微生物染色液配制及染色法

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微生物革兰氏染色法和芽孢染色法

微生物革兰氏染色法和芽孢染色法
第一步:初染:结晶紫使菌体着上蓝紫色; 第二步:媒染:碘和结晶紫形成大分子复 合物,能被细胞壁阻留在细胞内;第三 步:酒精脱色:细胞壁成分和构造不同, 出现不同的反应——G+菌:细胞不能被 酒精脱色,仍呈紫蓝色;G-菌:酒精将 细胞脱色,细胞无色;第四步:番红复染, G-菌呈红色, G+菌呈紫蓝色。
实验结果
营养细胞(红色) 芽孢(绿色)
结语
谢键环节,脱色不 足,阴性菌被染成阳性菌;脱色过度,阳性菌被染成 阴性菌
实验结果
阳性菌(蓝紫色) 阴性菌(红色)
细菌芽孢染色法
实验目的
学习并掌握芽孢染色方法;初步了解芽孢杆 菌的形态特征。
实验原理
芽孢:某些细菌在一定的环境条件下,能在 菌体内部形成一个圆形或卵圆形小体,是细菌的 休眠形式。产生芽孢的都是革兰氏阳性菌。
革兰氏染色法
实验器材
1)菌种: 大肠杆菌和枯草芽孢杆菌 2)染色剂:结晶紫,番红 3)器材:显微镜、酒精灯、载玻片、接种环、
双层瓶、擦镜纸等
革兰氏染色法
实验步骤
混合涂片法涂片、干燥、固定 结晶紫初染1min, 水洗 碘液媒染1min,水洗 用滤纸吸去残水后, 将玻片倾斜,在白色背景下,用95%乙醇脱色,直至 流出的乙醇无色时,立即水洗 番红复染2min,水 洗 干燥后,镜检
细菌芽孢染色法
实验步骤
1)改良的Schaeffer-Fulton氏染色法 制备菌悬液 孔雀绿染液(2滴)水浴加热染色15-20 min 取1小滴,涂片,固定 水洗 番红染液复染23min,倾去染液,水洗 镜检 2)Schaeffer-Fulton氏染色法 涂片固定 孔雀绿染液在微火上加热染色5min 水洗 番红染液复染2min 水洗 镜检

微生物的染色实验报告

微生物的染色实验报告

微生物的染色实验报告微生物的染色实验报告一、引言微生物是一类极小的生物体,包括细菌、真菌和病毒等。

它们在自然界中广泛存在,对人类的生活和健康具有重要影响。

为了更好地研究微生物的形态和结构,染色实验成为一种常用的方法。

本实验旨在通过染色技术观察微生物的形态和结构。

二、实验材料和方法1. 实验材料:(1)细菌标本:如大肠杆菌、金黄色葡萄球菌等;(2)染色试剂:如甲基蓝、碘液等;(3)显微镜和玻片。

2. 实验方法:(1)制备细菌涂片:取一滴细菌液滴在玻片上,用另一块玻片将其均匀涂开。

(2)甲基蓝染色:将制备好的细菌涂片放入甲基蓝溶液中浸泡片刻,然后用水冲洗净。

(3)碘液染色:将经过甲基蓝染色的细菌涂片放入碘液中浸泡片刻,然后用水冲洗净。

(4)观察:将染好色的细菌涂片放在显微镜下观察,并记录所见。

三、实验结果经过甲基蓝染色和碘液染色后,观察到细菌在显微镜下呈现出不同的形态和结构。

1. 大肠杆菌大肠杆菌是一种革兰氏阴性细菌,呈杆状。

在染色后,我们观察到大肠杆菌呈现出深蓝色,细胞形态清晰可见。

通过放大镜,我们可以看到大肠杆菌的细胞体长约为2-3微米,直径约为0.5微米。

细菌细胞内部还可观察到细胞核和胞质等结构。

2. 金黄色葡萄球菌金黄色葡萄球菌是一种革兰氏阳性细菌,呈球状。

在染色后,我们观察到金黄色葡萄球菌呈现出浅蓝色,细胞形态圆润。

放大镜下,我们可以看到葡萄球菌的细胞直径约为1微米左右,呈团状生长。

细菌细胞内部可见到细胞壁和胞质等结构。

四、实验讨论通过本实验,我们成功地使用染色技术观察了大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的形态和结构。

