Cisbio成功开发出”一步法”定量检测人血清白蛋白(Albumin)
茜素红S标记分光光度法测定微量人血清白蛋白
茜素红S标记分光光度法测定微量人血清白蛋白赵丹华【摘要】研究有机染料茜素红S（alizarin red S，ARS）与牛血清白蛋白（bovine serum albumin，BSA）、人血清白蛋白（human serum albumin，HSA）的结合反应，选择实验的最佳条件：PH=5．10的B—R缓冲溶液3．00mL，4．00mL5．0×10-4mol／L茜素红S溶液．反应20min后，体系的吸光度很稳定，在入λ=420nm处有最大吸收峰，并且随着牛血清白蛋白（BSA），人血清白蛋白（HSA）的加入，茜素红S的吸收峰下降．因此以茜素红S为标记物，根据其在波长420nm处吸收峰下降的程度，可用于定量测定BSA和HSA．测量BSA的线性响应范围为0～32．0μg／mL，相关系数为0．9987，测量BSA的线性响应范围为0～28．0μg／mL，相关系数为0．9968．该方法具有较高的灵敏度和选择性，用于实际试样分析，实验结果令人满意．%The protein is a kind of important biological macromolecules in the human body. It is not merely very important and essential for maintaining the life. A acidic dye has been applied to the assay of proteins in the fields of medicine and life science. The reactions of human serum albumen （HSA） and bovine serum albumen （BSA） with alizarin red have been studied. Both BSA and HSA can form orange complexes, which decrease the absorbance. The optimum conditions of complex reactions of a new chromogenic reagent alizarin red with BSA and HSA was studied. The method was used in the photometric determination of BSA and HSA. In a buffer medium of pH 5.10, alizarin red reacts with BSA and HSA to form a complex having its absorption maxima at 420nm and the reactionssteady with 80 rain. Beefs law is obeyed in the concentration in the range of 0-32.0 μg/mL（r=0. 998 7） for BSA and 0-28.0μg/mL（r= 0. 996 8） for HSA. The BSA and HSA in human serum samples were determined, and the result is satisfactory.【期刊名称】《广东第二师范学院学报》【年(卷),期】2011(031)005【总页数】5页(P51-55)【关键词】茜素红S;牛血清白蛋白;人血清白蛋白;分光光度法【作者】赵丹华【作者单位】广东第二师范学院化学系,广东广州510303【正文语种】中文【中图分类】O657.32人体血液中的白蛋白是形成血浆渗透压的主要成分，它在维持体液的正常分布，保持血容量及血压等方面起着重要作用.同时，血浆白蛋白对人体具有营养作用.现已报道将它作为人体营养健康、疾病诊断和疗效观察的重要指标［1］.测定研究血浆中白蛋白的含量，可对人体健康和生命科学的研究提供重要的科学依据.蛋白质含量的测定方法很多，有荧光光度法［2］以及近年来新兴的共振光散射法［3］、分光光度法［4］等.目前，研究测定核酸较灵敏和较常用的手段是荧光光谱法.由于DNA内源荧光很弱，直接用其天然荧光来测定DNA受到了限制.共振光散射（RLS）法近年来得到了广泛的研究与应用.童沈阳等［5］首次将其作为一种新的高灵敏度方法应用于核酸的测定.肖锡林等［6］建立了纳克级核酸的分析方法.其中染料结合分光光度法具有简便、快速、经济、准确的特点，因而在蛋白质的定量分析中较为常用.近年来，利用某些染料作为标记物，如：乙基紫［7］、维多利亚蓝B［8］等测定DNA，取得了较好的效果.如维多利亚蓝的灵敏度高，反应快速，操作简便，是目前测定DNA较好的方法.茜素红S是由天然产物中提出的有机物质，其作为光谱探针与生物大分子作用的研究和应用中发现在一定的条件下，茜素红S能与生物大分子在一定的部位结合，生成复合物.本文采用分光光度法研究了以茜素红S作为标记物与牛血清白蛋白、人血清白蛋白的结合反应，发现在3.00 m L p H＝5.10的B-R缓冲溶液中，取5.00 m L 2.0×10-4 mol／L茜素红S，以二次蒸馏水作为参比溶液，随着BSA、HSA浓度的增加，在420 nm处有最大吸收峰，据此建立了一种测定BSA、HSA 的新方法.该方法操作简便，灵敏度高，选择性较好，用于实际样品分析，结果令人满意.仪器：721型可见分光光度计（上海光谱仪器有限公司）；半自动电光分析天平（上海第二分析仪器厂）；p HS-3C型酸度计（上海第二分析仪器厂）；TU-1901双光束紫外可见分光光度计（北京普析通用仪器有限公司）.试剂：牛血清白蛋白溶液（BSA上海生物化学试剂公司）、人血清白蛋白（HSA上海文化科技有限公司）各100μg／m L的溶液；5.0×10-4 mol／L的茜素红S （分析纯）溶液；Britton-Robinson（B-R）缓冲溶液.