到盛有5mL低渗液的小试管中，在37℃水浴下处理30分钟以上；
4. 固定弃去低渗液，加入新配制的甲醇（3）：冰乙酸（1）固定液约5ml，静止固定40分钟左右；
5. 解离弃去固定液，加入约2ml60％的冰乙酸，轻轻摇动，使解离的细胞充分散开，5分钟后弃去小肠，即得细胞悬浮液；
6. 滴片吸取少许细胞悬浮液，在适当的高度滴3－4滴于冰冷的载片上，迅速吹斜气；
7. 干燥滴片自然风干或吹风机吹干；
8. 染色在载片上滴十滴磷酸缓冲液，再滴一滴Giemsa染液，橡皮球轻轻吹均匀，染色30分钟左右；
9. 观察吹干后在显微镜下观察。
实验六果蝇唾液腺染色体的观察及制备
实验六果蝇唾液腺染⾊体的观察及制备实验五果蝇唾液腺染⾊体的观察及制备⼀．⽬的1．了解果蝇唾液腺染⾊体的形态学及遗传学特征。
2．习分离果蝇幼⾍唾液腺的技术。
3．掌握唾液腺染⾊体制⽚⽅法。
⼆、原理蝇、摇蚊幼⾍唾液腺细胞中的巨⼤染⾊体。
双翅⽬昆⾍的唾液腺细胞发育到⼀定阶段之后就不再进⾏有丝分裂，⽽永久停留在分裂间期。
但随着幼⾍的⽣长，唾液腺染⾊体仍不断地进⾏⾃我复制⽽且不分开，经过许多次的复制形成约1 000—4 000拷贝的染⾊体丝，合起来直径达5µm，长度达400µm，⽐普通细胞中期染⾊体约⼤100～150倍，所以⼜称为多线染⾊体（polytene chromosome）或巨⼤染⾊体（giant chromosome）。
唾液腺染⾊体的另⼀特点是体细胞中同源染⾊体处于紧密配对状态，这种状态称为“体细胞联会”。
在以后不断的复制中仍不分开，由此成千上万条核蛋⽩纤维丝唾液腺染⾊体（salivary gland chromosome）是⼀类存在于双翅⽬昆⾍，如果结合在⼀起，紧密盘绕。
所以细胞中染⾊体只呈单倍数。
⿊腹果蝇的染⾊体数⽬2n=8其中第Ⅱ、第Ⅲ染⾊体为中部着丝粒染⾊体，第Ⅳ染⾊体和第IX染⾊体为端着丝粒染⾊体。
唾液腺染⾊体形成时，染⾊体着丝粒和近着丝粒的异染⾊质区聚于⼀起形成⼀个染⾊中⼼（chromo-center），所以在光学显微镜下可见从染⾊中⼼处伸出6条配对的染⾊体臂，其中5条为长臂，l条为紧靠染⾊中⼼的很短的臂。
唾液腺染⾊体经染⾊后，呈现深浅不同，疏密各异的横纹（band）。
这些横纹的数⽬，位置，宽窄及排列顺序都具有物种的特异性。
研究认为这些横纹与染⾊体的基因是有⼀定关系的。
通过⼀定的实验⽅法使果蝇唾液腺染⾊体各臂分散开，并且使带纹、膨突等特征不受杂质影响清晰地显⽰出来，是进⾏果蝇遗传学研究的很重要的⼀个环节．果蝇唾液腺染⾊体在不同种间的共同点是染⾊体的着丝点位于⼀个染⾊区域，但不同的种类往往其染⾊体臂数⽬不同．每条染⾊体臂上分布着染⾊深浅不同、粗细各异的磺纹(band)，这些横纹的宽窄疏密程度以及排列顺序和数⽬⼜都有种的特异性和种内的差异．由此，果蝇唾液腺染⾊体近⼏⼗年来，已⼴泛⽤于种内系统发⽣和种间亲缘关系的研究中，因为种间及种内不同品系和近缘种中的遗传差异经常反映在唾液腺染⾊体的不联会、形成泡(puff)、缢虞(constriction)和间带区的伸缩性以及顶体(telomere)的形态等多⽅⾯的差异，⽽特别重要的是研究它的基因序列的差异(观察是否产⽣了例位以及染⾊体的断裂、融合和重排)．因此，⽆论从细胞遗传学的⾓度研究基因与突变性状之间的联系，还是从进化遗传遗传学⽅⾯研究染⾊体的系统发⽣，探讨种间以及近缘种间的遗传差异和⽣殖隔离的机制等，唾液腺染⾊体的分析研究都是⼗分重要的．从其横纹分布特征可对物种的进化特征进⾏⽐较分析，⽽⼀旦染⾊体上发⽣了缺失，重复，倒位。
实验六动物染色体标本的制备与观察
实验六动物染色体标本的制备与观察实验简介：染色体是细胞内遗传物质的载体。