染色技术能够使细菌在显微镜下更加清晰可见,有助于研究微生物的特征和生理功能。

细菌的染色实验是一种常用的方法,不仅可以观察细菌的形态和结构,还可以帮助鉴定不同种类的细菌。

在实际应用中,染色技术在医学、食品安全和环境监测等领域具有重要作用。

例如,医生可以通过染色技术快速鉴定细菌感染的类型,从而指导治疗方案的选择。

微生物常用染色法-PPT

微生物常用染色法-PPT
微生物常用染色法
1
细菌染色的一般程序
涂片(干燥)---固定---染色---脱色---复染
2
涂片制备
血液,分泌物,排泄物,穿刺液和液体培养物,直接 在载玻上作薄涂片. 固体培养基上的菌落或菌 苔的制片,用接种环取1 环9g/L氯化钠溶液置载 玻片中央.再用无菌接种环取少量的培养物在 氯化钠溶液中磨匀,涂成人1CM*1CM大小的涂 面.置室温下自然干燥或火慢慢烘干.
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涂片见G+球菌,呈葡萄状排列
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涂片见G+球菌,呈链状排列
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染色原理:
最广泛接受观点认为与细菌细胞壁结构及化学 组成有关. G+菌细菌壁结构致密,肽聚糖层厚, 脂质含量少,形成结晶紫_碘复合物.脱 色过程 中,虽然溶解细菌壁脂质成分形成小孔.脱水作 用使细胞壁收缩又 构成屏障,阻止结晶紫—碘 复合物被乙醇溶出,细菌保持紫色.G-菌细菌壁 疏松,肽聚糖层较薄,脂质含量高,乙醇溶解脂质, 经复染细菌呈红色.
– 复染色法 用两种或以上的不同颜色的染料进行 染色,可将不同细菌或同一细菌的不同结构染成 不同颜色
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大家有疑问的,可以询问和交流
可以互相讨论下,但要小声点
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革兰染色
– 细菌涂片经火焰固定,加结晶紫染液1min,清水冲去染液. – 加碘液媒染1min,水洗,甩干. – 用95%乙醇脱色,轻轻摇动约30S,至无紫色洗落为止,水洗,
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染色原理
抗酸性染色细菌与细胞壁成分有关.分枝杆菌 细胞壁含脂质较多,其中主要成分是分枝菌酸. 决定抗酸性染色反应,用乙醚脱去分 分枝菌酸,则呈非抗酸染色性.
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剂.也可用加热法促进着色.
6
脱色
使已着色的被染物脱去颜色.常用乙醇,丙酮等 作为脱色剂.脱色剂可以查出细菌与染料结合 的稳定程度,作为鉴别染色用.

简述革兰染色法的操作步骤

简述革兰染色法的操作步骤

简述革兰染色法的操作步骤革兰氏染色法:也称革兰氏阴性染色法。

属于活细胞染色法,也是初中阶段接触的细菌学基本技术之一。

此法特别适合观察病毒的形态,故常作为临床微生物实验中重要的染色方法。

简述革兰氏染色法的操作步骤一般方法如下:(1)检查试管,将所需的培养基配制好并检查是否均匀。

(2)液体试剂的制备:取无菌的结晶紫注射液0。

5ml,精氨酸0。

5ml, 0。

01%升汞液2。

5ml,蒸馏水150ml混匀后再加蒸馏水至1000ml。

(3)固体试剂的制备:取无菌的结晶紫指示液0。

5ml,精氨酸0。

5ml,蒸馏水50ml混匀后再加蒸馏水至1000ml。

(4)稀释:在试管内分别加入精氨酸0。

5ml,无菌水20ml,再加蒸馏水至9ml,摇匀,用结晶紫指示液染色20分钟,并随时注意结晶紫是否变蓝,必要时可轻轻摇动或加热。

(5)加生理盐水到标线内,使高度恰好达到培养基中最低部位。

(6)加培养液:吸取配制好的液体培养基分别滴到三个试管中,每个试管各加入100μl的纯化蛋白胨培养基,即为含无菌牛血清的生理盐水,分别置于37 ℃温箱中保存备用。