所用其他试剂均为分析纯，实验用水为二次去离子水.于25 m L比色管中依次加入p H＝5.10的3.00 m L B-R缓冲溶液，4.00 m L 5.0×10-4 mol／L茜素红S，一定量的标准BSA溶液，稀释至刻度，静置20 min，于λ＝420 nm处读取吸光度A值；不加入BSA，按上述步骤做空白，测定吸光度A 0值.以二次去离子水作为参比溶液，测定吸光度值.令ΔA＝A 0-A，以ΔA作为测定BSA的信号响应.在选定的B-R缓冲溶液（p H＝5.10）的体系中，茜素红S与BSA相互作用，其UV-Vis光谱见图1.由图1可知，BSA溶液和茜素红S在420 nm处有最大吸收峰，且由于茜素红S与BSA的相互作用，导致体系吸光度发生变化，即随BSA浓度的增加，体系的吸光度显著下降，并且在420 nm处吸收峰的灵敏度最大.所以本文选择420 nm作为测定波长.2.2.1 最佳p H值的选择用不同PH值的B-R缓冲溶液作酸度影响实验，在B-R缓冲介质中不同p H值对体系复合物的影响.按照实验方法取4.00 m L 5.0×10-4 mol／L茜素红S；1.00 m L 100.0μg／m L BSA；3.00 m L B-R缓冲溶液.结果表明，当p H＝5.10时，体系的吸光度ΔA变化最大且最稳定，实验选择p H＝5.10的B-R缓冲溶液作为最佳酸度.2.2.2 茜素红S用量的选择在p H 5.10的B-R介质中，室温条件下研究了茜素红S的用量对实验的影响，实验表明，随着茜素红S用量的增加ΔA先变大后变小.当茜素红S的用量为4.00 m L时，ΔA最大，且体系稳定性好，本实验选择茜素红S用量为4.00 m L.2.2.3 缓冲溶液用量的选择在4.00 m L 5.0×10-4 mol／L茜素红S，p H 5.10的B-R介质中，在室温条件下研究了缓冲溶液的用量对实验的影响，结果表明，当缓冲溶液用量为3.00 m L 时，ΔA最大且比较稳定.本实验选择缓冲溶液用量为3.00 m L.2.2.4 放置时间选择在p H 5.10的B-R介质中，在室温条件下研究了时间对反应的影响，实验结果（如图2）表明该体系的反应速度很快，20 min后ΔA可达到稳定，并在80 min 内ΔA不变，本实验选择20 min后测定体系吸光度.2.2.5 工作曲线的绘制在确定的最佳实验条件下，改变BSA、HSA的加入量，绘制测定BSA、HSA的工作曲线，当BSA、HSA的浓度分别为在0～32.0μg／m L、0～28.0μg／m L时，体系的吸光度与BSA、HSA浓度呈良好的线性关系.其线性回归方程及相关系数分别为A＝0.372-0.006C，r＝0.9987和A＝0.373-0.005C，r＝0.9968.本实验具有较宽的线性范围，用BSA作为标准蛋白质的代用标准进行人血清白蛋白的测定.2.2.6 其他物质的干扰在确定的最佳实验条件下，当体系中含有12.0μg／m L蛋白质时，研究了各种金属离子、蛋白质及氨基酸等干扰因素对测定准确性的影响，结果见表1.试验结果表明，各种常见金属离子、及氨基酸等对BSA的测定基本没有影响.2.2.7 温度的影响由于高温下BSA、HSA会变性，所以本实验只讨论了10～40℃范围内BSA、HSA与茜素红S的反应，结果表明，在室温范围内ΔA很稳定，本实验可在室温下进行.在确定的最佳实验条件下，对人血清样品（淮北市人民医院提供）总蛋白量进行测定，获得较好的结果.结果见表2.基于茜素红S与BSA、HSA结合形成有色化合物而建立一种测定蛋白质含量的新方法，在BSA和HSA浓度分别为0～32.0μg／m L和0～28.0μg／m L内，吸光值与BSA、HSA的浓度呈良好的线性关系，该方法用于实际样品的测定，结果令人满意.【相关文献】［1］杨忠东，郭伟明，沈菲，等.检测人血清白蛋白制品中微量铝荧光分析法的建立［J］.中国生物制药品杂志，2004，17（5）：316-317.［2］宋功武，成耀鹏，何治柯，等.小蘖碱与核酸作用荧光光谱及其分析应用［J］.分析化学，1999，27（1）：44-46.［3］达毛拉·杰力里，黄承志.酚藏花红与DNA作用的共振光散射特征及微量DNA的光散射测定［J］.分析化学，1999，10（27）：1204-1207.［4］胡秋娈，李克安，童沈阳，等.氟磺酸酚与蛋白质作用的分光光度研究［J］.分析化学，1999，27（2）：166-169.［5］迟燕华，李克安，童沈阳.以锌试剂显色法测定蛋白质的研究［J］.高等学校化学学报，1998，19（6）：879-991.［6］肖锡林，王永生，李贵荣，等.甲基胺蓝共振光散射法测定纳克级脱氧核糖核酸［J］.光谱学与光谱分析，2004，2（24）：190-193.［7］李天剑，沈含熙，罗云敬.乙基紫分光光度法测定脱氧核糖核酸［J］.分析化学，1998，11（26）：1372-1375.［8］苏界殊，龙云飞，郑峰.维多利亚蓝B标记分光光度法测定DNA［J］.光谱实验室，2003，20（6）：894-896.。
血清Western Blot去除白蛋白(Albumin)
血清Western Blot去除白蛋白(Albumin)应用Western Blotting的方法检测血清中某种蛋白的含量是,最关键的问题是要将血清做怎样的电泳前处理.一般的处理方式:1.常规分离血清,即取血后常温放置,使其凝固,然后3000 rpm 15 min离心,取上清即可。
2.测血清蛋白浓度。
3.用Laemmli buffer（蛋白裂解液）稀释至所需浓度，我一般为5ug/ul.4.加入适量loading buffer，100℃煮5分钟。
注意：有时会出现水煮后，蛋白液变得非常粘稠，这时可以在65℃煮10-20 minutes以替代沸水煮。
PS：对于目标蛋白在血清中含量很低，或者目标蛋白分子量与白蛋白或球蛋白分子量相近的情况下，必烦要去除血清中的白蛋白和/或球蛋白，以下是知名厂商G-Biosciences提供的试剂盒，使用较为简便，同时价格也不贵哦。
美国G-Biosciences-AlbuminOUT™白蛋白去除试剂盒血浆和脑脊髓液等样本中，包含大量的白蛋白，从而封闭掉在二维凝胶电泳中发现和鉴定其他低丰度蛋白的可能。