骨髓细胞具有丰富的细胞质和高度的分裂能力，可直接观察到细胞周期中的各个时相。
但通常情况下，中期染色体在镜下的数量较少，如经秋水仙素处理后，分裂的骨髓细胞大多被阻断在有丝分裂中期，再经离心、低渗、固定、滴片等步骤，便可得到理想的染色体标本,用以观察中期染色体形态和染色体组型分析等实验。
实验学时3个。
一、实验目的1.初步掌握动物骨髓染色体标本制备基本过程，了解操作步骤的原理。
2.了解常用实验动物染色体的数目及特点。
二、实验原理染色体的分析往往是选择细胞处于活跃增殖状态，或者经过各种处理后细胞进入分裂的动物组织。
在正常动物体内，骨髓是处于不断分裂的组织之一。
给动物注射一定剂量的秋水仙碱即可使许多处于分裂的细胞停滞于中期，然后采用常规空气干燥法制备染色体，即可得到大量可分析的染色体标本。
在动物实验时，可在取材前经腹腔注射有丝分裂抑制剂，一般常用秋水仙素，这此方法对于动物的核型分析是非常有用的。
本方法简便、可靠，不需要经体外培养和无菌操作，易于推广。
因此骨髓细胞是用于动物细胞遗传学研究很好的材料。
三、实验材料（一）材料昆明种小白鼠若干只。
（二）器材水平离心机、显微镜、刻度离心管(10m1)、注射器(1m1)、载玻片、烧杯(400m1、100m1)、试管架、镊子、剪刀、解剖刀、吸管、擦镜纸。
（三）试剂1. 2％柠檬酸钠溶液：称取28g柠檬酸钠(柠檬酸三钠，Trisodium citrate，AR)溶解于蒸馏水中。
2. 1％柠檬酸钠溶液。
3. 200μg ／ml 秋水仙素(cochicine)4. 姬姆萨 (Giemsa)原液(P H6.8)Giemsa 染料(Giemsa stain) 1g甘油(glycerine ，AR) 33ml甲醇(methyl alcohol ，AR) 45ml将染粉倾入乳钵，加几滴甘油，在乳钵内研磨直到无颗粒为止，此时再将全部剩余甘油使60～65℃保温箱中保温2h 后，加入甲醇搅拌均匀，保存于棕色瓶中备用。
染色体标本制作与观察实验报告
染色体标本制作与观察实验报告一、引言染色体是细胞核中的遗传信息携带体，它是由DNA和蛋白质组成的长丝状结构。
染色体的数目、形态和大小等特征在不同物种和个体中是有差异的。
本实验旨在通过染色体标本制作和观察，了解染色体的基本结构和分类。
二、实验材料1.新鲜的玉米幼苗2.醋酸3.高锰酸钾4.盐酸5.电镜滴管6.镜片和盖玻片7.显微镜8.实验室用具：手套、显微刀、移液器等三、实验步骤1.将新鲜的玉米幼苗准备好材料摆放在实验台上；2.取一片净玻片，滴加一滴醋酸，然后用电镜滴管吸取一点玉米根尖细胞悬浮液，滴在玻片上；3.将盖玻片慢慢压在悬浮液上，使悬浮液扩散均匀；4.把制作好的染色体标本放在带有千倍放大倍数的显微镜下观察。
四、实验结果将制作好的染色体标本放在显微镜下观察，可以清晰地观察到悬浮液中的染色体结构。
在玉米根尖细胞中，染色体呈为长条状丝状物，一般成双出现。
根据染色体的位置和大小可以将其分为四组，分别为A、B、C、D组。
五、实验分析根据观察结果可以得出以下结论：1.染色体是由DNA和蛋白质组成的长丝状结构；2.染色体的数目、形态和大小等特征在不同物种和个体中是有差异的；3.在玉米根尖细胞中，染色体大多数成对出现，有些物种的染色体可能会出现多倍体现象。
六、实验总结通过本实验，我们成功制作了染色体标本并观察到了染色体的基本结构和分类。
染色体是细胞核中的遗传信息携带体，对于了解生物遗传学、进化与变异等方面具有重要意义。
然而，本实验只观察了玉米根尖细胞中的染色体，染色体在不同组织和细胞中可能会有差异，需要进一步研究和探索。