(1)检查试管,吸出液体试剂,吸干,检查。

(2)准确量取需用量(或先倒在烧杯中,再用量筒量),检查药液浓度。

(3)用酒精灯火焰点燃试管内的培养基,分别在每管中加入1。

0ml培养基,将试管放回37 ℃温箱中培养。

(4)观察并记录细菌生长情况。

第一,培养时间应足够,以获得足够的细菌数量;第二,以提高对细菌生长曲线的观察能力;第三,缩短细菌培养时间有利于分离、纯化细菌。

(5)取出试管,观察染色的结果。

如果菌落周围染色较浅,表明染料被细菌分泌物包绕,菌体呈现模糊状态;反之,菌落周围染色较深,则表明细菌染色质集中,结构明显。

①加生理盐水到标线内,使高度恰好达到培养基中最低部位。

②加培养液:吸取配制好的液体培养基分别滴到三个试管中,每个试管各加入100μl的纯化蛋白胨培养基,即为含无菌牛血清的生理盐水,分别置于37 ℃温箱中保存备用。

大肠菌群革兰氏染色具体方法

大肠菌群革兰氏染色具体方法

大肠菌群革兰氏染色具体方法在微生物学领域,大肠菌群的革兰氏染色法是一种常用的方法,它可以帮助我们区分细菌的种类和特性。

具体操作步骤如下:首先,取适量的大肠菌群样品,将其放入95%的乙醇中,然后搅拌均匀,静置10分钟。

这一步的目的是让细菌固定在样本中,便于后续的染色操作。

接下来,从乙醇固定的菌液中取一滴,滴加革兰氏染液。

革兰氏染液是由结晶紫染液和碘溶液混合而成的,它可以将细菌染色,使其在显微镜下更容易观察。

在滴加革兰氏染液后,轻轻搅拌均匀,然后静置1分钟,让染色充分进行。

第三步,用滤纸过滤染液,弃去初滤液,留下次滤液。

这一步的目的是去除多余的染料,以便进行下一步的操作。

在第四步中,取一滴次滤液,滴加95%的乙醇,轻轻混匀后静置10秒钟。

乙醇的作用是脱色,使细菌染色后的颜色更加清晰。

随后,用滤纸过滤,弃去初滤液和次滤液,留下脱色后的细菌悬液。

在第五步中,取一滴脱色后的细菌悬液,滴加番红复染液(稀),轻轻搅拌均匀,静置1分钟。

番红复染液可以使细菌重新着色,同时增强细菌的对比度,便于观察。

第六步,用滤纸过滤,弃去初滤液和次滤液,留下复染后的细菌悬液。

此时,细菌已经完成了革兰氏染色,呈现出鲜明的紫色。

最后,在第七步中,取一滴复染后的细菌悬液,涂抹在载玻片上,然后加盖盖玻片。

这样,我们就得到了一个革兰氏染色后的样本。

最后一步是进行镜检,通过显微镜观察染色后的细菌形态和结构,从而进行进一步的分析和研究。

革兰氏染色法在微生物学领域具有广泛的应用,其主要优点如下:1.染色效果鲜明:革兰氏染色法能使大肠杆菌呈现出鲜明的紫色,便于观察和区分。

2.染色步骤简单:革兰氏染色法的操作步骤相对简单,容易掌握,适用于各种实验条件。

3.染色时间短:整个革兰氏染色过程仅需数分钟,有利于提高实验效率。

4.适用范围广泛:革兰氏染色法不仅适用于大肠杆菌的染色,还可用于其他类型细菌的染色。

革兰氏染色法在微生物学领域的应用主要包括:1.临床检测:革兰氏染色法可用于临床样本中细菌的检测,如痰液、尿液、血液等,有助于临床医生诊断感染性疾病。

微生物的制片染色技术

微生物的制片染色技术

微生物的制片染色技术微生物的细胞含水量大(一般可达80~90%或更高),菌体薄而透明,折光性强,因此,除观察活细胞外,绝大多数情况下,都必须经过染色才能在显微镜下观察。

至于细菌的特殊结构——鞭毛、芽孢、荚膜,以及真菌的有性或无性孢子等,均需经特殊方法染色后,才能进行观察。

细菌的制片染色细菌涂片的制作与简单染色涂片制作:在干净载片上加清水1滴,用接种环(或牙签)取纯培养菌种(或牙垢等含菌标本)少许,与水混匀,涂布成薄层,在酒精灯火焰上方微热烘干,杀死菌体并使其固定在载片上。

注意:载片一定要清洁无油,即水滴可均匀散开,不收缩;取样要适当,不可过多;涂片要薄而均匀,干后呈淡乳白色、半透明状;烘干过程载片背面保持温热。

简单染色:在涂片上滴1滴复红或其他染色液,染色1分钟,倾去染料,用水沿玻片一侧轻轻冲去多余染料,擦干载片背面及周围水渍,风干,镜检。

此方法用于观察细菌外形及大小。

革兰氏染色细菌学中广泛使用的一种染色方法。

用于鉴别细菌,可将细菌分为革兰氏染色阳性及革兰氏染色阴性两大类。

染色步骤:用上述方法制备细菌涂片,干燥后,加结晶紫1滴,初染1分钟,用水冲去多余的染料;稍干后,加媒染剂卢戈氏碘液2~3滴,固定1~2分钟,用水冲去碘液;稍干后,加95%酒精1~2滴,脱色20~30秒,迅速用水冲洗(此时革兰氏阳性菌紫色,阴性菌无色);滴加0.5%番红1滴复染1分钟,使被脱色的阴性菌着色。

镜检时,阳性菌紫色,阴性菌红色。

革兰氏染色的关键为酒精脱色,脱色过轻,阴性菌脱不掉紫色;若脱色过重,阳性菌的紫色也会脱掉。

因此,染色时首先应制好薄而均匀的涂片,并掌握好脱色时间。

此外还应注意菌龄,某些革兰氏染色阳性菌,其老龄菌常呈阴性反应,因此,染色用菌种应是24小时内的培养物。

特殊结构染色细菌的鞭毛、芽孢、荚膜等特殊结构,必须用特殊方法才能使其着色。

芽孢染色:芽孢壁较厚,染料不易透过,但着色后亦不易脱色。

芽孢染色一般需用培养24~48小时的菌种,涂片风干后,加5%孔雀绿染液3~5滴,用酒精灯微火加热至出现蒸气(不断补充染液,使其保持不干,也不沸腾),染色5~10分钟,冷却后,用水冲洗,再用0.5%番红液复染1分钟,水洗,风干后镜检。

革兰氏染色操作规程

革兰氏染色操作规程

1 目的
建立微生物实验室细菌形态和主要构造检验方法,以鉴定菌种。

2 范围
本规程适用于我司革兰氏染色测试实验。

3 职责
质量部微生物实验员负责按此规程进行革兰氏染色测试。

4 染液的配制
4.1 0.5%结晶紫染色液
称取1g结晶紫,放入250ml试剂瓶中,加95%乙醇2ml,溶解后加入200ml蒸馏水摇匀即可。

4.2 革兰氏碘液
分别称取碘 1g和碘化钾2g放入蒸馏水300ml中,溶解摇匀即可。

4.3 脱色剂
95%乙醇
4.4 复染液(番红染液)
称取番红0.25g,加入10ml 95%乙醇内,然后用90ml蒸馏水稀释,摇匀即可。

5 革兰氏染色程序
5.1 涂片
用纱布擦净载玻片,以无菌接种环取一小滴无菌生理盐水,然后用无菌接种环挑取少数菌苔(菌落)或液体培养物(不必加生理盐水),在玻璃片中央涂成一薄膜。