AlbuminOUT™白蛋白去除试剂盒被设计用来在这种样本中大量去除白蛋白。
这种白蛋白去除方法是基于白蛋白和Cibachron蓝色染料的结合。
AlbuminOUT™被优化从样本中去除人的白蛋白。
AlbuminOUT™使用快速离心柱方法，每个柱子含有0.2ml的染料结合树脂，从而可以结合大于2mg的人白蛋白。
AlbuminOUT™可以从5-50微升人血浆中去除大于98%的白蛋白。
离心柱形式可以在10分钟内去除白蛋白。
高结合力的蓝色染料结合树脂可以从人，猪，羊，狗，兔，大鼠和牛样本中达到瞬间的结合和去除白蛋白。
AlbuminOUT™或许也可以从其他物种中去除白蛋白。
适用于处理25或50个样本。
Figure 1: 2D analysis of whole human serum before (left) and after(right) treatment with AlbminOUT™.产品特点：●从样本中不到10分钟的时间内去除白蛋白●基于白蛋白和Cibachron蓝色染料的结合●每个柱子的结合力大于2mg的人白蛋白●从5-50微升人血浆中去除大于98%的白蛋白应用：从生物学样本比如血浆和脑脊髓液中去除白蛋白产品信息：产品货号产品名称包装786-251 AlbuminOUT™白蛋白去除试剂盒25 Preps 786-251T AlbuminOUT™白蛋白去除试剂盒 4 Preps 786-252 AlbuminOUT™白蛋白去除试剂盒50 Preps。
临床生化检验：3-血清白蛋白测定(溴甲酚绿法)
试剂与器材
R试剂: pH4.15琥珀酸缓冲液 2.4g/L聚氧乙烯十二烷基醚（Brij-35） 溴甲酚绿（BCG） 白蛋白标准液（28g/L） 分光光度计 水浴锅 病人血清
2012春季学期
样品要求
血清，采血后及时分离，避免溶血，血清在2～ 8℃稳定3天。
2012春季学期
操作步骤
取3支试管做好标记，按下表操作：
加入物
血清 蛋白标准液 蒸馏水 R试剂
B
21μl 3ml
S
21μl
3ml
U
21μl 3ml
混匀，37℃孵育1分钟后，在波长630nm处，以B管调零，读取各 管吸光度A。
2012春季学期
数据处理计算
管号 S U
/ L 28 A u As
平均A值
2012春季学期
技术指标
线性范围：5～80g/L,r≥0.99。 精密度：批内CV≤4.0%，批间相对极差＜5%。 准确度：相对误差≤10%。 空白吸光度变化率：波长630nm，光径10mm， 测得试剂吸光度变化率△A/min≤0.5。
2012春季学期
注意事项
1．BCG是一种pH指示剂，变色域为PH3.8（显黄色）～5.4（显蓝绿色 ），因此控制反应液的pH是本法测定的关键。 2．配制BCG试剂也可用其他缓冲液如枸椽酸盐或乳酸盐缓冲液。但以 琥珀酸缓冲液的校正曲线通过原点，线性好，灵敏度高，成为首选推荐 配方。
2012春季学期
血清白蛋白测定（溴甲 酚绿法）
医学检验系临床生化检验教研室
白蛋白生化特性
血清白蛋白（Albumin,Alb） pI4.7 正常人血清Alb含量为35～55g/L,占血浆蛋白的 50%～60%。 生理功能：营养价值
血清白蛋白测定及紫外分光光度计的使用
四、临床意义：
• 1、白蛋白/球蛋白=1.5~2.5/1，通过
计算其比值可以判定肝脏的功能情况； • 2、白蛋白降低，其比值降低或倒置： 慢性肝炎（肝细胞功能降低）、肝硬 化（肝细胞坏死、肝腹水）； • 3、球蛋白大量降低：机体免疫功能降 低。
五、方法学评价
1、操作简单、快速，受干扰因素小 2、线性范围：10～60g/L, 3、RCV＜4%（批内重复测定变异系数） 4、白蛋白的测定方法：有色氨酸含量法、 燃料结合法、电泳法、免疫化学法和电化 学测定法。
10 10
于空白管中加入蒸馏水10 μl，各管充分混匀。
2、分光光度计测定方法：波长620nm， 空白管调零，测定标准管和测定管吸光度 值，按公式计算测定结果。
计算公式：
A样 Байду номын сангаас样 C标 A标
（40g/L）
三、参考值：
总蛋白：62~82 g/L 白蛋白：35~55g/L 球蛋白：20~30 g/L 白蛋白/球蛋白=1.5~2.5/1
六、注意事项
1、应保持PH为3.8 2、BCG与多种蛋白呈颜色反应，及与a-球 蛋白、运铁蛋白、结合珠蛋白结合显色， 但血清中BCG在30秒内与白蛋白的反应最 快，且呈主导地位 3、实验小组分批间隔保温。
溴甲酚绿（BCG）与血清蛋白呈非特异性反 应，但是在反应的30秒钟内溴甲酚绿（BCG）与 白蛋白结合形成蓝色复合物呈特异性反应。因此 反应结束后应立刻比色测取吸光度。
二、测定方法
1、加样： 试管三只
试剂
空白管（B） 标准管（C） 测定管（U） 工作试剂（ml） 2 2 2
标 准 液（μl） 样 品（μl）
血清白蛋白（ALB）的测定 (Assays for Serum Albumin) （溴甲酚绿染色法）
安博灵(人血白蛋白)
【安博灵药物过量】 剂量过大或输注速率过快可能发生循环血容量过多。 一旦出现心血管超负荷的早期临床症状 （头痛、呼吸困难、颈静脉充血） ，或者血压升高、中心静脉压升高和肺水肿时，必须立即 停止输注并仔细监测病人的血液动力学指标。
人血白蛋白价格问题，为什么这么贵？
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价格、优惠
安博灵人血白蛋白主要用于那些疾病的治疗？
【安博灵人血白蛋白适应症】
1.失血创伤、烧伤引起的休克产生的低血容量。 2.脑水肿及损伤引起的颅压升高。 3.肝硬化及肾病引起的水肿或腹水（尤其适用于不能使用 常规脱水剂或者使用常规脱水剂后症状不能减轻的患者）。 4.低蛋白血症的防治（病因：1、营养不良；2、异常丢失， 比如肾病，烧伤；3、某些严重，危及的疾病比如严重创 伤，严重感染，蛋白都从血管跑到组织里了；4、肝功能 异常等。） 5.新生儿高胆红素血症。 6.用于心肺分流术、烧伤的辅助治疗、血液透析的辅助治 疗和成人呼吸窘迫综合征。