同时，在制作染色体标本的过程中需要注意操作规范，以免对实验环境和个人健康造成危害。
以上是本次染色体标本制作与观察实验的实验报告，通过本实验，我们对染色体的结构和分类有了一定的了解，并为进一步的研究提供了基础。
实验过程中需注意操作规范，确保安全性和准确性的同时保证结果的可靠性。
小鼠染色体标本制作、染色及观察
小鼠染色体标本制作、染色及观察小鼠是生产药物和进行基因研究的重要实验动物之一。
了解其染色体特征和行为对于生物学和医学研究非常重要。
本文将介绍如何制作小鼠染色体标本，以及染色和观察的步骤。
制作小鼠染色体标本需要使用小鼠肺部组织。
以下是制作步骤：1. 首先将小鼠处死，取出肺部组织并剪成小块。
2. 将肺组织移入一个离心管中，并添加10毫升10％KCl溶液。
3. 用注射器向管中注入溶液，轻轻摇动以使组织浸泡在KCl中。
4. 将溶液和组织离心5分钟，然后倒掉上层液体。
5. 用少量冰冷等渗氨水将沉淀悬浮并再次离心。
6. 倒掉上层液体，重复该步骤直到样品中不含有明显的碎片和其他杂质。
7. 最后，在离心管中滴加10毫升3：1（甲醇：冰醋酸）混合液，并轻轻混合。
8. 将混合液沿离心管壁滴加，使其缓慢地沉淀到底部。
变态反应需要放置在-20°C 的60分钟以上。
9. 滴掉液体，并用75％乙醇固定沉淀。
染色将固定的小鼠染色体标本染色需要的材料如下：1. 铬酸盐染液2. 蒸馏水3. 复方玫瑰红4. 静电纸和制作装置染色步骤如下：1. 将铬酸盐染液溶解在蒸馏水中（比例为1：3），搅拌混合。
2. 将小鼠染色体标本放在静电纸上，用制作装置连接到正离子极板上。
3. 用玫瑰红溶液覆盖标本，使其均匀覆盖。
4. 将正极板移动到离开标本1-2厘米的位置，并接通电源。
5. 在2-5分钟内，染色体将升起并接触到铬酸盐染液，染色体将呈现出不同的条纹状。
观察1. 显微镜2. 移相仪1. 将小鼠染色体标本放在显微镜上，并使用20倍至100倍的放大倍数进行观察。
2. 用相机或移相仪将图像捕捉下来以进行记录和分析。
总结小鼠染色体标本制作、染色和观察需要精细的技术和专业知识。
掌握这些技能对于研究小鼠染色体特征和行为非常重要。
希望本文的介绍有助于读者理解有关小鼠染色体标本制作、染色和观察的相关知识。
染色体标本制作与观察实验报告
染色体标本制作与观察实验报告实验报告：染色体标本制作与观察一、实验目的1.掌握染色体标本制作的基本原理和方法。
2.学习并掌握染色体观察的基本技巧和特点。
3.通过实验加深对遗传学基础知识的理解和应用。
二、实验原理染色体标本制作是生物学实验中的一项基本技术，其目的是将细胞中的染色体以一种可见且易观察的形式展现出来。
染色体观察有助于我们了解细胞分裂过程中染色体的行为和变化，进一步理解遗传物质的复制、分离和交换等基本过程。
本实验将通过植物根尖细胞的有丝分裂过程来制作染色体标本，并通过显微镜观察其形态和分布。
三、实验步骤1.准备试剂和器材：碱性染料（如龙胆紫溶液）、生理盐水、镊子、滴管、载玻片、盖玻片、显微镜等。
2.选取植物根尖：选择新鲜的植物根尖，长度约为5-10mm。
3.预处理：将根尖放入冰箱冷藏（4℃）约24小时，然后放入25℃的温水中浸泡约6小时。
4.固定：用镊子将根尖取出，放入卡诺氏液中浸泡0.5-1小时，然后转移到70%酒精中保存。
5.解离：将根尖放入1N的盐酸盐酸盐酸KOH溶液中，在60℃的水浴中解离10分钟。
6.漂洗：用镊子取出根尖，用清水冲洗3次，每次5分钟。
7.染色：将根尖放在载玻片上，用滴管吸取龙胆紫溶液滴在根尖上，染色3-5分钟。
8.制片：盖上盖玻片，避免产生气泡。
然后在显微镜下观察。