5.2 干燥
涂片后放室温中自然干燥。

5.3 固定
将载玻片迅速通过火焰三次(其目的是杀死细菌),使菌体与载玻片粘附牢固,以及改变对染料的通透性。

5.4 初染
滴加结晶紫染液于已固定的载玻片上,染1min,水洗。

微生物实验四细菌的涂片及简单染色法和革兰氏染色法经典法

微生物实验四细菌的涂片及简单染色法和革兰氏染色法经典法

【实验报告】
• 2)填表

表1 细菌形态的描述
【实验报告】

2.思考题

(1)涂片为什么要固定,固定时应注
意什么问题?

(2)你在涂片染色过程中遇到了什么
问题?试分析其中原因?

ห้องสมุดไป่ตู้
(3)革兰氏染色中哪一步是关键,为
什么?你如何控制这一步。

(4)不经复染这一步,能否区别革兰
氏阳性菌和阴性菌?
• 2、仪器 显微镜(25台); • 3、材料 载玻片(每组4个),酒精灯(每组1个)
,接种环(每组1个),擦镜纸,二甲苯、香柏油 ,吸水纸,染色缸等;
【实验用品】
• 4、染料 草酸铵结晶紫(Crystal Violet , CV)、沙黄、吕氏碱性美蓝染液。
1)草酸铵结晶紫染液的配制:
A液: 结晶紫

染色前必须先固定细菌,其目的有二
:一是杀死细菌,使细胞质凝固,菌体粘
附于玻片上;二是增加其对染料的亲和力
。常用的有加热和化学固定两种方法。固
定时应尽量维持细胞原有形态,防止细胞
膨胀或收缩。
【基本原理】
• 二、革兰氏染色法(经典法)基本原理 • 革兰氏染色反应是细菌分类和鉴定的重
要性状 • 革兰氏染色法(Gram stain)不仅能观
【方法步骤】
• 3、染色

⑴初染 将玻片置于玻片搁架上,加草酸铵结
晶紫染色液(加量以盖满菌膜为度),染色1-2min。
倾去染色液,用自来水小心地冲洗。

⑵媒染 滴加(Lugol)碘液,染1-2min,水洗。

⑶脱色 滴加95%乙醇2-3次,脱色20-25s立

常用染色液的配方

常用染色液的配方

常用染色液的配方染色液是一种用于给纤维或织物上色的溶液,可以通过调整其成分的配比来获得不同颜色的染色效果。

以下是一些常见的染色液配方,涵盖了不同颜色和纤维材料的染色需求。

1.无酶法染色液- 水:1000ml-染料:根据需要调整用量-草酸:10g-盐:60g-分散剂:适量2.酶法染色液- 水:1000ml-染料:根据需要调整用量-酶解剂:2g-分散剂:适量3.酸性染色液- 水:1000ml-染料:根据需要调整用量- 醋酸:20ml-分散剂:适量4.乳液染色液- 水:1000ml-染料:根据需要调整用量-乳化剂:适量- 硫酸:10ml-盐:60g-分散剂:适量5.染料固定剂染色液- 水:1000ml-染料:根据需要调整用量-染料固定剂:根据需要调整用量-盐:60g-分散剂:适量6.阴离子染色液- 水:1000ml-染料:根据需要调整用量-还原剂:适量-分散剂:适量7.阳离子染色液- 水:1000ml-染料:根据需要调整用量-盐:60g-分散剂:适量上述配方仅为一般参考,实际配方可能会因具体染色要求和纤维类型的不同而有所调整。

在进行染色之前,应根据纤维类型、染料选择和染色效果的要求进行配方调整。

此外,注意遵循相关安全操作和环保要求,以确保染色过程的安全和可持续性。

在实际染色过程中,可以根据需要使用其他添加剂来调整染色液的性能,如增稠剂、酸碱调节剂、湿润剂等。

此外,注意控制染色液的pH值、温度和时间等参数,以获得理想的染色效果。

总之,染色液的配方是根据具体需求和材料类型来确定的,在实际应用中需要充分考虑材料特性和染色效果,并注意安全环保要求。

常用的微生物染色方法

常用的微生物染色方法

常用的微生物染色方法微生物染色是微生物学研究中非常重要的方法,通过染色可以使微生物的形态和结构更加清晰,便于观察和研究。

下面将介绍几种常用的微生物染色方法。

1. 革兰氏染色法(Gram染色):革兰氏染色法是最常用的微生物染色方法之一、该方法可以根据细胞壁结构的差异将细菌分为革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌。

革兰氏阳性菌具有较厚的细胞壁,可以保留紫色的革兰氏染料-碘-酒精复合物,呈紫色;而革兰氏阴性菌由于细胞壁较薄,无法保留染料-碘-酒精复合物,经酒精洗涤后以褪色方式显现嫩蓝色。