1、人血白蛋白必须避光贮藏，温度不超过25℃。不可冰冻。 一旦发现如出现混浊有沉淀，这表明溶液里的蛋白质不稳定或 溶液已被污染，则不能再用。
2、人血白蛋白是玻璃瓶包装，属于易碎品，因此如果瓶子 有裂纹、瓶盖松动、过期失效等情况，就千万不能够使用。
3人血白蛋白开启后，应一次输注完毕，不得分次或给第二 人输用； 4输注过程中如过患者感到有不适反应，应立即通知医生停 止输用； 5有明显脱水者应同时补液； 6.人血白蛋白不能与血管收缩药合用；但可与葡萄糖注射液 或盐水合用。肾病患者使用人血白蛋白时不宜用生理盐水稀释。
药师温馨提示
【安博灵人血白蛋白使用禁忌】
对白蛋白有严重过敏者禁止使用人血白蛋白治疗。
【以下患者使用要格外小心】
临床医学检验临床免疫：免疫标记技术(题库版)
临床医学检验临床免疫：免疫标记技术（题库版）1、单选分离结合态与游离态放射性标记抗原不完全时会增加（）A.特异性结合量B.非特异性结合量C.敏感度D.精确度E.反应速率正确答案：B2、单选要定量检（江南博哥）测人血清中的生长激素，采用的最佳免疫检测法是（）A.免疫荧光法B.免疫酶标记法C.细胞毒试验D.放射免疫测定法E.补体结合试验正确答案：D3、单选瑞典科学家A．Tiselius首先利用U形管建立移界电泳法的时间是（）A.1920年B.1930年C.1937年D.1940年E.1948年正确答案：C4、单选在ELISA中，不是ELISA的反应过程，但却是决定试验成败的关键的是（）A.温育B.洗涤C.加样D.结果判断E.做阴阳性对照正确答案：B5、单项选择题钩状效应是指用ELISA一步法测定标本中待测抗原时，抗原浓度过（），实测值偏（）的现象，极易造成假阴性。
A.低，高B.高，高C.高，低D.低，低E.高，不变正确答案：C6、单选荧光寿命指的是（）A.荧光物质被一瞬时光脉冲激发后产生的荧光随时间而衰减到一定程度所用的时间B.荧光物质被一瞬时光脉冲激发后产生的荧光随时间而增强到一定程度所用的时间C.非荧光物质被一瞬时光脉冲激发后产生的荧光随时间而衰减到一定程度所用的时间D.非荧光物质被一瞬时光脉冲激发后产生的荧光随时间而增强到一定程度所用的时间E.以上都不是正确答案：A7、单选下列有关血清中酶活力测定的说法有误的是（）A.可测定底物消耗量B.可测定产物生成量C.需最适pHD.需最适温度E.与底物浓度无关正确答案：E8、单选传统的单向电泳方法最多只能分析的蛋白质种数是（）A.50B.100C.150D.200E.250 正确答案：B9、单选要使荧光强度与荧光物质的浓度成正比，应使（）A.激发光必须很强B.样品浓度应适中C.待测物吸光系数必须很大D.光源与检测器应与样品在同一线上E.液槽厚度要足够厚正确答案：B参考解析：要使荧光强度与荧光物质的浓度成正比，应使样品的浓度适中。
血清清蛋白和球蛋白测定方法及临床意义
血清清蛋白和球蛋白测定方法及临床意义血清清蛋白1.测定方法溴甲酚绿法（BCG法）：溴甲酚绿是一种阴离子染料，在pH4.2的缓冲液中，与白蛋白结合成复合物，溶液由未结合前的黄色变成蓝绿色，在628nm波长的吸光度与白蛋白浓度成正比，经与同样处理的白蛋白标准液比较，即可求得白蛋白的含量。
2.临床意义（1）清蛋白浓度增高：除严重脱水，血浆浓缩而使清蛋白增高外，尚未发现单纯清蛋白浓度增高的疾病。
（2）清蛋白浓度降低：同总蛋白浓度降低医`学教育网搜集整理。
球蛋白的含量及白蛋白与球蛋白的比例1.球蛋白的含量是通过血清总蛋白测定值减去血清清蛋白测值计算出的。
2.临床意义（1）球蛋白浓度增高：临床上球蛋白增高多见于炎症、免疫系统疾病和肿瘤。
1）细菌、病毒、寄生虫引起的急慢性感染：结核病、麻风病、疟疾、黑热病、血吸虫病、病毒性肝炎。
2）自身免疫性疾病：系统性红斑狼疮、硬皮病、风湿热、类风湿性关节炎等。
3）多发性骨髓瘤和淋巴瘤：多发性骨髓瘤是一种单克隆疾病，它是由浆细胞恶性增殖造成的异常高的单一Ig（多见于IgA或IgG0）血症。
淋巴瘤也属单克隆疾病。
（2）球蛋白浓度降低：见于血液稀释、严重的营养不良、胃肠道疾病等。
3.清蛋白与球蛋白比值（A／G比值）A／G比值反映了清蛋白与球蛋白浓度变化的关系。
正常A／G比值为1～2／1.临床上常用A／G比值来衡量肝脏疾病的严重程度，当A／G比值小于1时，称比值倒置，为慢性肝炎或肝硬化的特征之一。
白蛋白的作用为：1.增加血容量和维持血浆胶体渗透压：白蛋白占血浆胶体渗透压的80%，主要调节组织与血管之间水分的动态平衡。
由于白蛋白分子量较高，与盐类及水分相比，透过膜内速度较慢，使白蛋白的胶体渗透压与毛细管的静力压抗衡，以此维持正常与恒定的血容量；同时在血循环中，1g白蛋白可保留18ml水，每5g白蛋白保留循环内水分的能力约相当于100ml血浆或200ml全血的功能，从而起到增加循环血容量和维持血浆胶体渗透压的作用。
人(Human)白蛋白(Albumin)ELISA试剂盒
本试剂盒只能用于科学研究，不得用于医学诊断人（Human）白蛋白（Albumin）ELISA检测试剂盒使用说明书检测原理试剂盒采用双抗体一步夹心法酶联免疫吸附试验（ELISA）。
往预先包被白蛋白（Albumin）抗体的包被微孔中，依次加入标本、标准品、HRP标记的检测抗体，经过温育并彻底洗涤。
用底物TMB显色，TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。
颜色的深浅和样品中的白蛋白（Albumin）呈正相关。
用酶标仪在450nm波长下测定吸光度（OD值），计算样品浓度。
样品收集、处理及保存方法1.血清：使用不含热原和内毒素的试管，操作过程中避免任何细胞刺激，收集血液后，3000转离心10分钟将血清和红细胞迅速小心地分离。
2.血浆：EDTA、柠檬酸盐或肝素抗凝。
3000转离心30分钟取上清。
3.细胞上清液：3000转离心10分钟去除颗粒和聚合物。
4.组织匀浆：将组织加入适量生理盐水捣碎。
3000转离心10分钟取上清。
5.保存：如果样本收集后不及时检测，请按一次用量分装，冻存于-20℃，避免反复冻融，在室温下解冻并确保样品均匀地充分解冻。