四、实验结果与讨论1.实验结果：通过显微镜观察到清晰的染色体形态，可以看到细胞分裂的不同阶段，如前期、中期和后期。
在中期可以看到染色体整齐地排列在赤道板上，而在后期则可以看到染色体的分离和移动。
这证明了实验方法的可行性。
2.结果讨论：实验中观察到的细胞分裂过程与教科书中的描述基本一致，说明我们的实验方法是有效的。
此外，通过观察不同阶段的细胞分裂，我们可以更好地理解细胞周期和遗传物质的复制、分配等过程。
然而，我们也注意到实验过程中存在一些问题。
例如，解离过程中可能会出现过度解离的情况，导致染色体形态不完整。
实验动物染色体标本的制备与观察
二、实验原理
1、染色体的中期阻断法
材料:具有高度分裂能力的细胞
植物细胞染色体制备:常规的压片法 动物细胞染色体制备:滴片法
2、几种试剂的Βιβλιοθήκη 用秋水仙素 柠檬酸钠 KCl溶液 固定剂 姬姆萨染液 姬姆萨 （ Giemsa ‘ s stain ；天青 - 伊红）
3、小白鼠染色体的特点：呈“U”型，全部 为端着丝粒染色体； 40条（19对常+1对性）
2如果在实验前不给小白鼠腹腔注射秋水仙素所制备的染色体制片会出现怎样的情3在该实验中常常会观察到一些大大小小的被染成紫色或兰色的近似圆形的结构是未被打散的细胞核吗
实验动物染色体标本的制备与观察
一、实验目的
初步掌握动物骨髓细胞染色体标本制备的 基本过程，了解操作步骤的原理；
了解一些哺乳动物染色体的数目和特点。
颈椎脱臼法
股骨
取骨髓细胞
滴片
图: 小白鼠染色体
拓展实验
1、实验前不给小白鼠腹腔注射秋水仙素 （每组2只）
2、注射秋水仙素后2h、 4h、 6h、 8h 后再进行试验
五、作业及思考题
1、制备的小白鼠染色体标本，分裂相是否 多，染色体分散程度如何？有什么不足处， 原因何在？
2、如果在实验前不给小白鼠腹腔注射秋水 仙素，所制备的染色体制片会出现怎样的情 况？
一些常见动物的染色体数目： 家兔：44 野兔：48 猪：38 黄牛：60 马：64 驴子：62 骡子：63 猩猩：48 金丝猴：44 猫：38 狗：78
三、实验材料与仪器
1、材料：小白鼠 2、试剂：
2%柠檬酸钠、0.1%秋水仙素（现用现 配）、Giemsa染液（pH6.8） 0.4%Kcl溶液
0.067mol/L的磷酸盐缓冲液（pH6.8） 1：10Giemsa磷酸盐缓冲液（pH6.8） 固定液：甲醇：冰醋酸（3：1） 3、器材和仪器：
小兔子染色体的制备与观察
小兔子染色体的制备与观察一、实验目的：1.相关仪器的使用2.在细胞分裂中的相关形态变化3.科学严谨的实验作风二、实验原理：血液中含有红、白两类细胞，它们均是处于未分裂的间期细胞。
红细胞没有核，无分裂能力；白细胞类虽有细胞核存在，但是外周血中处于休止期。
植物血球凝集素（简称PHA）能促使淋巴细胞和单核细胞转化为具有分裂作用的母细胞。
染色体只有在细胞分裂中期时最典型。
秋水仙素类药的药物能抑制纺锤丝的形成，使细胞分裂停止于中期，低渗处理使细胞膨胀，细胞膜破裂，染色体分散，这样就可便于分析。
三、实验准备：1、实验仪器及用具A 玻璃仪器：烧杯培养瓶胶头滴管离心管移液管吸管载玻片玻璃棒容量瓶酒精灯等B 其他：恒温箱分离机显微镜分析天平清洗桶贮水瓶试管架橡皮塞坩埚钳吸球火柴等2、实验所需试液（1）RPMI-1640按要求10.4克/1000ml配制成溶液，并加入NaHCO3 2.0克/1000ml 以缓冲pH。
完全溶解后经0.22 μm灭菌滤膜抽滤除菌。
（2）肝素钠（肝素）：称取0.2g溶于100ml双蒸水中，浓度为0.2%，15磅20分钟灭菌。