2. 去瓶球菌染色法(Ziehl-Neelsen染色):该染色方法主要用于诊断结核菌感染。

结核菌具有酸酒杆菌的特征,该染色方法通过热定性进行,即将杆菌加热固定在玻璃片上。

染色液为仲子红与甲苯红的酒精醚溶液,结核菌上的脂质物质可以吸附染色液,呈现红色。

3.金黄色葡萄球菌染色法:金黄色葡萄球菌染色采用的是接种在含有豆粉和盐的琼脂糖平板上的细菌进行。

染色液为碘酸钾和碘甘液的混合物,在细菌细胞内部染出棕色团块。

4. 吉姆萨染色法(Giemsa染色):吉姆萨染色法主要用于染色血液细胞、细菌和寄生虫等。

染色液为吉姆萨染料溶液,通过染色液和蒸馏水的混合来染色。

吉姆萨染色方法对捕获染色成分极为敏感,将蓝色碱性染料用于碱性碳水化合物和核酸材料,将红色和紫红色酸性染料用于酸性成分,如蛋白质和细胞质组分。

5. 格拉姆-韦瑞染色法(Gram-Weigert染色):该染色法用于菌体内基质和胞外多糖的特异染色。

六元蔗糖银试剂与格拉姆染色特殊染料结合,生成黑色的沉淀物,用以观察菌体内多糖地点和部位。

6.碘染色法:碘染色用于染色藻类和真菌。

该染色法主要原理是将菌丝或细胞的内部特异性细胞器染为紫黑色,以便更容易观察和研究。

7.寇歇染色法:寇歇染色法主要应用于真菌的染色,染色方法与碘染色类似,可以观察到真菌菌丝和孢子的形态和结构。

总结起来,微生物染色方法有很多种,每种方法适用于特定的微生物和研究目的。

微生物染色液的配制

微生物染色液的配制

微生物染色液的配制一、吕氏(Loeffler)碱性美蓝染液 (实验6,53)A液:美蓝(methylene blue) 0.6g95%酒精 30mlB液:KOH 0.01g蒸馏水 100ml分别配制A液和B液,配好后混合即可。

二、齐氏(Ziehl)石炭酸复红染色液 (实验6)A液:碱性复红(basic fuchsin) 0.3g95%酒精 10mlB液:石炭酸 5.0g蒸馏水 95ml将碱性复红在研钵中研磨后,逐渐加入95%酒精,继续研磨使其溶解,配成A液。

将石炭酸溶解于水中,配成B液。

混合A液及B液即成。

通常可将此混合液稀释5—10倍使用,稀释液易变质失效,一次不宜多配。

三、革兰氏(Gram)染色液 (实验7)1.草酸铵结晶紫染液A液:结晶紫(crystal violet) 2g95%酒精 20mlB液:草酸铵(ammonium oxalate) 0.8g蒸馏水 80ml混合A、B二液,静置48小时后使用。

2.卢戈氏(Lugol)碘液碘片 1.0g碘化钾 2.0g蒸馏水 300ml先将碘化钾溶解在少量水中,再将碘片溶解在碘化钾溶液中,待碘全溶后,加足水分即成。

3.95%的酒精溶液。

4.番红复染液番红(safranine O) 2.5g95%酒精 100ml取上述配好的番红酒精溶液10ml与80ml蒸馏水混匀即成。

四、芽孢染色液 (实验8)1.孔雀绿染液孔雀绿(malachite green) 5g蒸馏水 100ml2.番红水溶液番红 0.5g蒸馏水 100ml3.苯酚品红溶液碱性品红 11g无水酒精 100ml制法取上述溶液10ml与100ml5%的苯酚溶液混合,过滤备用。

4.黑色素(nigrosin)溶液水溶性黑色素 10g蒸馏水 100ml称取10g黑色素溶于100ml蒸馏水中,置沸水浴中30分钟后,滤纸过滤二次,补加水到100ml,加0.5ml甲醛,备用。

五、荚膜染色液 (实验9)1.黑色素水溶液黑色素 5g蒸馏水 100ml福尔马林(40%甲醛) 0.5ml将黑色素在蒸馏水中煮沸5分钟,然后加入福尔马林作防腐剂。

环境微生物:革兰氏染色

环境微生物:革兰氏染色

二、革兰氏染色原理
为什么通过革兰氏染色G+呈兰色,G-呈红色?
①脱色剂----95%乙醇为脂溶剂破坏G﹣的外膜、肽聚 糖层和 细胞质膜,于是被乙醇溶解的结晶紫和碘的 复合物从细胞中渗漏出来,当再用藩红复染时,显 现红色。
②但在G+细胞中,乙醇使厚的肽聚糖层脱水,导致孔 隙变小, 由于结晶紫和碘的复合物分子较大,不能 通过细胞壁,保持紫色。
革兰氏染色
革兰氏染色步骤 革兰氏染色原理
革兰氏染色
革兰氏染色—由丹麦科学家 Gram在1884年建立,是细菌学上最 重要的鉴别染色法。通过革兰氏染 色法可将细菌分成革兰氏阳性菌和 革兰氏阴性菌两大类。
革兰氏染色
1884年,丹麦医生C.Gram发明 程序: (1)初染(结晶紫1-2min) (2)媒染剂(碘液1min) (3)脱色(95%乙醇20~30S) (4)复染(蕃红1 ~ 2min) 结果判断:菌体呈紫色的为革兰氏阳性菌(G+)
球菌
肺炎链球菌
杆菌
炭疽杆菌
破伤风杆菌
肉毒芽孢杆菌
杆菌
变形杆菌
大肠杆菌
绿脓杆菌
螺菌
幽门螺杆菌
霍乱弧菌
钩端螺旋体
感谢观看,欢 迎批评指正
菌体呈红色的为革兰氏阴性菌(G-)
一、革兰氏染色步骤
3.媒染— 碘-碘化钾 溶液浸湿
1min
4. 脱色—95%乙醇溶液 进行颜色洗脱30s
5.复呈现第一次染色的效果紫色,
革兰氏阳性菌(紫阳G+);
• 呈现第二次染色的效果红色;称
革兰氏阴性菌(红阴G -)