自备物品1.酶标仪（450nm）2.高精度加样器及枪头：0.5-10uL、2-20uL、20-200uL、200-1000uL3.37℃恒温箱操作注意事项1.试剂盒保存在2-8℃，使用前室温平衡20分钟。
从冰箱取出的浓缩洗涤液会有结晶，这属于正常现象，水浴加热使结晶完全溶解后再使用。
2.实验中不用的板条应立即放回自封袋中，密封（低温干燥）保存。
3.浓度为0的S0号标准品即可视为阴性对照或者空白；按照说明书操作时样本已经稀释5倍，最终结果乘以5才是样本实际浓度。
4.严格按照说明书中标明的时间、加液量及顺序进行温育操作。
5.所有液体组分使用前充分摇匀。
上海笃玛生物科技有限公司试剂盒组成名称96孔配置48孔配置备注微孔酶标板12孔×8条12孔×4条无标准品0.3mL*6管0.3mL*6管无样本稀释液6mL3mL无检测抗体-HRP10mL5mL无20×洗涤缓冲液25mL15mL按说明书进行稀释底物A6mL3mL无底物B6mL3mL无终止液6mL3mL无封板膜2张2张无说明书1份1份无自封袋1个1个无注：标准品（S0-S5）浓度依次为：0、15、30、60、120、240ng/mL试剂的准备20×洗涤缓冲液的稀释：蒸馏水按1：20稀释，即1份的20×洗涤缓冲液加19份的蒸馏水。
人血清白蛋白质量要求
人血清白蛋白质量要求
人血清白蛋白（human serum albumin，简称HSA）是一种重要的血浆蛋白，具有多种生理功能。
在医学和生物科学领域，HSA的质量要求非常高，因为其用途广泛且直接关系到人体的健康和疾病诊断。
以下是人血清白蛋白质量要求的一些方面：
纯度：人血清白蛋白应具有高纯度，即在样品中含有较少的杂质。
高纯度的白蛋白可以减少其他物质对实验结果的干扰，并确保其在药物研发、疫苗制备等应用中的有效性和安全性。
活性和功能：人血清白蛋白应具备正常的生物活性和功能。
它在维持渗透压、输送营养物质、调节体液平衡等方面起着重要作用。
因此，血清白蛋白的质量要求包括保持其结构完整性和生物活性。
纯度检测：为了确保白蛋白的质量，常常需要对其进行纯度检测。
常见的检测方法包括聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）、高效液相色谱（HPLC）、质谱等。
这些方法可以用来确定白蛋白的分子量、纯度和存在的杂质。
无致病性：人血清白蛋白作为临床和生物制品的原料，必须符合无致病性的要求。
这意味着它必须经过严格的筛选和检测，确保不含任何潜在的病原体、毒素或污染物。
规定的生产标准：人血清白蛋白的生产通常受到一系列规定和标准的监管，如药典规定、国家法规等。
这些标准包括对原料来源、生产过程、质量控制和批次记录等方面的要求，以确保产品的一致性和可追溯性。
人血清白蛋白纯化技术研究进展
人血清白蛋白纯化技术研究进展人血清白蛋白（Human serum albumin，HSA）是一种重要的生物医学制剂和临床药物载体材料，已广泛应用于治疗领域。
为了获得高纯度的HSA，研究者们一直在不断探索和改进人血清白蛋白的纯化技术。
早期的HSA纯化技术主要依赖于血浆的分离和凝集法，如冷沉淀法、聚合物吸附法、直接提取法等。
然而，这些方法存在操作复杂、纯度低和净化效率低等问题。
随着生物技术和分离纯化技术的发展，越来越多的新技术被应用于HSA的纯化过程。
以下是一些研究进展的概述。
亲和层析技术是最常用的HSA纯化方法之一、亲和层析技术利用HSA 与特定配体的高亲和力进行结合，然后通过洗脱来分离HSA。
常用的配体有疏水性配体（如脂肪酸和硫醇）、金属离子配体（如硫氰酸盐和8-氨基喹啉）等。
该技术具有操作简单、纯度高和净化效率高的优点，但成本较高。
离子交换层析技术是另一种常用的HSA纯化方法。
离子交换层析技术利用HSA带有的负电性与正电性离子交换树脂之间产生静电吸附而实现分离纯化。
动态调整pH值和离子浓度可以控制吸附和洗脱过程。
该技术适用于大规模生产，但纯化效率相对较低。
凝胶过滤层析技术是一种基于颗粒大小分离的技术。
这种技术通过选择性排除比HSA分子大的组分，实现纯化的目的。
凝胶过滤层析技术简单易行，可用于样品的初步纯化和浓缩。
另外，有学者探索了大孔树脂吸附和反应表面吸附等技术在HSA纯化中的应用。
此外，高效液相色谱、超滤、超声波辅助技术和基于蓝藻细胞表面展示技术等新技术也被尝试用于HSA的纯化过程。
总的来说，人血清白蛋白的纯化技术一直在不断发展和改进。
上述提到的技术只是其中的一部分，随着科学技术的进步和对HSA纯化需求的日益增长，我们可以预见将会有更多新的技术被应用于HSA的纯化过程，从而推动临床应用中HSA的质量和效果不断提高。
人血白蛋白的使用流程解
人血白蛋白的使用流程解人血白蛋白（Human Serum Albumin）是一种天然存在于人体血液中的蛋白质，具有重要的生理和药理作用。
它主要由肝脏合成，可以与细胞外液中的毒素结合，并参与多种生化反应，调节血液渗透压和血流动力学等生理过程。
因此，人血白蛋白被广泛应用于临床医学中。
二、人血白蛋白的生产过程1.供血者筛选：供血者应符合一定的身体健康条件，年龄在18至60岁之间，无严重疾病史和传染性疾病的感染风险。
同时，供血者的血液会进行检测，确保不含有常见传染病的病原体。
2.血浆采集：采用提供封闭系统的无菌采集方法，将供血者的血液抽取一定量，多次采集累加形成的总采集量构成一批血浆。
3.血浆检测：对采集的血浆进行详细的实验室检测，包括传染病标志物、肝功能指标和血浆蛋白质含量等。
4.病毒灭活：经过初步处理的血浆进行病毒灭活处理，以杀死可能存在的病毒。
5.血浆分离：将经过病毒灭活的血浆进行离心分离，去除其中的红细胞、血小板和白细胞，得到血浆上清液。
6.纯化过程：通过离心、过滤、柱层析和再离心等步骤，将血浆上清液中的人血白蛋白纯化出来。
7.检测和质量控制：对纯化后的血浆进行质量检测，确保符合药品规范。
8.冻干和包装：将纯化后的人血白蛋白通过冻干工艺处理，使其适合长时间保存和运输，最终进行包装。