（3）秋水仙碱（秋水仙素〕，生理盐水配制成10μg/ml浓度，15磅20分钟灭菌，分装，置－20℃。
（4）低渗液：0.56%的KCl。
（5）固定液（Carnoy固定液）甲醇∶冰乙酸（3∶l），临时配制。
（6）Giemsa工作液：1份原液和10份磷酸缓冲液，临时配制。
（7）磷酸缓冲液：1/15M Na2HPO4、1/15M KH2PO4等体积混和。
（8）5% NaHCO3灭菌滤器抽滤备用。
四、实验操作1．培养基的配制：在超净工作台中，100ml培养基含以下成分和比例：RPMI-1640 84ml小牛血清 15mlPHA 4ml肝素钠 1ml卡那霉素终浓度为100单位/ml以5% NaHCO3（无菌）或1N HCl调pH至7.2－7.4, 用刻度吸管将培养液分装入培养瓶（10ml/瓶），4℃备用。
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实验六动物染色体标本的制备与观察
实验简介：染色体是细胞内遗传物质的载体。
骨髓细胞具有丰富的细胞质和高度的分裂能力，可直接观察到细胞周期中的各个时相。
但通常情况下，中期染色体在镜下的数量较少，如经秋水仙素处理后，分裂的骨髓细胞大多被阻断在有丝分裂中期，再经离心、低渗、固定、滴片等步骤，便可得到理想的染色体标本, 用以观察中期染色体形态和染色体组型分析等实验。
实验学时 3 个。
一、实验目的
1. 初步掌握动物骨髓染色体标本制备基本过程，了解操作步骤的原理。
2. 了解常用实验动物染色体的数目及特点。
二、实验原理
染色体的分析往往是选择细胞处于活跃增殖状态，或者经过各种处理后细胞进入分裂的动物组织。
在正常动物体内，骨髓是处于不断分裂的组织之一。
给动物注射一定剂量的秋水仙碱即可使许多处于分裂的细胞停滞于中期，然后采用常规空气干燥法制备染色体，即可得到大量可分析的染色体标本。
在动物实验时，可在取材前经腹腔注射有丝分裂抑制剂，一般常用秋水仙素，这此方法对于动物的核型分析是非常有用的。
本方法简便、可靠，不需要经体外培养和无菌操作，易于推广。
因此骨髓细胞是用于动物细胞遗传学研究很好的材料。
三、实验材料
（一）材料昆明种小白鼠若干只。
（二）器材水平离心机、显微镜、刻度离心管（10m1、注射器（1m1、载玻片、烧杯（400m1、100m1、试管架、镊子、剪刀、解剖刀、吸管、擦镜纸。
（三）试剂
1. 2％柠檬酸钠溶液：称取28g 柠檬酸钠（柠檬酸三钠，Trisodium citrate，AR 溶解于蒸馏水中。
2. 1％柠檬酸钠溶液。
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3. 200 卩/gml 秋水仙素（cochicine
4. 姬姆萨（Giemsa原液（P H6.8
Giemsa 染料（Giemsa sta in 1g
甘油（glycerine, AR 33ml
甲醇（methyl alcohol，AR 45ml
将染粉倾入乳钵，加几滴甘油，在乳钵内研磨直到无颗粒为止，此时再将全部剩余甘油使60〜65C保温箱中保温2h后，加入甲醇搅拌均匀，保存于棕色瓶中备用。
5. 0.067mol/L磷酸盐缓冲液（pH
6.8
Na 2HPO 4. 12H2O 11.81g
（或Na 2HPO 4. 2H2O 5.92g
KH 2P04 4.5g
溶解于蒸馏水中至1000m1。
6. 姬姆萨（Giemsa应用液（pH6.8
取1ml 姬姆萨原液用9ml 0.067mol/L 磷酸盐缓冲液(pH 6.8 稀释即可。
当天临时配制，一天后失效。
7. 甲酸(AR
8. 冰醋酸(Acetic acid glacial,AR