亚甲基蓝染色液配方

亚甲基蓝染色液配方

亚甲基蓝染色液配方
一、简介
亚甲基蓝染色液是一种常用的生物染色剂,尤其在微生物学和医学领域中有着广泛的应用。

本配方提供了亚甲基蓝染色液的详细制备方法,帮助您轻松制作高品质的染色液。

二、配方及用量
以下为所需的原料及各自的用途:
1.亚甲基蓝染料:50g,提供染色功能。

2.硫酸铜:2g,作为催化剂,提高染色效果。

3.氯化镁:4g,增强染色稳定性。

4.蒸馏水:1000mL,作为溶剂,稀释染料和其他原料。

5.抗坏血酸:1g,抑制染色过程中的氧化反应。

6.聚乙烯吡咯烷酮:1g,提高染色液的稳定性。

7.甘油:10mL,增加染色液的粘稠度,使染色更加均匀。

8.甲醇:10mL,增强染色效果。

9.盐酸:10mL,调节染色液的pH值至适宜范围。

三、制备步骤
1.在烧杯中加入蒸馏水,然后加入亚甲基蓝染料,搅拌均匀至完全溶解。

2.加入硫酸铜、氯化镁、抗坏血酸、聚乙烯吡咯烷酮、甘油、甲醇和盐酸,
继续搅拌至所有原料完全溶解。

3.将混合液转移至试剂瓶中,密封保存。

4.使用前摇匀染色液。

四、注意事项
1.为确保染色效果,建议将染色液储存在暗处,避免阳光直射。

2.使用过程中应佩戴化学防护眼镜和实验服,防止染色液溅出造成皮肤和衣
物染色。

3.若长时间不使用染色液,建议定期检查其颜色和浓度,以确保其有效性。

微生物基本染色方法

微生物基本染色方法

基本染色方法1.染色准备:染色的第一步是制作涂片。

菌液涂片时,用接种环沾取菌液点在载玻片上,标本可直接在玻片上涂布。

菌落涂片时,先取生理盐水 1滴,置玻片上,用接种针挑取菌落,在盐水中涂布。

涂片时必须注意应轻轻操作。

猛烈的动作会改变菌细胞原有的排列形式,或造成细菌鞭毛脱落,影响结果的准确性。

制备的涂片应自然干燥,并经火焰固定,固定温度不宜过高,以玻片背面接触手背不烫为准,否则可能使细胞形态改变。

将固定后的涂片进行染色。

2.几种基本染色方法2.1 革兰染色本染色是最基本的染色法,可用于标本涂片或菌落涂片。

染色结果将细菌分为革兰阳性(紫色)和革兰阴性(红色)两类。

2.1.1结晶紫溶液A液:结晶紫2g95%乙醇20mlB液:草酸铵0.8g蒸馏水80ml需在用前24h将A液、B液混合,过滤后装入试剂瓶内备用。

2.1.2碘液碘1g碘化钾2g蒸馏水300ml碘与碘化钾混合并研磨,加入几毫升水,使其逐渐溶解,然后研磨,继续加入少量蒸馏水至完全溶解。

最后补足水量。

也可用少量蒸馏水,先将碘化钾完全溶解,再加入碘片,待完全溶解后,加水至300ml。

2.1.3 脱色液:95%乙醇。

2.1.4复染液A. 贮存液:沙黄 2.5g95%乙醇100mlB. 应用液: A液 10ml蒸馏水 90ml2.1.5染色方法:A.涂片经火焰固定,加结晶紫液染30s,清水冲去染液。

B.加碘液染30s,水洗。

C.加脱色液,不时摇动约5~10s,至无紫色脱落为止,水洗。

D.加复染液,染30s,水洗。

E.干后镜检。

3、抗酸染色抗酸染色直接用于痰标本时,可以适当增加标本涂片的厚度,以提高检出率。

染厚涂片时,须掌握复染色时间。

如果背景过深,影响镜检。

奴卡菌及放线菌可呈弱抗酸性,取培养菌落涂片染色时,呈现两种现象,视野中有些菌细胞阳性,另外一些则阴性;有时同一个菌体上,红色的深浅亦有不同,观察时应予注意。

抗酸染色有两种常用方法:①碱性复红法又称萋纳(Ziehl—Neelsen)法(我们使用的方法)。

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微生物染色液配制及染色法
2.1 美蓝染色法2.1.1 吕氏碱性美蓝染色液美蓝0.3g95%乙醇30mL0.01%氢氧化钾溶液100mL 将美蓝溶解于乙醇中,然后与氢氧化钾溶液混合。