三、人血白蛋白的应用1.补充血容量：临床上常用人血白蛋白作为补充血容量的解决方案之一、例如，在大出血、休克、烧伤等情况下，血浆蛋白质流失严重，使用人血白蛋白可以有效增加血容量，维持血液循环稳定。
2.营养支持：人血白蛋白还可以提供营养成分，满足机体的营养需求。
在肠功能不良、肠系膜血管阻断等情况下，口服摄入营养物质困难，可以通过静脉输注人血白蛋白来实现营养支持。
3.药物运载：人血白蛋白具有较强的药物结合能力，可以为一些药物提供稳定的运载介质。
通过结合人血白蛋白，药物的生物利用度可以提高，疗效也可以得到增强。
人血白蛋白还可以阻止药物的早期代谢，延长其作用时间。
白蛋白检测操作程序
白蛋白检测操作程序白蛋白（albumin ，ALB ）是一种仅含有氨基酸的单纯蛋白质,在血浆中发挥多种生理功能。
溶于水和中性盐，易与阴离子染料结合，故本试验采用溴甲酚绿（阴离子染料）法测定,在反应中加入丁二酸缓冲液能够避免溶液混浊，降低空白吸光度。
主要用于肝、肾等疾病的诊断。
实验原理在pH4.2条件下，白蛋白与溴甲酚绿结合形成蓝绿色结合物,蓝绿色结合物与样本中白蛋白浓度成正比,在630nm 处测定吸光度值，即可求得样本中白蛋白的浓度。
试剂与仪器1. 试剂1.1. 白蛋白试剂盒（由上海复兴长征医学科学有限公司提供）化学组成：溴甲酚绿0.35mmol/L 丁二酸缓冲液50mmol/L工作参数：在开展项目之前或更换试剂品牌时，将以上工作参数输入到仪器内，并按要求进行调整后，方可进行实验。
技术性能指标:试剂空白起始吸光度（630nm37℃）≤0.20A 。
线性范围：50g/L ±10%。
准确度：相对偏差(RE%)≤±10%。
精密度：批内精密度变异系数(CV%)≤5%；批间精密度相对极差(%)≤5%。
储存条件、有效期：储存于2～25℃，避光可稳定18个月。
以蒸馏水为空白在630nm 处光吸收值高于0.3A时，则不能使用。
计算公式： 白蛋白深度(g/L )= ×校准液浓度(g/L )样品管吸光度校准管吸光度以上是依据化学实验计算测试结果的公式，全自动分析时将校准液浓度值（Conc值）输入仪器即可。
1.2. 英国郎道（RANDOX）质控品，每次采用正常和异常两个水平，并参照质控品测试要求进行。
1.3. 校准液2. 仪器采用日立（HITACHI）7060型全自动生化分析仪。
选择波长340-800nm之间，能对终点、速率、两点、免疫比浊等方法的实验进行测定。
标本测定程序1. 开机：开机前要加清洗液、上打印纸、接蒸馏水等。
然后打开电源及中文计算机信息管理系统。
2. 试剂准备：开机后将所需试剂置于试剂盘相应位置。
人白蛋白基因名称
人白蛋白基因名称人白蛋白基因（human albumin gene）是指编码人体内白蛋白的基因。
白蛋白是一种重要的血浆蛋白，它在人体内具有多种功能，包括维持血浆渗透压、运输物质、调节免疫反应等。
人白蛋白基因的研究对于理解白蛋白的生物学功能和相关疾病具有重要意义。
人白蛋白基因位于人类染色体4上的长臂（4q11-q13），由15个外显子和14个内含子组成。
该基因的长度约为16.7 kb，编码一种包含585个氨基酸的白蛋白前体蛋白。
白蛋白是一种高度保守的蛋白质，其编码基因在不同物种中具有高度同源性。
人白蛋白基因的启动子区域包含一些重要的顺式作用元件，如TATA 和CAAT盒。
这些序列可以与转录因子结合，调控基因的转录活性。
在转录过程中，启动子区域的甲基化和组蛋白修饰等也起到重要的调控作用。
人白蛋白基因的转录后修饰是其功能多样性的重要来源。
转录后修饰包括信号肽的剪切、N-糖基化、羟基化和硫酸化等。
这些修饰可以影响白蛋白的稳定性、分泌和功能。
值得一提的是，白蛋白在肝脏中合成并经过严格的质量控制，确保其结构和功能的完整性。
人白蛋白基因具有广泛的表达谱，主要在肝脏中高表达，但也在其他组织和器官中有低水平的表达。
这种组织特异性表达与白蛋白的功能有关。
肝脏是白蛋白合成的主要器官，白蛋白通过肝脏细胞的内质网系统合成，并经过高度调控的分泌过程释放到血液中。
其他组织和器官中的白蛋白可能起到特定的局部功能。
人白蛋白基因的突变与一些遗传性疾病的发生相关。
例如，突变导致白蛋白合成异常可以引起先天性白蛋白缺乏症，这是一种罕见的遗传性疾病。
此外，白蛋白基因的多态性也与个体对药物的反应和药物代谢有关。
一些单核苷酸多态性（SNP）位点可能影响白蛋白的结构和功能，从而影响其对药物的结合和运输。
近年来，人白蛋白基因的研究也涉及到基因工程领域。
通过重组DNA技术，科学家可以将人白蛋白基因导入其他生物体内，使其产生大量白蛋白。
这对于白蛋白的制备和临床应用具有重要意义。
血清清蛋白测定方法
血清清蛋白测定方法血清清蛋白（serum albumin，SA）是人体血浆中含量最丰富的蛋白质，它在维持血浆渗透压、调节血液的黏稠度和酸碱平衡等方面起着重要作用。
因此，准确测定血清清蛋白的含量对于临床诊断和治疗具有重要意义。
本文将介绍几种常用的血清清蛋白测定方法，希望能为相关研究和临床实践提供参考。
一、免疫比浊法。
免疫比浊法是常用的血清清蛋白测定方法之一，其原理是利用血清清蛋白与特定抗体结合后形成免疫复合物，从而使溶液浑浊度增加。
通过测定浑浊度的变化来计算血清清蛋白的含量。
该方法操作简便，结果准确可靠，适用于大批量样品的测定。
二、免疫电泳法。
免疫电泳法是一种利用免疫反应原理进行蛋白质分离和测定的方法。
通过将血清样品在电泳条件下与特定抗体结合，然后在电泳板上进行电泳分离，最后通过染色或放射自显影的方法来定量测定血清清蛋白含量。
该方法对血清清蛋白的测定灵敏度高，分辨率好，适用于测定血清中各种蛋白质的含量。
三、免疫比浊法。
免疫比浊法是一种利用抗原与抗体结合后形成免疫复合物而产生光学测定信号的方法。
该方法操作简便，准确性高，适用于各种类型的血清样品，尤其适用于测定含量较低的血清清蛋白。
四、免疫化学发光法。
免疫化学发光法是一种利用化学发光技术进行免疫分析的方法。
该方法利用特定抗体与血清清蛋白结合后，通过化学发光底物产生发光信号，再通过光度计测定发光强度来计算血清清蛋白的含量。