9．0.4％KCl(potassiumchloride，AR 溶液
四、实验操作
1. 秋水仙素处理动物按4卩g g体重的剂量经腹腔注射秋水仙素，3〜4h后杀死动物。
2. 取骨髓取出动物后肢的胫骨和股骨，剪去两端骨骺。
将0.6〜1ml 2％柠檬
酸钠用1ml 注射器接上5#针头注入骨髓腔，将骨髓细胞先冲入小培养皿中，取下注射器针头，反复吸打骨髓细胞，使细胞团块分散，转入10ml 离心管。
3. 低渗处理视骨髓量之多少，加入0.4%KCI溶液8〜10ml，随即将离心管置37C水浴中低渗10min。
4. 固定1000r g min 离心8min 。
弃上清液，沿离心管壁缓慢加入新配制的甲
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醇：冰醋酸(3：1 固定液5ml ，加固定液时，注意不要冲动细胞团块。
加完固定液后，立即用吸管将细胞轻轻吸打均匀，静置固定20 min。
如此反复固定2〜3次，每次20min 。
5. 滴片固定的细胞经离心后，吸去上层固定液，视管底的细胞多寡加入少量
新配制的固定液，将细胞团块轻轻吸打成悬液。
在干净、冰冷的载玻片上滴2〜3滴上层细胞悬液，在酒精灯上文火烘干，在空气干燥30min 。
6. 染色将玻片标本平放于支架上，细胞面朝上，每片滴加1: 10 Giemsa应用液0.2〜1m1,染色10min。
7. 冲洗在自来水管下细流水冲洗15s ，洗去Giemsa 应用液，用滤纸吸干玻片标本，置于显微镜观察。
五、结果
1. 在显微镜下可观察到染色体被Giemsa 应用液染为紫红色或桃红色。
小鼠染色体数目2n=40。
2. 在低倍镜下可见较多的圆形的间期细胞核。
寻找染色体分散良好的中期分裂
相，移至视野中央，然后用油镜观察。
在油镜下，可见40条清晰的染色体，每条
染色体中，还可以见到着丝粒、染色体长臂和短臂等特征。
六、注意事项
1. 秋水仙素的注射剂量与时间对观察中期染色体的形态影响很大。
通常情况
下，小鼠按4卩g/g体重的剂量经腹腔注射秋水仙素，3〜4h后处死小鼠，此时观察中期染色体特征明显。
注射时间过短或过长，在镜下可见间期细胞多，而中期染色体形态少。
如果在显微镜下能观察到50%〜80%中期染色体，说明试验操作相当成功。
2. 由于小鼠的股骨较细，因此应细心地剥去皮肤，然后用手术剪剪去两端骨骺，用装有2％柠檬酸钠溶液的注射器针小心插入骨髓腔将溶液注射完毕，并反复从两端冲洗将骨髓冲出来，吹洗直至骨腔变白。
此外要防止注射针头阻塞。
3. 低渗处理是实验成败的关键，其目的是使细胞体积胀大，染色体松散。
低渗处理时间过长，会造成细胞破裂，染色体丢失。
低渗处理时间不足，细胞内染色
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体则易聚集在一起，不能很好伸展开来，观察时无法区分和计数。
4. 固定液要现配现用。
用固定液固定染色体形态至关重要，固定时间要充分，应在20
min以上。
5. 载玻片要事前要酸液浸泡24〜48h，自来水反复冲洗后，双蒸水冲洗后，烘干备用。
临用前，用洁净纸包裹置于4C冰箱中。
6. 对于离心过后的沉淀于管底中的沉淀物，要用吸管吸入固定液将细胞轻轻吸打均匀。
尤其最后一步，如果混合不均匀，可造成细胞聚集成团，在镜下就不易见到散在的中期染色体，影响染色体的后期分析。
七、作业
1. 记录所观察小白鼠骨髓细胞染色体的数目和形态。
2. 如果在实验前不给小鼠腹腔注射秋水仙素，所制备的染色体标本会出现怎样
的情况？
小鼠骨髓中期染色体形态图。