2.1.2 染色法将涂片在火焰上固定,待冷。

滴加染液,染1~3min,水洗,待干,镜检。

2.1.3 结果菌体呈蓝色。

2.2 革兰氏染色法2.2.1 结晶紫染色液结晶紫1g95%乙醇20mL1%草酸铵水溶液80mL将结晶紫溶解于乙醇中,然后与草酸铵溶液混合。

2.2.2 革兰氏碘液碘1g碘化钾2g蒸馏水300mL将碘与碘化钾先进行混合,加入蒸馏水少许,充分振摇,待完全溶解后,再加蒸馏水至300mL。

2.2.3 沙黄复染液沙黄0.25g95%乙醇10mL蒸馏水90mL将沙黄溶解于乙醇中,然后用蒸馏水稀释。

2.2.4 染色法2.2.4.1 将涂片在火焰上固定,滴加结晶紫染色液,染1min,水洗。

2.2.4.2 滴加革兰氏碘液,作用1min,水洗。

2.2.4.3 滴加95%乙醇脱色,约30s;或将乙醇滴满整个涂片,立即倾去,再用乙醇滴满整个涂片,脱色10s。

2.2.4.4 水洗,滴加复染液,复染1min。

水洗,待干,镜检。

2.2.5 结果革兰氏阳性菌呈紫色。

革兰氏阴性菌呈红色。

注:亦可用1:10稀释石炭酸复红染色液作复染液,复染时间仅需10s。

2.3 耐酸性染色法(萎-倪二氏法)2.
3.1 石炭酸品红染色液碱性品红0.3g95%乙醇10mL5%酚水溶液90mL将品红溶解于乙醇中,然后与酚溶液混合。

2.3.2 3%盐酸-乙醇浓盐酸3mL95%乙醇97mL2.3.3 复染液吕氏碱性美蓝染色液。

2.3.4 染色法2.3.
4.1 将涂片在火焰上加热固定,滴加石炭酸品红染色液,徐徐加热至有蒸气出现,但切不可使沸腾。

染液如因蒸发减少时,应随时添加。

染5min,倾去染液,水洗。

2.3.4.2 滴加盐酸-乙醇脱色,直至无红色脱落为止(所需时间视涂片厚薄而定,一般为1~3min),水洗。

2.3.4.3 滴加吕氏碱性美蓝染色液,复染30s~1min,水洗,待干,镜检。

2.3.5 结果:耐酸性细菌呈红色,
其他细菌、细胞等物质呈蓝色。

2.4 柯氏染色法2.4.1 染色液2.4.1.1 0.5%沙黄液。

2.4.1.2 0.5%孔雀绿液。

2.4.2 染色法2.4.2.1 将涂片在火焰上固定,滴加0.5%沙黄液,并加热至出现气泡,约2~3min,水洗。

2.4.2.2 滴加0.5%孔雀绿液,复染40~50s。

水洗,待干,镜检。

2.4.3 结果布氏杆菌呈红色,其他细菌及细胞呈绿色。

2.5 奥尔特氏荚膜染色法2.5.1 染色液沙黄3g蒸馏水100mL用乳钵研磨溶解。

2.5.2 染色法将涂片在火焰上固定,滴加染色液,并加热至产生蒸气后,继续染3min。

水洗,待干,镜检。

2.5.3 结果炭疽
芽胞杆菌菌体呈赤褐色,荚膜呈黄色。

2.6 瑞氏染色法2.6.1 染色液瑞氏色素0.1g甲醇60mL用乳钵研磨溶解。

2.6.2 染色法2.6.2.1 涂片待自然干燥后,滴加染色液,固定1min。

2.6.2.2 加入等量蒸馏水(pH6.5),染色3~5min。

2.6.2.3 用
蒸馏水冲洗,待干,镜检。

2.7 鞭毛染色法2.7.1 染色液的配制2.7.1.1 甲液:称丹宁酸5g、氯化高铁(FeCl3)1.5g,溶于100mL 蒸馏水中,待溶解后加入1%的氢氧化钠溶液1mL和15%的甲醛溶液2mL。

2.7.1.2 乙液:称2g硝酸银溶于100mL蒸馏水中。

在90mL乙液中滴加浓氢氧化铵溶液,到出现沉淀后,再滴加使其变为澄清,然后用其余10mL乙液小心滴加至澄清液中,至出现轻微雾状为止(此为关键性操作,应特别小心)。

滴加氢氧化铵和用剩余乙液回滴时,要边滴边充分摇荡,染液当天配,当天使用,2~3d基本无效。

2.7.2 染色法在风干的载玻片上滴加甲液,4~6min后,用蒸馏水轻轻冲净。

再加乙液,缓缓加热至冒汽,维持约半分钟(加热时注意勿使出现干燥面)。

在菌体多的部位可呈深褐色到黑色,停止加热,用水冲净,干后镜检,菌体及鞭毛为深褐色到黑色。

2.8 碱性复红染色法将0.5g碱性复红染料溶解于20mL95%乙醇中,然后用蒸馏水稀释至100mL。

如有不溶物时,可用滤纸过滤,或静置后取上清液备用。

注:本染色液系用于苏云金芽胞内蛋白质毒素结晶的染色,藉以与蜡样芽胞杆菌相区别
实验用染色液及试剂的配制
1.黑色素液水溶性黑素10g,蒸馏水100mL, 甲醛(福尔马林)0.5mL。