该方法具有高灵敏度、高特异性和高稳定性的特点，适用于各种类型的血清样品。
五、高效液相色谱法。
高效液相色谱法是一种利用高效液相色谱技术进行血清清蛋白测定的方法。
该方法操作简便，分离效果好，准确性高，适用于各种类型的血清样品，尤其适用于测定含量较低的血清清蛋白。
总结。
以上介绍了几种常用的血清清蛋白测定方法，每种方法都有其特点和适用范围。
在选择测定方法时，需要根据实际样品的特点和要求来进行选择，以确保测定结果的准确性和可靠性。
希望本文能为相关研究和临床实践提供一定的参考价值。
白蛋白检测方法
白蛋白检测方法一、背景简介白蛋白（Albumin）是血液中最主要的蛋白质，占血液中蛋白质总量约 60-70％，主要由肝脏合成，用于维持血液循环及悬浮脂质，参与水溶性和油溶性物质的转运，和作为激活素，如激素和维生素辅助物质。
此外，白蛋白还参与病毒抗原的转移以及病毒抗体结合，在细胞外前列腺素合成反应中起调节作用。
由于白蛋白的重要性，其在血液中的含量可以用来衡量患者的健康情况和疾病的早期发现。
1.血清定量测定法：血清定量测定法是目前常用的检测白蛋白的方法之一。
这种方法采用改良型琼脂（Agarose）橡胶电泳法，在43℃温度下，就可达到白蛋白最佳分离的活性，使血清中的白蛋白分离出各种糖蛋白和其它血液蛋白，准确测定白蛋白含量。
此外，还可以利用反相高效液相色谱和免疫比浊的方法，检测细胞外的白蛋白含量。
2.尿液检测：尿液分析中，白蛋白可采用肝脏松来检测，该试剂可以检测尿液中的低浓度白蛋白。
此外，可采用紫外分光光度计，通过尿液中含有白蛋白的亚硝酸钠氮反应，来测定尿液中的白蛋白含量。
3.免疫分析技术：采用免疫分析法可以准确检测白蛋白含量，例如通过直接免疫吸附法（DIA）、反转阴性聚苯胺吸附-放射免疫分析（IRIA）和免疫化学法（ICA）。
另外还可以采用双抗体特异性抗原反应（SPR）、酶标法（EIA）和免疫钻取技术（IFCT）等高灵敏度的分析技术，快速测定血清中的白蛋白含量。
4、纳米生物传感技术：最近，科学家利用纳米技术来实现高灵敏度和快速的白蛋白检测。
例如采用纳米金粒子和金色葡萄球菌抗原作为特异性结合剂，可以快速灵敏地测定血清中的白蛋白含量。
总之，测定血清、尿液等体液中白蛋白含量的方法，有血清定量测定法、尿液检测、免疫分析技术和纳米生物传感技术等多种，其中最常用的是血清定量测定法，而近年来，采用纳米生物传感技术来检测白蛋白的方法也被广泛应用，得到了广泛的好评。
人血清白蛋白的提取纯化和分子量测定
盐析
广泛使用的分离蛋白质的方法，所谓的盐析就是用大量中性盐 使蛋白质从溶液中析出的过程。在高浓度的中性盐影响下，蛋 白质分子的水化膜被剥夺及所带的电荷被中和，因而破坏了蛋 白质溶胶的稳定因素，使蛋白质沉淀析出。但中性盐并不会使 蛋白质变性，因此，若除去中性盐或减低盐的浓度，蛋白质就 可以重新溶解。
Ⅱ.血清白蛋白的纯化：DEAE－纤维素阴离子交换剂
离子交换层析是一种用离子交换树脂作支持剂的层析方法。 本实验采用的是DEAE－纤维素阴离子交换剂（中强碱型），可电离基团是二乙基氨 基乙基，适用于大分子的分离。在离子交换层析中，蛋白质对离子交换剂的结合力 取决于彼此之间相反电荷基团的静电吸引，而这又和溶液的pH与盐离子浓度有关。 因此，蛋白质混合物的分离可以由改变溶液中盐离子浓度和 pH来完成，对离子交换 剂结合力最小的蛋白质首先从层析柱中洗脱出来 。除硫酸铵后的白蛋白溶液在 0.02mol/L pH7.4 醋酸铵缓冲液的条件下，加到二乙氨乙基（DEAE ）一纤维素层 析柱上，在此pH 时，DEAE 一纤维素带有正电荷，它能吸附带负电荷的白蛋白、α 及β 球蛋白（血清白蛋白等电点为4.5，绝大多数，α 及β 球蛋白等电点均小于6 ）。 随着盐离子浓度的提高，离子交换柱上的β －球蛋白、α －球蛋白、白蛋白依次被洗 脱下来。
Ⅲ.血清白蛋白相对分子量的测定：SDS－PAGE法
在一定范围内，蛋白质的迁移率和分子量的对数呈线性关系，符合下式： logMW=K-bx （MW为分子量，X为迁移率，k、b均为常数） 若将已知分子量的标准蛋白质的迁移率对分子量对数作图，可获得一条标准曲线，未知蛋 白质在相同条件下进行电泳，根据它的电泳迁移率即可在标准曲线上求得分子量。
样品2 样品2 标准蛋白样品1 （Marker） 样品2 样品2
检验科生化白蛋白测定的标准程序
白蛋白测定的标准程序【目的】体外检测血清白蛋白（ALB ）的含量。
【职责】1.实验室工作人员均应熟知并严格遵守本SOP，室负责人监督落实。
2.本SOP的改动，可由任一使用本SOP的工作人员提出，并报经下述人员批准签字：室负责人、科主任。
【标本类型及实验前准备】1.受检者的准备病人空腹12h，不饮酒24h后采集血样。
体检对象抽血前应有两周的的正常状况。
孕妇应在产后或终止哺乳3个月后检验。
此外，有无服用影响的药物以及采血的季节都应做相关记录。
2.静脉采血除非是卧床的病人，一般在采血时取坐位。
体位影响水分在血管内外的分布，会影响测试项目的浓度。
在采血前至少应静坐5分钟，一般从肘静脉取血，使用止血带的时间不超过1分钟，穿刺成功后立即松开止血带。
【仪器设备】东芝TBA-FX8全自动生化分析仪，低速离心机一、检测原理本试剂采用澳甲酚绿染料结合法，即在PH4.2条件下，白蛋白与澳甲酚绿结合形成蓝绿色络合物。
反应形成的蓝绿色络合物与样本中白蛋白浓度成正比。
通过在630nm处测定吸光度值的变化值，即可测得样本中白蛋白的浓度。
二、试剂1.试剂本科使用上海复星长征医学科学有限公司ALB试剂盒，为液体单试剂，其各组分如下：试剂组分澳甲酚绿0.35 mmol/L丁二酸缓冲液50 mmol/L2.校准要求2.1校准品：使用与试剂配套使用的复星长征临床化学校准血清（货号:449 5 0/4 5 9 5 0对测定进行校准。
2. 2校准间隔2. 2. 1试剂批号变更时使用与试剂配套使用的复星长征临床化学校准血清对测定进行校准后再对临床病人样本进行测定。