可用作荚膜的背景染色。

2.墨汁染色液国产绘图墨汁40mL,甘油2mL,液体石炭酸2mL。

先将墨汁用多层纱布过滤,加甘油混匀后,水浴加热,再加石炭酸搅匀,冷却后备用。

用作荚膜的背景染色。

3.吕氏(Loeffier)美蓝染色液
A 液:美蓝(methylene blue, 又名甲烯蓝)0.3g, 95%乙醇30mL;
B 液:0.0l% KOH l00mL。

混合A 液和B 液即成,用于细菌单染色,可长期保存。

根据需要可配制成稀释美蓝液,按1:10 或
1:100 稀释均可。

4.革兰氏染色液
(1)结晶紫(crystal violet)液:结晶紫乙醇饱和液(结晶紫2g 溶于20mL95%乙醇中)20mL,1%草酸铵
水溶液80mL 将两液混匀置24h 后过滤即成。

此液不易保存,如有沉淀出现,需重新配制。

(2)卢戈(Lugol)氏碘液:碘1g,碘化钾2g,蒸馏水300mL。

先将碘化钾溶于少量蒸馏水中,然后加入碘使之完全溶解,再加蒸馏水至300mL 即成。

配成后贮于棕色瓶内备用,如变为浅黄色即不能使用。

(3)95%乙醇:用于脱色,脱色后可选用以下(4)或(5)的其中一项复染即可。

(4)稀释石炭酸复红溶液:碱性复红乙醇饱和液(碱性复红1g, 95%乙醇l0mL, 5%石炭酸90mL 混合
溶解即成碱性复红乙醇饱和液),取石炭酸复红饱和液l0mL 加蒸馏水90mL 即成。

(5)番红溶液:番红O(safranine,又称沙黄O)2.5g, 95%乙醇100mL,溶解后可贮存于密闭的棕色瓶
中,用时取20mL 与80mL 蒸馏水混匀即可。

以上染液配合使用,可区分出革兰氏染色阳性(G+)或阴性(G-)细菌,G-被染成蓝紫色,G+被染成淡
红色
5. 鞭毛染色液
A液:丹宁酸5.0g, FeCl3 1.5g,15%甲醛(福尔马林)2.0mL,l%NaOH 1.0mL,蒸馏水l00mL;
B 液:AgNO3 2.0g, 蒸馏水100mL。

待AgNO3 溶解后,取出l0mL 备用,向其余的90mLAgNO3 中滴加NH4OH,即可形成很厚的沉淀,继续滴加NH4OH 至沉淀刚刚溶解成为澄清溶液为止,再将备用的AgNO3 慢慢滴入,则溶液出现薄雾,但轻轻摇动后,薄雾状的沉淀又消失,继续滴入AgNO3,直到摇动后仍呈现轻微而稳定的薄雾状沉淀为止,如雾重,说明银盐沉淀出,不宜再用。

通常在配制当天便用,次日效果欠佳,第3 天则不能使用。

6. 0.5%沙黄(Safranine)液:2.5%沙黄乙醇液20mL,蒸馏水80mL。

将2.5%沙黄乙醇液作为母液保
存于不透气的棕色瓶中,使用时再稀释。

7. 5%孔雀绿水溶液:孔雀绿5.0g,蒸馏水100mL。

8. 0.05%碱性复红:碱性复红0.05g,95%乙醇100mL。

9.齐氏(Ziehl)石炭酸复红液:碱性复红0.3g 溶于95%乙醇l0mL 中为A 液:0.01%KOH溶液l00mL
为B 液。

混合A、B 液即成。

10.姬姆萨(Giemsa)染液
(1)贮存液:称取姬姆萨粉0.5g,甘油33mL,甲醇33mL。

先将姬姆萨粉研细,再逐滴加入甘油,继
续研磨,最后加入甲醇,在56℃放置1~24h 后即可使用。

(2)应用液(临用时配制):取1mL 贮存液加19mL pH7.4 磷酸缓冲液即成。

亦可取贮存液:
甲醇=1:4 的比例配制成染色液。

11.乳酸石炭酸棉蓝染色液(用于真菌固定和染色) 石炭酸(结晶酚)20g,乳酸20mL,甘油40mL,棉蓝0.05g,蒸馏水20mL。

将棉蓝溶于蒸馏水中,再加入其他成分,微加热使其溶解,冷却后用。

滴少量染液于真菌涂片上,加上盖玻片即可观察。

霉菌菌丝和孢子均可染成蓝色。

染色后的标本可用树脂封固,
能长期保存。

12. 1%瑞氏(Wright’s)染色液:称取瑞氏染色粉6g,放研钵内磨细,不断滴加甲醇(共600mL)并继续
研磨使溶解。

经过滤后染液须贮存一年以上才可使用,保存时间愈入,则染色色泽愈佳。

13.阿氏(Albert) 异染粒染色液:
A 液:甲苯胺蓝(toluidine blue)0.15g,孔雀绿0.2g,冰醋酸lmL,95%乙醇2mL,蒸馏水100mL;
B 液:碘2g, 碘化钾3g,蒸馏水300ml。

先用A 液染色1min,倾去A 液后,用B 液冲去A 液,并染1min。

异染粒呈黑色,其他部分为暗
绿或浅绿。

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