2. 2. 2室内质量控制出现问题时使用与试剂配套使用的复星长征临床化学校准血清对测定进行校准并确认问题得到解决后方可对临床病人样本进行测定。
三、操作按生化分析仪操作要求结合长征试剂说明书输入测定参数，并按校准、质量控制、样本测定的顺序进行常规测定。
四、计算白蛋白浓度（g/L ） 五、质控程序1. 建议采用朗道水平2（正常范围质控）和 水平3 （病理范围质控）两个水平的血清进行室内质控。
测定白蛋白的方法有哪些
测定白蛋白的方法有哪些白蛋白是人体血浆中含量最丰富的蛋白质，它在维持血浆渗透压、输送营养物质、调节酸碱平衡等方面发挥着重要作用。
因此，测定白蛋白含量对于临床诊断和疾病监测具有重要意义。
那么，我们该如何准确地测定白蛋白的含量呢？下面将介绍几种常见的测定方法。
一、免疫测定法。
免疫测定法是目前测定白蛋白含量最常用的方法之一。
它利用抗体与特定抗原结合的原理，通过免疫沉淀、免疫比浊、免疫电泳等技术手段来测定白蛋白的含量。
免疫测定法具有灵敏度高、特异性好、操作简便等优点，被广泛应用于临床诊断和科研领域。
二、色谱法。
色谱法是利用色谱柱分离和检测技术对样品中的成分进行分析和测定的方法。
在测定白蛋白含量时，常用的色谱方法包括高效液相色谱（HPLC）、气相色谱（GC）等。
色谱法具有分离效果好、分析速度快、灵敏度高等优点，能够准确地测定样品中白蛋白的含量。
三、比浊法。
比浊法是通过测定溶液浑浊度的变化来间接测定白蛋白含量的方法。
在碱性条件下，白蛋白与某些染料结合形成复合物，使溶液变得浑浊。
通过测定溶液的吸光度或浑浊度，可以推算出白蛋白的含量。
比浊法操作简便，成本低廉，适用于大批量样品的测定。
四、电泳法。
电泳法是利用蛋白质在电场中的迁移速度差异来分离和测定蛋白质的方法。
在测定白蛋白含量时，可以利用聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）或凝胶过滤法等技术进行分离和测定。
电泳法具有分辨效果好、操作简便等优点，适用于对蛋白质进行定量和纯度分析。
五、光度法。
光度法是通过测定物质对光的吸收、透射或散射来测定物质含量的方法。
在测定白蛋白含量时，可以利用紫外光度法或荧光光度法进行测定。
光度法具有操作简便、灵敏度高等优点，适用于对白蛋白含量进行快速准确的测定。
总结。
通过以上介绍，我们可以看到，测定白蛋白含量的方法有很多种，每种方法都有其特点和适用范围。
在实际应用中，我们可以根据实验目的、样品性质、设备条件等因素选择合适的测定方法。
希望本文对您了解测定白蛋白的方法有所帮助。
白蛋白内流实验方法
白蛋白内流实验方法白蛋白内流实验（Albumin Internalization Assay）是一种常用的细胞生物学实验方法，用于研究白蛋白（Albumin）在细胞内的摄取和代谢过程。
以下是该实验方法的详细说明：1. 细胞培养：选择适合的细胞系进行培养，如人类肾上皮细胞株HEK293T、小鼠巨噬细胞株RAW264.7等。
将细胞培养在含有适当营养物质的培养基中，通常为DMEM 或RPMI 1640，并加入10%胎牛血清（FBS）以提供生长因子和其他必需的成分。
2. 细胞处理：将细胞转移到培养皿中，并使其达到适当的细胞密度。
在进行内流实验之前，细胞需要适应培养基中不含白蛋白的条件，通常使用含有低浓度（例如0.5%）的FBS培养基进行预处理。
这样可以减少培养基中的自由白蛋白含量，避免影响实验结果。
3. 白蛋白标记：使用荧光染料或同位素标记的白蛋白作为实验物质。
荧光染料如Fluorescein isothiocyanate（FITC）或Alexa Fluor系列染料可以直接与白蛋白结合，形成标记的白蛋白。
同位素标记通常使用^125I-白蛋白。
4. 细胞内流：将标记的白蛋白添加到细胞培养基中，使其与细胞接触。
根据研究目的和时间点，可以选择不同的处理方式，如短时间孵育（例如10分钟）或长时间孵育（例如24小时）。
在孵育过程中，细胞会主动摄取白蛋白，并将其运输至细胞内部。
5. 终止内流：终止内流实验可以通过两种方式进行。
一种方式是通过快速冷冻法，将细胞迅速冷冻保存在液氮中，以停止细胞内的代谢活动。
另一种方式是用酸性缓冲液（如PBS加入0.2 M乙酸，pH 2.8）冲洗细胞，使其失去细胞外的标记白蛋白。
6. 细胞溶解和分析：将冻存的细胞或溶解的细胞用适当的缓冲液溶解，释放出细胞内的物质。
可以使用放射计数仪测量同位素标记的白蛋白的放射性，或使用荧光光度计测量荧光染料标记的白蛋白的荧光强度。
通过分析实验结果，可以得出关于白蛋白摄取和代谢的信息。
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Cisbio成功开发出“一步法”定量检测人血白蛋白（Albumin）
作者：鲁延军（luyanjun83@）
白蛋白（又称清蛋白，Albumin）是由肝脏合成，含量丰富的多功能非糖基化血浆蛋白，通常占血浆蛋白质总含量的50%以上。
白蛋白具备多种生理功能，如：维持血浆胶体渗透压、物质的结合
和转运、协调血管内皮完整性、保护血细胞，调节凝血、不激活炎症反应、器官保护、抗氧化，
损伤修复等。
因此，白蛋白是一个重要的新药开发靶点，以及有着重大意义的临床检测指标。
Cisbio China已利用HTRF技术，成功开发出“一步法”，定量检测人血白蛋白。
实验原理
该方法是采用夹心结合分析法。
分别在夹心配对的两个抗人血白蛋白抗体上标记能量供体荧光素（Eu/Tb Cryptate）和能量受体荧光素（XL665/d2），用人血清白蛋白作为标准品，制作标准曲线。
在384孔微孔板中加入10 uL样品或标准品，再加入两个检测抗体各5 uL，孵育2小时，即可上
机读数。
原理示意图
实验结果
Albumin标准曲线
稳定性测试 Z值测试应用实例
稀释线性测试
稀释倍数浓度回算
结论
•该方法操作简单：只需一步加入样品和检测试剂，孵育2个小时即可读值。
•高灵敏度和线性范围：1 ng/ml —— 1000 ng/ml。
•方法非常稳定：孵育从1小时至过夜，Z值为0.87。
•良好的样品稀释线性：R2 > 0.85。